植物组织培养-外植体的选择与建立
外植体选择的原则
外植体选择的原则外植体选取的原则是什么?1、选择优良的种质无论是离体培养繁殖种苗,还是进行生物技术研究,培养材料的选择都要从主要的植物入手,选取性状优良的种质或特殊的基因型。
对材料的选择要有明确的目的,具有一定的代表性,以提高成功的几率,增加其实用价值。
2、选择健壮的植株选取发育正常的器官或组织,再生能力强,组培易成功。
组织培养用的材料,最好是从生长健壮的无病虫的植株上选取发育正常的器官或组织。
因为这些器官或组织代谢旺盛,再生能力强,培养后比较容易成功。
此现象可能是由于外植体内部的植物激素水平能够在接种后得以维持所致。
3、选择适宜的部位植物组织培养几乎在植物体的各个部位都获得了成功,这些部位包括茎尖、茎段、皮层及维管组织、髓细胞、表皮、块茎的储藏薄壁细胞、花瓣、根、茎、子叶、鳞茎、胚珠和花药等。
但是不同种类的植物以及同一植物的不同器官对诱导条件反应是不一致的,有的部位诱导分化率高,有的部位很难脱分化,或者再分化频率很低。
4、选择适当的时期组织培养选择材料时,要注意植物的生长季节和生长发育阶段,对大多数植物而言,应在其开始生长或生长旺季采样,此时材料内源激素含量高,容易分化,不仅成活率高,而且生长速度快,增殖率高。
若在生长末期或已进入休眠期时采样,则外植体可能对诱导反应迟钝或无反应。
花药培养应在花粉发育到单核靠边期取材,这时比较容易形成愈伤组织。
百合在春夏季采集的鳞茎、片,在不加生长素的培养基中,可自由地生长、分化;而其他季节则不能。
叶子花的腋芽培养,如果在1~2月采集,则腋芽萌发非常迟缓;而在3~8月采集,萌发的数目多,萌发速度快。
对于大多数植物而言,应在其生长季节开始时采样。
在生长末期或已进入休眠期时取样,外植体可能对诱导反应迟钝或无反应,较难成活。
5、考虑器官的生理状态和发育年龄一般认为,生理年龄小的幼嫩组织较生理年龄大的成熟衰老组织具有较高的形态发生能力。
随着组织年龄的增加,器官的再生能力逐渐减弱甚至完全失去再生能力。
植物组织培养技术第四章:植物离体培养体系2
修剪外植体
接种
盖好瓶塞
外植体的灭菌处理
• 外植体灭菌流程 • 常用灭菌剂 • 灭菌关键性问题
– 适当的搭配 – 适当的浓度 – 适当的时间
外植体灭菌流程
材料的预处理 (剪切、清洗)
75%酒精 (20 s)
0.1%升汞 (15 min)
无菌水冲洗 (6次)
沥干
接种
外植体的预处理
对外植体进行修整,去掉不要的部分,在 流水下冲洗干净.
化的方法与技能。
一、外植体的种类与选择
1、外植体的种类
– 外植体是指植物离体培养中的各种接种材料。 包括植物体的各个器官、组织、细胞和原生质 体等。因此,可以作为培养对象的所有植物器 官、组织、细胞、原生质体等均是可选择的对 象。
常见外植体类型
• 茎尖(园艺植物组织培养中应用最多,繁殖率高, 不易发生遗传变异,但取材有限)
消毒注意事项
1、表面消毒剂对植物组织是有害的,应正确选择消毒 剂的浓度和处理时间,以减少组织的死亡。
2、在表面消毒后,必须用无菌水漂洗材料3次以上以 除去残留杀菌剂,但若用酒精消毒,则不必漂洗。
3、与消毒剂接触过的切面在转移到无菌基质前需将其 切除,因为消毒剂会阻碍植物细胞对基质中营养物质 的吸收。
第二节: 无菌外植体的选择与处理
本节主要内容
• 外植体的种类与选择 • 外植体的消毒 • 外植体的接种 • 外植体的初代培养与观察
–培养条件 –外植体的污染及其防治 –外植体的褐化及其防治 • 外植体的继代培养 –培养物的分化诱导培养:愈伤组织的诱导与分化;不
定芽的诱导与分化。 – 试管苗的增殖与生根诱导培养 – 试管苗的玻璃化与防治
4、若外植体污染严重则应先用流水漂洗1小时以上或 先种子培养得到无菌种苗,然后用其各个部分建立组 织培养。
组培苗生产技术—外植体的选择、处理与接种(植物组织培养课件)
3、蔬菜(龙牙百合) 龙牙百合特征:鳞茎,无皮,广卵形,外部鳞片长,将整个鳞茎 包裹,直径5~15厘米,白色,茎高90厘米左右,直立茎上叶 多而散生,披针形,叶色从浓绿,光滑。花单生茎顶。花朵 呈喇叭状长筒形,白色,有清香。
不能损伤组织材料,保持外植体的生活力,使外 植体在良好的培养条件下很快恢复生机,正常 生长和繁殖.
• 消毒剂的要求 • 要求:具有良好的消毒作用,既不会杀死植物的
组织细胞,又易被无菌水冲洗掉,不影响消毒后 外植体的生长和分化.
