蛙或蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备.
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备
生理学实验1 蛙坐骨神经腓肠肌标本的制备一、目的和原理蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动与温血动物近似,但其离体组织所需的生活条件比较简单,且易于控制,因此在生理学实验中常用其离体组织或器官作为实验标本。
例如:蛙或蟾蜍的坐骨神经腓肠肌标本,可用来观察和研究兴奋性、兴奋过程、刺激引起兴奋的条件、兴奋在神经-肌接头处的传递、肌肉收缩的特点等多种生理现象,所以,制备坐骨神经-腓肠肌标本,是生理学实验的一项基本操作技术。
本实验的目的是:学习并掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的方法,为以后的神经肌肉实验打下基础。
二、实验对象蛙或蟾蜍三、器材和用品蛙板、蛙针、蛙钉、剪刀(2把)、镊子(2把)、玻璃针、锌铜弓、培养皿、滴管、棉线、棉球、尸体盘(以上用品合称蛙类解剖器械一套)及任氏液。
四、方法与步骤1.破坏脑脊髓选一活泼健壮的蛙或蟾蜍,用清水冲洗干净。
左手握蛙,用食指下压吻端,拇指按压背部,使头前俯;右手持蛙针由吻端沿正中线向尾端触划,所触到的凹陷处即是枕骨大孔所在部位。
将蛙针由此垂直刺入皮下,再将针尖折向前方,经枕骨大孔进入颅腔,左右搅动捣毁脑组织(图1-1)。
然后将蛙针退出至刺入点皮下,再将针尖向后插入椎管捣毁脊髓。
图1-12.剪除前部躯干及内脏在骶髂关节以上1厘米处用粗剪刀剪断脊柱,并将前部躯干及所有内脏一并剪去,仅保留一段腰骶部脊柱和后肢。
在所留脊柱的腹侧两旁可看到坐骨神经丛。
剪下的部分置于尸体盘内。
3.剥皮左手捏住脊柱断端,右手捏住断端边缘的皮肤,向下剥掉后肢的全部皮肤,标本置于盛有任氏液的培养皿中待用,皮肤弃去。
洗净双手和器械,以免蛙或蟾蜍皮肤的分泌物损害神经和肌肉。
4.分离两后肢将下肢标本腹侧向上用蛙钉固定于蛙板上,用玻璃针沿脊柱两侧分离两条坐骨神经;在两条坐骨神经下各穿一线,于靠近脊柱处将其分别结扎,并在扎线与脊柱之间剪断神经;左手用结扎线提起坐骨神经,右手持剪刀或玻璃针向下游离,直至坐骨神经出盆腔处;将游离的两条坐骨神经分别置于两侧大腿的肌肉上。
坐骨神经—腓肠肌标本的制备
实验名称:坐骨神经—腓肠肌标本的制备一、实验目的学习坐骨神经—腓肠肌标本的制备方法,掌握基本操作技术。
二、实验原理1、牛蛙作为实验动物的优势容易饲养,产量丰富价格便宜,性价比高。
蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与哺乳动物相似,如神经的生物电活动、肌肉收缩等。
牛蛙是哺乳动物的理想替代品。
牛蛙的离体组织所需的生活条件比较简单,易于控制和掌握。
在任氏液的浸润下神经肌肉标本可较长时间保持生理活性。
2、使用锌铜弓检验标本活性的原理锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起,另一端分开。
锌的金属电势比铜低,形成一定的电势差(就相当于有电压)。
细胞的静息膜电位为外正内负,电刺激可改变可兴奋细胞的膜电位差。
膜电位减小时,细胞去极化。
细胞兴奋,膜电位增大时,细胞超极化,细胞兴奋性被抑制。
当用锌铜弓接触标本时,可产生沿锌片—活组织—铜片流向的电流对细胞产生刺激效应。
引起标本局部去极化,引发动作电位,肌肉收缩。
三、实验器材1、实验动物:牛蛙。
2、实验器材:任氏液,蛙类手术器械一套,大头针,锌铜弓。
四、实验流程和步骤1、实验流程洗干净实验动物→毁髓→剥制后肢→分离两后肢→分离坐骨神经→游离腓肠肌→分离股骨头→标本检验2、实验方法与步骤(1)毁髓:一只手握住牛蛙,使其背部向上。
用拇指压住牛蛙背部,食指压其头部前端,另一只手持毁髓。
用解剖针从蛙的枕骨大孔(把头抬起来时凹陷的部位或者脊柱与头骨的中心点)插入向前搅动后再向后搅动,直至毁髓成功(蛙的四肢自然下垂,瘫软无力)。
(2)剥制后肢标本:轻提双毁髓蛙,自背面耻骨联合上方约 1 公分处用粗剪刀横向剪断脊柱。
轻轻托起后肢,看清坐骨神经位置。
沿脊柱两侧横向切口剪断体壁、去除断口以上肢体和内脏放入污物缸。
剥去后肢皮肤后放入任氏液中备用。
(3)分离两后肢:用粗剪刀纵向剪开脊柱,并剪断两后肢相连的肌肉。
一只用于剥制标本,另一只放入任氏液中保存。
(4)分离坐骨神经、将后肢二标本脊柱端腹面向上、趾端向外侧用蛙钉将标本固定在蛙板上。
生理学实验报告-《坐骨神经-腓肠肌标本的制备》
实验二-坐骨神经标本—腓肠肌标本的制备一、实验目的:1.学习蛙类动物单毁髓与双毁髓的方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本及腓肠肌的制备方法。
3.了解电刺激的极性法则。
