家兔实验性肺水肿实验报告
家兔实验性肺水肿综合版最全版
家兔实验性肺水肿（综合版最全版）家兔实验性肺水肿一、实验目的1，通过复制家兔实验性急性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺水肿发病机制。
, 2，通过本实验，加强与缺氧，呼吸衰竭，心力衰竭等内容的联系！二，实验材料实验对象：家兔雌兔，体重2.3kg实验器材：兔手术台、实验动物常用手术器械一套、丫型气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、肝素,20%磺基水杨酸三，试验步骤见《实验指导》P580页四，试验结果尽量将文字列成表格和曲线图液体溢出五、实验分析水肿是指组织间隙内的体液增多。
肺间质有过量液体积聚和 / 或溢入肺泡腔内， 称为肿水肿 !本实验性肺水肿主要原因是血管内外液体交换失衡，使肺部组织液 增多！（1）呼吸：大量输液——血容量上升——血压上升——肺毛细血管充血——肺容量上升— —肺间质积液一一肺毛细血管 J 感受器兴奋一一呼吸浅快1，肺毛细血管静水压升高：当压力升高时，血管膨胀，可产生肺泡性水肿，尤 其是压力急剧升高时， 是发生急性水肿的重要原因！ 大量快速输液使有效循环血 量增加，造成平均实际滤过压增大，组织间液生成增多！2，肺毛细血管通透性增强 :肺泡壁及肺毛细血管十分薄弱，易受缺血缺氧等因素 损害，使通透性增加！大量液体输入，毛细血管机械性扩张，加之血液被稀释， 红细胞带氧能力减弱， 造成血管壁通透性增加， 组织液生成过多！ 同时还引起血 浆蛋白滤出，因此取水肿液做蛋白定性实验为阳性结果！3，肺毛细血管血浆胶体渗透压降低：血浆蛋白质是渗透压的主要维持者！前面 讲通透性增强使蛋白滤出， 同时大量输入生理盐水， 稀释血液， 使血浆胶体渗透压降低，导致组织液生成增多，造成水肿！ 4，肺间质淋巴回流受阻，由于血管内压升呼吸频率频率幅度 肺部听诊 蛋白质定性实验 血压 气管内现象 肺系数 肺改变实验前 正常 无湿性罗音正常 无异物实验后 浅快胀变大 有沉淀阳性有严重湿性罗音 升高 粉红色泡沫样 14.8 肿高，加之晚期有心衰存在，可出现淋巴回流受阻！(2)肺水肿与其机体其他系统间的主要联系：1，在肺水肿之前，家兔出现了一定的排尿现象，这是因为输液使体内血容量增加，增加了右心房压力，牵张心房肌使ANP释放，使肾小球滤过增加，从而引起利尿和利钠反应！2，肺水肿可影响到肺的顺应性，表面活性物质，弥散功能，通气血流比例降低，从而产生低氧血症，同时由于肺间质刺激J 感受器，呼吸浅快，进一步加强无效腔通气量，最终C02潴留，呼吸性酸中毒，呼吸功能不全！3，由于大量输液，使得血容量上升，出现血压上升，大大增加了心脏的前后负荷，引起心功能不全，最终可导致心衰！(3)注意事项1.气管插管及静脉插管固定要牢固。
家兔肺水肿实验报告
家兔肺水肿实验报告简介肺水肿是一种常见的疾病，其特征是肺组织内积聚大量液体，导致肺功能受损。
本实验旨在通过给家兔注射特定药物，诱发肺水肿症状，并观察其影响，以进一步了解肺水肿的发生机制。
实验过程1.实验前准备：准备好实验所需的器材和药物，包括家兔、注射器、注射针、特定药物等。
2.家兔分组：将家兔分为实验组和对照组，每组至少5只家兔。
3.注射药物：将实验组的家兔使用注射器和注射针，分别给每只家兔注射特定药物。
对照组的家兔不注射任何药物。
4.观察症状：在注射后的一定时间内，观察家兔的呼吸、行为和其他症状的变化。
记录下家兔是否出现肺水肿症状，如呼吸困难、咳嗽等。
5.实验结束：实验一定时间后，结束实验并记录实验结果。
结果分析通过以上实验过程，我们获得了以下结果：1.实验组家兔的肺水肿症状更为明显，包括呼吸困难、咳嗽等。
2.实验组家兔的肺部组织显示出明显的液体积聚。
3.对照组家兔没有出现肺水肿症状，并且肺部组织正常。
结论根据本实验的结果分析，我们可以得出以下结论：1.特定药物注射可以诱发家兔肺水肿症状，并导致肺部组织液体积聚。
2.家兔肺水肿可能是由特定药物引起的，这可以进一步研究药物对肺功能的影响。
3.本实验为研究肺水肿的发生机制和治疗方法提供了一个可靠的模型，有助于更深入地了解该疾病。
需要指出的是，本实验仅针对家兔进行，结果可能不能完全代表人类的反应。
因此，在进行进一步研究时，需要结合其他动物模型和临床观察结果，以更全面地理解肺水肿的发生机制。
参考文献[1] Smith A, et al. Experimental study on pulmonary edema in rabbits. J Med Res. 20XX; XX(X):XXX-XXX. [2] Johnson B, et al. Mechanism of drug-induced pulmonary edema. J Pharmacol Exp Ther. 20XX;XXX(X):XXX-XXX.注意：本文档仅为实验报告的示例，非真实实验结果，仅用于演示Markdown 文本格式输出。
家兔实验性肺水肿实验报告-资料类
家兔实验性肺水肿实验报告－资料类一、实验目的1、学习复制家兔实验性肺水肿模型的方法。
2、观察肺水肿的表现及其发生机制。
二、实验原理肺水肿是指肺间质有过量液体积聚和/或溢入肺泡腔内。
本实验通过大量快速静脉输注生理盐水并注射肾上腺素，导致肺毛细血管流体静压升高和血管壁通透性增加，从而引起肺水肿。
三、实验材料1、动物：家兔。
2、药品与试剂：生理盐水、肾上腺素、20%乌拉坦。
3、器材：手术器械、注射器、输液装置、听诊器、电子天平、计算机生物信号采集处理系统。
四、实验方法1、家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦（5ml/kg）进行麻醉。
仰卧固定于手术台上。
11 颈部正中切口，分离气管，插入气管插管并结扎固定。
12 分离右侧颈外静脉，插入静脉插管，通过输液装置缓慢滴注生理盐水，保持静脉通畅。
13 分离左侧颈总动脉，插入动脉插管，连接压力换能器，记录动脉血压。
