二甲双胍对2型糖尿病模型大鼠胰岛素抵抗的影响_图文(精)
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
中国组织工程研究第21卷第12期 2017–04–28出版
Chinese Journal of Tissue Engineering Research April 28, 2017 Vol.21, No.12
ISSN 2095-4344 CN 21-1581/R CODEN: ZLKHAH
1909
www. CRTER .org
·研究原著·
秦凤,女,1981年生,四川省遂宁市人,汉族,主治医师,主要从事内分泌疾病和代谢病的研究。
通讯作者:张惠莉,教授,主任医师,青海大学附属医院内分泌科,青海省西宁市 810001
中图分类号:R318 文献标识码:B 文章编号:2095-4344 (201712-01909-06 稿件接受:2017-02-22
Qin Feng, Attending physician, Department of Endocrinology, Affiliated Hospital of Qinghai University, Xining 810001, Qinghai Province, China
Corresponding author: Zhang Hui-li, Professor, Chief physician, Department of Endocrinology, Affiliated Hospital of Qinghai University, Xining 810001, Qinghai Province, China
二甲双胍对2型糖尿病模型大鼠胰岛素抵抗的影响
秦凤1,李春亮2,张惠莉1 (1青海大学附属医院内分泌科,青海省西宁市810001;2青海大学医学院,青海省西宁市 810016 引用本文:秦凤,李春亮,张惠莉. 二甲双胍对2型糖尿病模型大鼠胰岛素抵抗的影响[J].中国组织工程研究,2017,21(12:1909-1914.
DOI:10.3969/j.issn.2095-4344.2017.12.018 ORCID: 0000-0003-2043-9136(秦凤
文章快速阅读:
文题释义:
胰岛素抵抗:是指各种原因使胰岛素促进葡萄糖摄取和利用的效率下降,机体代偿性的分泌过多胰岛素产生高胰岛素血症,以维持血糖的稳定。
胰岛素抵抗易导致代谢综合征和2型糖尿病。
胰岛素受体:是一个四聚体,由两个α亚基和两个β亚基通过二硫键连接。
两个α亚基位于细胞质膜的外侧,其上有胰岛素的结合位点;两个β亚基是跨膜蛋白,起信号转导作用。
摘要
背景:目前已经发现的脂肪代谢相关基因有10余种,脂肪代谢相关基因介导的内分泌功能失常是导致胰岛素抵抗发生、发展的重要病理基础。
目的:分析二甲双胍对2型糖尿病大鼠血脂水平、胰岛素抵抗相关基因及肝脏和胰腺组织病理学变化的影响。
方法:通过4周高脂饮食结合腹腔注射链脲佐菌素(35 mg/kg建立2型糖尿病大鼠模型。
4周高脂饮食时,模型大鼠同时口服二甲双胍4周[400
mg/(kg•d],对照组大鼠正常饮食,腹腔未注射链脲佐菌素。
然后利用半定量RT-PCR 、组织病理学及生化检测等方法进行相关分析。
结果与结论:①二甲双胍通过恢复2型糖尿病大鼠正常血脂,改善胰岛素抵抗症状;②二甲双胍上调脂肪代谢相关胰岛素受体和基因乙酰辅酶A 氧化酶, 肉毒碱棕榈酰转移1和过氧化物酶体增殖物激活受体α;③二甲双胍治疗下调胎球蛋白A 和视黄醇结合蛋白,2型糖尿病大鼠中降低的脂滴包被蛋白也恢复正常;④在胰腺内,二甲双胍处理诱导胰岛素分泌和胰腺β细胞再生;⑤结果说明,二甲双胍通过调节胎球蛋白A 、视黄醇结合蛋白4、脂滴包被蛋白和脂肪代谢相关基因,改善2型糖尿病引起的胰岛素抵抗。
关键词:
组织构建;组织工程;二甲双胍;2型糖尿病;胰岛素抵抗;机制主题词:
糖尿病, 2型;二甲双胍;胰岛素;组织工程
Effect of metformin on the insulin resistance in a rat model of type 2 diabetes mellitus
Qin Feng1, Li Chun-liang2, Zhang Hui-li1 (1Department of Endocrinology, Affiliated Hospital of Qinghai University, Xining 810001, Qinghai Province, China;
2Medical College of Qinghai University, Xining 810016, Qinghai Province, China
Abstract
BACKGROUND: More than 10 kinds of lipid metabolism-related genes have been found, and endocrine
dysfunction mediated by these genes is an important pathological basis for the occurrence and development of insulin resistance.