二、实验原理:1、牛蛙作为实验动物的优势:离体实验是动物生理学主要的实验方法之一。
两栖动物是冷血动物,其基本生理机能与温血动物近似,而其离体组织器官维持活性所需要的条件比较简单,因此它常被选为生理学实验提供离体组织或器官的实验动物。
蟾蜍或青蛙坐骨神经—腓肠肌在任氏液中可维持生理活性数小时,在其基础上还可进一步制作神经干标本、腓肠肌标本,可用于研究肌肉收缩的特性,神经和肌肉的兴奋性、传导性,刺激与反应的关系,神经肌肉接头活动等生理活动及相关机制,甚至还可以用于药物筛选如抗疲劳药物的模型。
其中牛蛙人工养殖成本低产出率高,相对蟾蜍要更安全。
因此,本次实验选择牛蛙作为实验对象。
2、锌铜弓刺激检测标本活性的原理:锌铜弓在溶液中沾湿以后,锌的表面电离出正离子,里面形成负离子;而铜的表面电离出负离子,里面形成正离子。
当用锌铜弓接触活组织时,电流便沿着锌一活组织→铜的方向流动而产生刺激效应。
所以锌相当于正极,面铜相当于负极发挥刺激作用;当断开时,则发生相反的效应。
锌的金属电势比铜低,形成一定的电势差(就相当于有电压),锌铜弓是把一根锌棒和一根铜棒一端焊在一起,另一段分开,则接触样本(例如神经干)时,会引起样本局部去极化,引发动作电位。
三、实验器材:牛蛙,常用手术器械(手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、毁髓针、玻璃分针),蜡盘,蛙板(木质或硬泡沫塑料),玻璃板,固定针,锌铜弓,培养皿或不锈钢盘,污物缸,滴管,纱布,粗棉线,任氏液。
四、实验流程和步骤:1.牛蛙的双毁髓一手握住牛蛙,背部向上。
用拇指压住牛蛙的背部,食指按压其头部前端,使头端向下低垂;另一手持毁髓针,由两眼之间沿中线向后触划,当触及两耳中间的凹陷处(此处与两眼的连线成等边三角形)时,持针手即感觉针尖下陷,此处即是枕骨大孔的位置。
生理学实验 坐骨神神经腓肠肌标本制备
实验一 坐骨神经腓肠肌标本制备【实验目的】掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备技术,为以后有关实验打下基础。
【实验原理】两栖类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似, 而其离体组织所需的生活条件 比较简单,易于建立、控制和掌握。
因此在实验中常用蟾蜍或蛙的坐骨神经腓肠肌标本来观 察兴奋与兴奋性的一些规律以及骨骼肌的收缩特点等。
所以坐骨神经腓肠肌标本的制备是生 理实验的一项基本操作技术。
【实验对象】蟾蜍或蛙。
【实验材料】两栖类手术器械 1套(粗剪刀、组织剪、眼科剪、组织镊、眼科镊、金属探针、玻璃 分针、蛙板)、手术线、蛙尸缸、滴管、平皿、锌铜弓、任氏液。
【实验步骤】1. 破坏脑和脊髓取蟾蜍 1 只,用自来水冲洗干净。
左手握住蟾蜍,用拇指按压背部,食指按压头部 前端使其头部前俯,右手持金属探针在头前缘沿正中线向尾端触划,所触划到的头部后 端的凹陷处,即为枕骨大孔所在部位。
在此处将金属探针垂直刺入皮肤,有突破感后再 将金属探针折向前经枕骨大孔刺入颅腔,左右搅动捣毁脑组织;然后将金属探针回抽至 枕骨大孔处,转向后刺入脊椎管,反复提插捣毁脊髓。
此时如蟾蜍的四肢松软,呼吸运 动消失,表示脑和脊髓已完全破坏,否则应按上法再行捣毁。
2. 剪除躯干上部及内脏如图 1-1 所示,在骶髂关节位置用左手将蟾蜍提起,在骶髂关节水平以上 0.5~l 厘米处用粗剪刀剪断脊柱,然后将粗剪刀尖向下深入体腔沿躯干两侧剪开皮肤,使蟾蜍 头、上肢与内脏自然下垂,将其一并剪除弃去,仅留后肢、骶骨、脊柱及紧贴于脊柱两 侧的坐骨神经。
在整个剪除过程中注意勿损伤神经。
3. 剥皮左手用组织镊夹紧或用手直接捏住脊柱断端(注意:不要夹住或接触神经),右手捏,将标本放在盛有任氏液 住其上的皮肤边缘,用力向下剥掉全部后肢皮肤(见图 1-2)的平皿中。
将手及用过的粗剪刀、组织镊等全部手术器械洗净,再进行下述步骤。
4. 分离两腿用镊子从背位夹住脊柱将标本提起,剪去向上突出的骶骨(注意勿损伤坐骨神经),然后沿正中线用粗剪刀将脊柱分为两半,并从耻骨联合中央剪开两侧大腿,然后将分离的两条腿浸于盛有任氏液的平皿中备用。
蛙或蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备
1. 破坏脑脊髓 取蟾蜍一只,用自来水冲洗干净。左手握住蟾蜍,用食指压住头部前端使 头前俯,右手持刺蛙针从枕骨大孔向前刺入颅腔(图 1-1),左右搅动捣毁脑组织,然 后将刺蛙针退到枕骨大孔,不拔出而是将其尖转向后插入脊柱管中捣毁脊髓,插入椎管 时,蟾蜍后肢立即失去紧张性,多数情况出现尿失禁。若脑脊髓破坏完全,可见蟾蜍四 肢松软,呼吸消失。
5. 游离坐骨神经和剪断股骨 认清坐骨神经沟和腓肠肌的部位(图),用剪刀剪断梨状肌 及其周围的结缔组织,左手提着神经上的细线,右手持剪刀或玻璃分针沿坐骨神经沟细 心剥离,直至将坐骨神经剥离到腘窝。将游离干净的坐骨神经放在下腿上,沿膝关节的 周围将大腿的所有肌腱剪断,并用剪刀刮净股骨下段附着的肌肉,在股骨上三分之一处 剪去上段股骨及所附的肌肉,这样制成的称为坐骨神经下腿标本(图 1-4)。