常用灭菌药剂的使用和效果
灭菌剂 使用浓度(%) 清除的难易 消毒时间 效 果
2、茎段(采用嫩茎的切段促进腋芽萌发,取材容易) 3、叶(幼嫩叶片组织通过愈伤组织或不定芽分化产生植株,
取材容易,操作方便,但易发生变异); 4、花球和花蕾 5、种子、根、块根、块茎、花瓣等。
(二)实例分析 1、花卉(非洲菊) • 常用茎尖、嫩叶、花托进行非洲菊的组织培养,也有利用
种子进行组织培养的。 • 茎尖培养操作麻烦,但对于脱毒苗的生产是最有效的。 • 花托培养可直接成苗, 既可保持种性,又易行、 耗时短,是首选的外植体。
• 首先要选择花大、花色艳丽、市场流行的品种,然后再选 择无病虫害、植株生长健壮、花色纯正的优良品种单株进 行取材。
• 一旦选出优株后,应进行挂牌标记,并一直在其上采取花 蕾。作为外植体的花蕾要选取直径在1㎝左右,而且未露 心的小花蕾,太大或是太小的花蕾均不能获得满意的效果 。
2、水果(草莓)
(1)选择结果性优良的草莓母株上新抽出的匍匐茎作外植体,以每年6~7 月份最为适宜。
龙牙百合的许多器官、组织都可作为外植体, 如鳞片、花梗、叶片、茎尖、腋芽、花瓣、花托 、花丝、花药、胚、子房、根尖等,其中采用鳞 片作外植体的较多。
植物组织培养的完整过程
植物组织培养的完整过程1.选择适宜的母体植物:选择具有优良性状和抗病虫害能力的母体植物,从中选择健康的叶片、茎段等组织作为外植体。
2.外植体的准备:将母体植物采集的叶片或茎段进行无菌处理,去除表面杂菌和泥沙,然后用75%酒精或漂白粉消毒外表。
3.外植体的切割:将无菌环境下的外植体切割成小片,大小约为0.5-1cm,同时尽量保持外植体的干燥,以防止外植体内部水分过多。
4.外植体的接种:将切好的外植体小片接种在含有植物生长激素的无菌培养基上。
培养基通常由无机盐溶液、有机源、糖和植物生长激素等组成,植物生长激素的种类和浓度会影响到后续培养过程中的分化和增殖。
5.分化:外植体接种到培养基后,会经历分化阶段,外植体的组织逐渐增殖和分化为不同种类的细胞,形成生长点。
6.增殖:通过定期的次级培养,子培养、分生器、病毒消除等手段,将外植体中的细胞不断分化和增殖,以便大量生产幼苗。
7.再分化:经过增殖后的外植体,可以再次进行分化,形成茎尖、腋芽或花蕾等器官,以便进一步培养和繁殖。
8.根的诱导:在合适的培养条件下,外植体可以诱导生成根系,这是为了使外植体脱离体外培养环境,继续生长的必要步骤。
9.移栽:当幼苗的根系已经发达足够,可以将外植体移栽到含有适宜营养成分的固体培养基上或直接移植到土壤中,进行实地管理和生长。
10.过程控制:在整个培养过程中,要控制好环境条件,例如温度、湿度和光照等,以保证培养的成功率。
11.病毒清除:植物组织培养中经常伴随着病毒感染问题,可以通过不同的方法对外植体和培养基进行检测和清除,以保证获得健康的植株。
总的来说,植物组织培养是一个复杂的过程,需要严格的无菌操作和合适的培养条件。
它广泛应用于植物的繁殖、遗传改良、新品种选育以及病毒和细菌的清除工作中,对推动植物学研究和农业生产具有重要的意义。
简述外植体的采集与处理操作流程
简述外植体的采集与处理操作流程下载温馨提示:该文档是我店铺精心编制而成,希望大家下载以后,能够帮助大家解决实际的问题。
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植物组织培养实用技术
3、继代培养
1)分离小鳞茎培养 选择直径达到0.5cm大小的小鳞茎,用镊子将
其轻轻剥离,置于增殖培养基中。
把原来的鳞片重新转到新鲜的诱导培养基上继续诱导 小鳞茎,小鳞茎还会在其他的部位产生,整个生长周 期可以延续5~6个月。
小鳞茎继代培养30天左右可增殖1~2倍。开始是在 鳞茎基部产生小鳞茎,40天左右小鳞茎长大,形成丛鳞 茎。小鳞茎慢慢抽出新芽,然后形成小植株。此时可把 丛芽切割继续培养增殖。
消毒步骤 ①用洗涤灵水溶液洗去材料表面的油质 ②用70%的乙醇浸泡数秒以除去表面的蜡质
③用3%的次氯酸钠溶液 浸泡消毒15~30min,然 后用无菌水冲洗3次
三、外植体的原代培养
把芽放在解剖镜下,无菌条件下,用镊子、刀 片、解剖针等工具把芽外面的幼叶和叶原基除 去,使生长点暴露。用利刀切下含有1~2个叶 原基,大小为0.5mm的生长点。
4、增重培养
直径达到1cm以上即可进行生根培养,对于达不到此 标准的小鳞茎,接种到增重培养基中,在此种培养基 上,小鳞茎较少长叶而明显增重。
如果能采用液体振荡培养,则增重效果更佳。一般转 速设为110r/min。是否可以进行浅层液体静置培养, 尚需试验。
五、试管苗的生根与练苗
将丛生的试管芽切成单株,接种在1/2MS+IBA 0.5mg/L+活性炭0.5%生根培养基上,7天后芽 基部开始形成根尖。慢慢伸长成辐射状白色的小 根。20天后根长达7~10cm,基部稍膨大。温度 设置为25~28℃,光照强度为1500Lx.每天给 予10~12h光照。
40天左右发育成球状的可见鳞片的小鳞茎。
四、龙牙百合的继代培养
大田培植
鳞茎
原代培养 形回顾
原代培养 形成再生芽