OBJECTIVE: To investigate the effects of metformin on serum lipid profiles and the expression levels of various
秦凤,等. 二甲双胍对2型糖尿病模型大鼠胰岛素抵抗的影响 P .O. Box 10002, Shenyang 110180
1910
www.
CRTER .org
genes associated with insulin resistance, as well as the histopathological changes of the liver and pancreas in rats with type 2 diabetes melitus.
METHODS: A type 2 diabetes mellitus rat model was established by feeding a high-fat diet to the rats for 4 weeks, combined with the intraperitoneal injection of streptozotocin (35 mg/kg. In the meanwhile, metformin was administered orally (400
mg/kg•d (model group or nothing (control group. Semi-quantitative RT-PCR, histopathological and biochemical examinations were then performed.
RESULTS AND CONCLUSION: Metformin improved the symptoms of insulin resistance by normalizing the serum lipid profiles in the diabetic rats. Furthermore, metformin upregulated the expression levels of insulin receptors and genes associated with lipid metabolism, including acyl-CoA oxidase, carnitine palmitoyl transferase-1 and peroxisome proliferator activated receptor-α. In addition, metformin downregulated the expression levels of fetuin-A and retinol binding protein-4, and improved the expression of perilipin that had been reduced in the type 2 diabetes mellitus rats. Metformin was shown to induce positive signaling for insulin and the regeneration of panc reatic β cells in the pancreas. These results suggest that metformin ameliorates the insulin resistance induced by type 2 diabetes mellitus via
regulating the expression levels of fetuin-A, retinol binding protein-4, perilipin and various genes associated with lipid metabolism.
Subject headings: Diabetes Mellitus, Type 2; Metformin; Insulin; Tissue Engineering
Cite this article: Qin F, Li CL, Zhang HL. Effect of metformin on the insulin resistance in a rat model of type 2 diabetes mellitus. Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu. 2017;21(12:1909-1914.
0 引言 Introduction