图 1-1 破坏蟾蜍脑脊髓
图 1-2 剪除躯干和内脏
图 1-3 剥除后肢皮肤
4. 分离两腿 用玻璃分针沿脊柱两侧游离出两条坐骨神经,并于近脊柱处各扎一细线,然 后在扎线与脊柱之间剪断神经。提着神经上的细线,将两条坐骨神经分别置于两条大腿 上,左手持脊柱,将骶骨翘起,将下位脊柱全部剪除。捏着两侧骼骨向反方向分离,使 耻骨联合脱臼后,沿耻骨联合正中将两下肢剪开,将一条腿浸于任氏液中备用,另一条 置于浸有任氏液的玻璃板上。
6. 游离腓肠肌 在坐骨神经下腿标本的基础上,用剪刀将跟腱的下端剪断,在跟腱与肌肉 交界处扎一条细线,左手提线,右手用剪刀游离腓肠肌,直到膝关节。最后用粗剪刀在 膝关节下将小腿剪去,留下的即为坐骨神经腓肠肌标本(图 1-5)。做好的标肌立即收缩,表示标本的兴奋性良好,然后将标本 放入任氏液中,待其兴奋性稳定后再进行实验。
实验 1 蛙或蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备
实验1坐骨神经-腓肠肌标本的制备
实验1坐骨神经-腓肠肌标本的制备实验目的掌握制备坐骨神经-腓肠肌标本的操作技术,为此后有关的神经肌肉实验打下基础。
实验原理蛙或两栖类动物的一些基本生命活动及生理功能与恒温动物近似,而且其离体组织需要的生活条件非常简单,易于控制和掌握。
因此在生理学实验中,坐骨神经-腓肠肌标本是研究神经肌肉生理最常用的对象,经常用来研究神经肌肉的兴奋性、刺激与反应的规律、肌肉收缩的特点、兴奋性的周期性变化等。
实验器材和药品蛙类手术器械一套(金属探针1根,粗剪刀、眼科剪刀各1把,圆头镊子、眼科镊子各1把,玻璃分针2根),蛙板和玻璃板各1块,滴管,废物缸、锌铜弓,丝线,棉花;任氏液。
实验对象蟾蜍。
实验方法和步骤1.破坏脑和脊髓以左手持蟾蜍,将其腹面朝向手心,前肢夹在食指和中指之间固定,后肢夹在无名指和小指之间固定,并用拇指按压蟾蜍头部使之下俯30-40度角;然后右手持金属探针沿蟾蜍头部的中线下划,可触及一凹陷处即为枕骨大孔(此处与两眼的连线成等边三角形)。
将探针从枕骨大孔垂直刺入1-1.5mm,再向前刺入颅腔,左右搅动(如毁髓针确在颅腔内,实验者可感到针尖触及颅骨),破坏脑组织;再将探针退回至进针处,但不拔出而是转向后方刺入椎管,破坏脊髓。
彻底捣毁脊髓时,可看到动物的后肢突然蹬直,而后瘫软如棉,此时的动物为双毁髓动物。
如动物仍表现四肢肌肉紧张或活动自如,必须重新毁髓。
操作过程中应注意使蟾蜍头部向外侧(不要挤压耳后腺),防止耳后腺分泌物射人实验者眼内(如被射入,则需立即用生理盐水冲洗眼睛)。
破坏脑和脊髓成功后,蟾蜍出现四肢(尤其是后肢)瘫软,并常有尿失禁现象。
2.剪去躯干上部及内脏用粗剪刀在两侧腋部稍下(或在骶髂关节以上1.5-2cm处)剪断脊柱,用左手握住蟾蜍后肢,拇指按压骶骨,使蟾蜍头部及内脏自然下垂;避开腰骶神经丛后,右手用粗剪刀沿脊柱两侧剪开腹壁,在耻骨联合处将躯干上部及内脏剪掉,弃入废物缸内。
3.剥皮左手持大镊子夹住脊柱断端 (小心勿伤神经),右手捏住脊柱断端的皮肤边缘,逐步向下剥去全部后肢皮肤。
坐骨神经腓肠肌标本制备步骤
坐骨神经腓肠肌标本制备步骤《坐骨神经腓肠肌标本制备步骤坐骨神经腓肠肌标本制备步骤》嘿,朋友!今天咱们来聊聊坐骨神经腓肠肌标本的制备步骤。
这事儿啊,说起来还挺有趣的,您可得听我慢慢道来。
呢,咱们得准备好一些工具和材料。
像是蛙类动物,常用的是蟾蜍,还有一些手术器械,像解剖刀、镊子、剪刀之类的,当然还少不了一些生理盐水,这可是保持标本活性的关键哦。
准备好这些,咱们就可以开始动手啦!把蟾蜍捉来,先得让它安静下来。
这时候可以给它来一下“温柔的抚摸”,让它放松放松。
然后,用大头针把蟾蜍的四肢固定在解剖盘上。
这一步可得小心点,别弄疼了它。
找到脊柱后,在它的两侧找到坐骨神经,这两条神经就像是藏在深处的宝贝,得仔细找才能发现。
找到后,用镊子轻轻把周围的组织清理干净,让坐骨神经完全暴露出来。
然后,顺着坐骨神经往下,就能找到腓肠肌。
这腓肠肌就像是一个小肌肉块,连着坐骨神经。
用剪刀把坐骨神经和腓肠肌周围的其他组织剪掉,但要注意,千万别把神经和肌肉剪断了,这可需要点耐心和细心。
不过,还没完呢!把取下的标本放在盛有生理盐水的培养皿里,让它好好泡个澡,保持湿润和活力。
经过这一系列的操作,咱们的坐骨神经腓肠肌标本就制备好啦!是不是感觉还挺有意思的?这当中每一步都需要咱们小心谨慎,就像对待一件珍贵的宝贝一样。
朋友,您要是自己动手做这个标本,一定要按照这些步骤慢慢来,相信您一定能成功的!。
实验二 蛙和蟾蜍神经肌肉标本制备
实验二蛙和蟾蜍神经肌肉标本制备一、实验目的熟悉并掌握蛙和蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备方法。
