实时荧光定量PCR技术

千里之行，始于足下。

Real-time PCR for mRNA quantitation
一、原理
实时荧光定量PCR技术是通过检测PCR产物中荧光讯号强度来达到定量PCR产物的目的，目前该技术已在动植物基因工程，微生物和医学领域中得到广泛应用。

实时定量PCR 包括探针法和染料法两种，探针法是利用与靶序列特异杂交的探针来指示扩增产物的增强，特异性高，如Taq Man TM技术；染料法则是利用染料来指示扩增的增强，特异性相对较低，但简便易行。

染料法的原理是在PCR 反应体系中，参加过量荧光染料，荧光染料特异性地掺入DNA双链后，发射荧光信号，而不掺入链中的染料分子不会发射任何荧光信号，从而保证荧光信号的增强与PCR产物的增强彻低同步。

荧光染料发射出的荧光讯号强度与DNA 产量成正比，检测PCR 过程中的荧光讯号便可得知靶序列初始浓度，从而达到定量目的。

目前染料法实时荧光定量PCR主要使用的是美国Molecular Probes 公司的SYBR Green 1 和SYBR Gold 染料。

二、实验步骤
一）、单链cDNA 摸板的合成（参照相关资料）
二）、Real-time PCR操作主意(TIANGEN 公司RealMasterMix(SYBR Green) PCR Kit)
1、20×SYBR Green solution 在室温下平衡并彻底混匀。

2、将125μL 20×SYBR Green solution 参加至1.0 ml 2.5×ReaMasterMix 中并轻轻混匀。

3、照表1决定多个PCR反应混合物并分装到各个PCR管中。

4、将PCR管放入热循环仪并启动循环程序（表2）。

三、计算
在定量PCR中，需要经过数个循环后荧光信号才干够被检测到。

荧光域值的缺省设置是3-15 个循环的荧光信号的标准偏差的10 倍。

在实际操作中普通以前15个循环的荧光信号作为荧光本底信号。

荧光定量PCR中一个关键的数据是“Ct（threshold cycle）值”，其中“t”是Threshold ，即PCR管内荧光超过本底（达到可检测水平）时的临界数值；
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朽木易折，金石可镂。

“Ct值”的含义是每个反应管内的荧光信号达到设定的域值时所经历的循环数。

研究表明, 每个模板的Ct值与该模板的起始拷贝数的对数存在线性关系,起始拷贝数越多, Ct值越小。

1、绝对定量的计算
首先利用已知起始拷贝数的标准品作出标准曲线，其中横坐标代表起始拷贝数的对数，纵坐标代表Ct值。

因此，只要获得未知样品的Ct值，即可从标准曲线上计算出该样品的起始拷贝数。

表1 Real-time PCR 反应体系
表2 Real-time PCR反应程序
2、相对定量的计算
相对定量PCR是指目标基因相对于内参基因的表达量。

倘若需要了解一个cDNA样品中目标基因的相对表达量，就需要分离测定目标基因和内参基因的Ct值,然后按照下列公式计
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算目标基因的相对表达量。

内参基因通常选用诸如Tubulin、Actin等组成性表达基因。

目标基因的相对表达量=2-[(CtG处理-CtT处理)-(CtG对照-CtT对照)]
CtG处理：目标基因在处理条件下的Ct值
CtT处理：内参基因在处理条件下的Ct值
CtG对照：目标基因在对照条件下的Ct值
CtT对照：内参基因在对照条件下的Ct值
四、注重事项
1、反转录（Rt）
反转录取的RNA 必须经过DNA酶充足消化。

因为双链DNA的存在会结合一定量的荧光染料，从而影响荧光信号的强弱。

2、引物设计
引物设计要求特异性强，没有引物二聚体的形成，并且扩增产物的长度在100bp-300bp之间。

3、荧光定量PCR反应用的离心管要求透光性好，需要定购实时荧光定量PCR专用离心管。

4、不同的荧光定量PCR试剂盒要尽量选用与之相相宜的荧光定量PCR仪。

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