2型糖尿病是最常见的糖尿病,在世界范围内占糖尿病总数的90%[1]。
2型糖尿病发病是由于胰岛β细胞破坏导致胰岛素分泌不足以及胰岛素抵抗(insulin resistance,IR [2]。
胰岛素抵抗对各种器官和组织产生影响,对中枢神经系统的影响是可能导致肥胖,因为中枢神经系统胰岛素活性增加会提高食欲[3];在脂肪组织中,胰岛素抵抗会引起高脂血症,脂肪组织可分泌细胞因子和激素,而脂肪膨胀破坏其内分泌功能,从而促进胰岛素抵抗[4];在胰腺组织,胰岛素抵抗损坏胰岛β细胞再生[5]。
Sam 等[6]发现由肝脏分泌的胎球蛋白A ,与肥胖、胰岛素抵抗和非酒精性脂肪肝有关。
胎球蛋白A 通过抑制肝和骨骼肌中胰岛素受体酪氨酸激酶影响胰岛素信号转导,除了使胰岛素受体自身磷酸化,也可导致胰岛素抵抗[7]。
另外一个胰岛素抵抗可靠指标是视黄醇结合蛋白,其在胰岛素抵抗和2型糖尿病患者动脉粥样硬化中发挥关键作用。
脂滴包被蛋白作为一种重要的脂肪代谢相关蛋白包被于脂滴的表面,对脂滴代谢具有重要的调控作用。
先前的研究表明脂滴包被蛋白活性与胞浆内脂滴的生理功能及与肥胖相关的疾病如胰岛素抵抗相关[8]。
二甲双胍是糖尿病的最常用的药物之一。
二甲双胍改善胰岛素敏感性,减少糖异生,促进葡萄糖吸收,降低肝糖原产生。
二甲双胍对一些胰岛素抵抗和高胰岛素血症影响的组织,如骨骼肌,脂肪组织和血管内皮细胞,具有多重效应[9]。
虽然二甲双胍在临床中已应用了40多年,但其确切作用机制尚未完全阐明。
因而,实验目的是评价二甲双胍对2型糖尿病大鼠胰岛素抵抗影响及相关机制探讨。
1 材料和方法 Materials and methods
1.1 设计分组对照动物实验。
1.2 时间及地点实验于2014年11月至2015年12月在青海大学医学院完成。
1.3 材料
实验动物:30只成年健康的Wistar 大鼠,雌雄不限,
体质量80-100 g,购于青海大学医学院动物实验中心,自由摄入食物和水。
试剂:链脲佐菌素、二甲双胍(美国Sigma 公司;血脂生化试剂盒(上海百傲生物科技有限公司;苏木精-伊红染色液购于美国Sigma 公司;兔抗胰岛素多克隆抗体(美国Santa 公司;RNA 提取试剂盒(天根生物科技有限公司;基因引物由北京奥科鼎盛科技有限公司构建。
1.4 实验方法
1.4.1 2型糖尿病大鼠模型制备及实验分组一次性腹腔注射1%链脲佐菌素溶液35 mg/kg,然后大鼠连续4周高脂饮食,包括15.5%蛋白,38.8%脂肪,45.7%碳水化合物。
大鼠随机分为3组:对照组大鼠正常饮食,腹腔未注射链脲佐菌素;2型糖尿病大鼠进一步分为2组:2型糖尿病组(胰岛素抵抗和2型糖尿病+二甲双胍组,二甲双胍组大鼠4周高脂饮食同时口服二甲双胍[400 mg/(kg•d],每组大鼠10只。
大鼠注射链脲佐菌素溶液和连续4周高脂饮食4周后,血糖和血脂水平增高,证实造模成功[10]。
1.4.2 血脂分析采用分光光度分析试剂盒分析各组大鼠血清中三酰甘油、胆固醇、低密度脂蛋白、极低密度脂蛋白和高密度脂蛋白。
1.4.3 半定量RT-PCR 分析收集大鼠肝脏和附睾脂肪组织,冷结在1 mL izol 试剂中,陏后储存在-70 ℃,利用RNA 提取试剂盒提取组织中总RNA ,通过分光光度计评价RNA 纯度。
RNA(1 μg在70 ℃处理5 min后,采用反转录酶反转录生成cDNA 。
PCR 扩增,25 μL反应体系,2 μL模板,
2.5 U Taq聚合酶,3 mmol/L MgCl2,50 pmol前向和反向引物,不同基因引物如表1所示。
PCR 产物进行琼脂糖凝胶电泳,溴化乙锭染色。
1.4.4 肝脏和胰腺组织病理学及免疫组织化学分析大鼠被麻醉后取出肝脏和胰腺,用体积分数4%甲醛固定,乙醇脱水,二甲苯透明,石蜡包埋,切成5 μm 的薄片,苏木精-伊红染色。
关于免疫组织化学,组织切片经脱蜡和体积分数3%过氧化氢10 min 处理。
随后,组织样品进
秦凤,等. 二甲双胍对2型糖尿病模型大鼠胰岛素抵抗的影响 ISSN 2095-4344 CN 21-1581/R CODEN: ZLKHAH
1911
www. CRTER .org
行加热,在10 mmol/L的枸橼酸盐缓冲液进行抗原修复 30 min ,体积分数5%的血清封闭20 min ,用兔多克隆抗胰岛素抗体孵育过夜。
PBS 冲洗3次后,用羊抗兔IgG ‑生物素标记的二抗孵育30 min ,后与辣根过氧化物酶标记的亲和素孵育,切片用苏木精复染。
1.5 主要观察指标大鼠血清胰岛素、葡萄糖及脂肪变化、脂肪代谢相关基因影响、胰岛素信号分子表达、肝组织病理学和胰腺免疫组织化学改变。
1.6 统计学分析数据采用SPSS 19.0 软件进行统计学处理,数据以x _
