家兔失血性休克的药物急救实验(呼吸)
家兔失血性休克及其抢救
家兔失血性休克及其抢救【实验目的】复试家兔失血性休克。
观察家兔在失血性休克时的表现及微循环变化,探讨失血性休克的发生机制。
了解失血性休克的抢救。
【摘要】目的:学习失血性休克动物模型的复制方法、观察休克各期的主要临床变化、了解其机制及通过药物及输液治疗,了解各种治疗的不同效果。
方法:家兔麻醉后,分离并进行左、右两侧颈总动脉、右侧颈外静脉插管,正确连接管道并用肝素冲洗,进入电脑程序,描记正常血压,快速放血,使血压维持60mmHg,血压稳定后,夹闭右颈总动脉,记录并观察血压变化。
待血压稳定后,再放血,使血压降至40mmHg并维持,在维持期间的20min内记录并观察血压变化。
结果:放血后,家兔血压下降,大量放血后血压明显下降,输血后血压急剧上升,并最终达到正常水平。
结论:家兔少量放血后,家兔血压下降,但通过代偿反应可以在短时间内使血压回复到正常时或稍低。
家兔大量放血后,家兔血压明显下降。
输血、输液后血压急剧上升,并最终达到正常水平。
【关键词】失血性休克、抢救、输液治疗。
【实验对象】健康家兔一只【实验器材和药品】1、仪器:家兔手术台、常用手术器械一套、止血钳、眼科剪、支架、动脉插管、动脉夹、血压换能器、RM6240生物信号采集处理系统、照明灯、纱布、丝线、注射器。
2、试剂:生理盐水、氨基甲酸乙酯、肝素。
【实验步骤】1、家兔称重,用5ml/kg氨基甲酸乙酯麻醉家兔,固定家兔,剪去颈部被毛,切开颈部皮肤5~7cm,钝性分离颈部肌肉、暴露颈部气管和血管神经鞘。
用玻璃分针分离2~3cm长两侧颈总动脉,各穿两线,将两线分别拉至动脉两端备用。
用玻璃分针分离2~3cm长右侧颈外静脉,穿两线,将两线分别拉至动脉两端备用。
2、右侧颈总动脉进行动脉插管:将分离出的右侧颈总动脉远心端用线结扎,近心端用动脉夹将动脉夹住。
在远心端结扎线下方用眼科剪在动脉上作一小“V”形切口,将动脉插管朝心脏方向插入动脉,确认插入动脉后用备用线将血管与插管结扎固定,再将结扎线固定于插管上,防止插管从血管中滑脱。
家兔失血性休克及其抢救实验报告
家兔失血性休克及其抢救实验报告
实验一:家兔失血性休克模型的建立
实验目的:本实验旨在建立家兔失血性休克模型,以便探究该病情的发生机制及抢救
措施。
实验材料和方法:本次实验材料均来自成年雄性家兔,共有15只,体质量均为2.5
kg左右,每只家兔体内取得150 ml鲜血,并以此构建失血休克模型,放置于恒温器中保
持恒温,监测家兔体温、血氧饱和度、心率等生理指标。
实验结果:按照实验设定,放血完毕后,家兔的体表温比刚开始实验时期降低了 1.2℃以上,血氧饱和度下降到80-90%以下,而心率却急剧上升到160-170次/分钟之外,家兔
还出现了瘙痒、抽搐、呕吐等典型症状,明显发现其已经进入失血性休克状态。
结论:本实验成功建立了家兔失血性休克模型,可供今后失血性休克研究及抢救策略
研究使用。
实验目的:本实验旨在考察用于家兔失血性休克的抢救策略的有效性,并找出最佳的
抢救方案。
实验材料和方法:经过安置好各个参数后,按照实验设计,将15只家兔随机分成3组,每组5只:对照组、抗血清组、血液制品组,分别给予相应的抢救治疗,比较形成失
血性休克的家兔休克恢复情况。
实验结果:经过1个小时的抢救,家兔失血性休克模型的生理指标有显著改善。
其中,血液制品组的体表温降幅最低,血氧饱和度下降最小,心率最低,可见血液制品组的抢救
措施最为有效。
结论:本次实验证实,在家兔失血性休克抢救中,最佳抢救方案应该采用血液制品抢救,并取得良好治疗效果。
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救
家兔失血性休克实验报告范文家兔失血性休克及抢救实验报告实验题目:家兔失血性休克模型的制作及治疗实验目的:制作家兔失血性休克模型,观察家兔血压、心率、呼吸和微循环的变化,进一步理解休克发生的病理生理机制,并了解失血性休克的治疗措施实验对象:家兔,体重1.92kg实验器材与药品:1、器材:兔用手术器械一套、兔手术台、静脉输液装置、动脉和静脉插管各一、三通管、注射器(20,5,1ml)、显微镜、手术线、纱布2、药品:20%乌拉坦、1%肝素、去甲肾上腺素、生理盐水实验步骤:1、抓取家兔并称重,取20%乌拉坦9.6ml经耳缘静脉缓慢推注2、待家兔四肢张力降低,无抵抗,角膜反射消失后,在兔手术台进行牢靠固定并备皮,备皮部位:颈部与腹部3、做颈