植物组织培养 组培苗生产技术外植体的选择处理与接种护理课件
ห้องสมุดไป่ตู้湿度
保持培养环境湿度适宜, 以防止培养基干燥和外植 体失水。
培养过程中的观察与记录
定期观察外植体的生长状 况,包括颜色、质地、生 长速度等,并记录观察结 果。
观察外植体是否有异常表 现,如病变、死亡或生长 异常等,及时采取相应措 施。
记录外植体的生长曲线, 以便了解其生长动态和规 律。
培养过程中的问题处理
污染问题
如发现外植体受到微生物污染, 应及时采取措施,如更换培养基、
增加消毒频率等。
褐化问题
外植体褐化是常见的现象,可以通 过添加抗氧化剂、调整培养基成分 等方法减轻褐化程度。
玻璃化现象
玻璃化是指培养中的植物组织出现 半透明状的现象,可以通过降低激 素浓度、增加培养基湿度等方法进 行改善。
外植体的繁殖与移栽
生根过程
无根苗在生根培养基上生长,经过细胞分裂和分 化形成根原基,进而发育成完整的根系。
移栽前的准备
在生根培养过程中,需要对外植体进行适当的炼 苗处理,以适应外界环境,提高移栽成活率。
移栽与驯化
移栽是将培养好的组培苗从培养 容器中取出,移植到自然环境中 的过程。
移栽后的管理:保持适宜的光照、 温度、湿度和水分条件,及时除 草、防治病虫害,促进组培苗健 康生长。
外植体的接种
无菌操作技 术
操作前准备
在操作前,需要对外植体进行彻底清洗,去除表面的污垢 和微生物。同时,操作人员需要对手部进行消毒,确保无 菌操作。
灭菌处理 外植体需要进行严格的灭菌处理,以消除附着在表面上的 微生物。常用的灭菌方法包括使用酒精、次氯酸钠或氯化 汞等消毒剂。
接种环境
接种环境需要保持无菌状态,通常在超净工作台或无菌室 内进行。同时,接种工具也需要进行消毒处理,避免交叉 污染。
组培实验外植体选择处理及接种培养
2.温度 离体培养中对温度的调控要比光照显得更 为突出。不同的植物有不同的最适生长温度,大多 数植物最适温度在23C-32C之间。培养室一般所 用的温度是25C±2C。低于15C或高于35C,对 生长都是不利的。
3.湿度 组织培养中的湿度影响主要有两个方面,一是培 养容器内的湿度,它的湿度条件常可保证100%。二是培 养室的湿度,它的湿度变化随季节和天气而有很大变动 。湿度过高过低都是不利的,过低会造成培养基失水而 干枯,或渗透压升高,影响培养物的生长和分化;湿度 过高会造成杂菌滋长,导致大量污染。因此,要求室内 保持70%-80%的相对湿度。
3.选择最适的时期 组织培养选择材料时,要注意植物的生长季节和植物 的生长发育阶段。如快速繁殖时应在植株生长的最适时期 取材,这样不仅成活率高,而且生长速度快,增殖率高; 花药培养应在花粉发育到单核期时取材,这时比较容易形 成愈伤组织。
4.选取适宜的大小 建立无菌材料时,取材的大小根据不同植物材料而异 。材料太大易污染,也不需要;材料太小,多形成愈伤组 织,甚至难于成活。一般选取培养材料的大小,在0.5cm-1.0cm。如果是胚胎培养或脱毒培养的材料,则应更小。
4.氧气 植物组织培养中,外植体的呼吸需要氧气。在液 体培养中,振荡培养是解决通气的良好办法。
1. 选择优良的种质 无论是离体培养繁殖种苗,或者是进行生物技术研究, 培养材料的选择都要从主要的植物入手,选取性状优良的 种质,或特殊的基因型。对材料的选择要有明确的目的, 具有一定的代表性,提高成功机率,增加其实用价值。
2. 选择健壮的植株 组织培养用的材料,最好从生长健壮的无病虫的植株 上,选取发育正常的器官或组织。因为这些器官或组织代 谢旺盛,再生能力强,比较容易培养成功。
• (5)布质制品的灭菌 • 湿热灭菌法:工作服、口罩、帽子等布质品均用湿
植物组织培养的工作流程
植物组织培养的工作流程
植物组织培养是一种常用的植物繁殖和研究方法,其工作流程包括以下几个主要步骤:
1.材料准备:选择适宜的原植物材料,如茎段、叶片、种子等作为外植体。
确保材料的新鲜性和无病原体污染。
2.表面消毒:将外植体进行表面消毒,以去除表面的微生物和杂质。
这可以通过在消毒剂(如酒精、次氯酸钠等)中浸泡、搅拌等方法进行。
3.分离和切割:根据实验需求,将外植体切割成适当大小的组织片段。
可以使用手工切割、离心分离或显微镜下的操作等方法进行。
4.培养基制备:制备适合植物生长和繁殖的培养基。
培养基通常包括基本盐、有机物、维生素、植物激素和其他添加剂。
根据实验需求可以调整培养基成分。
5.外植体接种:将分离和切割好的外植体进行培养基中的接种。
接种可以通过将外植体直接放置于培养基上或将其插入培养基中的凝胶(如琼脂)中进行。
6.培养条件控制:对培养的温度、光照、湿度和气体条件进行控制。
这些条件可以根据不同植物的生长习性和实验要求进行调整。
7.植物增殖和分化:在培养基中,外植体会通过分裂、再生和分化等过程进行植物增殖和不同类型的器官分化。
植物激素的添加和培养条件的调整可以影响生长和分化的过程。
8.增殖体移栽:将培养的增殖体转移到新的培养基或固体培养基中,以促进继续生长和发育。
9.实验分析:通过观察、记录和分析培养组织的生长情况、形态特征、遗传表达等参数,进行实验结果的分析和研究。
