酵母中海藻糖提取纯化工艺设计生物工程设备与分离技术毕业论文
海藻糖的提取与分离实验设计
目录海藻糖的提取与分离实验设计------------------------------------------ 2 前言----------------------------------------------------------- 2 关键词--------------------------------------------------------- 21、海藻糖的理化性质--------------------------------------------- 21.1密度----------------------------------------------------- 21.2熔点----------------------------------------------------- 21.3溶解热--------------------------------------------------- 21.4甜度----------------------------------------------------- 21.5溶解性、晶体析出性--------------------------------------- 21.6高玻璃化转变温度----------------------------------------- 31.7低吸湿性和保水性----------------------------------------- 31.8耐热、耐酸性--------------------------------------------- 31.9着色性--------------------------------------------------- 32、海藻糖的功效作用--------------------------------------------- 32.1保护功能------------------------------------------------- 32.2抑制淀粉老化--------------------------------------------- 42.3防止蛋白质变性------------------------------------------- 42.4抑制鱼腥味的产生----------------------------------------- 42.5抑制脂质氧化变质----------------------------------------- 52.6矫味作用------------------------------------------------- 53、海藻糖提取分离的原理和影响因素的预判------------------------- 53.1提取分离原理--------------------------------------------- 53.2海藻糖标准曲线的绘制原理--------------------------------- 63.3粉末活性炭脱色脱蛋白效果的表征--------------------------- 73.4离子交换树脂脱盐脱色效果的表征--------------------------- 73.5相关影响因素--------------------------------------------- 74、海藻糖提取分离的实验设计------------------------------------ 84.1实验原料与器材------------------------------------------- 84.2海藻糖提取与分离工艺流程--------------------------------- 94.2.1实验流程----------------------------------------------- 94.2.2相关因素对海藻糖提取效率的影响------------------------- 94.2.3相关因素对粉末活性炭脱色脱蛋白效率的影响-------------- 114.2.4相关因素对离子交换柱脱盐脱色效率的影响---------------- 155、总结------------------------------------------------------------ 17 参考文献----------------------------------------------------------- 18海藻糖的提取与分离实验设计化学132牟丽慧1301020414前言海藻糖是由两个葡萄糖分子以α,α,1,1-糖苷键构成的非还原性糖,广泛存在于海藻、酵母、霉菌、食用菌、虾、昆虫及生物体内,具有保湿性、抗寒抗旱性、耐热耐酸性等特殊的生物学功能,对生物大分子和生物体均有非特异性的保护作用。
酵母内海藻糖积累条件的研究
酵母内海藻糖积累条件的优化酵母提取法是海藻糖最主要的合成方法,而且较高的海藻糖含量一般是在物种抵抗外界应力时才能产生。
研究发现,培养基内C、N、S、P的缺乏可引起海藻糖的大量积累,即当营养缺乏,生长受限时海藻糖才开始积累。
鉴于此,在对海藻糖积累条件的设计上,我们主要从营养饥饿方面入手,只供给酵母适量的碳源及少量的微量元素和维生素,并严格限制N源,利用PB法及RS法对培养基组分进行优化,从而获得优化培养基。
1材料1·1使用菌种:面包酵母1·2主要培养基1·2·1种子培养基葡萄糖4 g、蛋白胨2 g、酵母膏1 g、Mg-SO4·7H2O 0·1g、K2HPO40·1g溶于100mL 水中,121℃灭菌20min。
将已灭菌的装有100 mL培养基的500mL三角瓶内接入液体管面包酵母BY-11,30℃振荡培养16~24 h,菌种离心并用无菌水洗涤2次备用。
1·2·2发酵培养基葡萄糖2 g、NaCl 10 mg、K2HPO4 12.5mg,KH2PO4 87.5 mg、KI 0.01 mg、MgSO4·7H2O 50 mg、CaCl2·2H2O 10 mg、MnCl2·4H2O 1 mg、FeSO4·7H2O 5 mg、CoCl2 0.05mg溶于100mL蒸馏水中,另加入微量元素母液0·1 mL、维生素母液0·1 mL。
121℃灭菌15min。
发酵培养实验接以上种子3g/L(以酵母干固物计),37℃振荡培养3 h后,取发酵液10mL 离心,沉淀酵母泥用硫酸-蒽酮法测定海藻糖含量。
2结果与讨论2·1酵母内海藻糖积累的主要影响因素2·1·1缓冲液浓度对海藻糖积累的影响实验过程中的培养基以Na2HPO4-KH2PO4缓冲液为液态基质,对不同浓度的缓冲液,实验结果(表1)表明,80 mmol/L的缓冲液浓度最有利于海藻糖的积累。
酵母抽提物中海藻糖分析方法的探讨
0 l 0 2O 3 O 4 0 5 0 6 O
海藻糖含量 /g・ - Ll
国医药 上海 化 学 试 剂 公 司 ; 光 仪 , 京 实 验 仪 器 旋 南
厂。
图 1 海 藻 糖 含 量 一 旋 光 度 曲线
配 制 浓度 为 1 % 的 酵母 溶 液 , 0 3 活 性 炭 0 加 .% 在3 0℃条 件下 脱 色 , 分别 稀 释 不 同 的倍 数 , 定 稀 测 释液 旋 光 度 , 得海 藻 糖含 量 如 表 3所 示 。 查
表 3 酵 母 浓 度 对 测 定 结 果 的影 响
嫩
图 2 海 藻 糖 含 量 与 酵 母 浓 度 关 系
河南化工 H N NC E IA D SR E A H M C LI U T Y N 表 2 氨 基 酸 对 海 藻 糖 旋 光 度 的影 响
21 0 1年 1 2月
第2 8卷
第 1 、2期 ( ) 11 下
在 整个 测 定 范 围 内 , 测 得 的海 藻 糖 含 量 和 酵 对
母 浓度 进行 线 性 拟合 得 直线 如 图 2所示 。
1 2 l 0 8
由表 2可 知 , 基 酸 加 到 海 藻 糖 溶 液 中对 测 定 氨
结 果 影 响很 小 , 可近 似看 作 不 受 干扰 。
2 3 酵 母 浓 度 对测 定 结果 的 影 响 .