属于急性实验中的离体实验。
原理:两栖类动物的离体组织器官可在室温下,于一定时间内保持其机能,故常用作生理学实验的材料。
蛙或蟾蜍坐骨神经腓肌肠标本,常用来研究兴奋性、兴奋过程、刺激的规律以及肌肉的收缩特点等。
制备坐骨神经腓肌肠标本是生理实验的一项基本操作技术。
可兴奋细胞包括:神经细胞、肌肉细胞兴奋的传递:神经细胞之间突触传递;神经细胞与肌肉细胞之间采用接头传递。
二、实验仪器及材料牛蛙(Rana catesbeiana),手术剪1把,虹膜剪刀1把,大、小镊子各1把,刺蛙针1根,玻璃分针2根,小玻璃板和蛙板各1块,培养皿1个,烧杯1个,滴管1支,棉线、纱布、任氏液、锌铜弓。
三、实验方法与步骤1、破坏脑和脊髓取一只牛蛙,洗净蛙体,用左手握蛙,并用食指按压其头部前端,拇指按压背部,使头前俯;右手持刺蛙针由头前端沿中线向尾方划触,触及凹陷处即枕骨大孔处。
将刺蛙针转向头方,向前探入颅腔,然后向各方搅动刺蛙针,以捣毁脑组织。
脑组织捣毁后,将刺蛙针退出;再由枕骨大孔刺入,并转向尾方,与脊柱平行刺入脊管,以破坏脊髓。
脑和脊髓完全破坏后,动物四肢肌肉的紧张性完全消失。
拔出刺蛙针后,用一小干棉球堵住针孔止血。
2.剪除躯干上部、皮肤及内脏用左手捏住蟾蜍的脊柱,右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断,然后左手握住蟾蜍的后肢,紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去(注意避开坐骨神经),并剪去肛门周围的皮肤,留下脊柱和后肢。
3.剥皮一只手捏住脊柱的断端(注意不要捏住脊柱两侧的神经),另一只手捏住其皮肤的边缘,向下剥去全部后肢的皮肤(图2)。
将标本放在干净的任氏液中。
将手及使用过的探针、剪刀全部冲洗干净。
4.分离两腿用鑷子取出标本,左手捏住脊柱断端,使标本背面朝上,右手用粗剪刀剪去突出的骶骨(也可不进行此步)。
然后将脊柱腹侧向上,左手的两个手指捏住脊柱断端的横突,另一手指将两后肢担起,形成一个平面。
生物实验报告坐骨神经腓肠肌标本制备
生物实验报告姓名:班级:日期:同组者:实验序号:实验题目:坐骨神经-腓肠肌标本的制备实验目的:1.学习蛙类动物双毁髓的实验方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
实验原理:两栖类动物的离体组织所需要的生活条件比较简单,易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蟾蜍的坐骨神经——腓肠肌标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激强度、刺激频率与肌肉收缩反应的一些规律以及骨骼肌的收缩特性等。
实验对象:蟾蜍实验器材:常规手术器械(粗剪刀、手术剪、眼科剪、手术镊、眼科镊)蛙板、蛙钉、探针、锌铜弓、玻璃分针、培养皿、任氏液、滴管、手术线等。
实验方法及步骤:1、破坏脑脊髓部位枕骨大孔。
如果蟾蜍四肢松软,呼吸消失,表示脑脊髓已完全破坏,否则按上述方法再进行捣毁。
2、剪去躯干上部及内脏在骶髂关节前1 cm处用金冠剪(粗剪)剪断脊柱(可在下肢前端)。
沿脊柱切口向下剪开两侧腹部皮肤至耻骨处,将头、前肢、内脏及腹部软组织全部剪掉,放于污物盘,只保留下端脊柱和下肢。
在腹侧脊柱两旁可看到腰骶神经丛。
注意切勿触及或损伤坐骨神经。
3、剥后肢皮肤左手持镊子夹住脊髓断端,右手捏住断端边缘,剥掉全部后肢皮肤。
将标本放于盛有任氏液的培养皿内,将手和手术器械洗净。
4、分离两腿用金冠剪剪去尾骨杆(骶骨),沿脊椎中线将脊柱剪开,再沿耻骨联合正中央剪开两侧大腿,使两腿完全分离(切勿伤及神经),将两腿浸于任氏液中。
5、游离坐骨神经取一后肢,腹面向上(背位),固定于蛙板上,沿脊柱侧用玻璃分针轻轻勾起坐骨神经,逐一剪去神经分支至股端。
用金冠剪剪断脊柱,只保留一小段椎骨片与坐骨神经相连。
将标本改为背面向上(腹位)固定,用镊子提起梨状肌,剪断,用玻璃分针将坐骨神经小心勾至背部。
再沿坐骨神经沟(半膜肌和股二头肌的肌间缝)分离坐骨神经。
用镊子夹住与神经相连的脊椎骨,提起神经,用眼科剪将神经分支及结缔组织膜顺序剪断,将神经一直游离到腘窝处。
6、游离腓肠肌用镊子夹住脊椎骨,将神经搭在腓肠肌上,用剪刀将膝关节周围的大腿肌肉完全剪除,用金冠剪将膝关节上方的股骨刮干净,暴露骨股并在距膝关节上1 cm处剪断,分离腓肠肌的跟腱,用线结扎,然后自跟腱的附着点剪断,提起跟腱,将腓肠肌分离至膝关节处,将小腿其余部分剪掉。
观察蛙的坐骨神经实训报告
一、实验目的1. 了解蛙的坐骨神经的解剖结构和生理功能。
2. 掌握坐骨神经标本的制备方法。
3. 观察坐骨神经的兴奋传导过程和肌肉收缩现象。
4. 理解神经-肌肉兴奋传导和肌肉收缩的生理机制。
二、实验原理坐骨神经是人体最粗大的神经,起源于脊髓腰骶段的神经根,负责下肢的感觉和运动。