部正中切口5cm,分层剪开,分离右侧颈外静脉和左侧颈总动脉,小心游离血管3-4cm,在血管的两端穿线备用4、经耳缘静脉注入1%肝素2ml抗凝5、颈外静脉插管:先夹闭近心端,再结扎远心端,用眼科剪向近心端作V形切口,向近心端插管3-4cm,NS维持,5-10滴/min6、颈总动脉插管:先结扎远心端,再夹闭近心端,用眼科剪向近心端作V形切口,向近心端插管3-4cm7、腹部正中切口6-8cm,拉出一段肠系膜(不取盲肠肠系膜),固定于显微镜下观察微循环8稳定5min,记录此状态下BP、HR、R、微循环;然后静脉推注NEO.Iml,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录9、颈总动脉放血10%(约13ml),稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录;继续放血至25%(约35ml),稳定约5min,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录;然后静脉推注NEO.Iml,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录10、NE0.25ml,用NS稀释至20ml,静脉滴注,并全血回输,观察此时BP、HR、R、微循环的变化并记录实验结果:状态r、参数BP(mmHg)HR(次/min)R(次/min)微循环变化正常状态106190血流量及流速正常推注NE0.1ml11723254血管收缩,血流加速放血10%9222056血流量及流速变化不明显放血25%4617046血管收缩,血流量减少推注NE0.1ml56176血管进一步收缩,流速加快,流量减少全血回输6015844血管舒张,开始充盈分析讨论:正常状态下,推注NEO.Iml后,与心脏的(31受体结合,使心肌收缩力增强,心率加快,血压升高;与肠系膜血管a受体结合,使肠系膜血管收缩,血流速度加快。
家兔失血性休克实验报告
家兔失血性休克实验报告
实验目的:探究家兔在不同程度失血后对身体机能的影响及失血性休克的发生。
实验方法:
1.实验前令家兔空腹24小时,保证实验数据更精确。
2.选取5只体重相近的家兔,用异丙酚进行麻醉。
3.将家兔置于手术台上,消毒操作后进行切腹手术,暴露血管并取血。
4.分别在实验一组、实验二组、实验三组、对照组分别取血量为7ml,10ml,13ml,无取血。
5.在实验过程中检查家兔的心率及呼吸率,并记录实验数据,如血压,心率等数据。
实验结果:
1.实验一组:取血量为7ml,失血后家兔发生心悸、呼吸急促、体温下降等症状,心率加快,下降到了96次/分钟。
4.对照组:没有进行任何失血处理,心率平稳,保持在120次/分钟左右。
1.家兔失血量较小时,如7ml左右,心率下降速度较慢,家兔出现的症状也较轻。
2.家兔失血量逐渐增大,呼吸急促、体温下降等症状逐渐显露,瞳孔扩大等症状也逐渐出现。
3.家兔失血量逐渐增大,心脏功能逐渐下降,最终可能导致失血性休克,甚至死亡。
4.对照组的数据表明,不进行失血处理的家兔的心率较稳定,生命体征不受任何影响。
通过本次实验,我们深刻认识到失血性休克对家兔身体的严重危害。
家兔失血量逐渐增大,症状逐渐加重,甚至会导致失血性休克、甚至死亡。
因此,在医学实践中,我们应当全面掌握失血性休克的处理方法,以保障患者生命安全。
家兔失血性休克的抢救
药。 9.描记正常指标 连接实验装置,记录上述正常指标。 (1)一般指标:皮肤粘膜颜色,一般状况。 (2)正好血压描记。 (3)肠系膜微循环指标观察。
10.复制失血性休克动物模型
(1)少量放血 开放股动脉插管,用肝素化的烧杯收集流出血液, 并使放血量达到全血量1/10(全血量按体重的8%或70ml/kg计 算)后,夹闭动脉,观察记录同(二)。
(2)大量放血 少量放血10分钟使血压稳定在低水平后,再开放股 动脉上动脉夹,放血量约为1/5~1/4,放血时间为3~5min(切 勿过快)使血压(平均动脉压)稳定在30~40mmHg(4.0~ 5.33kPa)(如果停止放血,血压回升,可在放血,如血压过低, 则立即将放出血加压回输若干)即失血性休克状态。观察记录同 (二)。
(1)辨认微动脉(细,色浅)、微静脉(,色深) (2)观察肠系膜血流速度、血流量及血管内径。
5.左侧颈总动脉向心端方向插管,电传感器相连,插管前将电传感器用注 射器注满肝素,注意不要留有气泡。描记血压。