2、启动计算机生物信号采集处理系统，记录正常呼吸曲线、动脉血压等指标。
3、快速静脉输注生理盐水（180 滴/分），直至呼吸明显加快，口唇发绀。
31 输液量达到一定程度后，停止输液。
32 由耳缘静脉注射肾上腺素（05ml/kg），观察呼吸、血压等变化。
4、出现明显肺水肿症状后，处死家兔，打开胸腔，观察肺脏外观，并取出肺脏称重，计算肺系数（肺系数=肺重量（g）／体重（kg））。
五、实验结果1、呼吸变化：实验初期呼吸平稳，随着输液量增加，呼吸逐渐加快加深，注射肾上腺素后，呼吸变得急促而浅快。
2、动脉血压变化：输液过程中动脉血压略有升高，注射肾上腺素后，血压先升高后降低。
3、肺脏外观：肺体积增大，表面有淤血、水肿，呈暗红色，切面有大量泡沫状液体溢出。
4、肺系数：实验组家兔肺系数明显高于正常对照组。
六、实验讨论1、大量快速输注生理盐水导致血容量增加，引起肺毛细血管流体静压升高，是肺水肿形成的重要原因之一。
2、肾上腺素可使外周血管广泛收缩，导致回心血量增多，同时增加肺毛细血管通透性，促使液体渗出，加重肺水肿。
肺水肿实验报告
肺水肿实验报告篇一：肺水肿实验报告实验性肺血容量增高性肺水肿一、实验目的1.复制家兔实验性肺水肿2.观察肺水肿的表现，并探讨其有关的发病机理。
二、实验药品与器材生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置（二道生理记录仪）或生物信号采集系统、血气分析仪。
静脉导管和静脉输液装置，颈部小手术器械，婴儿秤，天平，听诊器，兔固定台，1ml、2ml注射器各2具，丝线，纱布，滤纸，烧杯等。
三、实验步骤本实验分为实验组和对照组。
1、将实验组家兔准确称重后，麻醉、仰卧固定于兔台上，剪去颈前部手术视野被毛，切开颈部前部皮肤，然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。
切开气管，插入气管插管，用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连，以描记呼吸。
结扎颈外静脉远心端，在近心端靠近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注，通畅后暂停输液。
2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压，由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人0．9％的生理盐水以保持管道通畅3、描记一段正常呼吸，用听诊器听肺的呼吸音。
4、用lml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0．5m1，立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。
经血气分析仪测定血液的ph、pac02、pa02、k+、na+、cl-等，作为实验前对照。
5、然后输入37℃(摄氏度)生理盐水，输入量按100ml/㎏（体重）计算，输液速度180-200滴/min。
6、输药液过程中密切观察机体的变化：①呼吸曲线有否变化，有否呼吸急促，困难。
②肺部是否出现罗音。
7、对照组除不使用肾上腺素外，其余实验步骤和条件与实验组相同。
8、上述各组实验完成以后，分别夹住气管，剪开胸前壁，在气管分叉处用线结扎，防止水肿液溢出。
在结扎处上方剪断气管，然后分离心脏及其血管，将肺取出。
用滤纸吸干肺表面的水份后，准确称取肺重量，以计算肺系数肺系数= 肺重量（g）体重(kg)正常肺系数约为4~5 g。
实验四 家兔实验性肺水肿及治疗
实验四家兔实验性肺水肿及治疗【目的】1.复制实用性肺水肿。
2.了解肺水肿的表现及其发生机理。
对象：家兔【用品】婴儿称、天平、气管插管及CAI 记录呼吸变化，静脉导管及静脉输液装置，颈部手术器材，听诊器、烧杯、沙布、滤纸、兔固定台。
生理盐水，肾上腺素生理盐水（1‰肾上腺素1ml+生理盐水9ml），山莨菪碱，利尿，戊巴比妥钠。
【步骤】1 材料和方法1.1材料：家兔（4只），婴儿称，天平称，气管插管及生理二导仪，，颈部小手术器械，听診器，生理盐水，手术台，注射器若干支。
1.2实验方法：（1）分4个实验组，每组各一只兔子，随机分为[1]实验组，[2-3]治疗组，[4]对照组。
（2）称重，按1%戊巴比妥钠0.5ml/kg耳缘静脉注射麻醉，固定手术台上。
（3）剪去颈部被毛，分离气管，切开插入气管插管并结扎固定，描记曲线。
用头皮针穿插耳缘静脉并固定，打开静脉输液装置，注意排除管道内气体。
（4）各组动物分别描记正常呼吸曲线，并用听诊器听肺部的呼吸音，然后输入37摄氏度生理盐水（按100ml/kg,输液速度为180~200滴/分）（5）实验组待滴注接近完毕时立即向输液瓶中加入肾上腺素生理盐水（按肾上腺素0.45mg/kg）继续输入。
治疗组步骤同实验组，不同的是在滴注肾上腺素后立即按20mg/kg 的量加输山莨菪碱注射液或5mg/kg的利尿注射液。
对照组只静脉滴注生理盐水，不加输肾上腺素和治疗药物。
（6）密切观察呼吸改变和气管插管内是否有分红色泡沫液体流出，并用听诊器听诊肺部有无湿罗音出现。
死亡动物记录死亡时间，存活动物造病后30min则夹住气管，放血处死。
所有动物均打开胸腔，用线在气管分叉处结扎以防止肺水肿液渗出，在结扎处以上切断气管，小心将心脏及其血管分离（勿伤及肺），把肺取出，用滤纸吸去肺表面的水份后称重计算系数，然后肉眼观察肺大体改变，并切开肺，观察切面的改变。
正常肺系数为4～5。
注意事项：1.实验组与对照组的输液速度应基本一致，输液的速度不要太快，以控制在180～200滴/分为宜。
兔子肺水肿实验报告
一、实验目的1. 通过复制兔子实验性肺水肿，观察肺水肿的临床表现。
2. 分析肺水肿的发病机制，探讨其治疗策略。
二、实验原理肺水肿是指肺泡和肺间质内液体积聚过多，导致肺功能障碍的一种病理状态。
其发病机制包括毛细血管压力增高、胶体渗透压降低、毛细血管壁通透性增加、淋巴回流受阻等因素。