在实验中,通过电刺激坐骨神经,可以观察到神经纤维的兴奋传导和肌肉的收缩反应,从而了解神经-肌肉兴奋传导的生理机制。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:蛙或蟾蜍、任氏液、剪刀、镊子、手术刀、蛙板、蛙钉、细线、培养皿、滴管、双凹夹、滤纸片等。
2. 实验仪器:坐骨神经-腓肠肌标本屏蔽盒、带电极的接线和用棉花做成的引导电极、计算机生物信号采集处理系统、普通剪刀、手术剪、眼科镊(或尖头无齿镊)、金属探针(解剖针)、玻璃分针、蛙板(或玻璃板)、蛙钉、细线、培养皿、滴管、双凹夹、培养皿、滤纸片。
四、实验步骤1. 坐骨神经-腓肠肌标本的制备- 将蛙或蟾蜍放入装有任氏液的培养皿中,使其适应环境。
- 在蛙板上固定蛙,用剪刀剪开皮肤,暴露坐骨神经和腓肠肌。
- 用镊子分离坐骨神经和腓肠肌,注意保护神经和肌肉的完整性。
- 将坐骨神经和腓肠肌放入标本屏蔽盒中,用任氏液浸泡。
2. 观察坐骨神经的兴奋传导- 将引导电极插入坐骨神经,另一电极置于腓肠肌上。
- 打开计算机生物信号采集处理系统,观察坐骨神经的兴奋传导过程。
- 通过改变刺激强度和频率,观察坐骨神经兴奋传导的特性。
3. 观察肌肉收缩现象- 在腓肠肌上施加电刺激,观察肌肉的收缩反应。
- 通过改变刺激强度和频率,观察肌肉收缩的特性。
4. 观察神经-肌肉兴奋传导和肌肉收缩的相互关系- 在坐骨神经上施加电刺激,观察腓肠肌的收缩反应。
- 通过改变刺激强度和频率,观察神经-肌肉兴奋传导和肌肉收缩的相互关系。
五、实验结果与分析1. 坐骨神经的兴奋传导- 观察到坐骨神经的兴奋传导具有双向传导性,即电刺激从一端传入,另一端也能观察到兴奋传导。
实验三 蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备
用蛙针由凹陷处垂直刺入枕骨大孔,再向前伸入颅腔,捣毁脑;
向44、、后有 有插时时入标标椎住本本管兴兴,断奋奋3捣性性、端毁过过脊去边高高髓,,皮。缘可可放放:皮置置先22肤00剪,mmiinn去向待待其其肛下稳 稳门定定剥后后周掉再再 围全皮部肤后,肢然皮后肤用。左标手本捏放住入脊盛柱有断林端格,液右的手小捏烧 两2、栖剪类除手躯术杯干器上械中部,及,培内养将脏皿:,手在任腋及氏部液用用,铁棉过剪刀的剪断器脊械柱,、将头蛙、板前肢洗和内净脏,一并以弃去免,皮仅保肤存一分段泌脊柱物和后污肢染。 神经-肌肉 标本。 5、游离坐骨神经:用玻璃分针在半膜肌和股二头肌之间分离出坐骨神经。 熟神悉经并 干掌,握又蟾要蜍避4坐免、骨金神属分经器离-械腓对标肠神肌经本标的为本不的必两制要备触部碰分。 :沿脊柱正中线将标本均匀地分成左右两半, 神肉经,干 防,止又干分要燥避。别免作金属进器械一对步神经剥的不制必。要触碰。 322、、、避 游 游免离离蟾神神神蜍经经皮时时经肤,,5分切切、。泌勿勿游注物用用和玻玻离意血璃璃液分分坐分等针针骨污逆逆离染向向神时标剥剥本离离经要,,,:也以以仔不防防用细能损损用伤伤玻用璃剪分刀针剪在断半坐膜骨肌神和经股的二分头支肌,之勿间伤分神离经出干坐,骨前 4蛙、类有一时些标基面本本兴生分奋命性离活过动至高和,生脊可理放柱功置能2坐与0恒骨m温in神动待物其经相稳似定丛,后基其再离部体组,织向器官下所需分的离生活至条件膝比关较简节单,。并保且易留于控与制坐和掌骨握,神因经此在相生理试
线,玻璃分针,解剖盘,剪刀
2或、把剪铁除剪躯刀干插上入部6口及、裂内,分脏沿:离两在眼腋腓后部缘肠用剪铁肌去剪头刀:,剪再在断以脊跟蛙柱针,腱捣将毁上头脊、扎髓前。肢牢和一内脏线一并,弃提去,起仅保结存线一段,脊柱剪和断后肢结。 扎线外的跟 1、破坏脑腱脊髓,:左游手离持蛙腓,用肠食指肌下至压吻膝端,关拇节指按处压背,部将,使膝蛙头关前节俯;以下小腿其余部分全部剪去。至 此,标本制成。 3、去皮:先剪去肛门周围皮肤,然后用左手捏住脊柱断端,右手捏住断端边缘皮肤,向下剥掉全部后肢皮肤。
蟾蜍的坐骨神经—腓肠肌标本的制备
蟾蜍的坐骨神经一腓肠肌标本的制备及神经干的性质实验报告实验名称蛙的坐骨神经一腓肠肌标本的制备及神经干的性质实验目的要求学习并掌握坐骨神经一腓肠肌标本以及腓肠肌标本制备的方法;学习生理学实验基本的组织分离技术;观察刺激强度,刺激频率与肌肉收缩反应的关系;掌握引导神经干复合动作电位和测定其传导速度的基本原理和方法。
实验材料,仪器,试剂蟾蜍、常用手术器械(手术剪、手术镊、手术刀、金冠剪、眼科剪、眼科镊、玻璃分针等)、烧杯、培养皿、纱布、棉线、粗剪刀、蛙板、污物缸、滴管、生理信号采集系统、张力传感器、铁架台、计算机、任氏液等。
实验原理两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似,而其离体组织所需要的生活条件比较简单,易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蟾蜍的神经肌肉标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激的规律以及骨骼肌收缩的特点等。
