紫薯酒酿造工艺优化及挥发性香味成分分析

紫薯酒酿造工艺优化及挥发性香味成分分析
袁杰彬;孙琳;李茂
【摘要】在单因素实验的基础上,采用Box-Behnken响应面法对紫薯酒发酵工艺条件进行优化.选取温度、糖度、pH值、接种酵母量为自变量,花青素与酒精含量为双响应值,建立模型,并进行优化.同时为更加准确的描述紫薯酒品质特征,采用顶空固相微萃取法提取富集紫薯酒的挥发香气成分物质,再运用GC-MS联用法对酒中香气组分进行测定和分析,尽可能详细表达出紫薯酒的香味特征.实验结果表明,最佳发酵条件为:初始糖度为21°Bx、初始pH4.0、酵母接种量0.55‰、温度21.5℃.香气分析共计从紫薯酒中检测到约40余种挥发性香气成分.
【期刊名称】《酿酒科技》
【年(卷),期】2019(000)007
【总页数】9页(P69-77)
【关键词】响应面优化;紫薯酒;发酵;香气成分
【作者】袁杰彬;孙琳;李茂
【作者单位】宜宾五粮液股份有限公司技术研究中心,四川宜宾644000;宜宾五粮液股份有限公司技术研究中心,四川宜宾644000;宜宾五粮液股份有限公司技术研究中心,四川宜宾644000
【正文语种】中文
【中图分类】TS262.4;TS261.4
紫薯是一种富含花青素的薯类新品种，除含有普通甘薯所具有的营养物质以外，还富含紫薯花青素（PSPAs），已有研究证实紫薯花青素具有消炎[1]、抗氧化生物活性[2]、抗突变[3]、对肝损伤提供保护[4]、抗动脉粥样硬化[5]等益处。

以紫薯为原料，参照果酒酿造工艺开发的紫薯酒饮料新品，具有良好的色泽和薯香，有别于传统的调配酒饮料，不仅保留了绝大部分紫薯营养物质，还保留了紫薯中的花青素。

发酵是紫薯酒生产过程中的重要环节，直接影响后期成品酒的品质，本研究采用Box-Behnken响应面法对紫薯酒发酵条件进行优化，找出最佳发酵条件，同时对紫薯酒的香气成分进行研究，采用顶空固相微萃取法提取富集紫薯酒的香气成分物质，再运用GC-MS联用法对紫薯酒中香气组分进行测定和分析，尽可能详细表达出紫薯酒的香味特征。

为进一步提高紫薯酒品质做好基础研究，促进紫薯产业的发展。

1 材料与方法
1.1 材料
紫薯：产地四川宜宾。

试剂及耗材：柠檬酸、碳酸钙，国产分析纯；α-淀粉酶、糖化酶，无锡赛德生物工程有限公司；安琪高活性酿酒干酵母；矢车菊素标品，纯度＞98%，成都曼思特生物科技有限公司；高速冷冻离心机，德国eppendorf；安捷伦7890气相色谱仪质谱仪联用；紫外可见分光光度计，国产754型；酒精计、糖度计，成都科普达科技有限公司；恒温培养箱，上海一恒科技有限责任公司。

1.2 实验方法
1.2.1 紫薯汁制备
紫薯蒸煮熟透，去皮切块后按照料液比为1∶2加水（含0.01%柠檬酸）打浆，经α-淀粉酶液化，糖化酶糖化后过滤取汁，冷藏备用。

1.2.2 发酵条件
1.2.2.1 单因素实验设计
温度对紫薯酒发酵影响：调整发酵液起始糖度为20 °Bx，pH4.0，接菌量为
3.0‰，分别于16 ℃、20℃、24℃、26℃、28℃、32℃发酵7 d，测定酒精度及花青素含量。

pH值对紫薯酒发酵影响：初始糖度调整为20°Bx，分别调发酵液pH3.5、pH4、pH4.5、pH5、pH5.5，接菌量均为3.0‰，于26℃发酵7 d，测定酒精度及花青素含量。

初始糖度对紫薯酒发酵影响：发酵液pH4.0，分别调整糖度为16 °Bx、18 °Bx、20 °Bx、22 °Bx、24 °Bx、26°Bx，接菌量均为1.5‰，于26℃发酵7 d，测定酒精度及花青素含量。