6.右侧颈外静脉向心端方向插管,使导管与输液瓶相通,插管前注意将输 液系统管内冲满液体并排气,缓慢滴注生理盐水(5~10滴/分),保持静 脉通畅。
实验器材及药品静脉输液装置一套三通开关50ml20ml10ml射器各一个肝素500ml1普鲁卡因生理盐水动物手术器械一套呼吸血压描记装置低分子右旋糖苷20乌拉坦溶液台氏液去甲肾上腺素山莨菪碱6542
家兔失血性休克的抢救
(一)实验目的
1.观察休克发展过程中机体的变化。 2.掌握急性失血性休克模型复制方法。 3.分析讨论急性失血性休克发病机制。
家兔失血性休克实验报告
实验二十六家兔失血性休克一:实验目的复制失血性休克的家兔模型;观察失血性休克的发生发展过程中机体的变化,探讨其发生机制。
二:实验方法通过对比同一只家兔正常时和大量失血时的角膜反射、血压、心跳频率、呼吸频率、呼吸幅度以及红细胞压积来观察失血性休克时机体的变化。
三:实验步骤1.取健康家兔一只称重、固定,用1%普鲁卡因溶液皮下浸润麻醉颈部和股三角区动脉搏动明显部位,分离颈总动脉和股动脉,在两动脉下穿双线备用2.耳缘静脉注射1%肝素溶液1.5ml/Kg3.颈总动脉插管以及股动脉插管,股动脉近心端用动脉夹夹住,以备放血用4.观察正常时的各项指标,同时用比积管取一管血作为正常红细胞压积测定5.从股动脉大量放血,直至血压降至正常血压一半,观察各项指标的变化。
10min后再次从股动脉取血做红细胞压积测定,将两管置于离心机,4000r/min,离心5min,读数。
读数时注意取斜面最高点和最低点数值之和的一半。
单位为ml%,读数结果乘以二才为最终结果6.大量放血后15min时观察各项指标四:实验结果正常时:大量失血后即刻:大量失血十五分钟后:家兔失血性休克结果家兔失血性休克时,嘴唇发绀五:讨论1.为何大量放血后家兔血压会下降?之后血压又有所回升?在突然对家兔实施大量放血时,家兔血容量降低,回心血量急剧下降,导致心脏搏出量快速降低,血压也就急剧下降,虽然经过代偿作用后,心率、外周阻力以及循环血量等发生变化,但是主动脉和大动脉的弹性储器作用在大量出血时作用很小,因此代偿作用也弥补不了因血容量降低而引起的血压急剧降低。
血容量减少引起交感-肾上腺髓质系统强烈兴奋,儿茶酚胺大量释放入学,同时还有许多缩血管体液因子参与,共同起到缩血管作用,同时儿茶酚胺可作用于β受体,使微循环动-静脉短路开放,真毛细血管网血流量明显减少,同时伴随着“自身输血”和“自身输液”作用,使得血压得到一定程度的回升于,但并不能回复到正常水平。
2.为何在大量失血后家兔心率会加快?大量失血后家兔血容量降低,引起回心血量降低,导致心脏搏出量快速降低,动脉血压降低,从而引起交感-肾上腺髓质系统兴奋,释放大量去甲肾上腺素,作用心脏β1受体,产生兴奋作用,使心肌收缩力增强,心率增快3.为什么大量失血后家兔呼吸会加深加快?释放的去甲肾上腺素引起肺部小血管收缩,而微动脉、后微动脉、毛细血管前括约肌收缩更为明显,使肺部毛细血管处于“少灌多流”的状态,使得血液与肺泡氧交换不充分,血氧分压降低,二氧化塔潴留,刺激外周化学感受器,使呼吸加深加快。
家兔失血性休克的药物急救实验(呼吸)
休克的药物急救—呼吸实验目的1.学会复制失血性休克的模型;2.了解抢救休克时扩容及应用血管活性药物的意义。
实验原理根据微循环学说,休克定义为各种原因引起有效循环血量减少,微循环灌流障碍,引起重要生命器官血液灌注不足,从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。
休克的病因有多种,本实验采用颈动脉放血的方法,直接减少有效循环血量,复制低血容量性休克模型。
由于放血一定程度后可使循环血量不足,静脉回心血量减少,血压下降,通过压力感受器反射,引起交感神经兴奋,外周血管收缩,组织灌流量急剧减少,导致失血性休克。
失血后呼吸加快。
休克时,呼吸会停止。
通过输液,补充血容量及药物,抢救休克。
器材药品动物:家兔,生物呼吸实验系统,压力换能器,动物实验手术器械一套,动脉插管,静脉输液装置一套,气管插管,动脉夹,结扎线,纱布,注射器,兔台,秤。
20%乌拉坦溶液,生理盐水, 0.2%肝素生理盐水,去甲基肾上腺素,烧杯。
实验步骤1.称重:从耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦5ml/kg.2.固定3.剪毛:手术部位是颈部和一侧腹股沟,把这两个部位的毛剪干净。