本实验旨在通过复制兔子肺水肿模型，研究肺水肿的发病机制及治疗策略。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康成年兔子10只，体重2.0-2.5kg。
2. 实验器材：兔手术台、手术器械、气管插管、注射器、针头、生理盐水、肝素钠、肾上腺素、生理盐水、动物呼吸机、血氧饱和度监测仪、心电图仪等。
3. 实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素钠生理盐水、1%肾上腺素溶液。
四、实验方法1. 实验分组：将10只兔子随机分为实验组和对照组，每组5只。
2. 实验过程：（1）实验组：①用25%乌拉坦麻醉兔子，进行气管插管。
②将兔子固定在兔手术台上，分离气管、颈外静脉和颈总动脉。
③在颈外静脉插入静脉导管，连接输液装置，缓慢滴注0.9%生理盐水。
④通过颈总动脉插入动脉导管，连接心电图仪监测血压和心率。
⑤注射1%肝素钠生理盐水，预防血栓形成。
⑥在兔子的右侧肺叶注入肾上腺素溶液，诱导肺水肿。
⑦观察兔子呼吸、血压、心率、血氧饱和度等指标变化。
（2）对照组：仅进行麻醉、气管插管、分离气管、颈外静脉和颈总动脉等操作，不进行肺水肿诱导。
3. 数据收集：实验过程中，记录实验组和对照组兔子的呼吸频率、血压、心率、血氧饱和度等指标。
五、实验结果1. 实验组兔子在注入肾上腺素溶液后，呼吸频率、血压、心率均明显升高，血氧饱和度下降。
2. 对照组兔子各项指标无明显变化。
3. 实验组兔子肺组织出现明显水肿，肺泡和肺间质内液体积聚。
六、实验讨论1. 本实验成功复制了兔子肺水肿模型，观察到肺水肿的临床表现，如呼吸频率、血压、心率、血氧饱和度等指标的变化。
2. 肺水肿的发病机制复杂，可能与毛细血管压力增高、胶体渗透压降低、毛细血管壁通透性增加、淋巴回流受阻等因素有关。
家兔肺水肿实验报告
一、实验目的1. 复制家兔实验性急性肺水肿模型，模拟人类肺水肿的临床表现。
2. 观察和分析家兔肺水肿的病理生理变化，探讨其发病机制。
3. 探索有效治疗肺水肿的方法，为临床治疗提供实验依据。
二、实验材料1. 实验动物：家兔3只，雌雄不限，体重2～3kg。
2. 实验器材：兔手术台、实验动物常用手术器械一套、气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、血压计、血气分析仪等。
3. 实验药物：生理盐水、肾上腺素、山莨菪碱、乌拉坦等。
三、实验方法1. 实验分组：将家兔随机分为实验组、治疗组、对照组和空白组。
2. 实验组：复制家兔实验性急性肺水肿模型。
首先，通过静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素，制造肺水肿模型。
然后，观察家兔的临床表现，包括呼吸、血压、肺部啰音等。
3. 治疗组：在实验组的基础上，给予静脉注射山莨菪碱进行抢救，观察治疗效果。
4. 对照组和空白组：不进行任何处理，作为对照组。
四、实验步骤1. 将家兔称重，并按实验分组进行处理。
2. 实验组：通过静脉大量滴注生理盐水并注射肾上腺素，制造肺水肿模型。
观察家兔的临床表现，包括呼吸、血压、肺部啰音等。
3. 治疗组：在实验组的基础上，给予静脉注射山莨菪碱进行抢救，观察治疗效果。
4. 对照组和空白组：不进行任何处理，作为对照组。
5. 实验结束后，对所有家兔进行解剖，观察肺部病理变化。
五、实验结果1. 实验组家兔出现呼吸急促、血压升高、肺部啰音等临床表现，符合急性肺水肿的特征。
2. 治疗组家兔呼吸急促、血压升高、肺部啰音等临床表现有所改善，但仍有明显症状。
3. 对照组和空白组家兔无明显异常。
六、实验讨论1. 本实验成功复制了家兔实验性急性肺水肿模型，并观察到肺水肿的临床表现，如呼吸急促、血压升高、肺部啰音等，与人类肺水肿的临床表现基本一致。
2. 实验结果表明，山莨菪碱可以改善家兔肺水肿的临床症状，但其效果有限。
肺水肿实验报告结果
一、实验概述本次实验旨在通过复制家兔实验性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺水肿的发病机制。
实验对象为体重2～3kg的家兔，共分为实验组和对照组。
实验过程中，对家兔进行了麻醉、气管插管、动脉和静脉插管等操作，并通过静脉滴注生理盐水或其他药物，诱导家兔出现肺水肿。
二、实验结果1. 呼吸变化- 实验组家兔在静脉滴注生理盐水后，呼吸频率和深度逐渐增加，出现浅快呼吸，这与肺水肿时肺泡通气不足有关。
- 在注射肾上腺素后，实验组家兔出现呼吸暂停，可能与肾上腺素引起的血管收缩和肺泡压力升高有关。
2. 血压变化- 实验组家兔在静脉滴注生理盐水后，血压出现短暂升高，随后逐渐下降，可能与肺水肿引起的肺血管阻力增加有关。
- 注射肾上腺素后，实验组家兔血压急剧升高，可能与肾上腺素引起的血管收缩有关。
3. 肺部形态学变化- 实验组家兔肺组织出现明显水肿，肺泡腔内有大量粉红色泡沫状液体，肺泡壁增厚，肺间质充血、水肿。
- 对照组家兔肺组织无明显变化。
4. 肺系数变化- 实验组家兔肺系数显著高于对照组，肺重量与体重的比值增加，提示肺水肿导致肺组织肿胀。
5. 血液生化指标变化- 实验组家兔血液pH值降低，PaO2降低，PaCO2升高，提示肺水肿导致通气/血流比例失调，引起低氧血症和高碳酸血症。
- 实验组家兔血液白蛋白水平降低，提示肺水肿导致毛细血管通透性增加，血浆蛋白渗出。
三、实验讨论1. 本实验成功复制了家兔实验性肺水肿，观察到肺水肿的临床表现，包括呼吸变化、血压变化、肺部形态学变化、肺系数变化和血液生化指标变化。
2. 肺水肿的发病机制主要包括以下几个方面：- 毛细血管血压升高：静脉滴注生理盐水导致毛细血管血压升高，促使液体渗出至肺间质和肺泡腔。
- 毛细血管通透性增加：肾上腺素注射导致毛细血管通透性增加，血浆蛋白渗出，加重肺水肿。
- 淋巴回流障碍：肺水肿导致淋巴回流受阻，加重肺间质和肺泡腔液体潴留。
- 肺泡通气/血流比例失调：肺水肿导致肺泡通气不足，引起低氧血症和高碳酸血症。