6
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2
河南化工
21 年 l 01 2月
第2 8卷
第 l 、2期 ( ) l1 下
HE NAN CHE C NDU MI AL I
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酵母胞内海藻糖提取工艺研究
poencn et tsb db ce a poess J . A Ol rti o cnr e ya atr l rtae LJ J. m. i a n i
Ch m . o . 1 91 6 2 :1 0 e S c , 9 , 8( ) 3
(5】M a q e o e o M Fe n d zCu d a o V. z mi y r yss ru z M r n C. r a e a r d En y ch d ol i n
3 结论
[ 参考 文献 ]
[ ] i l ,S t K. o b a :hm.n co. MJ A u 1 Cr e J mi A S yen c e adt h 1 L . VI b c S h e P
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综 上所述 ,预处理 最佳 条件为处理温 度 8 ℃, 0 处 理时间 2 mi, 0 n 加碱 量 1 %。 随加酶量增加 , 分散时 间呈下 降趋势 , 但分散稳定
酵母中海藻糖提取的响应曲面优化及纯化工艺_张丽杰
[6]徐良雄,曾佑炜,龙刚,等.不同花卉抗氧化能力及其多酚,黄酮含量比较[J].中国野生植物资源,2005,24(1):51-54.[7]张镜,叶春飞.阴香花中原花青素的提取工艺[J].食品科学,2014,35(02):115.[8]郭传琦,崔波,李文华,等.浅色系牡丹花瓣多酚含量及生物活性的研究[J].山东食品发酵,2013(3):13-16.[9]史国安,郭香凤,高双成,等.牡丹花发育过程中花瓣抗氧化活性的变化[J].园艺学报,2009,36(11):1685-1690.[10]Sun Y,Xu W,Zhang W,et al.Optimizing the extraction of phenolic antioxidants from kudingcha made from Ilex kudingcha C.J.Tseng by using response surface methodology[J].Separation and Purification Technolo-gy,2011,78(3):311-320.[11]Silva E M,Rogez H,Larondelle Y.Optimization of extraction of phe-nolics from Inga edulis leaves using response surface methodology[J].Sep-aration and Purification Technology,2007,55(3):381-387.[12]Cacace J E,Mazza G.Mass transfer process during extraction of phe-nolic compounds from milled berries[J].Journal of Food Engineering,2003,59(4):379-389.[13]Liyana-Pathirana C,Shahidi F.Optimization of extraction of phenolic compounds from wheat using response surface methodology[J].Food Chemistry,2005,93(4):47-56.[14]阿布都拉热依木古丽,刘力,艾萨阿吉艾克拜尔.新疆石榴花多酚的提取工艺[J].食品科学,2011,32(2):1-4.[15]Wang J,Sun B,Cao Y,et al.Optimisation of ultrasound-assisted extraction of phenolic compounds from wheat bran[J].Food Chemistry,2008,106(2):804-810.[16]Nepote V,Grosso NR,Guzman C A.Optimization of extraction of phenolic antioxidants from peanut skins[J].Journal of the Science of Food and Agriculture,2005,85(1):33-38.[17]王晓阳,唐琳,赵垒.响应面法优化刺槐花多酚的超声提取工艺[J].食品科学,2011,2(2):66-70.[18]冯志文,杨霞光,潘剑,等.6个品种牡丹花瓣的抗氧化活性分析[J].西北农林科技大学学报:自然科学版,2009,37(1):205-210.[19]卢帅,索菲娅,王傲立,等.新疆孜然黄酮超声提取及其抗氧化作用研究[J].中国农学通报,2013,29(27):215-220.[20]Stankovic M S,Niciforovic N,Mihailovic V,et al.Antioxidant activi-ty,total phenolic content and flavonoid concentrations of different plant parts of Teucrium polium L.subsp.polium[J].Acta Societatis Botanico-rum Poloniae,2012,81(2):117-122.酵母中海藻糖提取的响应曲面优化及纯化工艺张丽杰,王昌科,韩雪,赵天涛*(重庆理工大学药学与生物工程学院,重庆400054)摘要:目的:针对现有技术存在的步骤复杂、环境污染和效率不高等问题,探索干酵母中海藻糖的高效提取纯化新工艺。
酵母菌的分离与纯化
酵母菌的分离与纯化酵母菌的分离与纯化小组组员: 一、实验目的1.学习分离纯化酵母菌的技术与方法2.了解培养基的配置与灭菌技术3.增强无菌操作技术的意识二、基本原理从混杂的微生物群体获得只含某一种某一株微生物的过程叫做微生物分离与纯化,酵母菌常见于含糖份比较高的环境中,如果园土、菜园土及果皮等的表面。