植物组织培养
植物组织培养重点名词解释:1、植物组织培养:是指在无菌和人工控制的环境条件下,利用适当的培养基,对离体的植物器官、组织、细胞及原生质体进行培养,使其再生细胞或完整植株的技术。
又称为植物离体培养2、外植体(explant):用于离体培养的那部分植物器官、组织或细胞。
3、愈伤组织(callus):是指外植体因受伤或在离体培养时,其细胞进行活跃的分裂增殖而形成的一种无特定结构和功能的组织。
4、离体生态学(in vitro ecology):是指研究离体培养环境条件控制的科学,其研究对象是培养基、植物材料和人工环境条件。
5、植物细胞全能性(totipotency):是指任何携带完整遗传信息的植物活细胞都具有表达其所有遗传信息的能力,能够发育成完整的植株。
胞需经过脱分化和再分化过程才能表现其全能性。
6、脱分化(dedifferentiation):成熟细胞或分化细胞转变为分生状态(即形成愈伤组织)的过程。
7、再分化(redifferentiation):成熟细胞或分化细胞脱分化转变为愈伤组织后重新分化成异质细胞的过程。
8、植物茎段培养是指对植物的带有一个以上定芽或不定芽的外植体(包括块茎、球茎、鳞茎在内的幼茎切段)进行离体培养的技术。
9、茎尖培养(shoot tip culture or apical meristem culture)是指对植物顶端的原分生组织和它衍生的分生组织的培养。
10、叶培养的意义:研究叶形态建成、光合作用、叶绿体形成等;叶细胞全能性;原生质体融合;无性繁殖系;诱变育种。
11、离体叶组织发育途径:直接产生不定芽,由愈伤组织产生不定芽,胚状体和其他。
12、植物器官培养是指对植物某一器官的全部或部分或器官原基进行离体培养的技术。
13、植物胚胎培养是指对植物的胚、胚乳、胚珠和子房等进行离体培养,使其发育成完整植株的技术。
包括:胚培养、胚乳培养、胚珠培养以及子房培养。
14、胚乳培养是指将胚乳组织从母体上分离出来,通过离体培养,使其发育成完整植株的技术15、胚珠培养是将胚珠从母体分离出来,无菌条件下让其进一步生长发育,使其形成植株的技术。
植物组培关键技术—外植体选择
外植体选取原则
天气要合适,尽可能在晴朗的天气,避免在 下雨时取外植体。
外植体选取原则
工具要选择这种无锈的钢刀或钢剪,避免母本感染,工具要 锋利,避免对母本材料进行挤压式的伤害。
外植体选取原则
选好后我们就用消毒过的工具将花梗从母本 上切除取下来,切的时候要注意要从基部留 取部分以对母本进行保护,这样我们就选取 了一株优良的母本做外植体。
外植体选取原则
第五,工具要选择锋利的无锈的钢刀或钢剪, 避免取材时对母本感染。
外植体选取原则-蝴蝶兰外植体的选取
蝴蝶兰是一种高档的室内花卉,其种子细小,自然条件下播种 困难,而且种子繁殖后代会产生变异,生产过程中采用植物组织 培养为主要育苗方式
蝴蝶兰外植体的选择
选择的品种要选择目前市场上受欢迎的优良品种,这样 组培的组培苗才有市场竞争力。目前市场上比较受欢迎的 蝴蝶兰品种有:大辣椒、火凤凰等。
蝴蝶兰外植体的选择
花序以及花梗的粗壮度等几个方面评价。
蝴蝶兰外植体的选择
一、叶片,叶片要厚实,有光泽,能 很好的进行光合作用。
蝴蝶兰外植体的选择
二、基部、基部要肥大,能为蝴蝶 兰生长储存足够养分
蝴蝶兰外植体的选择
三、根系发达,能更好的吸收养 分,能使花期维持更久
蓝莓外植体选择
蓝莓选择半木质化的当年生枝条为外植 体进行诱导快繁
粗肋草外植体选择
粗肋草外植体选择
粗勒草选择带节的茎段为外植体进行诱导培养
外植体选取原则
首先选择的母本要品种优良、无病虫害的健 壮植株为外植体,母本健壮,培育的后代才 会健壮。
外植体选取原则
第二,选择的部位要合适,选择幼嫩的,生 长旺盛的部位,而避免病残弱的部位。
外植体选取
植物组织培养实务--外植体的选择与消毒
植物组织培养实务--外植体的选择与消毒1、外植体的选择外植体是指植物组织培养中的各种接种材料。
从理论上讲,植物细胞都具有全能性,能够再生新植株,任何器官、任何组织、单个细胞和原生质体都可以作为外植体。
但实际上,不同品种、不同器官之间的分化能力有巨大差异,培养的难易程度不同。
为保证植物组织培养获得成功,选择合适的外植体是非常重要的。
(1)选择优良的种质及母株无论是离体培养繁殖种苗,还是进行生物技术研究,培养材料的选择都要从主要的植物入手,选取性状优良的种质、特殊的基因型和生长健壮的无病虫害植株。
尤其是进行离体快繁,只有选取优良的种质和基因型,离体快繁出来的种苗才有意义,才能转化成商品;生长健壮无病虫害的植株及器官或组织代谢旺盛,再生能力强,培养后容易成功。
(2)选择适当的时期组织培养选择材料时,要注意植物的生长季节和生长发育阶段,对大多数植物而言,应在其开始生长或生长旺季采样,此时材料内源激素含量高,容易分化,不仅成活率高,而且生长速度快,增殖率高。
若在生长末期或已进入休眠期时采样,则外植体可能对诱导反应迟钝或无反应。
花药培养应在花粉发育到单核靠边期取材,这时比较容易形成愈伤组织。