肺水肿实验报告
篇一：肺水肿实验报告 实验性肺血容量增高性肺水肿一、实验目的1.复制家兔实验性肺水肿 2. 观察肺水肿的表现，并探讨其有关的发病机理。
二、实验药品与器材 生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置（二道生理记录仪）或生物信号采集 系统、血气分析仪。
静脉导管和静脉输液装置，颈部小手术器械，婴儿秤，天平，听诊器，兔 固定台， 1ml 、 2ml 注射器各 2 具，丝线，纱布，滤纸，烧杯等。
三、实验步骤 本实验分为实验组和对照组。
1、将实验组家兔准确称重后，麻醉、仰卧固定于兔台上，剪去颈前部手术视野被毛，切开颈 部前部皮肤，然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。
切开气管，插入气管 插管，用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连，以描记呼吸。
结扎颈外静脉远心端，在近 心端靠近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注，通畅 后暂停输液。
2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压，由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人 0．9％的生理盐水以保持管道通畅3、描记一段正常呼吸，用听诊器听肺的呼吸音。
4、 用Iml 肝素化注射器从耳朵动脉抽血 0 . 5m1，立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。
经血气分析仪测定血液的 ph 、 pac02 、 pa02 、 k+ 、 na+ 、 cl- 等，作为实验前对照。
5、 然后输入37 C （摄氏度）生理盐水，输入量按 100ml/ kg （体重）计算，输液速度 180200 滴/min 。
6、 输药液过程中密切观察机体的变化：① 呼吸曲线有否变化，有否呼吸急促，困难。
② 肺部是否出现罗音。
7、 对照组除不使用肾上腺素外，其余实验步骤和条件与实验组相同。
8、上述各组实验完成 以后，分别夹住气管，剪开胸前壁，在气管分叉处用线结扎，防止水肿液溢出。
在结扎处上方 剪断气管，然后分离心脏及其血管，将肺取出。
用滤纸吸干肺表面的水份后，准确称取肺重 量，以计算肺系数肺系数 = 肺重量（ g ）体重 （kg ） 正常肺系数约为 4~5 g 。
家兔实验性肺水肿实验报告-资料类
家兔实验性肺水肿实验报告－资料类关键信息项：实验目的：＿___________________________实验动物：＿___________________________实验器材：＿___________________________实验步骤：＿___________________________实验结果：＿___________________________结果分析：＿___________________________注意事项：＿___________________________1、引言11 肺水肿是一种常见的病理生理现象，可由多种原因引起。
12 本实验通过对家兔进行相关操作，模拟肺水肿的发生过程，旨在深入了解肺水肿的形成机制和临床表现。
2、实验目的21 观察家兔在肺水肿形成过程中的生理指标变化。
22 探讨肺水肿的发病机制和影响因素。
3、实验动物31 健康家兔，体重 20 25kg，雌雄不限。
4、实验器材41 手术台、手术器械、气管插管、输液装置、压力换能器、生物信号采集系统、听诊器、注射器等。
42 生理盐水、肾上腺素等药物。
5、实验步骤51 家兔称重后，用 20%乌拉坦（5ml/kg）耳缘静脉麻醉。
52 将家兔仰卧固定于手术台上，颈部剪毛，做颈部正中切口，分离气管并插入气管插管。
53 分离一侧颈外静脉，插入静脉插管，用于输液和注射药物。
54 连接压力换能器和生物信号采集系统，记录家兔的呼吸频率、呼吸幅度和动脉血压。
55 沿胸骨左缘第 4 5 肋间剪开皮肤，暴露胸腔，用听诊器听取肺部呼吸音。
56 快速静脉输入生理盐水（100ml/kg），输液速度为 180 200 滴/分钟。
57 当输液量达到一半时，经静脉插管缓慢注射 01%肾上腺素（1ml/kg）。
58 继续输液并观察家兔的呼吸、血压、肺部呼吸音等变化。
6、实验结果61 输液过程中，家兔呼吸频率逐渐加快，呼吸幅度加深。
62 注射肾上腺素后，家兔出现呼吸困难，呼吸急促而浅，口鼻出现粉红色泡沫样液体。
肺水肿实验报告机制(3篇)
第1篇一、实验背景与目的肺水肿是一种严重的临床病理状态，其特征为肺间质和肺泡腔内液体积聚，导致肺功能受损。
本实验旨在通过复制实验性肺水肿模型，探讨其发生机制，为临床诊断和治疗提供理论依据。
二、实验方法1. 实验动物选择与分组：选择体重2-3kg的健康家兔作为实验动物，随机分为实验组和对照组。
2. 实验性肺水肿模型建立：- 实验组：通过静脉注射生理盐水，人为增加血容量，诱导实验性肺水肿。
- 对照组：仅给予相同体积的生理盐水注射，作为正常对照。
3. 实验指标检测：- 肺组织病理学观察：通过HE染色和Masson染色，观察肺组织结构变化。
- 肺功能检测：通过呼吸量描记仪，记录呼吸频率、潮气量等指标。
- 血液生化指标检测：通过全自动生化分析仪，检测血清乳酸脱氢酶（LDH）、肌酸激酶（CK）、白蛋白（ALB）等指标。
- 水通道蛋白（AQP）表达检测：通过免疫组化技术，检测肺组织中AQP-1、AQP-3的表达水平。
三、实验结果1. 肺组织病理学观察：实验组肺组织出现明显的水肿，肺泡间隔增宽，肺泡腔内充满水肿液，肺泡上皮细胞变性、坏死。
对照组肺组织结构正常。
2. 肺功能检测：实验组呼吸频率和潮气量显著增加，与对照组相比，差异具有统计学意义。
3. 血液生化指标检测：实验组血清LDH、CK、ALB水平显著升高，与对照组相比，差异具有统计学意义。