剪毛的时候,用左手把皮肤绷紧,右手用粗剪刀贴近皮肤剪毛。
4分离血管:(1)颈外静脉--输血输液,作为抢救的通路颈外静脉位于颈部两侧皮下,很容易分辨。
它的特点是壁薄,粗大,色暗,没有明显的搏动,分离尽量游离得长一些,下面穿两根线备用。
(2)颈动脉--放血。
颈部做长4-6cm的皮肤切口,逐层钝性分离皮下组织,暴露出气管,分离气管,翻开肌肉层,就可以看到颈总动脉,颈总动脉的特点是搏动明显、粉红色、壁韧,很容易分辨。
把颈总动脉小心分离出来,尽量游离得长一些,下面穿两根线备用。
5.插管:(1)气管插管,连张力换能器,记录呼吸.(2)静脉插管:颈外静脉插管,一定要避免进去气泡,防止发生气栓,所以静脉插管要事先通满生理盐水,排净里面的气泡。
先夹闭近心端,再结扎远心端,。
在靠近远心端剪口,插入静脉插管以后,可以松开动脉夹,向静脉内送入一段,然后结扎。
家兔失血性休克及其实验性治疗-实验报告
家兔失血性休克及其实验性治疗——《医学机能实验学》实验报告作者:Aspirin实验日期:2013年12月18日院系:第一临床医学院专业:临床医学【实验题目】家兔失血性休克及其实验性治疗【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型2.观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变3.了解失血性休克的抢救治疗方案【实验原理】休克是多种原因引起的,包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等,以机体微循环功能紊乱为主要特征,并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少,是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减,如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等,超过总血量的25%~30%,超出机体代偿的能力,即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。
根据失血性休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(休克代偿期或微循环缺血性缺氧期)、休克中期(可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期)、休克晚期(不可逆性失代偿期或微循环衰竭期)。
但依失血程度及速度的不同,各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗,首先强调的是止血和补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,改善微循环,必要是可予抗炎等治疗。
【材料与方法】1.实验动物家兔(体重2.0kg以上)2.器材与药品器材:兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器(1ml、10 ml 、50 ml)、输液装置、丝线(7#、1#)、纱布、生物信号采集与处理系统药品:25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因3.方法与步骤①麻醉固定家兔称重后,25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉,仰卧位固定于兔手术台上,减去手术部位被毛。
家兔失血性休克及抢救实验报告
家兔失血性休克及抢救实验报告家兔失血性休克及抢救实验报告篇一:休克实验报告家兔失血性休克及其抢救实验人员5人第2组班一、实验目的1. 复制家兔失血性休克模型,观察少量失血和大量失血对家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的影响。
探讨其发生机制。
2. 用颈外静脉输血和输液的方法抢救失血性休克,观察抢救过程中家兔动脉血压、心率、皮肤和粘膜颜色的变化。
二、实验材料和方法实验器械:兔手术台,常规手术器械,注射器,动脉夹,动脉插管,电刺激连线,血压换能器,三通管,铁架台,棉线,纱布实验仪器:电脑,RM6240生物信号采集系统实验药品:20%氨基甲酸乙酯,肝素,生理盐水/10g三、实验对象家兔1只由浙江中医药大学动物实验中心提供四、实验步骤1、仪器调试:首先打开电脑,选择MedLab生物信号处理系统;从第1、2、3通道中选择1个通道,记录动脉血压。