百合在春夏季采集的鳞茎、片,在不加生长素的培养基中,可自由地生长、分化;而其他季节则不能。
叶子花的腋芽培养,如果在1月至翌年2月间采集,则腋芽萌发非常迟缓;而在3-8月间采集,萌发的数目多,萌发速度快。
(3)选取适宜的大小培养材料的大小根据植物种类、器官和目的来确定。
通常情况下,快速繁殖时叶片、花瓣等面积为5mm2,其他培养材料的大小为0.5~1.0cm。
如果是胚胎培养或脱毒培养的材料,则应更小。
材料太大,不易彻底消毒,污染率高;材料太小,多形成愈伤组织,甚至难以成活。
(4)外植体来源要丰富为了建立一个高效而稳定的植物组织离体培养体系,往往需要反复实验,并要求实验结果具有可重复性。
因此,就需要外植体材料丰富并容易获得。
(5)外植体要易于消毒在选择外植体时,应尽量选择带杂菌少的器官或组织,降低初代培养时的污染率。
植物组织培养:第4章 外植体的选择、灭菌及培养
防细菌滤膜的网孔的直径为0.45μm以下,当溶液 通过滤膜后,细菌的细胞和真菌的孢子等因大于滤膜直 径而被阻。
在需要过滤灭菌的液体量大时,常使用抽滤装置; 液量小时,可用注射器。使用前对其高压灭菌,将滤 膜装在注射器的靠针管处,将待过滤的液体装入注射 器,推压注射器活塞杆,溶液压出滤膜,从针管压出 的溶液就是无菌溶液。
由于在消毒后的环境里和物品上没有活着的微生物, 所以通过严格消毒灭菌的操作空间(接种室、超净台、 等)和使用的器皿,以及操作者的衣着和手都不带任何 活着的微生物。在这样的条件下进行的操作,就叫做无 菌操作。
一 常用的灭菌方法 物理方法
化学方法
湿热灭菌(常压或高压蒸煮) 干热灭菌(烘烧和灼烧) 射线处理(紫外线、超声波、微波) 过滤除菌 大量无菌水冲洗
3. 叶片:由于叶片的来源最有保证,因而许多植物的组 织培养以叶片为起始培养物,如,玫瑰、海棠、矮牵 牛和豆瓣绿等许多植物。
4.子叶或下胚轴:对一些培养较困难的植物,则往往可 以通过其子叶或下胚轴来建立其组织培养体系。 若有可能,最好对培养较困难的植物各部位的诱导及 分化能力进行比较,从中筛选出最佳外植体。
甲醛(福尔马林)
过氧化氢 高锰酸钾 来苏儿 漂白粉 次氯酸钠 升汞(氯化汞) 酒精
(一)物理方法灭菌
1.湿热灭菌(高压蒸汽灭菌)—培养基灭菌
培养基在制备后的24h内完成灭菌工序。高压灭菌 的原理是:在密闭的蒸锅内,其中的蒸气不能外溢, 压力不断上升,使水的沸点不断提高,从而锅内温度 也随之增加。在0.1MPa的压力下,锅内温度达121℃。 在此蒸气温度下,可以很快杀死各种细菌及其高度耐 热的芽孢。
植物组织培养的基本知识及操作技术
氨基酸 (almino acide)
3、有机附加物 (天然复合物)
10%—20%
150-200ml/L
150—200g/L
0.01%-0.05%
浓度:
有机附加物
椰乳
香蕉
马铃薯
酵母提取液
植物生长调节物质(hormone)
01
赤霉素(gibberellic acid)
02
细胞分裂素类 ( cytokinin )
第一节 植物组织培养的一般原理
器官发生
胚胎发生
细胞全能性的实现 实现条件:离体;培养条件 经历的过程:脱分化----再分化---- 再分化的方式
离体的植物组织在组培条件下形成吴根苗、根、芽等器官的过程称为器官发生。
发生类型
发生方式
直接途径
间接途径
先芽后根
先根后芽
根芽同时发生
植物细胞未经过性细胞的融合而通过与合子胚发生类似的途径形成完整植物的过程称为胚胎发生。
缓冲室
培养室
无菌室(一)
无菌室(二)
主要单元功能介绍:
准备室:
洗涤区:排水良好、地板耐湿
灭菌区:地面、墙面防潮、耐高温;绝缘
化学实验区:器皿洗涤、干燥、保存;药品称量、溶解;培养基配制;材料预处理;培养材料观察分析等。主要设备包括:工作台、药品柜、冰箱、烘箱、天平、蒸馏水器等。
无菌操作室:
灭菌锅
普通医用灭菌锅 大的高压灭菌锅 培养基、水、各种器皿的消毒灭菌
烘箱(干燥箱) 80℃ 测定植物组织干重 80-100 ℃ 烘干物品 150-160 ℃ 干热灭菌
冰箱 试剂和母液的贮藏;细胞及其他材料的冷藏保存;植物材料的处理等。
酸度计 培养基及酶制剂的pH值调整
外植体培育实验报告
一、实验目的1. 了解外植体培育的基本原理和操作步骤;2. 掌握外植体消毒、接种和培养的方法;3. 学习观察和记录外植体的生长和发育过程;4. 分析影响外植体生长和发育的因素。
二、实验原理外植体培育是植物组织培养技术的重要组成部分,其原理是利用植物细胞的全能性,将植物体上的器官、组织或细胞分离出来,在人工控制的条件下进行培养,使其分化、生长、发育,最终形成完整的植株。
三、实验材料1. 植物材料:选取生长旺盛、无病虫害的植物器官或组织作为外植体,如叶片、茎尖、根尖等;2. 培养基:MS培养基;3. 消毒剂:70%乙醇、75%酒精、氯化汞;4. 培养容器:无菌培养皿、无菌试管;5. 培养箱:光照培养箱;6. 其他工具:剪刀、镊子、无菌滤纸、无菌水、酒精灯等。
四、实验步骤1. 外植体消毒:将外植体放入70%乙醇中浸泡30秒,取出后用无菌水冲洗3次;再用75%酒精浸泡30秒,取出后用无菌水冲洗3次;最后用氯化汞浸泡5-10分钟,取出后用无菌水冲洗5次。