接菌量对紫薯酒发酵影响：发酵液初始糖度均调整为20°Bx，pH4.0，调整接菌量依次为0.5‰、1‰、1.5‰、2‰、2.5‰，26℃发酵7 d，测定酒精度及花青素含量。

1.2.2.2 响应面实验设计
根据单因素实验结果，采用4因素3水平的Box-Behnken响应面设计方法进行试验，见表1，以酒精含量和花青素含量为响应值，优化发酵条件。

表1 响应面实验因素水平编码表因素A：温度(℃)B：初始pH值C：初始糖度(°Bx)D：接种量(‰)水平-1 20 3.5 20 0.3 01 22 4 21 0.5 24 4.5 22 0.7
1.2.3 紫薯酒香气成分测定
取8 mL紫薯酒于20 mL萃取瓶中，加入1.0 g氯化钠，48℃吸附平衡30 min。

吸附结束后将吸附有目标物质的萃取头插入进样口，解析6 min。

用相同方法处理其余待测酒样。

色谱分析条件：选择不分流模式，程序升温：35℃保持5 min，以10℃/min升
至100℃，保持3 min，以15℃/min升至230℃，保持5 min。

载气为高纯度氦气，流量为1 mL/min，进样口温度和检测器及各接口温度均设定为250℃。

质谱分析条件：电力方式为EI,电压70 eV，离子源温度230℃，四级杆温度150℃，扫描范围30～800 u。

1.2.4 指标测定
1.2.4.1 酒精度
参照GB/T 15038—2006测定。

1.2.4.2 花青素含量[7]
将紫薯酒于12000 r/min离心5 min，取上清液，以水为空白，将稀释后的酒液
于530 nm处测定吸光度，3次测定值求平均值。

原酒中花青素含量的（μg/mL）计算公式：
2 结果与分析
2.1 单因素实验结果
2.1.1 温度对紫薯酒发酵影响
温度对紫薯酒发酵的影响如图1所示，随着发酵温度的逐步升高，紫薯酒中花青
素含量在一定温度范围内较为稳定，超过24℃，花青素含量呈下降趋势；酒精含
量随着温度的升高而逐渐增加，当温度达到22℃时酒精含量最高，进一步升高温度，加快了酵母生长老化速度，酒精度及花青素含量均降低。

综合考虑两种评价指标选择发酵温度，确定20℃、22℃、24℃为紫薯酒的响应面优化设计对应温度因素水平，以确定最佳发酵温度。

图1 温度对紫薯酒发酵的影响
2.1.2 pH值对紫薯酒发酵影响
pH值对紫薯酒发酵的影响见图2。

由图2可知，随着发酵起始pH值逐步提高，
花青素含量逐渐降低，酒精度在pH3.5～4.5区间有一明显顶点值，最大酒精含量
为12.8%vol，之后酒精度逐渐下降。

综合考虑两种评价指标选取发酵液初始pH
最佳值，确定初始pH3.5、pH4、pH4.5为紫薯酒的响应面优化设计对应因素水平，以确定最佳初始pH值。

图2 pH值对紫薯酒发酵的影响
2.1.3 初始糖度对紫薯酒发酵影响
初始糖度对紫薯酒发酵的影响结果如图3所示，随着糖度的逐步提高，酒精度也
随之呈上升趋势；糖度在16～22°Bx之间，花青素含量趋于稳定，含量变化不明显，但当糖度大于22°Bx后，花青素含量明显降低。

综合考虑两种指标，选取初
始糖度20 °Bx、21 °Bx、22 °Bx作为紫薯酒发酵条件响应面分析对应因素水平，
以确定最佳发酵条件。

图3 初始糖度对紫薯酒发酵的影响
2.1.4 接种量对紫薯酒发酵影响
酵母接种量对紫薯酒发酵的影响如图4，实验结果表明，接种量介于0.25‰～1‰之间时存在顶点值，当接种量为0.5‰时，酒精度与花青素含量均达到最大，之后逐步下降，随着接种量逐步增大，花青素含量基本趋于稳定，但酒精度下降趋势较为明显。

综合考虑两种指标，选取接种量0.3‰、0.5‰、0.7‰作为紫薯酒发酵
条件响应面分析对应因素水平，以确定最佳发酵条件。

图4 接种量对紫薯酒发酵的影响
2.2 响应面法优化发酵条件
2.2.1 响应面设计及结果
利用Design-Expert 8.0.6软件中BBD方法进行实验设计，共需安排27组试验，并分别以各组原酒的酒精度和花青素含量作为双响应值。