±s 表示;组间比较采用方差分析或post hoc 分析,P < 0.05为差异有显著性意义。
2 结果 Results
2.1 实验动物数量分析实验选用大鼠30只,分为3组,实验过程无脱失,全部进入结果分析。
2.2 大鼠血清胰岛素、葡萄糖及脂肪变化见表2。
与对照组相比,胰岛素抵抗组大鼠血清葡萄糖、三酰甘油、胆固醇、低密度脂蛋白、极低密度脂蛋白水平增高;而胰岛素和高密度脂蛋白水平降低。
与胰岛素抵抗组比较,二甲双胍组血清葡萄糖、三酰甘油、胆固醇、低密度脂蛋白、极低密度脂蛋白水平降低,而胰岛素和高密度脂蛋白水平增加。
2.3 二甲双胍对糖尿病诱导脂肪代谢相关基因的影响半定量RT-PCR 分析各组乙酰辅酶A 氧化酶、肉毒碱棕榈酰转移1和胎球蛋白A 。
在胰岛素抵抗组,脂质代谢紊乱并且与脂质代谢相关的基因表达改变,半定量RT-PCR 显示大鼠肝脏乙酰辅酶A 氧化酶、肉毒碱棕榈酰转移1和胎球蛋白A 表达改变,乙酰辅酶A 氧化酶和肉毒碱棕榈酰转移1表达水平降低提示胰岛素抵抗组中脂肪酸氧化减少(图
1A 、B 。
而二甲双胍组乙酰辅酶A 氧化酶和肉毒碱棕榈酰转移1表达水平增高(图1A 、B ,提示二甲双胍改善2型糖尿病大鼠血脂异常。
与乙酰辅酶A 氧化酶和肉毒碱棕榈酰转移1比较,胰岛素抵抗组胎球蛋白A 表达增高,二甲双胍组胎球蛋白A 表达降低,接近正常水平(图1C 。
2.4 二甲双胍对糖尿病诱导胰岛素信号分子的影响半定量RT-PCR 分析各组肝胰岛素受体底物(IRS-1和IRS-2 、脂肪酸合成酶和过氧化物酶体增殖物激活受体
α。
如图2A ,B 所示,胰岛素抵抗组中胰岛素信号分子IRS-1和IRS-2表达降低。
相比较,胰岛素抵抗组中脂肪酸合成酶表达增高,而二甲双胍组脂肪酸合成酶表达降低,接近正常(图2C 。
二甲双胍组过氧化物酶体增殖物激活受体α表达增高(图2D 。
2.5 二甲双胍对脂肪组织脂滴包被蛋白和视黄醇结合蛋白4表达的影响半定量RT-PCR 分析各组脂肪组织脂滴包被蛋白和视黄醇结合蛋白4表达。
如图3所示,胰岛素抵抗组中脂滴包被蛋白表达显著降低,而视黄醇结合蛋白4表达水平增加。
二甲双胍组脂滴包被蛋白表达恢复正常,而视黄醇结合蛋白4表达降低。
2.6 肝组织病理学和胰腺免疫组织化学改变对照组大鼠肝组织表现出正常的肝细胞结构,肝细胞以中央静脉为中心呈放射状排列,网眼间有窦状隙和血窦(图
4A 。
胰岛素抵抗组由于脂肪或小脂滴在肝细胞浆中积累,导致肝细胞形态改变(图4B 。
而二甲双胍组肝细胞形态恢复正常(图4C 。
对照组大鼠胰腺结构正常,胰腺β细胞正常分泌胰岛素(图4D 。
然而,胰岛素抵抗组大鼠胰腺组织胰岛素表达减少,胰腺β细胞轻度萎缩(图4E 。
最后,二甲双胍组胰岛素表达正常,胰腺β细胞再生(图4F 。
3 讨论 Discussion
生物医学科研专业设计中常要考虑如何建立动物模型的问题,因为很多阐明疾病及疗效机制的实验不可能或不应该在患者身上进行。
研究采用目前国际上公认的造模方法[10],模型稳定,可重复性强,经多项研究证实了该模型接近人类的2型糖尿病疾病模型[11-13],可特异地、可靠地反映2型糖尿病代谢情况及胰岛组织结构变化,具备该种疾病的主要症状。
二甲双胍改善血脂、胰岛素表达和血糖水平。
此外,二甲双胍改善2型糖尿病诱导改变的脂质代谢相关基因表达水平。
2型糖尿病大鼠中胰岛素受体信号下调,而二甲双胍上调胰岛素受体信号并改善2型糖尿病引起的血脂异常,这与以前的研究是一致的[14]。
研究已经证实,二甲双胍通过调节胰岛素信号通路改善高脂肪和果糖饮食诱导的胰岛素抵抗大鼠肝胰岛素敏感性,高脂肪和果糖饮食导致高血糖、高胰岛素血症,糖异生增加,胰岛素受体β和IRS-1酪氨酸磷酸化减少[15-16]。
研究表明,二甲双胍通过增强IRS-1和IRS-2的酪氨酸磷酸化提高胰岛素敏感性。
过氧化物酶体增殖物激活受体α是一种转录因子,对血脂的影响显著,通过调节脂质代谢相关基因表达而对血脂具有显著的影响。
过氧化物酶体增殖物激活受体α主要在肝脏表达,调节参与脂肪摄取和氧化的基因转录,如酰乙酰辅酶A 氧化酶、肉毒碱棕榈酰转移1和脂蛋白脂酶等[17]。
本研究证实乙酰辅酶A 氧化酶、肉毒碱棕榈酰转移1促进脂肪进入肝脏中氧化。
因而减少骨骼肌中脂肪,导致肌肉中胰岛素敏感性增高。
二甲双胍使肝组织中
表2 各组血清胰岛素、葡萄糖及血脂变化 (x
_±s
Table 2 Serum levels of insulin, glucose and lipid in rats 表注:与对照组比较,a P < 0.05;与胰岛素抵抗组比较,b P < 0.05。