2. 外植体接种:将消毒后的外植体剪成约1-2cm长的段,接种到MS培养基上。
3. 培养基配置:将MS培养基母液与蒸馏水按比例混合,加入适量的蔗糖和琼脂,搅拌均匀后分装到无菌培养皿中,灭菌冷却备用。
4. 培养条件:将接种好的外植体放入光照培养箱中,温度控制在25-28℃,光照强度为1000-2000勒克斯,每天光照12-16小时。
5. 观察和记录:定期观察外植体的生长和发育情况,记录外植体的形态变化、生长速度、分化情况等。
6. 数据分析:对外植体的生长和发育数据进行分析,探讨影响外植体生长和发育的因素。
五、实验结果与分析1. 外植体形态变化:在培养过程中,外植体逐渐生长、分化,形成愈伤组织、芽和根。
2. 生长速度:外植体的生长速度受多种因素影响,如外植体种类、培养基成分、培养条件等。
3. 分化情况:外植体的分化情况受培养基中植物激素的种类和浓度、光照强度等因素影响。
任务三:外植体的选择和处理
(3)不定芽的发育 在培养中由外植体产生不定芽,通常首 先要经脱分化过程,形成愈伤组织的细 胞。然后,经再分化 。 (4)体细胞胚状体的发生与发育 体细胞胚状体类似于合子胚但又有所不 同,它也通过球形,心形,鱼雷形和子 叶形的胚胎发育时期,最终发育成小苗 。
园艺植物快繁与脱毒技术
任务三、外植体的选择和处理
学习目标:学习外植体的取材方法及外 植体褐变和玻璃化的处理方法 任务要求: 能够对外植体进行选择及处理 ,能够对掌握试管苗的驯化基本步骤, 能够对外植体的褐变及玻璃化采取相应 的处理方案。
学习内容:
(1)外植体的取材方法; (2)掌握外植体的消毒及处理 (3)无菌接种的步骤 (4)外植体的培养方法和步骤; (5)试管苗驯化的基本程序; (6)外植体褐变和玻璃化的处理;
二、常用的消毒方法: 1、茎切段和叶片的消毒 2、果实和种子的消毒 3、根及地下贮藏器官的消毒 4、花药的消毒
一、外植体的接种
子情境二、外植体的接种与培 养
1、接种室的消毒 接种前应进行地面的 清洁工作,可用甲醛或高锰酸钾熏蒸。 2、外植体的分离、接种和培养 外植体 材料的分离通常在无菌滤纸上进行。较大 的材料肉眼观察即可分离,较小的则需在 解剖镜下放大操作;
酒精擦拭手
外植体消毒
浸泡5min
器械消毒
酒精擦拭
酒精擦拭培养皿
酒精灯灼烧
旋转灼烧
取外植体
修剪外植体
接种
盖好瓶塞
2、培养步骤 (1)初代培养 初代培养旨在获得无菌材料和无性繁殖系 。 (2)顶芽和腋芽的发育 采用外源的细胞分裂素,可促使具有顶芽或 没有腋芽的ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ眠侧芽启动生长,从而形成 一个微型的多枝多芽的小灌木丛状的结构 。
植物组织培养学课件 (5)
⑶外植体的大小
一般来讲,较大的外植体有较大的再生能力 许多植物的茎尖培养表明,材料越小,成活率越 低(临界大小一般为一个茎尖分生组织带1~2个 叶原基) 但也不能过大,过大则难以消毒灭菌,容易引起 污染 一般愈伤组织诱导,可将材料切成5mm小段或 5m×5m小块 脱毒培养在保证存活的前提下应尽量小(0.1~ 0.2mm)
• • • • •
未成熟胚、子房及花药灭菌 选取适宜时期的花器官,对其进行适当整理 70-75%酒精处理0.5-1.0 min,立即除去酒 精 加入消毒液,同时滴加1-2滴Tween20,在摇 床上消毒10-20min,重复一次,消毒5min 弃去消毒液,用无菌水清洗5次,每次1-2min 灭菌后置于垫有无菌纸的培养皿中备用
驯化大棚
4.培养条件的控制
光照 温度 湿度
培养基pH
气体调节
光照
• 光照包括:时间、强 度和光质; • 光照时间影响植株再 生状态 • 光照强度应植物类型 不同而异 • 光质研究报道较少
温度
• 常用温度范围一般在20~30℃ • 低于15℃或高于35℃均会影响培养物的生 长 • 适宜的温度有利于细胞分裂;适当提高温 度,则有利于细胞伸长;而在一定范围内 降低培养温度,则使细胞的质量增加
切取
接种
外植体接种的原则
接种数量 一般材料每瓶3~5个;贵重或稀少的材料, 切勿用大的培养瓶,应用小三角瓶或试管, 每瓶只接种1~2个外植体 如果用大的培养瓶,一般可接种10个外植体, 但只要其中一个发生污染,由于培养基表面 水的流动,全瓶外植体都将被污染
•
•接种位置
如果一瓶只接种一个外植体 , 就放在培养基 的正中央;接种几个外植体就分布均匀地接 入培养基中
外植体的选取原则
• 产生原因:是在某个环节消毒灭菌布彻底, 如:无菌水消毒布彻底,或操作中某种工具带菌, 违反操作规程、说话、咳嗽等都能引起杂菌感染。 • 因此,接外植体,进行无菌操作前工作人员一定 要注意自身卫生,最好戴帽子和口罩操作。
②真菌污染
• 病症:首先在有真菌孢子存在的地方产生白色的 菌丝,经常可以在外植体和培养基表面看到。特 别是夏季阴雨天,空气湿度大,周围环境不清洁, 含孢子量较多,甚至棉花塞上也落上了孢子。
外植体取材方法--确定大小