结果如表2。

2.2.2 回归模型的建立及分析
2.2.2.1 模型建立
根据表3中实验结果进行多元回归方程拟合，并分别以酒精度（R1）和花青素含
量（R2）为响应结果建立数学回归模型：
表2 响应面优化试验设计及结果试验号A B 1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 0-1 1-1-1-1 1 0 0 0 0-C0 0 0 0-1 1-D0 0 0 0-1-1 1 1-1-1 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 1 1-1 1 0 0 0 0-1 1 0 0 0 0 0 0 0 0-1 1-1 1 0 0 0 0-1-1 1
1-1 1-1-1 1 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 0-1 1-1 1 0 0 0 0 0 0 0 0-1-1 1 1 0 0 0 1 1 0 0 0 0 0 0 0 1 1 0 0 0 R1：酒精度(%vol)12.5 11.4 11.4 11.8 11.5 12.3 12.9 12.2 12.6 11.7 11.6 12.1 12.5 12.1 12 11.2 12.9 11.3 11.7 11.6 11.5 12.1 13
11.4 13.5 13 13.6 R2：花青素含量(μg/mL)16.22539 11.79226 16.17787
12.53904 14.6979 14.32451 17.9905 13.17719 16.40869 11.14053 14.14121 15.96062 16.33401 15.852 11.95519 14.6979 18.66938 10.72641 12.7427 12.24033 13.85608 13.28581 18.18737 15.26816 20.9165 18.91378
17.75967
2.2.2.2 回归分析
由表3可知，模型的P=0.0006＜0.01，说明所构建的模型方程（Ⅰ）为极显著；模型失拟项表示模型预测值与实际值不拟合的概率，由模型Ⅰ失拟项p=0.5909＞0.05为极不显著；模型决定系数R2=0.8971，校正决定系数R2（Adj）=0.8771，说明该模型与实际拟合度较高，响应值的87.7%是由于所选变量引起；模型的离
散系数CV值反映了实验的精度水平，该值越小，精度越高。

当花青素含量为响应时实验结果C.V=2.67%，表明试验操作可信度较好。

证明所构建回归方程模型能
很好地预测和分析对应的紫薯酒原酒酒精度。

模型回归方程系数显著性分析结果见表4，可知模型方程（Ⅰ）中除一次项B、D
和二次交互项AD、BC为不显著外，其余各项均对酒精度的影响达显著水平。

其
中二次交互项BD，各二次项均为极显著，一次项A、C，交互项AB、AC、CD均为显著水平。

通过比较各一次项系数绝对值，可知各因素对紫薯酒酒精度含量影响的强弱关系：初始糖度＞温度＞初始pH值＞接种量。

由表4可知，模型的P=0.0003＜0.01，说明所构建的模型方程（Ⅱ）为极显著；模型失拟项表示模型预测值与实际值不拟合的概率，由模型失拟项p=0.8435＞0.05可知不显著；模型决定系数R2=0.9082，校正决定系数R2（Adj）=0.851，说明模型与实际拟合度较高，响应值的85.1%是由于所选变量引起；模型的离散
系数CV值反映了实验的精度水平，该值越小，精度越高。