多数酵母菌喜欢偏酸条件,最适pH为4.5-6.0.酵母菌生长迅速,容易分离培养。
马丁氏培养基是一种用来分离真菌的选择性培养基。
此培养基是由葡萄糖、蛋白胨、KH2PO4、MgSO4·7H2O、孟加拉红(玫瑰红,Rose Bengal)和链霉素等组成。
其中葡萄糖主要作为碳源,蛋白胨主要作为氮源,KH2PO4和MgSO4·7H2O作为无机盐,为微生物提供钾、磷和镁离子。
而孟加拉红和链霉素主要是细菌和放线菌的抑制剂,对真菌无抑制作用,因而真菌在这种培养基上可以得到优势生长,从而达到分离真菌的目的。
三、实验材料及用具1.用品:苹果、葡萄糖、琼脂、水、1%孟加拉红水溶液、马铃薯2.设备与器材:1ml的无菌吸管、无菌培养皿等.四、实验步骤1、马铃薯培养基的配置培养基成分:马铃薯40克、蔗糖(葡萄糖)4克、琼脂4克、水200毫升、 pH 自然。
配置方法:(1)配制20%马铃薯浸汁:取去皮马钓薯40g,切成小块,加水200ml.加热煮游30 min ,用纱布过滤,然后补足失水互所需体积。
121Pa灭菌30min.即成20%马铃馨漫汁,贮存备用。
(2)配制时,按每100ml 马铃薯浸汁加入2g蔗糖,加热煮沸后加入4克琼脂,继续加热融化并补足失水。
(3)分装、加塞,包扎。
(4)高压蒸汽灭菌:121Pa灭菌30min(5)将灭菌培养基放入37C°的温室中培养24-48小时,观察是否有菌落生成,以检查灭菌是否彻底。
2、倒平板:将马铃薯培养基加热融化,冷却至55--50C°时,倒平板,倒三皿3、制备苹果悬液(1)首先将1g苹果在研钵中磨细,放入装有10ml生理盐水和玻璃珠的100ml三角瓶中去。
酵母海藻糖提取及精制工艺的研究
p r t r 0 e a u e 8 C ,h o c n r to fy a t 7 L n h i fe ta to 0 ri . e e — t e c n e ta in o e s 0g/ a d t etme o x r c in 6 n Th x a
t c ol e hn ogy i bove 8 . sa 9 Ke ywor ds: r t eha o e; l s pur fc i iiaton;on e han hr m a o a i xc ge c o t gr phy; y s ea t
海 藻 糖 (rh ls )在 自然 界 的 动 植 物 和 微 生 物 te ao e
海 藻 糖 对 生 物 体 组 织 和 生 物 大 分 子 具 有 非 特 异 性 的保
转 化 法 制 取 海 藻 糖 的 途 径 有 多 种 , 要 分 为 以葡 萄 糖 、 主 麦 牙糖 、 粉 为底 物 的 3 方 法 。 淀 种
我 国 在 海 藻 糖 的 基 础 理 论 和 应 用 方 面 的 研 究 较
t a tng i r c i l quor w as pur fe by ani iid on and c i aton xc e hang hr e c om at ogr phy unde t ondi a r he c —
t n:lw a e i o fo r t 3~ 6 m L/ n,e e a u e 4 C.Th u iy o r h ls r d c d b h mi t mp r t r 0 e p rt fte a o e p o u e y t e
从啤酒废酵母中提取海藻糖的工艺研究及效益分析
T eP o e sRe e r h a d Be e tAn lsso r h o e E ta td h r c s s a c n n f ay i f e a s xr ce i T l
f m e a t r Be rYe s o
Ta ig Hu Mn ,G oSj ,S a g i l i Qn ," i ig u ui hn a i n e X o
Ke o d : b e e s ;t h o e b i d e t cin; a t r n y w r s e ry a t r a s ; o l xr t el e a o nh o e~ s l rc a i t o uf i cd meh d u
目前 ,我 国 啤酒 年 产 量 超 过 43×1mL - 0 ,居 世 了煮沸法提取海藻糖 的基本条件。 界第 1 。随着 啤酒产业的迅速发展 ,啤酒废酵母 位 1 材 料与 方法 产 量 也 与 日俱增 。废 啤酒 酵母 的 主要 处 理 方 式 是 干 燥 后 作 为 饲 料 或直 接 排 放 ,其 中 的有 效 成 分 没 有 得 11 材 料 . 11 原 料 与试剂 . 到充分利用 ,不仅造成了资源浪费 ,还污染 了环境 。 .1
t e a n a u p t o 0 × 1 4 t o e r a p ei n r s mae fo t e s e t y a t e ta t d t h ls a rn r h n u o tu f 1 l 0 f b e . rl mia ao e c n b i g mo e i e e o o c b n f sta i l a e b n f s o r i g a e . c n mi e e t h n smpy t t e e t fd n sf d i h t h i y e
基于面包酵母中海藻糖提取工艺优化及菌株筛选的高密度培养工艺
基于面包酵母中海藻糖提取工艺优化及菌株筛选的高密度培养工艺洪厚胜1,窦冰然2,郭会明2(1.南京工业大学生物与制药工程学院,江苏南京211816;2.南京工业大学化学与分子工程学院,江苏南京211816)摘 要:确定使用酶-3,5-二硝基水杨酸(3,5-dinitrosalicylic acid,DNS)法作为酵母胞内海藻糖定量测定方法,通过微波-浸提法对活性干酵母胞内海藻糖进行提取,采用单因素试验以酵母中海藻糖含量为参考指标优化该工艺中的微波功率、微波时间、三氯乙酸浓度、三氯乙酸体积、浸提温度、浸提时间,在此基础上对微波功率、微波时间、三氯乙酸浓度、三氯乙酸体积、浸提温度5 个因素进行正交试验,优化后工艺条件为:针对1.5 g活性干酵母,微波功率231 W、微波时间40 s、三氯乙酸浓度0.7 mol/L、三氯乙酸体积40 mL、浸提温度55 ℃、浸提时间150 min。