任氏液是—种比较接近两栖动物内环境的液体,可以用来延长青蛙心脏在体外跳动时间、保持两栖类其他离体组织器官生理活性等。
腓肠肌由许多的纤维组成,刺激腓肠肌时,不同的刺激强度会引起肌肉的不同反应。
当刺激强度过小时,不应期肌肉发生收缩反应,此时的刺激为阈下刺激。
而能引起肌肉发生收缩的最小刺激强度,为阈刺激,但全部肌纤维同时收缩时,贝y出现最大的收缩反应。
这时,即使再加大刺激强度,肌肉的收缩强度也不会随之而增大。
可以引起肌肉发生最大收缩反应的最小刺激强度为最适刺激。
肌肉组织对于一个阈上强度的刺激,发生一次迅速地收缩反应,即单收缩。
单收缩的过程分为三个时期,潜伏期、收缩期、舒张期。
刺激坐骨神经能引起腓肠肌产生收缩。
在其他条件不变情况下,不断增大刺激频率可引起肌肉收缩形式发生改变。
若刺激频率较小,两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩和舒张所持续的时间(即单收缩)时,肌肉收缩表现为一连串的单收缩;若增大刺激频率,使两次刺激间隔时间大于一次肌肉收缩的收缩期时间,而小于单收缩时,肌肉呈现不完全强直收缩;若继续增加刺激频率,使两次刺激间隔时间小于一次肌肉收缩的收缩期时间,肌肉则表现出完全强直收缩。
生物实验报告-坐骨神经腓肠肌标本制备
生物实验报告姓名:班级:日期:同组者:实验序号:实验题目:坐骨神经-腓肠肌标本的制备实验目的:1.学习蛙类动物双毁髓的实验方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
实验原理:两栖类动物的离体组织所需要的生活条件比较简单,易于控制和掌握。
因此在生理实验中常用蟾蜍的坐骨神经——腓肠肌标本来观察兴奋性、兴奋过程、刺激强度、刺激频率与肌肉收缩反应的一些规律以及骨骼肌的收缩特性等。
实验对象:蟾蜍实验器材:常规手术器械(粗剪刀、手术剪、眼科剪、手术镊、眼科镊)蛙板、蛙钉、探针、锌铜弓、玻璃分针、培养皿、任氏液、滴管、手术线等。
实验方法及步骤:1、破坏脑脊髓部位枕骨大孔。
如果蟾蜍四肢松软,呼吸消失,表示脑脊髓已完全破坏,否则按上述方法再进行捣毁。
2、剪去躯干上部及内脏在骶髂关节前1 cm处用金冠剪(粗剪)剪断脊柱(可在下肢前端)。
沿脊柱切口向下剪开两侧腹部皮肤至耻骨处,将头、前肢、内脏及腹部软组织全部剪掉,放于污物盘,只保留下端脊柱和下肢。
在腹侧脊柱两旁可看到腰骶神经丛。
注意切勿触及或损伤坐骨神经。
3、剥后肢皮肤左手持镊子夹住脊髓断端,右手捏住断端边缘,剥掉全部后肢皮肤。
将标本放于盛有任氏液的培养皿内,将手和手术器械洗净。
4、分离两腿用金冠剪剪去尾骨杆(骶骨),沿脊椎中线将脊柱剪开,再沿耻骨联合正中央剪开两侧大腿,使两腿完全分离(切勿伤及神经),将两腿浸于任氏液中。
5、游离坐骨神经取一后肢,腹面向上(背位),固定于蛙板上,沿脊柱侧用玻璃分针轻轻勾起坐骨神经,逐一剪去神经分支至股端。
用金冠剪剪断脊柱,只保留一小段椎骨片与坐骨神经相连。
将标本改为背面向上(腹位)固定,用镊子提起梨状肌,剪断,用玻璃分针将坐骨神经小心勾至背部。
再沿坐骨神经沟(半膜肌和股二头肌的肌间缝)分离坐骨神经。
用镊子夹住与神经相连的脊椎骨,提起神经,用眼科剪将神经分支及结缔组织膜顺序剪断,将神经一直游离到腘窝处。
6、游离腓肠肌用镊子夹住脊椎骨,将神经搭在腓肠肌上,用剪刀将膝关节周围的大腿肌肉完全剪除,用金冠剪将膝关节上方的股骨刮干净,暴露骨股并在距膝关节上1 cm处剪断,分离腓肠肌的跟腱,用线结扎,然后自跟腱的附着点剪断,提起跟腱,将腓肠肌分离至膝关节处,将小腿其余部分剪掉。
坐骨神经腓肠肌实验报告
一、实验目的1. 理解坐骨神经与腓肠肌的解剖结构和生理功能。
2. 掌握坐骨神经腓肠肌标本的制备方法。
3. 观察并分析坐骨神经刺激对腓肠肌收缩的影响。
4. 了解神经肌肉传导的基本原理。
二、实验原理坐骨神经是人体最粗大的神经,起源于腰骶神经丛,主要负责下肢的感觉和运动功能。
腓肠肌位于小腿后侧,是下肢的重要肌肉之一,主要功能是屈膝和伸踝。
在实验中,通过电刺激坐骨神经,可以观察腓肠肌的收缩反应,从而了解神经肌肉的传导过程和肌肉收缩的机制。
三、实验材料与仪器1. 实验动物:蟾蜍或青蛙2. 实验仪器:手术剪、手术镊、手术刀、眼科剪、眼科镊、毁髓针、蛙板、固定针、滴管、培养皿、玻璃分针、锌铜弓、污物缸、粗棉线、任氏液、电子刺激器3. 实验药品:生理盐水、肾上腺素四、实验步骤1. 制备坐骨神经腓肠肌标本- 将实验动物麻醉后,固定于蛙板上。
- 用手术剪剪开皮肤,暴露坐骨神经和腓肠肌。
- 使用毁髓针破坏坐骨神经的髓鞘,使神经传导功能减弱。
- 将腓肠肌从骨骼上分离,保留其与坐骨神经的连接。
- 将腓肠肌和坐骨神经放入任氏液中,保持标本的生理活性。
2. 观察坐骨神经刺激对腓肠肌收缩的影响- 将锌铜弓分别连接在坐骨神经和腓肠肌上。