当花青素含量为响应时实验结果C.V=7.79%，在可接受范围内，试验操作可信度较好。

证明所构建回归
方程模型能很好地预测和分析对应的紫薯原酒中花青素含量。

表3 方差分析结果(R值为酒精度)注：“*”为显著(0.01＜P＜0.05)；“**”为极
显著(P＜0.01)。

方差来源模型A—温度B—初始pH值C—初始糖度D—接种量AB AC AD BC BD CD自由度14显著性*** * ** *A2 B2 C2 D2 残差1 1 1 1 1 1
1 1 1 1 1 1 1 1 1
2 F值7.475 6.210 3.834 6.661 1.782 5.347 5.347 4.657
0.380 11.501 5.347 34.852 31.771 20.067 14.873 p值0.0006 0.0283 0.0739 0.0241 0.2067 0.0393 0.0393 0.0519 0.5490 0.0054 0.0393＜0.0001 0.0001 0.0008 0.0023**********失拟纯误差总和平方和11.01 0.65 0.40 0.70 0.19 0.56 0.56 0.49 0.04 1.21 0.56 3.67 3.34 2.11 1.56 1.26 1.06 0.21 12.27 10 2 26均
方0.786 0.653 0.403 0.701 0.188 0.563 0.563 0.490 0.040 1.210 0.563 3.667 3.343 2.111 1.565 0.105 0.106 0.103 1.0220.5909 R2=0.8971R2（Adj）
=0.8771C.V=2.67%
表4 方差分析结果(R值为花青素含量)注：“*”为显著(0.01＜P＜0.05)；“**”
为极显著(P＜0.01)。

方差来源模型A—温度B—初始pH值C—初始糖度D—接
种量AB AC AD BC BD CD自由度14显著性**********A2 B2 C2 D2 残差1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 2 F值8.477 24.214 0.017 13.909 7.365 0.115 10.088 9.154 1.895 1.005 3.592 35.433 17.033 23.118 12.733 p值0.0003 0.0004 0.8983 0.0029 0.0188 0.7404 0.0080 0.0106 0.1938 0.3358 0.0824＜0.0001 0.0014 0.0004 0.0039********失拟项纯误差总和平方和162.81 33.22 0.02 19.08 10.10 0.16 13.84 12.56 2.60 1.38 4.93 48.61 23.37 31.72 17.47 16.46 11.36 5.10 179.28 10 2 26均方11.629 33.220 0.023 19.082 10.105 0.158 13.841 12.558 2.600 1.379 4.928 48.612 23.369 31.717 17.469 1.372 1.136 2.551 0.4450.8435 R2=0.9082 R2(Adj)=0.851 C.V=7.79%
对模型回归方程系数显著性分析结果见表4，可知模型方程（Ⅱ）中除一次项B和二次交互项AB、BC、BD、CD为不显著外，其余各项均对花青素含量的影响达显著水平。

其中一次项A、C，交互项AC及二次项A、B、C、D均为极显著；一次项D、交互项AD均为显著水平。

通过比较各一次项系数的绝对值，可知各因素对紫薯酒中花青素含量影响的强弱关系：温度＞初始糖度＞接种量＞初始pH值，其中温度对花青素的稳定性、初始糖度、接种量均影响显著，考虑到花青素在酸性环境中较稳定[11]，在本实验中pH值范围均为酸性，因此实验中pH值变化对花青素稳定性影响表现出不显著。

2.2.3 交互作用分析
通过对表3、表4方差分析结果，对各因素间的交互作用对紫薯酒发酵的影响显著的交互项进行响应面及等高线图分析。

结果见图5—图10。

图5 初始pH值与温度对酒精度的影响
图6 初始糖度与温度对酒精度的影响
图7 接种量与初始糖度对酒精度的影响
图8 接种量与初始pH值对酒精度的影响
图9 接种量与温度对花青素含量的影响
图10 初始糖度与温度对花青素含量的影响
2.2.4 验证实验
通过软件对实验数据进行优化，得到最佳紫薯酒发酵工艺参数为：温度21.47℃，初始pH3.89，初始糖度20.63°Bx，酵母接种量0.55‰，所得紫薯酒原液中所含花青素含量为19.86 μg/mL，酒精度为13.46%vol。

为对响应面优化法所得的实
验条件数据进行可行性检验。

根据实际条件进行发酵试验，选取试验参数为温度21.5℃，初始pH4.0，初始糖度21°Bx，酵母接种量0.55‰。

选取3次平行实验，最终得到紫薯酒原酒花青素含量为19.52 μg/mL，酒精度为13.2%vol。

与预测值对应误差分别为1.71%、1.93%。

验证了所建模型能较准确地预测实验结果，再
次证明基于响应面优化紫薯酒发酵模型的可靠性。

2.3 紫薯酒香气成分分析[12-17]
如图11所示，通过GC-MS对紫薯酒中所含挥发性香气检测，利用NIST图谱库
进行检索，紫薯酒中共检测到约40种挥发性香气成分（表5），约占95%检测图谱中总峰面积，根据结构性质不同可以分为醇类、醛类、醚类、酚类、酯类、酮类及烷烃类物质。