其次将血压换能器连接线与相应的通道相连,检查换能器是否正常,加肝素溶液排除空泡,先清零,血压0mmH2、家兔称重、麻醉和固定取家兔一只,称重:,用20%氨基甲酸乙酯以5ml /Kg(体重), 耳缘静脉缓慢注射麻醉, 共注射14ml, 至呼吸深而慢、反射迟钝(角膜反射、夹肢反射)为止。
把兔子以背位固定法固定。
3、麻醉起效后手术颈部手术——左颈总动脉、右颈外静脉、右颈总动脉插管(1)颈部备皮,作颈部,正中3~5cm切口,左右颈总动脉分离,穿线标记,备用。
(2)左颈总动脉插管术---测血压动脉插管及换能器肝素化,左颈总动脉远心端结扎,近心端动脉夹夹闭,动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入,结扎固定。
放开动脉夹记录正常动脉血压。
(3)右颈外静脉插管术—输血输液排掉输液管中的空气。
右颈静脉近心端动脉夹夹闭,远心端结扎,静脉前壁倒“V”切口,输液管插入,固定。
缓慢输液,保持通畅。
(4). 右颈总动脉插管术——失血造模用肝素抗凝剂排掉50ml注射器(其中保留少许肝素液)和动脉插管中空气,右颈总动脉远心端结扎,近心端动脉夹夹闭,动脉前壁倒“V”切口动脉插管插入,结扎固定。
家兔失血性休克及其实验性治疗-实验报告参考模板
家兔失血性休克及其实验性治疗——《医学机能实验学》实验报告作者:Aspirin实验日期:2013年12月18日院系:第一临床医学院专业:临床医学【实验题目】家兔失血性休克及其实验性治疗【实验目的】1.复制失血性休克的动物模型2.观察失血性休克时和抢救过程中动物的功能代谢变化及微循环改变3.了解失血性休克的抢救治疗方案【实验原理】休克是多种原因引起的,包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等,以机体微循环功能紊乱为主要特征,并可导致多器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少,是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减,如外伤引起的出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起的出血等,超过总血量的25%~30%,超出机体代偿的能力,即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克。
根据失血性休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(休克代偿期或微循环缺血性缺氧期)、休克中期(可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期)、休克晚期(不可逆性失代偿期或微循环衰竭期)。
但依失血程度及速度的不同,各期持续时间、机体的功能代谢变化及临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗,首先强调的是止血和补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,改善微循环,必要是可予抗炎等治疗。
【材料与方法】1.实验动物家兔(体重2.0kg以上)2.器材与药品器材:兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器(1ml、10 ml 、50 ml)、输液装置、丝线(7#、1#)、纱布、生物信号采集与处理系统药品:25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因3.方法与步骤①麻醉固定家兔称重后,25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉,仰卧位固定于兔手术台上,减去手术部位被毛。
家兔失血性休克及救治实验设计 - 副本