参数对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组胰岛素(IU/L
4.5±0.5 3.4±2.5a
5.6±1.4b
血糖(mmol/L) 4.73±0.59 9.18±0.86 a 4.19±0.52b 三酰甘油(mmol/L 2.56±0.16 5.09±0.59 a 2.10±0.14b 胆固醇(mmol/L
3.08±0.08 5.00±0.11 a 2.69±0.09b 低密度脂蛋白(mmol/L 1.50±0.11 5.42±0.25 a 1.52±0.05b 极低密度脂蛋白(mmol/L 0.51±0.05 0.99±0.05 a 0.45±0.05b 高密度脂蛋白(mmol/L 0.88±0.03
0.61±0.05a
0.85±0.03b
秦凤,等. 二甲双胍对2型糖尿病模型大鼠胰岛素抵抗的影响 P .O. Box 10002, Shenyang 110180
1912
www.
CRTER .org
表1 半定量RT-PCR 引物 Table 1 Primers for semi-quantitative RT-PCR
基因前向引物(5'-3'
反向引物(5'-3'
胎球蛋白
A CCA GTG TCA TTC CAC CAG A CGC AGC TAT CAC AAA CTC CA 脂肪酸合成酶 CCA GAG CCC AGA CAG AGA AG GAC GCC AGT GTT CGT TCC IRS-1
GCC AAT CTT CAT CCA GTT GC CAT CGT GAA GAA GGC ATA GG IRS-2
CTA CCC ACT GAG CCC AAG AG CCA GGG ATG AAG CAG GAC TA 乙酰辅酶A 氧化酶 GCC CTC AGC TAT GGT ATT AC AGG AAC TGC TCT CAC AAT GC 肉毒碱棕榈酰转移1 TAT GTG AGG ATG CTG CTT CC CTC GGA GAG CTA AGC TTG TC 脂滴包被蛋白
ACA CTC TTT CTC GAC ACA CC CTG GTC TTC ATG GTT CTC AT 过氧化物酶体增殖物激活受体α
GAG GTC CGA TTC TTC CAC TG ATC CCT GCT CTC CTG TAT GG G3PDH AGA TCC ACA ACG GAT ACA TT
TCC CTC AAG ATT GTC AGC A
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
2.0
1.5 1.0
A C O 相对表达
ACO
G3PDH A
B
C
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
CPT-1 G3PDH
胎球蛋白A G3PDH
2.0 1.5 1.0
C P T -1相对表达
1.5
1.0
胎球蛋白A 相对表达
图1 半定量RT-CR 分析各组乙酰辅酶A 氧化酶、肉毒碱棕榈酰转移1和胎球蛋白A 在肝脏的表达 Figure 1 Expression levels of acyl-CoA oxidase, carnitine palmitoyl transferase-1 and peroxisome proliferator activated receptor-α in the liver detected by semi-quantitative RT-PCR
图注:图A 为乙酰辅酶A 氧化酶(ACO表达;B 为肉毒碱棕榈酰转移1(CPT-1表达;C 为胎球蛋白A 表达。
与对照组比较,a P < 0.05;与胰
岛素抵抗组比较,b P < 0.05。
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
2.0
1.5
1.0
0 I R S -1相对表达
A
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组 1.5
1.0
I R S -2相对表达
B
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
C
2.0
1.5
1.0
F A S 相对表达
IRS-1
G3PDH
IRS-2 G3PDH
FAS G3PDH
PPAR-α G3PDH
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
2.0
1.5
1.0
P P A R -α相对表达
D