其中醇类包括丙醇、丁醇、异戊醇、异丁醇、正己醇、顺-3-己烯醇、3-甲氧基苯甲醇、芳樟醇、α-松油醇、4-萜烯醇、萜品醇、苯乙醇；酯类包
括乙酸乙酯、乳酸乙酯、丁二酸二乙酯、丁酸乙酯、正己酸乙酯、辛酸乙酯、琥珀酸二乙酯、乙酸苯乙酯、乙酸异戊酯、亚油酸乙酯、十八碳-6,9-二烯酸乙酯；酚
类物质包括4-甲基愈创木酚、2,6-二叔丁基对甲酚、对乙基苯酚、2,4-二叔丁基苯酚；酮类物质包括3-羟基-2-丁酮、2-吡咯烷酮、吡喃-4-酮、α-吡喃酮、紫罗兰酮；醚类物质有乙基叔丁基醚、仲丁基醚、乙基丁基醚。

其中含量较高的物质有乙酸乙酯、异戊醇、乳酸乙酯、琥珀酸二乙酯、萜品醇、苯乙醇。

图11 紫薯酒香气成分GC-MS分析总离子流色谱图
3 结论
本实验利用响应面法优化紫薯酒的发酵工艺参数，经验证优化后的工艺参数为：温度21.5℃，初始pH4.0，初始糖度21°Bx，酵母接种量0.55‰。

此条件下所得紫薯发酵原酒酒精度数和花青素含量分别为13.2%vol和199.52 μg/mL。

紫薯酒的香气是由许多呈香呈味物质组分间共同作用构成，香气成分作为紫薯酒重要品质指标，其挥发性物质种类与含量直接体现出酒体的品质特征，为后期进一步提升紫薯酒品质提供重要参考。