家兔失血性休克及救治实验设计【实验目的】1、了解失血性休克动物模型的复制方法并复制失血性休克的动物模型;2、观察失血性休克发生前后家兔的血压、心率、呼吸频率等生理指标的变化;3、观察和了解休克发生、发展过程中,实验动物肠系膜微循环血液灌流的变化特点;4、讨论实验指标变化的原因及其病理生理学意义;5、了解失血性休克的治疗,探讨失血性休克的发病机理,根据该发病机理设计救治措施并实施,根据观察抢救后动物功能代谢变化、微循环改变及血气指标变化验证救治措施是否有效。
【实验原理】休克是多种原因引起的,以机体急性微循环障碍为主要特征,并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血导致血容量减少,是休克常见的病因。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减(如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血)超过总血量的20%以上时,极易导致急性循环障碍,组织有效血液灌流量不足,即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(微循环缺血期或缺血性缺氧期);休克期(微循环淤血期或淤血性缺氧期);休克晚期(微循环衰竭期或弥散性血管内凝血期)。
但依失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
对失血性休克的治疗,首先强调的是止血和补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克的不同发展阶段合理应用血管活性药物,改善微循环状态。
具体至本实验所用盐酸多巴胺而言,其主要激动α受体、β受体和多巴胺受体,中等剂量能增加心肌收缩力及心搏出量,收缩压升高而不易诱发心律失常。
值得注意的是,由于组织灌注减少,促使发生无氧代谢,导致血液中乳酸含量增高引发代谢性酸中毒,故本实验需要静脉注射NaHCO3以纠正代谢性酸中毒【实验对象】家兔,体重2.0~2.5kg。
【实验器材】PowerLab 10T 主机,曲臂显微镜,微循环生物信号处理系统,i-STAT血气分析仪,兔台,电子天平,酒精灯,石棉网,手术器械一套,动脉插管2个,钢针3枚,动脉夹2个,血气分析片3片,气管插管,静脉插管各一个,150ml烧杯2只,5ml、20ml、50ml注射器各3支。
失血性休克及其抢救实验报告
家兔的失血性休克及其抢救【摘要】1.目的:复制兔失血性休克模型;观察兔在失血性休克时的表现及循环变化;探讨失血性休克的发生机制及救治方法;了解失血性休克抢救。
2.方法:第二章微机生物信号采集处理系统,第四章动物实验技术。
3.结果:少量放血时,家兔血压及呼吸下降,但是在短时间内回升;大量放血时(45ml),血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低;进行输血输液等治疗措施后,大致恢复正常。
4.结论:少量失血,机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常;失血过多,机体会发生失代偿作用;经输血输液等治疗后,血压可恢复基本正常。
【关键词】休克;失血性休克;微循环【Abstract】1. Purpose: copy rabbit uncontrolled hemorrhagic shock model; Observe the rabbit uncontrolled hemorrhagic shock performance and circulation of change; Discusses the uncontrolled hemorrhagic shock the pathogenesis and treatment methods; Understand the rescue uncontrolled hemorrhagic shock. 2. Methods: the second chapter microcomputer biological signal acquisition and processing system, the fourth chapter animal experiment technology. 