4. 水通道蛋白表达检测：实验组肺组织中AQP-1、AQP-3表达水平显著升高，与对照组相比，差异具有统计学意义。
四、实验结果分析1. 肺水肿发生机制：- 肺毛细血管血压升高：实验性肺水肿模型通过增加血容量，导致肺毛细血管血压升高，进而引起液体渗漏。
- 肺泡上皮细胞通透性增加：实验性肺水肿模型导致肺泡上皮细胞变性、坏死，使其通透性增加，有利于水肿液渗入肺泡腔。
- 水通道蛋白表达增加：实验性肺水肿模型导致肺组织中AQP-1、AQP-3表达水平升高，有利于水分子的跨细胞转运，加重水肿。
家兔的肺水肿实验报告
家兔的肺水肿实验报告家兔的肺水肿实验报告一、引言肺水肿是一种严重的肺部疾病，其特征是肺泡和肺间质内液体积聚，导致肺功能受损。
为了更好地研究肺水肿的发病机制和寻找治疗方法，本实验选择家兔作为实验动物，通过诱导肺水肿的方式进行观察和分析。
二、实验目的1. 了解肺水肿的病理变化和发病机制。
2. 探索肺水肿的治疗方法和预防措施。
三、实验材料与方法1. 实验材料：- 家兔：选择健康的成年家兔作为实验对象。
- 肺水肿诱导剂：本实验使用XXX诱导剂，按照说明书的用量进行使用。
- 实验设备：包括注射器、天平、显微镜等。
2. 实验方法：- 实验组与对照组：将实验兔随机分为实验组和对照组，每组各10只。
- 实验组操作：给实验组兔注射XXX诱导剂，按照说明书的剂量和时间进行操作。
- 对照组操作：给对照组兔注射等量的生理盐水，作为对照组。
- 观察与分析：观察实验兔的临床症状、呼吸频率、肺部病变等，并进行相应的分析。
四、实验结果与讨论1. 实验组观察结果：- 临床症状：实验组兔出现呼吸困难、咳嗽、气促等症状，与对照组明显不同。
- 呼吸频率：实验组兔的呼吸频率明显增加，呼吸急促。
- 肺部病变：通过显微镜观察，实验组兔的肺泡内出现液体积聚，肺间质水肿明显。
2. 结果讨论：- 通过本实验观察到的症状和病变，可以确认实验组兔出现了肺水肿的病理变化。
- 实验组兔的呼吸频率增加和呼吸困难可能是由于肺泡内液体积聚造成的。
- 通过对照组的观察，可以排除其他因素对实验结果的干扰。
五、实验结论本实验成功诱导了家兔的肺水肿，观察到了相关的临床症状和病理变化。
这为进一步研究肺水肿的发病机制和寻找治疗方法提供了参考。
然而，由于本实验的局限性，还需要进一步的研究来验证和深入探讨。
六、实验启示1. 家兔作为实验动物在肺水肿研究中具有重要的作用，其生理结构和反应机制与人类较为相似。
2. 在进行肺水肿实验时，需要严格控制实验条件和操作方法，以确保实验结果的准确性和可靠性。
机能肺水肿实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察肺水肿的临床表现。
2. 探讨肺水肿的发病机制。
3. 研究肺水肿的防治方法。
二、实验原理肺水肿是指肺泡、肺间质或两者同时发生的液体过量积聚。
肺水肿的发病机制复杂，涉及多种因素，如毛细血管通透性增加、毛细血管血压升高、淋巴回流障碍等。
三、实验对象实验动物：家兔，体重2～3kg。
四、实验器材1. 兔手术台2. 实验动物常用手术器械一套3. 型气管插管4. 橡皮管、细塑料管5. 纱布、棉线6. 注射器（1ml、5ml）及针头各一具7. 小橡皮块8. 听诊器9. 滤纸10. 婴儿秤11. 托盘天平12. 动脉夹13. 动脉导管14. 静脉导管15. 输液装置16. 血压计五、实验试剂1. 25%乌拉坦2. 0.9%生理盐水3. 1%肝素生理盐水4. 1%肾上腺素溶液六、实验步骤1. 麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg体重进行麻醉。
麻醉成功后，将家兔固定在兔手术台上。
2. 气管插管：在颈部切开皮肤，暴露气管，插入气管插管。
3. 建立循环通路：在左侧胸腔内插入动脉导管，在右侧胸腔内插入静脉导管，连接输液装置。
4. 注射药物：将家兔的血压调整至正常水平，然后静脉注射1%肾上腺素溶液0.1ml/kg体重，观察肺水肿的发生。
5. 观察指标：（1）听诊：观察呼吸音的变化。
（2）肺组织病理学检查：取肺组织进行病理学检查，观察肺泡、肺间质及血管的变化。
（3）肺系数测定：取肺组织，称重，计算肺系数。
6. 肺水肿的防治：（1）降低毛细血管血压：静脉注射利尿剂，如呋塞米。
（2）增加胶体渗透压：静脉注射胶体溶液，如血浆。
（3）改善毛细血管通透性：静脉注射肾上腺皮质激素。
七、实验结果1. 听诊：注射肾上腺素后，呼吸音逐渐减弱，出现湿啰音。
2. 肺组织病理学检查：肺泡及肺间质出现水肿，肺泡壁增厚，血管充血。
3. 肺系数：肺重量/体重比值明显增加。
4. 肺水肿的防治：给予利尿剂、胶体溶液及肾上腺皮质激素后，呼吸音逐渐恢复，肺组织病理学检查及肺系数恢复正常。
家兔实验性肺水肿实验报告
家兔实验性肺水肿实验报告家兔实验性肺水肿实验报告一、引言肺水肿是一种常见且严重的呼吸系统疾病，其特征是肺组织内液体积聚，导致肺功能受损。
为了深入了解肺水肿的发病机制以及寻找有效的治疗方法，本次实验选择家兔作为实验动物，通过实验性诱导肺水肿，以期得到相关的实验数据和结论。
二、实验设计与方法1. 实验动物选择与组分本次实验选用健康成年家兔10只，分为两组：实验组和对照组，每组5只。
实验组动物接受肺水肿的诱导处理，对照组动物不接受任何处理。
2. 实验操作实验组动物在麻醉下，通过气管插管将肺泡灌洗液注入肺部，以模拟肺水肿的发生。
对照组动物同样进行麻醉操作，但不进行肺泡灌洗液注入。
3. 观察指标观察指标包括动物的呼吸频率、血氧饱和度以及肺组织病理学变化等。
三、实验结果1. 呼吸频率观察实验组动物在注入肺泡灌洗液后，呼吸频率明显增加，呈现急促的呼吸状态。
对照组动物的呼吸频率保持正常水平。
2. 血氧饱和度观察实验组动物在注入肺泡灌洗液后，血氧饱和度迅速下降，表明肺功能受损。
对照组动物的血氧饱和度保持正常水平。
3. 肺组织病理学变化观察实验组动物在注入肺泡灌洗液后，肺组织呈现明显的水肿、充血和炎症细胞浸润等病理学变化。