取大小适中的茎段、芽体进行清洗、灭菌,大了容易污染,小了不项
1.采样 2.洗涤 3.表面灭菌 4.分割(外植体切割) 5.接种
1.采样
• 在采样前除应预先制备好用于接种的培养 基外,还应携带刀、剪、广口瓶、塑料袋、 采集箱(袋)等, • 到田间或盆栽植物中选取洁净、无病虫伤 害的健壮植株。剪取比较幼嫩,生长能力 较强的部位,但又不能太嫩,
组织培养中降低污染率是工厂化生产 中不可忽视的技术环节 1、防止材料带菌 2、防止用具带菌 3、操作室要处于无菌状态 4、操作人员要按照操作程序进行
对于大多数植物来讲,茎尖是最好的部位,由于其形态已 基本建成,生长速度快,遗传性稳定,也是获得无病毒苗 的重要途径,但茎尖往往受到材料来源的限制,而采用茎 段可解决培养材料不足的困难。
常用的外植体种类: ①茎尖(园艺植物组织培养中应用最多,繁殖率高,不易发 生遗传变异,但取材有限) ②茎段(采用嫩茎的切段促进腋芽萌发,取材容易) ③叶(幼嫩叶片组织通过愈伤组织或不定芽分化产生植株, 取材容易,操作方便,但易发生变异); ④花球和花蕾 ⑤种子、根、块根、块茎、花瓣、胚等。
外植体取材方法--清洗
剪切好一定大小的外植体,在灭菌前要充分浸泡、冲洗,尽量降低 均量。
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第三节 外植体(培养物)的建立
• 抗生素对植物材料的毒性因植物类型不同差异很大,因 此,用植物离体培养进行基本的测试是实验成功的重要 一步。由于植物毒性影响或抗生素渗透性差,在处理污 染实验中,抗生素对分离组织也可能失效。了解抗生素 对细菌和植物二者的效应,是消除污染和保护培养物的 关键。 • 此外,抗生素常作为预防污染作用而加入到培养基中, 或者在已鉴定出细菌污染的情况下,用于抑制细菌生长 或消灭细菌。抗生素的抗菌作用在中性培养基(pH6.5— 7.5)中比常规状态提高许多,而在酸性条件下则失效, 而且抗生素具有热敏感性,不能采用高温高压灭菌,只 能采用过滤灭菌的方法加入培养基。
根据细胞全能性学说,植物体的每一个细胞 都含有全部的遗传信息,都能再生出一个 新植株。但是,要使每个细胞的全能性都 表现出来,在目前还是不易做到的事。因 而,外植体(初始培养物)的选择非常重 要。
第二节 外植体(培养物)的选择
1、基因型:
再生能力 (1)、双子叶>单子叶; (2)、被子植物>裸子植物; (3)、双子叶植物中:茄科(Solanacea);秋海棠 科(Begoniaceae);景天科(Crassulaceae); 苦苣苔科(Gesneriaceae);十字花科(Cruciferae) 再生力特强;郁金香(Tulip)再生力较弱。 (4)、同一种植物中:活体(in vivo)再生力强者, 离体(in vitro)再生力也强。
3 个材料/容器: 污染率=100-(60%)3=78.4% 污染量=100X78.4%=79 获得量= 100X(60%)3= 21 4 个材料/容器: 获得量= 100X(60%)4=13 5 个材料/容器: 获得量= 100X(60%)5=8 • 防止污染的对策: 小容器、多数量、尽量分散、相 互隔离
第三节 外植体(培养物)的建立
常用如下抗生素: 链霉素(10 mg/L)、青霉素(20mg/L)、地霉素(5mg /L)、夹竹桃霉素(20mg/L)、杆菌肽(50mg/L)、 新霉素(1mg/L)。 例如:用奥复星(氧氟沙星注射液)40~80 mg/L、 注射用的青霉素96~192 mg/L可有效抑制枣树试 管苗的细菌污染,而链霉素40~800mg/L和硫酸 庆大霉素20~60mg/L抑制枣树细菌效果不明显。
第三节 外植体(培养物)的建立
防止方法: • 在培养基中加入抗 生素。 • 利用茎尖培养。 • 利用无菌材料。
第三节 外植体(培养物)的建立
抗生素防治内源菌: • 外植体顶芽培养发现的污染、不同采收期外植体存 在的污染和表面彻底消毒后的细菌污染都可能是内 生菌造成的。内生菌的污染,无论用何种表面消毒 方法都不能彻底消除,因此,必须使用抗生素进行 间接防治处理。 • 选用适当的抗生素特别重要。理想的抗生素应该具 备以下特性:可溶性、稳定性、不受pH高低和培养 基差异的影响、无边界效应、广谱性、杀菌性、不 产生抗性诱导、既廉价又对人体无害。
第三节 外植体(培养物)的建立
(4)、附生菌控制:
• 采用化学杀菌剂可以有效地杀死附生菌,但是一些较特殊的外植体材料,如密披绒 毛的叶片或幼果、花芽或带苞片的叶芽,附生菌可能潜伏在外植体上,无法彻底清 除。这时,必须采取一些特殊的措施,才能有效控制附生菌。 取材来源: • 从保护条件下生长的植株上取材,可有效地控制微生物污染。保护条件指温室、培 养箱、生长室等。从温室、培养箱里取材,可有效减少附生菌的群体数量。从栽培 于温室中的植株上取材和从露地取材相比,前者污染率更低。 • 所取植株的生长土壤,是组织培养中的一个重要污染源。如果采用温室栽培,事先 应进行土壤灭菌。此外,灌溉水也可能成为污染源。取材于用过滤水和用缄市饮用 水灌溉的植株,前者大大降低了微生物污染.