使用该工艺得到的活性干酵母中的海藻糖含量为280.15 mg/g,相对于优化前提高了15.2%。
同时,利用该优化后工艺在现有面包酵母菌种中筛选出了一株高产海藻糖的菌株。
在50 L自吸式发酵罐中将该菌株进行流加发酵,采用糖蜜进行溶氧反馈流加时最大酵母湿质量浓度为198.34 g/L,将流加工艺进行改进,提出称质量补料的流加方法将糖蜜、尿素、磷酸二氢铵作为流加营养源,实验发现发酵后最大酵母湿质量浓度可提高到264.82 g/L,相对于原工艺提高了33.52%,达到了面包酵母高密度培养的要求。
发酵过程中将乙醇体积分数控制在0.7%~1.0%之间,将有效提高酵母湿质量浓度且保证其发酵力在650 mL/h以上,且工艺稳定性良好。
关键词:面包酵母;海藻糖;称质量补料;乙醇体积分数Optimization of Extraction Process for Trehalose from Baker’s Yeast for Strain Screening and High Density CultureHONG Housheng1, DOU Bingran2, GUO Huiming2(1. College of Biotechnology and Pharmaceutical Engineering, Nanjing Tech University, Nanjing 211816, China;2. College of Chemistry and Molecular Engineering, Nanjing Tech University, Nanjing 211816, China)Abstract: The microwave-assisted extraction of trehalose was optimized using one-factor-at-a-time and orthogonal array design methods. Intracellular trehalose in yeast cells was determined by 3,5-dinitrosalicylic acid (DNS) method after hydrolysis by trehalase. The optimum conditions for extracting trehalose from 1.5 g of active dry yeast were determined to be extraction at 55 ℃ for 150 min using 40 mL of 0.7 mol/L trichloracetic acid as the extraction solvent with microwave treatment duration of 40 s at 231 W power. Under these conditions, the yield of trehalose was 280.15 mg/g, 15.2% higher than that before optimization. Furthermore, one of the 10 baker’s yeast strains preserved in our laboratory was selected for high yield production of trehalose. In a 50 L self-priming fermenter, the selected strain was used to perform fed-batch fermentation. The maximum wet yeast biomass was 198.34 g/L by using feedback control of dissolved oxygen concentration through feeding molasses. By feeding a predetermined amount of molasses, urea and phosphoric acid as nutrient source, the maximum wet yeast biomass was increased to 264.82 g/L, which was increased by up to 33.52% compared with the original procedure and suggested high density culture of baker’s yeast. In the fermentation process, the alcohol content (V/V) was controlled between 0.7% and 1.0%, thereby effectively improving wet yeast biomass and simultaneously ensuring that the fermentation power is over 650 mL/h, and the modified process was confirmed to stable.Keywords: baker’s yeast; trehalose; weighing feeding; alcohol contentDOI:10.7506/spkx1002-6630-201806020中图分类号:TS201.3 文献标志码:A 文章编号:1002-6630(2018)06-0122-08引文格式:洪厚胜, 窦冰然, 郭会明. 基于面包酵母中海藻糖提取工艺优化及菌株筛选的高密度培养工艺[J]. 食品科学, 2018, 39(6): 122-129. DOI:10.7506/spkx1002-6630-201806020. 收稿日期:2017-04-19基金项目:国家高技术研究发展计划(863计划)项目(2012AA021201)第一作者简介:洪厚胜(1965—),男,教授,博士,研究方向为生物过程及生化反应设备。
海藻糖的分离纯化应用膜分离技术分析
海藻糖的分离纯化应用膜分离技术分析
海藻糖是一种安全、可靠的天然糖类。
市场中海藻糖的需求量大,海藻糖的提取方法随着产品需求量的增大而备受关注。
下面,小编为大家介绍一下海藻糖提取应用的的膜分离技术。
海藻糖纯化工艺