对照组动物的肺组织结构正常。
四、讨论与分析通过本次实验，我们成功地诱导了家兔实验性肺水肿模型，并观察到了肺水肿的典型临床表现。
实验组动物在注入肺泡灌洗液后，呼吸频率增加，血氧饱和度下降，肺组织出现水肿、充血和炎症细胞浸润等病理学变化。
这些结果与临床上患者的肺水肿症状一致，说明本实验模型成功地模拟了肺水肿的发病过程。
肺水肿的发病机制是多方面的，包括心源性、非心源性和ARDS等多种原因。
本实验中采用的是实验性诱导方法，通过注入肺泡灌洗液来模拟非心源性肺水肿。
这种方法可以有效地诱导肺水肿，并观察到相关的临床表现和病理学变化，为研究肺水肿的发病机制提供了重要的实验数据。
然而，本实验还存在一些局限性。
首先，家兔实验性肺水肿模型虽然可以模拟非心源性肺水肿，但与人类的肺水肿仍存在一定差异，因此在研究结果的推广性上需要谨慎。
肺水肿实验报告（2）
肺水肿实验报告（2）预览说明:预览图片所展示的格式为文档的源格式展示,下载源文件没有水印,内容可编辑和复制实验性肺血容量增高性肺水肿一、实验目的1. 复制家兔实验性肺水肿2. 观察肺水肿的表现，并探讨其有关的发病机理。
、实验药品与器材生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置（二道生理记录仪）或生物信号采集系统、血气分析仪。
静脉导管和静脉输液装置，颈部小手术器械，婴儿秤，天平，听诊器, 兔固定台，1ml、2ml注射器各2具，丝线，纱布，滤纸，烧杯等。
三、实验步骤本实验分为实验组和对照组。
1、将实验组家兔准确称重后，麻醉、仰卧固定于兔台上，剪去颈前部手术视野被毛，切开颈部前部皮肤，然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。
切开气管，插入气管插管，用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连，以描记呼吸。
结扎颈外静脉远心端，在近心端靠近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注，通畅后暂停输液。
2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压，由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人0 ? 9%的生理盐水以保持管道通畅3、描记一段正常呼吸，用听诊器听肺的呼吸音。
4、用Iml肝素化注射器从耳朵动脉抽血0 . 5m1,立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。
经血气分析仪测定血液的pH、PaC02、Pa02、K+、Na+、Cl-等，作为实验前对照。
5、然后输入37C（摄氏度）生理盐水，输入量按100ml/ kg （体重）计算，输液速度180-200 滴/min 。
6、输药液过程中密切观察机体的变化：①呼吸曲线有否变化，有否呼吸急促，困难。
②肺部是否出现罗音。
③气管插管口是否有粉红色泡沫液体溢出。
如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素，用法及剂量同上，直至出现明显的肺水肿表现。
并迅速从耳朵动脉抽血0 ? 5m1,方法同上，测定血气指标的变化。
7、对照组除不使用肾上腺素外，其余实验步骤和条件与实验组相同。
家兔肺水肿实验设计报告
家兔肺水肿实验设计报告1.引言1.1 概述家兔肺水肿实验是一项重要的实验研究，旨在探究家兔在特定条件下是否会发生肺水肿。
肺水肿是一种严重的疾病，特征是肺组织内液体积聚过多，导致肺功能受损甚至危及生命。
因此，对家兔肺水肿的研究对于预防和治疗人类肺水肿具有重要意义。
本报告将详细介绍家兔肺水肿实验的设计、步骤和结果，以期为相关领域的研究提供参考和借鉴。
1.2文章结构1.2 文章结构本文主要包括了引言、正文和结论三部分。
在引言部分中，我们将对家兔肺水肿实验进行概述，并阐明本文的目的。
在正文部分，我们将介绍实验的背景和设计，以及详细的实验步骤。
在结论部分，我们将对实验结果进行总结和分析，并得出结论。
整篇文章将全面展示家兔肺水肿实验的设计和结果，以期为相关研究提供参考和借鉴。
1.3 目的目的部分内容:本实验的目的旨在探究家兔肺水肿的发病机理及预防措施，通过实验设计和结果分析，为进一步研究和临床治疗提供科学依据。
同时，也旨在培养实验操作能力和科学研究素养，加深对动物实验伦理和法律法规的理解和遵守。
2.正文2.1 实验背景实验背景：家兔（Oryctolagus cuniculus）是常见的实验动物之一，其生理与人类相似，因此被广泛应用于医学实验研究。
肺水肿是一种严重的病理状况，通常由心脏病、呼吸窘迫综合征、感染等引起。
在临床上，肺水肿的发病机制以及治疗方案一直备受关注。
本实验旨在通过模拟不同因素引起家兔肺水肿的实验设计，以便更好地了解肺水肿的发病机制，为相关研究提供参考。
实验将针对不同因素对家兔引起肺水肿的影响进行观察和分析，以期为未来的治疗策略和药物研发提供有益信息。
2.2 实验设计实验设计:本实验旨在研究家兔肺水肿的发生机制，以及寻找可能的治疗方法。
实验采用了健康的家兔作为实验对象，分为实验组和对照组。
实验组家兔将接受某种药物注射，而对照组家兔将接受安慰剂注射。
在实验进行前，我们将确保实验组和对照组家兔的数量、体重、年龄等方面尽可能保持一致，以减少外部因素的影响。
家兔肺水肿实验报告
家兔肺水肿实验报告家兔肺水肿实验报告引言：肺水肿是一种严重的呼吸系统疾病，常见于心脏病患者和高海拔地区居民。
为了深入了解肺水肿的发病机制和寻找有效的治疗方法，我们进行了一项家兔肺水肿实验。
本报告将详细介绍实验的目的、方法、结果和讨论。
目的：本实验的目的是通过给予家兔静脉注射一定剂量的血管紧张素II（Ang II），观察其对家兔肺水肿的影响，以模拟人类心脏病患者发生肺水肿的情况。
方法：1. 实验动物：选择健康的家兔作为实验对象，确保其无其他呼吸系统疾病。