图2 半定量RT-PCR 分析各组肝胰岛素受体底物(IRS-1和IRS-2 、脂肪酸合成酶
(FAS和过氧化物酶体增殖物激活受体α(PPAR-α 在肝脏的表达
Figure 2 Expression levels of insulin receptor substrates 1 and 2, fatty acid
synthase and peroxisome proliferator activated receptor-α in the liver detected by semi-quantitative RT-PCR
图注:图A 为IRS-1表达;B 为IRS-2表达;C 为脂肪酸合成酶表达;D 为过氧化物酶体增殖物激活受体α表达。
与对照组比较,a P < 0.05;与胰岛素抵抗组比较,b
P < 0.05。
a
b
b
b
b
b
b
b
a
a
a
a
a
a
秦凤,等. 二甲双胍对2型糖尿病模型大鼠胰岛素抵抗的影响 ISSN 2095-4344 CN 21-1581/R CODEN: ZLKHAH
1913
www. CRTER .org
肉毒碱棕榈酰转移1 mRNA 水平增高,可能由于肝组织中β-氧化水平升高。
虽然二甲双胍未直接提高过氧化物酶体增殖物激活受体α mRNA 表达,但是二甲双胍增加肝乙酰辅酶A 氧化酶mRNA 水平,乙酰辅酶A 氧化酶是过氧化物酶体增殖物激活受体α活化的标志物。
这些结果表明,二甲双胍可作为过氧化物酶体增殖物激活受体α激动剂。
胎球蛋白A 是一个相对分子质量60 000的糖蛋白,由肝细胞分泌,可作为肝功能和炎症的标志物。
胎球蛋白A 通过抑制肝脏和骨骼组织胰岛素受体酪氨酸激酶及胰岛素受体自身磷酸化,调节胰岛素信号转导,最终导致胰岛素抵抗;此外,增高的胎球蛋白A 与肥胖、胰岛素抵抗、代谢综合症及肝脏脂肪堆积相关[18-20]。
在本实验中,胎球蛋白A 在2型糖尿病大鼠中增高,而二甲双胍治疗恢复胎球蛋白A 表达。
胎球蛋白A 已被证明可以抑制脂肪组织中脂联素的生成[21-22]。
因此,胎球蛋白A 表达升高可能导致2型糖尿病患者脂联素水平降低。
另外一个脂肪代谢调节蛋白是脂滴包被蛋白,脂滴包被蛋白通过限制酶和脂肪滴之间的相互作用调节脂肪分解[23-24]。
在本实验中,二甲双胍使2型糖尿病大鼠脂肪组织中脂滴包被蛋白表达增加。
以前的研究表明,视黄醇结合蛋白4是视网膜中唯一特定的运输蛋白,视黄醇结合蛋白4在脂肪组织及肝组织中高表达,与内皮功能密切相关[25]。
本实验结果与T ajtáková等的发现一致,二甲
双胍降低2型糖尿病肥胖患者视黄醇结合蛋白4水平,表明二甲双胍通过调节视黄醇结合蛋白4改善胰岛素敏感性[26]。
总之,胰岛素是机体内一种重要的内分泌激素,它与受体结合后经过一系列的信号转导来调节基因表达,作用于主要靶器官——肝脏、肌肉和脂肪组织,参与体内多种物质的代谢调节。
胰岛素抵抗是指胰岛素维持正常血糖的能力下降,其产生的生物学效应低于正常水平,或组织对胰岛素的反应性下降。
胰岛素抵抗并非单一因素致病,遗传、环境和行为因素均起重要作用。
其中受体水平胰岛素抵抗发生环节现在认为可发生于胰岛素与受体结合前,或受体及受体后。
血脂代谢紊乱即可引起受体后缺陷致胰岛素抵抗。
本研究通过动物模型治疗研究表明,二甲双胍通过改善胰岛素抵抗而有效治疗2型糖尿病;同时,二甲双胍也可改善2型糖尿病诱导的血脂异常。
此外,二甲双胍也被证实可以调节脂质代谢相关基因表达,包括胎球蛋白A 、脂滴包被蛋白和视黄醇结合蛋白4,结果提示二甲双胍具有良好控制2型糖尿病发展的作用,具有广阔的应用前景。
作者贡献:秦凤设计本次研究,秦凤和李春亮对本次研究具体实施,张惠莉对研究采用盲法评估。
利益冲突:所有作者共同认可文章有无相关利益冲突。
伦理问题:实验动物在戊巴妥纳麻醉下进行所有的手术,并尽一切努力最大限度地减少其疼痛、痛苦和死亡。
Perilipin
G3PDH
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
1.5
1.0 0
P e r i l i p i n 相对表达
A
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
对照组胰岛素抵抗组二甲双胍组
2.0
1.5
1.0
R B P -4相对表达
RBP-4 G3PDH
B
图3 半定量RT-CR 分析各组脂滴包被蛋
白(perilipin和视黄醇结合蛋白4(RBP-4在脂肪组织的表达
Figure 3 Expression levels of perilipin and retinol binding protein-4 in the adipose tissue detected by semi-quantitative RT-PCR