海藻糖与葡萄糖混合液通过填装有色谱树脂的连续色谱分离系统,在树脂罐中,由于色谱树脂对海藻糖与葡萄糖的作用力不同,海藻糖先于葡萄糖流出,而葡萄糖由于色谱树脂中作用力的原因,流动相对较慢,需要用水洗脱,后流出物为葡萄糖,为了进一步提高分离效果,需要把一部分葡萄糖液与初步分离的进料液混合,再经过树脂分离,以便能够收集到比较高纯度的海藻糖液。
采用膜分离技术提取海藻糖比采用原有的微生物或酶法生产海藻糖的工艺,提取收率可提高85%以上,副产的麦芽糖醇又具有较高的利用价值,因此对降低海藻糖的生产成本和市场价位,增强海藻糖的市场竞争力具有很好的经济意义和社会意义。
酵母抽提物超滤操作,可看作纳滤过程的预处理过程,操作压力和操作时间及料液流速对超滤通量均有很大影响。
纳滤操作起到浓缩和纯化作用,操作压力对纳滤通量产生较大影响,浓缩倍数、操作方式同样影响纳滤膜分离性能,采用循环式较间歇式省时节能。
经过超滤、纳滤操作,再经结晶、干燥处理,得到海藻糖成品,提取率达85.6%,高于传统提取方法。
海藻糖对生物体具有神奇的保护作用,是因为海藻糖在高温、高寒、高渗透压及干燥失水等恶劣环境条件下在细胞表面能形成独特的保护膜,有效地保护蛋白质分子不变性失活,从而维持生命体的生命过程和生物特征。
酵母海藻糖提取及精制工艺的研究_李于
酵母海藻糖提取及精制工艺的研究李 于,肖冬光,王 兰,石 萍(天津科技大学食品科学与生物工程学院,天津300222) 摘 要:对酵母海藻糖的提取与纯化工艺进行了研究。
在温度80℃、酵母质量浓度70g/L条件下用50%乙醇溶液提取60min,海藻糖提取率可达98.81%;采用大孔阴阳离子交换树脂混合柱纯化提取液,适宜条件为,流速(3~6)mL/min,温度40℃,经浓缩、结晶,海藻糖纯度可达98%以上。
关键词:海藻糖;提取;离子交换;酵母中图分类号:T Q028 文献标识码:A 文章编号:1001-456X(2002)04-0004-04EXTRACTION A ND PURIFICATION OF TREHALOS E FROMYEASTLI Y u,XIAO Dong-guang,WANG Lan,SHI Ping(College of Fo od Science a nd Bioengineering,Tianjin Univ ersity of Science andTech nolog y,Tianjin300222,China)Abstract:Ex traction a nd purificatio n techno log y o f trehalose fro m yeast was studied in theex periment.Th e ex traction r ecov er y o f tr eha lo se is abov e98.81%under th e co nditio n:tem-pera ture80℃,th e co ncent ratio n of y ea st70g/L a nd the time of ex tr actio n60min.Th e ex-tracting liquo r w as purified by a nion a nd cation ex chang e chr oma tog raphy under the co ndi-tion:flow ra te3~6m L/min,tem per ature40℃.T he purity o f tr ehalo se pro duced by thetechno log y is abov e98%.Keywords:trehalose;purificatio n;io n exchange chr omato g raph y;yeast 海藻糖(trehalose)在自然界的动植物和微生物中广泛存在[1、2],尤其在酵母、霉菌、蘑菇等真菌中[3、4]。
海藻多糖提取、纯化及其补体结合活性的研究毕业论文
硕士学位论文海藻多糖提取、纯化及其补体结合活性的研究RESEARCH ON EXTRACTION, PURIFICATION AND COMPLEMENT FIXATING ACTIVITY OF POLYSACCHARIDES IN KELP RESIDUE赵瑞希哈尔滨工业大学2015年6月国内图书分类号:X792 学校代码:10213 国际图书分类号:579 密级:公开理学硕士学位论文海藻多糖提取、纯化及其补体结合活性的研究硕士研究生:赵瑞希导师:闫培生教授申请学位:理学硕士学科:生物学所在单位:海洋科学与技术学院答辩日期:2015年6月授予学位单位:哈尔滨工业大学Classified Index: X792U.D.C: 579Dissertation for the Master Degree in ScienceRESEARCH ON EXTRACTION, PURIFICATION AND COMPLEMENT FIXATING ACTIVITY OF POLYSACCHARIDES IN KELP RESIDUECandidate:Zhao RuixiSupervisor:Prof. Y an PeishengAcademic Degree Applied for:Master of ScienceSpeciality:BiologyAffiliation:School of the Marine Science andTechnologyDate of Defence:June, 2015Degree-Conferring-Institution:Harbin Institute of Technology摘要摘要中国是海洋大国,“21世纪海上丝绸之路”的战略构想为促进我国从海洋大国向海洋强国的迈进制定了目标,因此发展海洋经济,提高海洋科研水平,海洋生物质资源化等都具有重要战略意义。
从啤酒废酵母中提取海藻糖工艺的研究
从啤酒废酵母中提取海藻糖工艺的研究
谭海刚;李书巧;关凤梅;王瑞明
【期刊名称】《酿酒科技》
【年(卷),期】2005(000)004
【摘要】对从啤酒废酵母中提取海藻糖的工艺进行了研究,在乙醇浓度为
60%(=v/v),提取温度为80±1℃,提取时间为30min,酵母质量浓度为100g/L条件下,海藻糖的提取率可达91.71%.采用活性炭脱色,阴阳离子交换除杂,经浓缩、结晶、干燥,制成的海藻糖成品纯度为96.85%.