3. The result: a few bloodletting, blood pressure and breath of decline, but in a short time, rebounded, A large bloodletting (45 ml), blood pressure, respiratory decline faster and self recover capacity reduction; Intravenous treatment measures for a blood transfusion, roughly returned to normal. 4. Conclusion: a small amount of blood, the body's own compensatory function can make blood pressure returned to normal; Excessive blood loss, the body will happen decompensated role; The blood transfusion intravenous treatment, bloodpressure may restore basic normal.【Key Word】Shock; Uncontrolled hemorrhagic shock; microcirculation 1实验材料1.1对象:家兔2.7kg;1.2实验试剂:氨基甲酸乙酯,肝素,生理盐水;1.3实验仪器:铁架台,婴儿秤,RM6240生物信号采集系统,手术剪1把,止血钳,镊子,兔手术台,注射器及针头,血管插管,动脉夹,血压换能器,输液装置,照明灯,棉线若干,纱布;2实验方法2.1实验装置与连接:①将压力换能器固定于铁支架上,使换能器的位置尽量与实验动物的心脏在同一水平面上。
实验 家兔失血性休克及其抢救 gyx
实验家兔失血性休克及其抢救【实验目的】1. 复制失血性休克的动物模型。
2. 观察失血性休克时机体的一般状态及呼吸、血压、心率、中心静脉压的变化及微循环改变,了解失血性休克的病理生理过程。
3.了解失血性休克的抢救原则和抢救方法。
【实验原理】休克是多种原因引起的,以机体急性微循环障碍为主要特征,并可导致器官功能衰竭等严重后果的全身性病理过程。
失血性休克是临床上常见的急症,由于血容量减少,机体有效循环血量降低,从而使机体重要脏器血液灌流减少,而微血管的持续收缩与痉挛又加重了器官的缺血,使器官功能进一步障碍。
休克的发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减(如外伤出血、胃十二指肠溃疡出血或食管静脉曲张出血)超过总血量的20%以上时,极易导致急性循环障碍,组织有效血液灌流量不足,即休克的发生。
根据休克过程中微循环的改变,将休克分为三期:休克早期(微循环缺血期或缺血性缺氧期);休克期(微循环淤血期或淤血性缺氧期);休克晚期(微循环衰竭期或DIC期)。
但依失血程度及快慢的不同,各期持续时间、病理生理改变和临床表现均有所不同。
本实验采用颈总动脉放血方法,造成机体有效循环血量减少,复制失血性休克。
通过实验进一步了解失血性休克时心、肺、肾等器官的功能障碍,加深对失血性休克的认识。
由于微循环障碍是失血性休克的基础,治疗的主要措施就是改善微循环灌流,因此,实验中采用回输血液及输入生理盐水方法来改善微循环灌流状态,对失血性休克进行抢救。
【实验对象】家兔【实验学时】4学时【器械与药品】常规手术器械,气管插管,动脉套管,动脉夹,婴儿秤,兔固定台,5ml、20ml、50ml 注射器,输液装置,水检压计,二道生理记录仪,滤纸,烧杯,丝线,粗棉线。
20%乌拉坦,1%肝素,3.8%枸橼酸钠,生理盐水。
【步骤与方法】1. 麻醉和固定家兔称重后,自耳缘静脉注射20%乌拉坦(5ml/kg.bw)进行全身麻醉,动物仰卧固定,剪去手术部位被毛。
失血性休克及抢救实验报告
失血性休克及抢救实验报告失血性休克及抢救[目的]1.学习动脉插管测量和记录动脉血压并观察神经体液因素对动脉血压的调节作用;2.复制家兔失血性休克模型,探讨失血性休克的发病机理并分析抢救措施。
[动物] 家兔,体重2.5~3.5kg,性别不拘。
[药品] 20%乌拉坦、1%普鲁卡因、0.9%氯化钠注射液、125U/ml 肝素溶液、7.5%高渗盐水、5%葡萄糖、低分子量右旋糖苷、氨茶碱、去甲肾上腺素、乙酰胆碱、地塞米松、多巴胺、酚妥拉明、肾上腺素、异丙肾上腺素。
[器材] 手术器械,注射器(1ml、5ml、10ml),动脉插管,压力换能器、生物信号采集处理系统、呼吸机。