图注:图A 脂滴包被蛋白的表达;B 为视黄醇结合蛋白4的表达。
与对照组比较, a
P < 0.05;与胰岛素抵抗组比较,b P < 0.05。
图4 组织标本行苏木精-伊红染色或免疫组织化学的显微照片(×200
Figure 4 Sections stained with hematoxylin-eosin or immunohistochemistry observed under microscope (×200
图注:图A 为对照组大鼠肝组织表现出正常的肝细胞结构;图B 为胰岛素抵抗组肝细胞形态改变;图C 为二甲双胍组肝细胞形态;图D 为对照组大鼠胰腺结构;图E 为胰岛素抵抗组胰腺β细胞结构;图F 为二甲双胍组胰腺β细胞再生情况。
A
B C
D
E
F
a
b
a
b
秦凤,等. 二甲双胍对 2 型糖尿病模型大鼠胰岛素抵抗的影响 文章查重:文章出版前已经过 CNKI 反剽窃文献检测系统进行 3 次查重。
文章外审:文章经国内小同行外审专家双盲外审,符合本刊发稿宗旨。
作者声明:第一作者秦凤对于研究和撰写的论文中出现的不端行为承担责任。
论文中涉及的原始图片、数据(包括计算机数据库记录及样本已按照有关规定保存、分享和销毁,可接受核查。
文章版权:文章出版前杂志已与全体作者授权人签署了版权相关协议。
开放获取声明:这是一篇开放获取文章,文章出版前杂志已与全体作者授权人签署了版权相关协议。
根据《知识共享许可协议》“署名 -非商业性使用-相同方式共享3.0”条款,在合理引用的情况下,允许他人以非商业性目的基于原文内容编辑、调整和扩展,同时允许任何用户阅读、下载、拷贝、传递、打印、检索、
超级链接该文献,并为之建立索引,用作软件的输入数据或其它任何合法用途。
4 参考文献 References [1] Kulkarni SS, Joffraud M, Boutant M, et al. Mfn1 Deficiency in the Liver Protects Against Diet-Induced Insulin Resistance and Enhances the Hypoglycemic Effect of Metformin. Diabetes. 2016;65(12:3552-3560. [2] 胡燕, 梁治学, 王金权,等. 2型糖尿病胰岛素抵抗的发病机制研究进展[J]. 中国保健营养旬刊, 2014, 24(2:28-31. [3] Yuan H, Hu Y, Zhu Y, et al. Metformin ameliorates high uric acid-induced insulin resistance in skeletal muscle cells. Mol cell Endocrinol. 2017,443:138-145. [4] Bazotte RB,Silva LG,Schiavon FP. Insulin resistance in the liver: deficiency or excess of insulin? Cell Cycle. 2014;13(16: 2494-2500. [5] Lu CH, Hung YJ, Hsieh PS. Additional effect of metformin and celecoxib against lipid dysregulation and adipose tissue inflammation in high-fat fed rats with insulin resistance and fatty liver. Eur J Pharmacol. 2016;789:60-67. [6] Sam WJ, Roza O, Hon YY, et al. Effects of SLC22A1 Polymorphisms on Metformin-Induced Reductions in Adiposity and Metformin Pharmacokinetics in Obese Children With Insulin Resistance. J Clin Pharmacol.
2017;57(2:219-229. [7] Yoo HJ, Kim BH, Baik SH. Salsalate and adiponectin ameliorate hepatic steatosis by inhibition of the hepatokine fetuin-A. Biochem Pharmacol.