第三节 外植体(培养物)的建立
(1)、产生污染的因素: ①外植体:通常多年生的木本材料比一二年生的草本材料带菌多; 老的材料比幼嫩的带菌多;田间生长的材料比温室的带菌多; 带泥土的材料比清洁的带菌多。一年中以雨季的材料带菌多, 一天中以中午阳光最强时的材料带菌少。 ②培养基:高压蒸汽灭菌的温度、压力、时间和正确使用情况, 以及过滤灭菌中过滤膜孔径、过滤灭菌器械的灭菌处理、过滤 灭菌操作等均影响培养基的灭菌效果。 ③操作环节:接种室是否清洁、干燥、密闭,是否经常用紫外线 灯照射、甲醛熏蒸、70%酒精喷雾杀菌等,操作是否等熟练。 ④培养环境:培养室要求清洁、密闭。每天用70%酒精喷雾除菌、 降尘,每周用少量甲醛熏蒸灭菌。如有空气过滤装置效果更好。 培养室相对湿度太高时,污染加重。
第三节 外植体(培养物)的建立
(5)、内源菌防治: 植物组织培养中对材料只能进行表面灭菌, 而对材料组织内部所带的细菌往往难 以对付。 1. 表面污染与内源污染的区别:
第三节 外植体(培养物)的建立
• 常见内源菌:芽孢杆菌(rod bacteria)为主,尤其是 Bacilus licheniformis 和B.subtilis (“white ghost”)。 真菌中主要是镰刀菌(Fusarium)、轮枝孢菌(Verticillium)、 瓶霉菌(Phialophora)和丝核菌(Rhizoctonia)。 • 内源菌的检测:通常情况下,通过观察培养瓶就可看到 一些污染的迹象;但是对于生长缓慢的细菌或内生菌来 说,仅靠肉眼观察是不够的,必须通过指示培养,即采 用微生物特别容易生长的培养基和培养条件,让外植体 上的微生物快速生长,然后予以鉴定[培养基中加入蛋白 胨(peptone)、胰蛋白胨(trypone)或酵母汁(YE)]。
• 污染估算:首次接种通常污染 率40—60% 按40%计:接种100个材料 1个材料/容器: 污染量=100X40%=40 获得量=100-40=60。 2个材料/容器: 2污染:1X40%X40%=16% 弃掉 1污染:2X40%X40%=32% 2未污染:60%X60%=36% 污染率=100-36=62% 污染量=100X62%=62 获得量=100-62=48
3、根据时间和季节取材
生 长 物 质 含 量
抑 制 物 质 含 量
时间或季节
时间或季节
第二节 外植体(培养物)的选择
3、根据时间和季节取材
取材时间 取材时间
物 质 含 量
抑制物质
生长物质
时间或季节
第二节 外植体(培养物)的选择
4、根据母株位置选择:
具原基结构的外植体:茎尖、 侧芽、原球茎、鳞芽、分生 组织 不具原基结构的外植体:根、 茎、叶、花、果等器官,需要 脱分化。
4、污染(Infection)
能否有效地控制微生物污染是植物离体培养是否成功的关键技术 之一。对于离体培养的探索性研究实验,污染会导致实验失败; 对于大规模的离体繁殖生产来说,污染使生产成本大大增加。 因此,无论是科研机构还是生产厂家都十分重视微生物污染问 题。 植物离体培养中的污染可分为外植体、培养基、无菌操作和培养 环境四个方面。其中培养基和无菌操作方面的污染,目前已得 到十分有效的控制。外植体方面污染最复杂,也最难控制,其 可能是细菌引起的,也可能是真菌引起的;微生物可能是附生 性的,也可能是内生性的。近年来,国外较重视各种微生物的 鉴定,并根据不同的微生物种类采取相应的控制措施,这方面 的研究进展较快。
第三节 外植体(培养物)的建立
5、褐变(Browning): (1)、概念:外植体在培养容器中被氧化变褐而死亡 的现象。
第三节 外植体(培养物)的建立
(2)、外植体材料褐化原理:
植物组织的褐化是通过含铜的氧化酶如多酚氧化酶和 酪氨酸酶起作用所致,其作用的底物通常是酪氨酸 和邻位羟酚类化合物如绿原酸等。酶和底物在植物 正常生长的情况下是在组织内的不同部位,当细胞 受伤或组织垂死时,酶和底物就跑到一起发生作用, 当酚被氧化为活性酸化物和环形多聚体氧化蛋白时 便形成深色化合物,这些物质又很快被氧化和变成 复杂的抑制性物质,从而导致外植体材料变褐死亡 并使培养基变褐 。
第三节 外植体(培养物)的建立
(6)、特殊污染源: 污染中特别注意一种呈乳白色的细菌污染,这种 细菌为芽孢杆菌。法国林木育种协会鉴定为迟 缓芽孢杆菌(Bacilluslenlus),它外被荚膜,耐 高温,一般灭菌剂难以杀死。它可以随培养材 料、用具等传播;它可出现在培养基表面,或 呈滴形云雾状存在于培养基内。 若出现应及时淘汰污染源,并对所用过的器皿和 用具进行严格高温灭菌处理。
第三节 外植体(培养物)的建立
• 与取样外植体年龄有关: 引起褐化程度的轻重常与取 样外植体组织的年龄有关, 通常是幼龄部位产生褐化 较轻,随着组织的老龄化 而褐化加重。因此,在外 植体接种时常需要剥去鳞 片和大叶片,尤其是以切 取幼嫩的芽尖或切取顶芽 分生组织(或带少量叶原 基)接种更为理想 。
2、根据母株的年龄和生长发育阶段选择:
年 龄 或 幼 化 程 度
外 植 体 建 立
阶 段 发 育
外 植 体 建 立
母株年龄和幼化程度与外植体建立
母株阶段发育与外植体建立
第二节 外植体(培养物)的选择
杜鹃花 ‘van Weerden Poelman’
第二节 外植体(培养物)的选择
第二节 外植体(培养物)的选择
第三节 外植体(培养物)的建立
1、主要任务:成功的将外植
体建立在试管中。
2、主要技术环节:
(1)、外植体的选择 (2)、外植体的消毒 (3)、培养基的选择、配制 (4)、外植体消毒与接种
3、关键问题:
(1)、污染(Infection) (2)、褐变(Browning)
第二节 外植体(培养物)的选择
材料预处理: • 在对外植体进行常规化学灭菌之前,对特殊材料进行特殊预处理,可以收到很好的 效果。例如,在对密披绒毛的枇杷幼果进行灭菌之前,先把绒毛刮去,灭菌效果很 好。对于密披绒毛的叶片,可先连枝带叶放在自来水下冲洗,去除污物后,用0.5 %Tween20浸1h(其间换新鲜液2~3次),然后进行常规灭菌,就可起到彻底杀菌 的作用。对兰花花芽常规灭菌之前,先用10%的杀藻铵(Benzalkonium Chloride) 溶液浸渍材料10min,效果很好。