【总页数】3页(P78-80)
【作者】谭海刚;李书巧;关凤梅;王瑞明
【作者单位】山东轻工业学院食品与生物工程学院,山东,济南,250100;山东轻工业
学院食品与生物工程学院,山东,济南,250100;山东轻工业学院食品与生物工程学院,山东,济南,250100;山东轻工业学院食品与生物工程学院,山东,济南,250100
【正文语种】中文
【中图分类】X797;TS261.1;TS261.9
【相关文献】
1.超声波辅助水浸提啤酒废酵母细胞中海藻糖工艺研究 [J], 杨渝军;刘静波;林松毅;王晓丽;魏巍
2.超声波法辅助提取啤酒废酵母中乙醇脱氢酶工艺研究 [J], 张飞;王永刚;胡均刚
3.从啤酒废酵母中提取海藻糖的工艺研究及效益分析 [J], 田青;惠明;郭素洁;尚小
利
4.从啤酒废酵母中提取海藻糖的工艺研究 [J], 郑辉杰;张洪起;刘伟;陈洵;邸进申
5.提取啤酒废酵母中β-葡聚糖的工艺研究 [J], 冯传威; 张洪微; 王琴
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酵母分离纯化实验报告
一、实验目的1. 掌握酵母菌分离纯化的基本原理和方法。
2. 学习使用显微镜观察酵母菌的形态特征。
3. 熟悉微生物实验室的基本操作技能。
二、实验原理酵母菌是一种单细胞真菌,广泛分布于自然界。
本实验采用稀释涂布平板法从混合样品中分离纯化酵母菌。
该方法基于菌落形成的原理,通过稀释样品,使聚集在一起的微生物分散成单个细胞,从而在培养基表面形成单个菌落。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:- 酵母菌混合样品- 营养琼脂培养基- 无菌水- 灭菌器械(接种环、酒精灯等)- 显微镜2. 实验仪器:- 研钵- 玻璃棒- 离心机- 培养箱四、实验步骤1. 制备平板:- 将营养琼脂培养基加热融化,冷却至约50℃。
- 将融化后的培养基倒入培养皿中,待凝固后备用。
2. 样品稀释:- 将酵母菌混合样品用无菌水进行10倍稀释,制成不同浓度的稀释液。
3. 涂布平板:- 用无菌吸管吸取适量稀释液,滴加到平板中央。
- 用无菌玻璃棒轻轻涂抹,使样品均匀分布在平板表面。
4. 培养:- 将平板倒置,放入培养箱中培养。
5. 挑取菌落:- 在适宜的温度下培养,观察菌落生长情况。
- 根据菌落特征(如大小、形状、颜色等)挑取单菌落。
6. 纯化:- 将挑取的单菌落接种到新的平板上,重复培养和挑取过程,直至获得纯化后的酵母菌。
7. 观察与鉴定:- 将纯化后的酵母菌制片,用显微镜观察其形态特征。
- 根据酵母菌的形态特征(如细胞大小、形态、芽殖方式等)进行鉴定。
五、实验结果与分析1. 菌落观察:- 经过培养,平板上形成了不同形状、大小的菌落。
- 通过挑取和纯化,获得了纯化后的酵母菌。
2. 显微镜观察:- 在显微镜下观察,纯化后的酵母菌呈现为球形或椭圆形的单细胞结构,直径约为5-10微米。
3. 鉴定:- 根据酵母菌的形态特征,初步鉴定为酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)。
六、实验讨论1. 本实验采用稀释涂布平板法成功分离纯化了酵母菌,该方法简单易行,适用于实验室常规操作。
从活性干酵母中提取海藻糖的工艺条件研究
从活性干酵母中提取海藻糖的工艺条件研究
邵漪;袁勤生
【期刊名称】《中国生化药物杂志》
【年(卷),期】2002(023)006
【摘要】目的探讨从活性干酵母中提取海藻糖工艺中几个关键步骤的工艺条件。
方法采用不同浓度乙醇热溶液搅拌提取,再用活性炭脱色和几咱离子交换树脂除盐和除杂,最后用工业乙醇结晶。
比较在不同条件下的提取率及脱色率,确定最佳工艺。
结果干酵母在70℃,60%~70%乙醇提取液中经过1.0~1.5h抽提,随后再用1%活性炭在pH4.8和50℃下脱色,再用711和122阴阳离子树脂串联进行离子交换,最后浓缩精制得到的糖液可以用97%的工业乙醇结晶,其最后的得率可达:第100g 活性干酵缝母得海藻糖11g,纯度在98%左右.结论该工艺条件为该工艺过程中几个关键步骤的最佳条件,并且简化了整个工艺.
【总页数】3页(P278-280)
【作者】邵漪;袁勤生
【作者单位】华东理工大学生物反应器工程国家重点实验室,上海,200237;华东理
工大学生物反应器工程国家重点实验室,上海,200237
【正文语种】中文
【中图分类】Q538