- 使用电子刺激器对坐骨神经进行电刺激。
- 观察腓肠肌的收缩反应,记录收缩幅度和持续时间。
- 改变刺激强度和频率,观察腓肠肌的收缩反应。
3. 分析实验结果- 比较不同刺激强度和频率下腓肠肌的收缩反应。
- 分析坐骨神经刺激对腓肠肌收缩的影响,探讨神经肌肉传导的原理。
五、实验结果1. 在低强度刺激下,腓肠肌出现短暂的收缩反应。
2. 随着刺激强度的增加,腓肠肌的收缩幅度和持续时间逐渐增大。
3. 当刺激强度达到一定阈值时,腓肠肌出现最大收缩反应。
4. 改变刺激频率,观察腓肠肌的收缩反应,发现低频率刺激时,腓肠肌收缩幅度较大;高频率刺激时,腓肠肌收缩幅度减小。
六、实验结论1. 坐骨神经刺激可以引起腓肠肌的收缩反应。
坐骨神经-腓肠肌标本的制备
坐骨神经-腓肠肌标本的制备XXX,YYY,ZZZ(版权所有,仅限个人)一、实验目的:1.学习蛙类动物双毁髓的实验方法。
2.学习并掌握坐骨神经-腓肠肌标本的制备方法。
二、实验原理:1.蟾蜍处死:将蟾蜍的脑和脊髓用毁髓针捣毁后,蟾蜍即死亡。
捣毁脑是为了将蟾蜍的感觉和运动中枢破坏,同时也使蟾蜍的意识消失,既避免解剖过程中蟾蜍感到痛苦,也避免蟾蜍有意识的反应;捣毁脊髓是为了破坏蟾蜍的周围神经系统,避免蟾蜍自然的非意识的反应(乱动)。
总之,双毁髓就是为了是蟾蜍在之后的解剖过程中无任何干扰实验的反应。
2.坐骨神经-腓肠肌标本的制备:坐骨神经直接支配着腓肠肌的反应,刺激坐骨神经的神经干,腓肠肌会产生收缩反应。
一次阈上刺激,腓肠肌会产生一个周期的收缩舒张过程,从而可以被信号采集系统采集,并通过计算机和相关软件转化成可视的收缩舒张曲线。
便于研究神经和肌肉的信号、反应关系和规律。
三、实验器材与试剂:(一)实验动物及器材:蟾蜍、常用蛙类手术器械(如:毁髓针、剪刀、解剖刀等)、蛙板、玻璃划针、固定针、培养皿、滴管、棉花、粗棉线等。
(二)实验试剂:任氏液(近似两栖动物内环境液,配制因子很多,不同于生理盐水)四、实验方法与步骤:1、蟾蜍处死,损毁脑和脊髓:a.学会持拿蟾蜍的方法:一般用左手持拿蟾蜍,用小指和无名指夹住蟾蜍两后腿,中指自然搭在蟾蜍腹部,食指和拇指可自由活动。
处死时,一般用拇指按住蟾蜍背部,食指将蟾蜍头鼻下压,以便使下针处清晰易找。
b.处死:按上述方法持拿,用毁髓针沿头部中线从鼻尖轻轻向后滑过,约在双眼连线中点后方某点,可感到有一下陷小窝,用针轻按,蟾蜍一般会有明显反应。
在此处下针。
将毁髓针垂直插入,会感觉到颅骨破碎的声音,立即将毁髓针向后放倒,将针尖从破碎处,并旋转捣毁脑部;然后将毁髓针拔出少许,向前放倒,向后插入同样旋转捣毁脊髓。
蟾蜍即被处死。
2、去除躯干上部及内脏:将蟾蜍腹部朝上放在蛙板上,将四肢用固定针固定。
动物生理学实验课件(二) 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
附3 :蛙坐骨神经——腓肠肌标本的制备图解附4:蛙骨神经——腓肠肌标本的制备图解
五.实验应注意事项
1.本制备过程中尽可能避免损伤神经,不可用力牵拉或用金属器械钳 夹神经。
2.随时滴加任氏液保持神经湿润,并将暂时不用的标本置于任氏液中 备用。
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备步骤图解
实验二 制备完成的蛙坐骨神经-腓肠肌标本
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
六.作业与思考
1.为什么制备过程中要避免用金属器械接触神经? 2.兴奋是如何从神经传递到肌肉的? 3.肌肉收缩是钙离子有什么作用? 4.神经兴奋与肌肉收缩如何保证是一对一的关系?
注明:本课件的完成引用了各院校的资料和图片,谨此一 并致谢!
附1:实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备过程
附2:蛙坐骨神经——腓肠肌标本的制备图解
(4)检查标本的兴奋性:用经任氏液湿润的铜锌弓迅速接触坐骨神 经,如腓肠肌发生明显的收缩,表明标本的兴奋性良好,即可将标本 置于盛有干净任氏液的培养皿中待用。
(二)坐骨神经干标本制备
实验二 蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的制备
分离坐骨神经的方法及步骤与上述1-5项的(1)项同.当坐骨神经游 离至膝关节处后再向下继续剥离,在腓肠肌两侧肌沟内找到肌神经和 腓神经,分别分离二支神经直至足趾,用线分别结扎(棉线留10厘米长, 以便提拿标本),在结扎的远端剪断.注意胫腓二支在绕过膝关节时,其 上覆有肌腱和筋膜,分别时慎勿剪断或损伤神经.标本置任氏液中浸泡 10分钟备用.
4.分离两腿: 沿正中线用剪刀将脊柱分为两半(勿损伤坐骨神经),并从 耻骨联合中央剪开两侧大腿.分离后两腿浸于盛有任氏液的烧杯内.
5.制作坐骨神经腓肠肌标本: 取一腿放置蛙板中央的玻璃板上,腹侧向 上用蛙钉固定之.