2013;86(7:960-969. [8] Mori K, Emoto M, Inaba M. Fetuin-A: a multifunctional protein. Recent Pat Endocr Metab Immune Drug Discov, 2011;5(2: 124-146. [9] Ou HT, Chen PC, Wu MH. Effect of metformin by employing 2-hour postload insulin for measuring insulin resistance in Taiwanese women with polycystic ovary syndrome. J Formos Med Assoc.2017;116(2:80-89. [10] Sztalryd C, Kimmel AR. Perilipins: lipid droplet coat proteins adapted for tissue-specific energy storage and utilization and lipid cytoprotection. Biochimie.2014;96: 96-101. [11] Mitchell PL, Nachbar R, Lachance D, et al. Treatment with a novel agent combining docosahexaenoate and metformin increases protectin DX and IL-6 production in skeletal muscle and reduces insulin resistance in obese diabetic
db/db mice. Diabetes Obes Metab. 2017;19(3:313-319. [12] Khan S, Jena G. Sodium butyrate reduces insulin-resistance, fat accumulation and dyslipidemia in type-2 diabetic rat: A comparative study with metformin. Chem Biol Lnteract. 2016; 254:124-134. [13]
Garabadu D, Krishnamurthy S. Metformin attenuates hepatic insulin resistance in type-2 diabetic rats through PI3K/Akt/GLUT-4 signalling independent to bicuculline-sensitive GABAA receptor stimulation. Pharmaceutical biology. 2017;55(1:722-728. [14] Doyle MA, Singer J, Lee T, et al. Improving treatment and liver fibrosis outcomes with metformin in HCV-HIV co-infected and HCV mono-infected patients with insulin resistance: study protocol for a randomized controlled trial. Trials. 2016;17(1: 331. [15] Zhao W, Li A, Feng X, et al. Metformin and resveratrol ameliorate muscle insulin resistance through preventing lipolysis and inflammation in hypoxic adipose tissue. Cellular signalling.2016;28(9:1401-1411. [16] Elmadhun NY, Lassaletta AD, Chu LM. Metformin alters the insulin signaling pathway in ischemic cardiac tissue in a swine model of metabolic syndrome. J Thorac Cardiovasc Surg. 2013;145(1:258-265. [17] Pandey AK, Gutch M, Mittal M,et al. Can metformin be used in type 1 diabetes with insulin resistance: Experience from tertiary care health center. J Assoc Physicians India. 2016; 64(1:91. [18] Yogalakshmi B, Bhuvaneswari S, Sreeja S .Grape seed proanthocyanidins and metformin act by different mechanisms to promote insulin signaling in rats fed high calorie diet. J Cell Commun Signal.2014;8(1:13-22. [19] Luo T, Nocon A, Fry J, et al. AMPK Activation by Metformin Suppresses Abnormal Extracellular Matrix Remodeling in Adipose Tissue and Ameliorates Insulin Resistance in Obesity. Diabetes.2016;65(8:2295-2310. [20] Neels JG, Grimaldi PA. Physiological functions of peroxisome proliferator-activated receptor β. Physiol Rev.2014;94(3: 795-858. [21] Bacha F, Klinepeter Bartz S. Insulin resistance, role of metformin and other non-insulin therapies in pediatric type 1 diabetes. Pediatric diabetes. 2016;17(8:545-558.
[22] Sharma AK, Srinivasan BP. Triple verses glimepiride plus metformin therapy on cardiovascular risk biomarkers and diabetic cardiomyopathy in insulin resistance type 2 diabetes mellitus rats. Eur J Pharm Sci. 2009;38(5:433-444. [23] Park SE,Lee NS,Park JW . Association of urinary RBP4 with insulin resistance, inflammation, and microalbuminuria. Eur J Endocrinol.2014;171(4:443-449. [24] Glueck CJ, Goldenberg N, Sieve L, et al. An observational study of reduction of insulin resistance and prevention of
development of type 2 diabetes mellitus in women with polycystic ovary syndrome treated with metformin and diet. Metabolism.2008;57(7:954-960. [25] Dehkordi EH, Sattari F, Khoshdel A,et al. Effect of folic acid and metformin on insulin resistance and inflammatory factors of obese children and adolescents. J Res Med Sci 2016;21: 71. [26] Bermudez-Pirela VJ, Cano C, Medina MT, et al. Metformin plus low-dose glimeperide significantly improves Homeostasis Model Assessment for insulin resistance (HOMA(IR and beta-cell function (HOMA(beta-cell without hyperinsulinemia in patients with type 2 diabetes mellitus. Am J Ther. 2007;14(2:194-202. 1914 P.O. Box 10002, Shenyang 110180 。