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吉林工程技术师范学院食品工程学院课程设计课程名称:生物工程设备与分离技术班级:生物工程10411TPM酵母中海藻糖提取纯化工艺设计目录目录 (I)第一章项目总论 (1)1.1海藻糖概述 (1)1.1.1 海藻糖的性质 (1)1.1.2 海藻糖的生理功能 (1)1.1.3 海藻糖的应用前景 (2)1.2 海藻糖的生产工艺 (2)1.2.1 酵母中海藻糖的提取纯化工艺 (3)第二章技术方案 (4)2.1 产品方案 (4)2.2生产工艺流程设计 (5)2.3生产工艺过程说明 (6)2.3.1 乙醇提取 (6)2.3.2 冷却离心 (6)2.3.3 浓缩 (6)2.3.4 活性炭脱色脱蛋白 (6)2.3.5 离子交换 (6)2.3.6 浓缩结晶 (6)2.3.7 过滤干燥 (6)2.4 物料衡算 (7)2.4.1 技术参数 (7)2.4.2 计算 (7)第三章设备选型 (9)3.1 热回流提取罐 (9)3.2 离心机 (9)3.3 浓缩罐 (9)3.4 离子交换设备 (9)3.5 干燥机 (9)第四章防污措施 (11)4.1 车间环境卫生 (111)4.2 废水处理 (11)4.3 废渣处理 (11)第五章结语 (12)参考文献 (13)第一章项目总论1.1 海藻糖概述1.1.1 海藻糖的性质海藻糖叉名茧蜜糖,蘑菇糖,漏芦糖或蕈糖,是在动物、植物、微生物中广泛分布的一种低聚糖。
它是由两分子的吡哺葡萄糖单体以a,a-1,1糖苷键连接而成,其化学式为a—D-吡喃葡萄糖基一a—D一吡喃葡萄糖苷,分子式为C12H22O11·H2O相对分子量为378.33。
其结构式如图1.1图1.1海藻糖是白色晶体,带有两分子结晶水,当加热到130"C时,海藻糖失去结品水,变成无水晶体。
海藻糖溶于水、冰醋酸和热乙醇中。
其水溶液性质稳定,无色无嗅,口感咯带甜昧,它不会焦化。
它对热、酸都十分稳定,是天然双糖中最稳定的糖质。
由于不具有还原性,即使与氧基酸、蛋白质等混合加热也不会产生美拉德反麻引起的着色反应。
海藻糖几乎不被一般的酶分解,只被具有特异性的海藻糖酶水解。
1.1.2 海藻糖的生理功能海藻糖不仅具有优良的理化性质,它还具有优于其他双糖的独特的生物学功能内源性的海藻糖可以有效地保护生物免受外界恶劣条件的侵害,外源性的海藻糖同样对生物体具有保护作用,这种保护作用是非特异性的。
内源性海藻糖,不仅可以作为生物体内的能量储备,也可以保护体内细胞免受外界恶劣条件的侵害,主要表现在当生物细胞处于营养饥饿、高温干燥缺氧或冷冻等各种胁迫环境时,生物细胞内开始积累海藻糖,并利用其特殊的生物学特性,对生物细胞进行保护。
科学研究表明,海藻糖是生物体应对环境压力的一种应激代谢产物,很多物种对外界恶劣环境所表现出的抗逆耐受力,与机体胞内海藻糖的变化有着直接的关系。
外源性的海藻糖同样也可以保护细胞和生命大分子对蛋白质变性具有保护作用和保水作用。
外加海藻糖能在许多生物处于异常条件下,如冷冻、低温或常温干燥时,有效地保护生物膜、蛋白质等的结构,维持生物体其本来的结构、性状和功能,海藻糖这种非特异性保护功能促使科技工作者争先进行对海藻糖的研究与开发。
海藻糖保护生物分子的机制有三种:水替代、玻璃态转换及优先排阻假说。
这三种作用机制并不是相互排斥的,而是它们对海藻糖的稳定作用机制的解释都有贡献。
目前对海藻糖这种特殊的保护机-制是一个研究热点。
1.1.3 海藻糖的应用前景随着海藻糖生产的不断发展,生产成本的不断降低,海藻糖的各种性能逐步被人们所认识,其应用领域也越来越广。
海藻糖的优良品质和性能使他在食品、保健品、医药、化妆品、农业等方面有着广泛的用途。
在食品方面主要利用海藻糖具有的非还原性、保湿性、耐冻性、耐干燥性以及良好的味,可以用来防止因干燥或冷冻引起的变性,或和其他甜味剂混合使用作为食品的甜味剂降低产生龋齿的副作用,还可作为一些调料、食品的品质改良剂和调味剂。
保健品方面主要采用海藻糖做冻干保护剂,它可以大大提高菌的冻干存活率,能使冻干制品在常温下长时间保存,大幅度延氏其保持期。
另外,海藻糖可改善骨质疏松症。
医药方面应用主要是作为试剂和诊断药的稳定剂.如可用于移植器官的贮存,激素、生物制剂、抗生素、维生素、酶以及各种易失活物质的稳定剂,也可用于牙膏、内服药、糖衣片等作为甜味剂、品质改良剂和稳定剂,它有降血糖、保肝等作用,还可制成衍生物用丁抗癌剂、抗肿瘤剂中。
化妆品方面主要是应用海藻糖的衍生物,海藻糖本身具有的保湿性已被确认为新的化妆品原料,用于皮肤化妆品中,可抑制皮肤的干燥,也可用于口腔清凉剂、口腔芳香剂等。
在农业领域,通过生物T程技术完全有可能将海藻糖的转基因植物培育成抗旱转基因植物。
1.2 海藻糖的生产工艺无论是酶转化法还是微生物抽提法生产海藻糖在我国均处于起步阶段。
相对而言,以酵母为原料生产海藻糖的技术在国内较为成熟。
中国科学院已经开发出了培养海藻糖高产酵母菌并从中提取精制海藻糖的专利。
大连理工大学、无锡轻工业大学、华东理工大学等高校也对从酵母生产海藻糖的工艺进行了研究,并取得了很多成果。
但是目前从活性干酵母中抽提海藻糖的工艺仍存在工艺复杂,成本较高等缺点,限制了海藻糖的大规模工业生产。
而酶法生产海藻糖在我国仍处于理论研究阶段。
因此工业化生产海藻糖在我国仍然是一个空缺,如何简化工艺降低成本,建立成熟的海藻糖工业化生产工艺成为目前人们研究的重点。
1.2.1 酵母中海藻糖的提取纯化工艺1.提取工艺乙醇(水)提取法:在乙醇(水)的共同作用下使酵母细胞破碎,海藻糖从破碎的细胞的中释放出来,同时高温和乙醇能够抑制从液泡中释放出来能将海藻糖水解为葡萄糖的海藻糖酶。