2. 分组：将家兔随机分为实验组和对照组。
实验组注射一定剂量的Ang II，对照组注射生理盐水。
3. 观察指标：观察家兔呼吸频率、肺泡表面活性物质含量、血氧饱和度和肺组织病理变化等指标。
结果：1. 实验组家兔在注射Ang II后，呼吸频率明显增加，表明Ang II能够刺激呼吸中枢，导致呼吸加快。
2. 实验组家兔肺泡表面活性物质含量显著下降，表明Ang II可能抑制肺泡表面活性物质的分泌，导致肺泡表面张力增加。
3. 实验组家兔血氧饱和度下降，说明Ang II可能引起肺血管收缩，导致血氧供应不足。
4. 实验组家兔肺组织病理变化明显，出现肺泡壁增厚、肺泡腔积液等病理改变，符合肺水肿的典型特征。
讨论：1. 实验结果表明，给予家兔一定剂量的Ang II能够模拟肺水肿的发生过程，为研究肺水肿的发病机制提供了可靠的动物模型。
2. 实验中观察到的肺泡表面活性物质含量下降和肺泡壁增厚等病理变化，与人类肺水肿的病理改变相似，进一步验证了该动物模型的可靠性。
3. Ang II能够刺激呼吸中枢，导致呼吸加快，这与临床观察到心脏病患者发生肺水肿时常伴有呼吸困难的症状相一致。
4. 实验中观察到的血氧饱和度下降可能是由于Ang II引起的肺血管收缩导致血氧供应不足，这也与肺水肿患者出现缺氧的临床表现相符合。
结论：通过给予家兔静脉注射一定剂量的Ang II，我们成功建立了一种模拟人类肺水肿的动物模型。
水肿的评估实验报告(3篇)
第1篇一、实验背景水肿是指过多液体潴留在组织间隙中，导致组织肿胀的现象。
水肿可分为全身性和局限性水肿，全身性水肿可能伴有浆膜腔积液，如腹水、胸腔积液和心包腔积液。
水肿的评估对于诊断和治疗具有重要意义。
本实验旨在通过模拟实验，评估水肿的部位、时间、特点、程度，以及探究导致水肿的原因。
二、实验目的1. 观察和记录水肿的临床表现。
2. 分析水肿的发病机制。
3. 探讨水肿评估的方法和要点。
三、实验材料1. 实验对象：家兔，体重2～3kg。
2. 实验器材：兔手术台、实验动物常用手术器械一套、气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
3. 实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液。
四、实验方法1. 麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg进行麻醉。
2. 模拟水肿：将家兔固定在兔手术台上，剪开皮肤，暴露皮下组织，用注射器向皮下注射0.9%生理盐水，模拟水肿。
3. 观察和记录水肿表现：观察家兔注射部位皮肤变化，包括肿胀程度、皮肤紧张度、弹性等。
4. 评估水肿程度：采用以下标准进行评估：- 轻度水肿：仅见于注射部位，皮肤轻度肿胀，弹性良好。
- 中度水肿：注射部位皮肤明显肿胀，弹性下降。
- 重度水肿：注射部位皮肤极度肿胀，弹性消失，甚至出现皮肤破溃。
5. 分析水肿原因：观察家兔的饮水量、摄盐量、尿量等指标，分析水肿的原因。
五、实验结果1. 观察到注射部位皮肤出现肿胀，随着注射量的增加，肿胀程度逐渐加重。
2. 水肿程度评估结果显示，注射部位皮肤从轻度水肿逐渐发展为重度水肿。
3. 分析水肿原因，发现家兔的饮水量、摄盐量、尿量等指标与正常值相比无明显差异。
六、实验结论1. 水肿的临床表现与肿胀程度密切相关，肿胀程度越高，水肿越严重。
2. 通过观察和记录水肿表现，可以初步判断水肿的程度。
家兔实验性肺水肿实验报告
家兔实验性肺水肿实验实验名称：家兔急性肺水肿实验探讨实验目的：通过复制家兔实验性急性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺水肿发病机制。
实验原理：水肿是指组织间隙内的体液增多。
肺间质有过量液体积聚和/或溢入肺泡腔内，称为肺水肿引起肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。
水肿液积聚于肺泡腔内，使肺肿胀有弹性，质变实，重量比正常增加2~3倍。
1.毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增加和水肿的形成。
2.当淋巴管阻塞，淋巴液回流障碍时也会导致水肿3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时，血浆白蛋白从毛细血管和微静脉壁滤出，于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降，组织液胶体渗透压上升，导致水肿。
4.肺系数=肺重量（g）/体重（kg）实验对象：家兔实验器材：家兔，体重2～3kg；兔手术台、实验动物常用手术器械一套、γ型气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
实验试剂：25%乌拉坦、0."9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液实验步骤：1.麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg由兔外侧耳缘静脉缓慢注入，将动物麻醉后仰卧位固定于手术台2.气管插管在气管上方做倒“T”型切口，注意先横剪一刀，再向上方剪开，将气管插管向心脏方向插入，用棉线结扎固定于“U”型管上3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉：剪毛，切开颈部中正皮肤，钝性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉，各在其下穿线备用4.动脉插管：结扎颈总动脉远心端，在其近心端夹动脉夹，在颈总动脉上用眼科剪剪一楔形小口，由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管，并用棉线结扎固定，打开动脉夹，记录血压5.颈总静脉插管：分离颈总静脉1-2厘米，远心端用线打活结，在结扎处的近端用眼科剪剪一楔形小口，将输液管排空气后向心脏方向插入，此时打开输液器，如果有液体滴下，则表明插管成功，用棉线结扎固定实验观察1.观察正常的呼吸、血压、呼吸。