表5 紫薯酒主要香味物质编号1 2 3 4 5 6 7 8 9 1 0 cas登录号141-78-6 64-17-5 105-54-4 71-23-8 78-83-1 123-92-2 71-36-3 123-51-3 123-66-0 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 31 32 33 34 35 36 37 38 39时间(min)6.65 8.85 10.69 10.91 12.22 12.47 13.49 14.75 14.84 16.30 16.77 17.07 17.82 17.94 18.69 19.67 19.84 19.99 20.46 20.83 22.05 22.23 22.48 22.87 23.27 24.33 24.57 24.81 25.29 25.39 25.64 25.73 27.02 27.51 28.12 28.98 29.04 30.92 32.33香味物质乙酸乙酯乙醇丁酸乙酯正丙醇异丁醇乙酸异戊酯正丁醇异戊醇正己酸乙酯对异丙基环己醇3-羟基-2-丁酮2-吡咯烷酮乳酸乙酯正己醇顺-3-己烯醇辛酸乙酯C14H56O7Si7吡喃-4-酮α-吡喃酮六甲基三硅氧烷紫罗兰酮乙基叔丁基醚仲丁基醚乙基丁基醚3-甲氧基苯甲醇4-甲基愈创木酚丁二酸二乙酯琥珀酸二乙酯芳樟醇α-松油醇4-萜烯醇萜品醇乙酸苯乙酯2,6-二叔丁基对甲酚苯乙醇亚油酸乙酯十八碳-6,9-二烯酸乙酯对乙基苯酚2,4-二叔丁基苯酚化学式C4H8O2 C2H6O C6H12O2 C3H8O C4H10O C7H14O2 C4H10O
C5H12O C8H16O2 C9H18O C4H8O2 C4H7NO C5H10O3 C6H14O C6H12O C10H20O2 C14H56O7Si7 C5H4O2 C5H4O2 C6H20O2Si3 C13H20O
C6H14O C8H18O C6H14O C8H10O2 C8H10O2 C8H14O4 C8H14O4
C10H18O C10H18O C10H18O C10H18O C10H12O2 C15H24O C8H10O
C20H36O2 C20H36O2 C8H10O C14H22O 513-86-0 616-45-5 97-64-3 111-27-3 928-96-1 106-32-1 107-50-6 108-97-4 504-31-4 1189-93-1 8013-90-9 637-92-3 6863-58-7 628-81-9 6971-51-3 93-51-6 123-25-1 123-25-1 78-70-6 98-55-5 562-74-3 10482-56-1 103-45-7 128-37-0 60—12-8 544-35-4 544-35-4 123-07-9 96-76-4相对分子量88.11 46.07 116.16 60.10 74.12 130.19 74.12 88.15 144.21 142.21 88.11 85.11 118.13 102.18 100.16 172.27 96.09 96.09 192.29 88.15 130.26 102.17 138.16 152.19 174.19 174.20 154.25 154.25 154.25 154.25 164.21 220.36 122.17 308.50 308.50 122.17 206.33峰面积占比(%)3.88 77.03 0.05 0.28 0.41 0.10 0.04 8.58 0.37 0.03 0.04 0.01 1.14 0.42 0.03 0.20 0.05 0.03 0.06 0.03 0.02 0.07 0.05 0.02 0.02 0.03 0.03 2.97 0.04 0.02 0.01 0.54 0.27 0.14 1.55 0.04 0.04 0.03 0.08
参考文献：
【相关文献】
[1]KARLSENA,RETTERSTØL L,LAAKE P,et al.Anthocyanins inhibit nuclear factor-κ B activation in monocytes and reduce plasma concentrations of proinflammatory mediators in healthy adults[J].The journal of nutrition,2007,137(8)：1951-1954.
[2]FURUTAS,SUDAI,NISHIBAY,et al.High tertbutylperoxyl radical scavenging activities of sweet potato cultivars with purple flesh[J].Food science and technology international,1998,4(1)：33-35.
[3]YOSHIMOTO M,OKUNO S,YOSHINAGAM,et al.Antimutagenicity of
sweetpotato(Ipomoea batatas)roots[J].Bioscience,biotechnology,and
biochemistry,1999,63(3)：537-541.
[4]SUDAI.Reduction of liver injury induced by carbon tetrachloride in administered purple-colored sweet potato juice[J].Nippon shokuhin kogaku kaishi,1997,44(4)：319-324.
[5]KANO M,TAKAYANAGYT,HARADAK,et al.Antioxidative activity of anthocyanins from purple sweet potato,Ipomoera batatas cultivarAyamurasaki[J].Bioscience,biotechnology
and biochemistry,2005,69(5)：979-988.
[6]AZEVEDO J,FERNANDES I,FARIAA,et al.Antioxidant properties of
anthocyanidins,anthocyanidin-3-glucosides and respective portisins[J].Food chemistry,2010,119(2)：518-523.
[7]FRANCIS F.Food colourants:anthocyanins[J].Critical reviews in food science and nutrition,1989,28：273-314.
[8]BRAND-WILLIAMS W,CUVELIER M E,BERSET e of a free radical method to evaluate antioxidant activity[J].LWT-food science and technology,1995,28(1)：25-30.
[9]MISHRAK,OJHAH,CHAUDHURY N K.Estimation of antiradical properties of antioxidants using DPPH·assay:a critical review and results[J].Food chemistry,2012,130(4)：1036-1043.
[10]DENG J,CHENG WY,YANG G Z.Anovel antioxidant activity index(AAU)for natural products using the DPPH assay[J].Food chemistry,2011,125(4)：1430-1435.
[11]TSUKUIA,MURAKAMI T,SHIINAR,et al.Effect of alcoholic fermentation on the stability of purple sweet potato anthocyanins[J].Food science and technology research,2002,8(1)：4-7.
[12]JARVIS B,FORSTER M J,KINSELLAW P.Factors affecting the development of cider flavor[J].J appl bacteriol,1995,79：5-18.
[13]MANGAS J J,GONZALEZ M P,RODRIGUZE R,et al.Solid-phase extraction and determination of trace aroma and flavour components in cider by GC-
MS[J].Chromatographia,1996,42：101-105.
[14]POLLARDA,KIESER M E,STEVENS P M,et al.Fusel oils in ciders andperries[J].Sci food agr,1965,16：384-389.
[15]WILLIAMSAA,MAY H V.Examination of an extract of cider volatiles using both electron impact and chemical ionization gas chromatography-mass spectrometry[J].Journal of the Institute of Brewing,1981,87：372-375.
[16]龙明华.以浓缩苹果汁酿造的苹果酒挥发性香气成分分析[J].酿酒科技,2006(6)：94-95.
[17]郭静,岳田利,袁亚宏,等.基于SPME-GC/MS的猕猴桃酒香气成分分析研究[J].西北农林科技大学学报(自然科学版),2007,35(6)：89-92.。