微波辅助法:以水作为提取溶剂,将酵母配制成一定浓度悬液,先经微波破壁处理一段时间后,使细胞内存在的海藻糖酶变性失活,破坏酵母细胞的结构,再进行水浴搅拌提取一段时间,从而促进酵母细胞内海藻糖快速溶出,增加海藻糖得率的一种破壁提取方法2.纯化工艺(1)脱蛋白热变性法脱蛋白:热变性法脱除蛋白是利用蛋白质在高温下变性,溶解度降低的原理,对海藻糖提取液进行加热,低温冷却后离心,从而脱除海藻糖提取液中蛋白质。
碱金属除蛋白:碱金属除蛋白的方法是加入一定量10%(质量分数)的ZnSO一溶液,4溶液,凋节pH为8,离心屙收集上清液;重金属除蛋白的方法是直再滴加饱和的Ba(OH)2接向溶液中加入适量的醋酸钳,离心后收集上清液。
活性炭脱蛋白:吸附作用是吸附过程中由吸附剂表面与被吸附物质分r之间的范德华力引起。
这种吸附作用的选择性很人,在高温F吸附最反而降低,吸附过程中能量变动较小,因而容易解吸。
活性炭颗粒的大小对吸附能力有影响。
一般来说,活性炭颗粒越小,过滤而秘越大,所以粉末状的活性炭的总面积最大,吸附效果最佳。
(2)采用离子交换树脂对海藻糖提取液进行处理除去溶液中的杂质盐类及色素。
经活性炭处理过后的海藻糖提取液中含有大量的的盐类及少量色,为了达到较好的脱色效果需要采用离子交换。
(3)结晶冷却结晶:冷却的过程基本上不去除溶剂,而使溶液冷却降温,成为过饱和溶液。
此法适于溶解度随温度的降低而显著下降的物系。
冷却法一般可分为自然冷却,间壁冷却或直接解除冷却。
此方法的优点在于设备要求不高、耗能小、缺点是生产效率低。
蒸发法:蒸发法是除去一部分溶剂的结晶法,它使溶液在加压、减压下加热蒸发而浓缩以达到过饱和。
此法主要适用于溶解度随温度变化不大的物系或具有逆溶解度的物质。
蒸发法结品消耗的热能最多,加热面的结垢问题也会使操作遇到困难。
真空冷却法:蒸发法是使溶剂在真空下闪蒸而绝热冷却,实质上是冷却及去除一部分溶剂的浓缩两种效应来产生过饱和度。
此法适用于溶解系数中等的物质。
这种方法所用的主体设备比较简单,操作稳定。
盐析法:向物系中加入某些物质,来降低溶质在溶剂中的溶解度。
可在不纯的混合水溶液中加入适当溶剂(如甲醇、乙醇、异丙醇、丙酮)以制取纯的物质。
值得注意是,所加物质要能溶解于原溶液的溶剂中,但又不溶解被结晶的物质,而且在有必要时溶剂与稀释剂的混合物易于分离。
第二章技术方案2.1 产品方案1.提取方案我们选用乙醇法分离提取,微波处理法时间比较久,而且处理后得到的海藻糖得率和乙醇法相差不大,微波处理法适合实验室来提取,而且经济方面也不划算,对于工厂生产适合用乙醇提取,提取率达5.548%。
2.纯化方案(1)研究表明采用碱金属(重金属)除蛋白会造成环境的污染且成本很高,热变性除蛋白温度控制对于大型生产不方便,而且耗能多,活性炭是一种强力高效而且廉价的吸附剂和脱色剂。
它可以对海藻糖提取液进行脱色脱蛋白的同步处理。
活性炭是利用木炭、各种果壳和优质煤等作为原料.通过物理和化学方法对原料进行破碎、过筛、催化剂活化、漂洗、烘干和筛选等一系列工序加下制造而成,它的污染危害要小的多,它可以有选择地吸附气相、液相中的各种杂质,以达到脱色精制,去污提纯的目的。
因此我们选用活性炭进行脱色,脱色率达82.99%。
(2)通过树脂的静态筛选,为了达到完全脱除阴阳离子的目的, 提高精制效果, 采用混合床。
D001大孔强酸性阳离子树脂与D201大孔强碱性阴离子树脂分别组成混合床。
脱色率达90.09%。
离子交换脱盐率98.18%。
(3)结晶选用向溶液中加入乙醇来结晶,海藻糖极易溶于水,但它在水中的溶解度随温度变化不敏感冈此冷却法不适用。
蒸发结晶也不适用于海藻糖,囚为过高的煮糖温度有可能会发生褐变反应,产生的焦糖色素不仅影响外观,还可能阻滞结晶,影响纯度。
同时作为绝人多数生物药晶和食品成分的保护剂,过多的杂质显然也不允许,因此加入盐类的盐析也是不行的。
反应结晶显然也不适用。
海藻糖虽然极易溶于水.但在乙醇中的溶解度很小,因此可以采用加入乙醇使海藻糖析出的结晶方法。
一般海藻糖提取液中的海藻糖浓度较低,因此可用减压蒸馏的方法浓缩,再加入乙醇用盐析法结晶。
2.2生产工艺流程设计生产工艺流程图如下2.3.1乙醇提取取干酵母加入体积分数40%乙醇溶液,其料液比为1:7,在80℃恒温水浴中, 回流10min,提取海藻糖。
2.3.2 冷却离心提取液先冷却至室温,再离心分离,在3000r/min下离心分离15min,使固液分离,倾出上清液。
2.3.3 浓缩将所得到的纯海藻糖溶液通入到浓缩罐中,对其进行加热蒸发处理,除去其中的水分,浓缩海藻糖,得到粗产品海藻糖。
2.3.4 活性炭脱色脱蛋白将海藻糖提取液的调节PH调为4.0,加入活性炭混合均匀,活性炭用量为1g/L,在80℃水浴中反应40min,期间不断地搅拌,蛋白脱除率达82.88%。
2.3.5 离子交换树脂选用D001 大孔强酸性阳离子树脂与D201大孔强碱性阴离子树脂分别组成混合床,以体积比 2 ∶1的组成分别装柱,除去各种离子杂质(包括离子型色素),样品流速为2 mL/min,用蒸馏水洗涤交换柱,收集洗脱液。