实验二 蛙和蟾蜍神经肌肉标本制备
实验二蛙和蟾蜍神经肌肉标本制备一、实验目的熟悉并掌握蛙和蟾蜍坐骨神经腓肠肌标本的制备方法。
属于急性实验中的离体实验。
原理:两栖类动物的离体组织器官可在室温下,于一定时间内保持其机能,故常用作生理学实验的材料。
蛙或蟾蜍坐骨神经腓肌肠标本,常用来研究兴奋性、兴奋过程、刺激的规律以及肌肉的收缩特点等。
制备坐骨神经腓肌肠标本是生理实验的一项基本操作技术。
可兴奋细胞包括:神经细胞、肌肉细胞兴奋的传递:神经细胞之间突触传递;神经细胞与肌肉细胞之间采用接头传递。
二、实验仪器及材料牛蛙(Rana catesbeiana),手术剪1把,虹膜剪刀1把,大、小镊子各1把,刺蛙针1根,玻璃分针2根,小玻璃板和蛙板各1块,培养皿1个,烧杯1个,滴管1支,棉线、纱布、任氏液、锌铜弓。
三、实验方法与步骤1、破坏脑和脊髓取一只牛蛙,洗净蛙体,用左手握蛙,并用食指按压其头部前端,拇指按压背部,使头前俯;右手持刺蛙针由头前端沿中线向尾方划触,触及凹陷处即枕骨大孔处。
将刺蛙针转向头方,向前探入颅腔,然后向各方搅动刺蛙针,以捣毁脑组织。
脑组织捣毁后,将刺蛙针退出;再由枕骨大孔刺入,并转向尾方,与脊柱平行刺入脊管,以破坏脊髓。
脑和脊髓完全破坏后,动物四肢肌肉的紧张性完全消失。
拔出刺蛙针后,用一小干棉球堵住针孔止血。
2.剪除躯干上部、皮肤及内脏用左手捏住蟾蜍的脊柱,右手持粗剪刀在前肢腋窝处连同皮肤、腹肌、脊柱一并剪断,然后左手握住蟾蜍的后肢,紧靠脊柱两侧将腹壁及内脏剪去(注意避开坐骨神经),并剪去肛门周围的皮肤,留下脊柱和后肢。
3.剥皮一只手捏住脊柱的断端(注意不要捏住脊柱两侧的神经),另一只手捏住其皮肤的边缘,向下剥去全部后肢的皮肤(图2)。
将标本放在干净的任氏液中。
将手及使用过的探针、剪刀全部冲洗干净。
4.分离两腿用鑷子取出标本,左手捏住脊柱断端,使标本背面朝上,右手用粗剪刀剪去突出的骶骨(也可不进行此步)。
然后将脊柱腹侧向上,左手的两个手指捏住脊柱断端的横突,另一手指将两后肢担起,形成一个平面。
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
蛙或蟾蜍。
【实验器材与药品】
蛙类坐骨神经一腓肠肌标本制备手术器械和药品1套,包括:蛙板、小玻板各1块、粗剪刀、直剪刀各1把,大镊子、小镊子各1把,眼科剪刀1把、探针1根、玻璃分针2根、大烧杯、小烧杯各1个,滴管1支,培养皿1个、棉线,任氏液、锌铜叉。
【实验方法和步骤】
1.破坏脑脊髓取蟾蜍一只,用自来水冲洗干净。左手握住蟾蜍,用食指压住头部前端使头前俯,右手持刺蛙针从枕骨大孔向前刺入颅腔(图1-1 ,左右搅动捣毁脑组织,然后将刺蛙针退到枕骨大孔,不拔出而是将其尖转向后插入脊柱管中捣毁脊髓,插入椎管时,蟾蜍后肢立即失去紧张性,多数情况出现尿失禁。若脑脊髓破坏完全,可见蟾蜍四肢松软,呼吸消失。
5.游离坐骨神经和剪断股骨认清坐骨神经沟和腓肠肌的部位(图,用剪刀剪断梨状肌及其周围的结缔组织,左手提着神经上的细线,右手持剪刀或玻璃分针沿坐骨神经沟细心剥离,直至将坐骨神经剥离到腘窝。将游离干净的坐骨神经放在下腿上,沿膝关节的周围将大腿的所有肌腱剪断,并用剪刀刮净股骨下段附着的肌肉,在股骨上三分之一处剪去上段股骨及所附的肌肉,这样制成的称为坐骨神经下腿标本(图1-4。
5.避免用手指或金属器械接触或夹持标本的神经肌肉部分。
【思考题】
你制备的坐骨神经腓肠肌标本兴奋性如何?有哪些体会?
(毕辉段玉斌
图1-1破坏蟾蜍脑脊髓
图1-2剪除躯干和内脏
图1-3剥除后肢皮肤
4.分离两腿用玻璃分针沿脊柱两侧游离出两条坐骨神经,并于近脊柱处各扎一细线,然后在扎线与脊柱之间剪断神经。提着神经上的细线,将两条坐骨神经分别置于两条大腿上,左手持脊柱,将骶骨翘起,将下位脊柱全部剪除。捏着两侧骼骨向反方向分离,使耻骨联合脱臼后,沿耻骨联合正中将两下肢剪开,将一条腿浸于任氏液中备用,另一条置于浸有任氏液的玻璃板上。
6.游离腓肠肌在坐骨神经下腿标本的基础上,用剪刀将跟腱的下端剪断,在跟腱与肌肉交界处扎一条细线,左手提线,右手用剪刀游离腓肠肌,直到膝关节。最后用粗剪刀在膝关节下将小腿剪去,留下的即为坐骨神经腓肠肌标本(图1-5。做好的标本用锌铜
叉的两极轻轻接触坐骨神经,如腓肠肌立即收缩,表示标本的兴奋性良好,然后将标本放入任氏液中,待其兴奋性稳定后再进行实验。
实验1蛙或蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本的制备
【实验目的】
1.学习急性实验的实验方法。
2.通过本实验熟悉刺激、兴奋、兴奋性和可兴奋组织的概念。
3.掌握蛙坐骨神经-腓肠肌标本的制备,为进行神经肌肉实验打下基础。
【实验原理】
蛙或蟾蜍等两栖类动物的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似,而其离体组织生活条件易于掌握,在任氏液的浸润下,神经肌肉标本可较长时间保持生理活性。因此,在生理学实验中常用蛙或蟾蜍坐骨神经腓肠肌离体标本来观察神经肌肉的兴奋性、兴奋过程以及骨骼肌收缩特点等。
椎骨
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ蛙板
玻璃板
坐骨神经
股骨
玻璃分针
坐骨神经
半膜肌
骨二头肌
腓肠肌腓肠肌
图1-4分离坐骨神经图1-5坐骨神经-腓肠肌标本
【注意事项】
1.已剥离皮肤的组织避免接触皮肤毒液或其他不洁物。
2.分离神经时,一定要用玻璃分针,不能随便用刀、剪进行操作。
3.不能过分牵拉神经,以免造成损伤。
4.标本制备过程中应适当地用任氏液湿润标本。
2.剪除上肢和内脏在骶髂关节上0.5~1.0cm处用粗剪刀剪断脊柱。用镊子夹住后端脊柱,以剪刀沿脊柱两侧剪除所有内脏及头胸部,留下后肢、骶骨、后端脊柱及紧贴于脊柱两侧的坐骨神经(图1-2。
3.剥皮左手用镊子或直接用手捏住脊柱断端(注意不要压迫神经,右手捏住断端边缘皮肤,向下剥去全部后肢皮肤(图1-3 ,将标本置于盛有任氏液的培养皿中。将手和用过的器械洗净后再进行以下步骤。