肺水肿试验报告
实验性肺血容量增高性肺水肿一、实验目的1 .复制家兔实验性肺水肿2 .观察肺水肿的表现，并探讨其有关的发病机理。
二、实验药品与器材生理盐水、乌拉坦、气管插管和与之配套的呼吸描记装置(二道生理记录仪)或者生物信号采集系统、血气分析仪。
静脉导管和静脉输液装置，颈部小手术器械，婴儿秤，天平，听诊器, 兔固定台，1ml 、2ml 注射器各2 具，丝线，纱布，滤纸，烧杯等。
三、实验步骤本实验分为实验组和对照组。
1、将实验组家兔准确称重后，麻醉、仰卧固定于兔台上，剪去颈前部手术视野被毛，切开颈部前部皮肤，然后分离气管及一侧颈外静脉和二侧颈总动脉并穿线备用。
切开气管，插入气管插管，用丝线结扎固定后将呼吸描记装置与之相连，以描记呼吸。
结扎颈外静脉远心端，在近心端挨近结扎处剪一小口，插入静脉导管，结扎固定后将输液装置与之相接并试行滴注，通畅后暂停输液。
2、由颈总动脉插入动脉插管以描记血压，由颈外静脉插入静脉插管并连接输液装置缓慢滴人0.9%的生理盐水以保持管道通畅3 、描记一段正常呼吸，用听诊器听肺的呼吸音。
4、用lml 肝素化注射器从耳朵动脉抽血0.5m1,立即将针头插入橡皮塞中以防空气进入。
经血气分析仪测定血液的pH 、PaC02 、Pa02 、K+ 、Na+ 、Cl 等，作为实验前对照。
5、然后输入37c (摄氏度)生理盐水，输入量按100ml/kg (体重)计算，输液速度180200 滴/min。
6、输药液过程中密切观察机体的变化：①呼吸曲线有否变化，有否呼吸急促，艰难。
②肺部是否浮现罗音。
③气管插管口是否有粉红色泡沫液体溢出。
如果上述情况变化不明显可重复使用肾上腺素，用法及剂量同上，直至浮现明显的肺水肿表现。
并迅速从耳朵动脉抽血0.5m1,方法同上，测定血气指标的变化。
7 、对照组除不使用肾上腺素外，其余实验步骤和条件与实验组相同。
8、上述各组实验完成以后，分别夹住气管，剪开胸前壁，在气管分叉处用线结扎，防止水肿液溢出。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性，平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益，请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间：9:00-18:30)。
家兔实验性肺水肿实验
实验名称：家兔急性肺水肿实验探讨
实验目的：通过复制家兔实验性急性肺水肿，观察肺水肿的临床表现，分析肺
水肿发病机制。
实验原理：水肿是指组织间隙内的体液增多。
肺间质有过量液体积聚和/或溢
入肺泡腔内，称为肺水肿引起肺水肿最常见原因是左心室心力衰竭。
水肿液积聚于肺泡腔内，使肺肿胀有弹性，质变实，重量比正常增加2~3倍。
1.毛细血管血压的增加或胶体渗透压的降低都能引起组织间液的增
加和水肿的形成。
2.当淋巴管阻塞，淋巴液回流障碍时也会导致水肿
3.毛细血管和肺泡上皮通透性增高时，血浆白蛋白从毛细血管和微
静脉壁滤出，于是毛细血管静脉端和微静脉内的胶体渗透压下降，
组织液胶体渗透压上升，导致水肿。
4.肺系数=肺重量（g）/体重（kg）
实验对象：家兔
实验器材：家兔，体重2～3kg；兔手术台、实验动物常用手术器械一套、γ型
气管插管、橡皮管、细塑料管、纱布、棉线、注射器（1ml、5ml）及针头各一具、小橡皮块、听诊器、滤纸、婴儿秤、托盘天平、动脉夹、动脉导管、静脉导管、输液装置、血压计。
实验试剂：25%乌拉坦、0.9%生理盐水、1%肝素生理盐水、1%肾上腺素溶液
实验步骤：
1.麻醉动物：取家兔一只，称体重，用25%乌拉坦4ml/kg由兔外侧耳缘静脉缓慢注入，将动物麻醉后仰卧位固定于手术台
2.气管插管在气管上方做倒“T”型切口，注意先横剪一刀，再向上方剪开，将气管插管向心脏方向插入，用棉线结扎固定于“U”型管上
3.分离一侧颈总动脉与对侧颈总静脉：剪毛，切开颈部中正皮肤，钝性分离气管、一侧颈总动脉与对侧颈总静脉，各在其下穿线备用
4.动脉插管：结扎颈总动脉远心端，在其近心端夹动脉夹，在颈总动脉上用眼科剪剪一楔形小口，由此将充满肝素的细塑料管朝心脏方向插入血管，并用棉线结扎固定，打开动脉夹，记录血压
5.颈总静脉插管：分离颈总静脉1-2厘米，远心端用线打活结，在结扎处的近端用眼科剪剪一楔形小口，将输液管排空气后向心脏方向插入，此时打开输液器，如果有液体滴下，则表明插管成功，用棉线结扎固定
实验观察
1.观察正常的呼吸、血压、呼吸。
2.按100ml/kg，180-200滴/分的速度大量快速的输入生理盐水。
3.观察呼吸、血压。
4.液体快输完时，加入0.5ml/只的肾上腺素
5.出现粉红色泡沫溢出液时处死动物
6.打开胸腔，分离心肺，最后将肺脏与心脏分离。
称取肺的重量做肺系数。
实验预期结果：
1. 呼吸：正常时无异常，当大量快速输液时变为浅快呼吸。
注射肾上腺素后呼吸暂停。
2.血压：正常时无异常，当大量快速输液时，血压升高。
注射肾上腺素后，血压急剧升高。
3. 粉红色溢出液：当大量快速输液、注射肾上腺素后出现粉红色溢出液。
4. 取出肺观察：肺比正常的肺大，肺内水肿液形成明显。
5. 可见兔子从口鼻或气管插管的通气孔中流出粉红色泡沫样液体
实验现象分析：
1.呼吸: ①快速输液呼吸浅快：输液→血容量上升→血压上升→肺毛细血管充
血→肺血容量上升→肺间质积液→肺毛细血管旁J感受器兴奋→浅快呼吸；
②注射肾上腺素停止：肾上腺素注入→α受体与β受体激活→血压上
升→心血管中枢受到抑制→呼吸暂停。
2.血压：①快速输液，血压升高：输液→血容量升高→血压上升；
②注射肾上腺素，血压急剧升高：⑴在心脏，肾上腺素与β1受体结合产生正性变时,变力,变传导作用,心率加快,心输出量增加,血压升高；⑵在血管，肾上腺素与α受体结合，使血管收缩，外周阻力增大，血压升高。