针头(9 号、16 号)、头皮针、动脉导管、气管插管、兔手术台、听诊器、压力换能器、HX200 型呼吸流量换能器、RM6240 多道生理信号采集处理系统、输血输液装置、微循环观察装置。
[方法]1. 仪器安装、调试将压力换能器固定于铁支架上,其位置应与仰卧家兔心脏在同一平面,输出线连接生物信号采集系统。
在电脑的实验软件中找到循环系统,进入系统的实验信号记录状态,调节仪器参数。
2.家兔麻醉及实验前准备家兔称重后耳缘静脉缓慢推注20%乌拉坦5ml/kg 体重。
静推麻醉药品速度不要太快,同时观察家兔的结膜反射、瞳孔大小、呼吸心跳等生命体征。
待动物麻醉后,将其仰卧固定于手术台上,固定四肢,用棉绳钩住门齿,将绳拉紧并缚于兔台铁柱上。
①分离颈总动、静脉及颈部神经:手术局部剪毛,颈前正中切开皮肤6-8cm,用止血钳钝性分离软组织及颈部肌肉,暴露气管、颈总动脉、颈静脉、迷走神经,用玻璃分针仔细分离右侧神经,穿细线。
②分离股动脉:剪去腹股沟内侧被毛,分离一侧股动脉,做动脉插管,以备放血用。
③分离气管:分离气管,做气管插管,插管一端连接呼吸流量换能器。
④暴露小肠襻:在腹部左侧距中线5cm 处剪毛,做长度约6cm 的纵行切口,打开腹腔。
将小肠襻置于微循环观察盒内,利用医学图象分析系统,打开微循环测量项,通过计算机采集图象,观察失血前后微循环变化。
家兔失血性休克及其实验性治疗实验研究分析报告
家兔失血性休克及其实验性治疗——《医学机能实验学》实验报告作者:Aspirin实验日期:2013年12月18日院系:第一临床医学院专业:临床医学【实验题目】家兔失血性休克及其实验性治疗【实验目地】1.复制失血性休克地动物模型2.观察失血性休克时和抢救过程中动物地功能代谢变化及微循环改变3.了解失血性休克地抢救治疗方案【实验原理】休克是多种原因引起地,包括大出血、创伤、中毒、烧伤、窒息、感染、过敏、心脏泵功能衰竭等,以机体微循环功能紊乱为主要特征,并可导致多器官功能衰竭等严重后果地全身性病理过程.失血导致血容量减少,是休克常见地病因.休克地发生与否取决于失血量和失血速度,当血量锐减,如外伤引起地出血、消化性溃疡出血、食管曲张静脉破裂、妇产科疾病所引起地出血等,超过总血量地25%~30%,超出机体代偿地能力,即可引起心排血量和平均动脉压下降而发生休克.根据失血性休克过程中微循环地改变,将休克分为三期:休克早期(休克代偿期或微循环缺血性缺氧期)、休克中期(可逆性失代偿期或微循环瘀血性缺氧期)、休克晚期(不可逆性失代偿期或微循环衰竭期).但依失血程度及速度地不同,各期持续时间、机体地功能代谢变化及临床表现均有所不同.对失血性休克地治疗,首先强调地是止血和补充血容量,以提高有效循环血量、心排血量,改善组织灌流;其次根据休克地不同发展阶段合理应用血管活性药物,改善微循环,必要是可予抗炎等治疗.【材料与方法】1.实验动物家兔(体重2.0kg以上)2.器材与药品器材:兔手术台、婴儿秤、兔用器械1套、动脉导管、三通管、气管插管、体温计、注射器(1ml、10 ml 、50 ml)、输液装置、丝线(7#、1#)、纱布、生物信号采集与处理系统药品:25%乌拉坦溶液、肝素生理盐水、1%普鲁卡因3.方法与步骤①麻醉固定家兔称重后,25%乌拉坦溶液按4ml/kg剂量经耳缘静脉注射麻醉,仰卧位固定于兔手术台上,减去手术部位被毛.②颈部手术从甲状软骨向下作5cm长地颈正中切口,分离右侧颈外静脉、左侧颈总动脉和气管,穿线备用.③启动生物信号采集与处理系统,选择“失血性休克”实验配置.④插管及心电地描记左侧颈总动脉插入与相应换能器相连地颈动脉导管(预先充满肝素生理盐水),描记血压曲线;右侧颈外静脉插入与相应换能器相连地静脉导管(预先充满肝素生理盐水),深约5cm,描记中心静脉压曲线;气管插管,连接呼吸换能器,描记呼吸曲线;按要求分别将白、红、黑色心电电极放置于动物地左后肢、右前肢和右后肢皮下,描记心电波形.⑤肝素化处理按10mg/kg剂量,经颈外静脉输入肝素作肝素化处理.【观察项目】1.观察家兔皮肤黏膜颜色、肛温、心率、血压、中心静脉压、呼吸等一般生理指标.2.休克模型复制打开三通开关,使血液从颈总动脉流入含少量肝素抗凝地50ml注射器内,一直放血使血压(平均动脉压)下降并稳定在40mmHg水平,15~20min 后观察失血后动物各项生理指标地变化.3.抢救治疗回输原血和生理盐水按1:1配置地混合液.抢救过程中注意观察各项生理指标是否逐渐恢复正常.【注意事项】1.麻醉深浅要适度,麻醉过浅,动物疼痛,可致神经源性休克;过深则抑制呼吸.动、静脉导管事先用生理盐水充盈,排除空气,导管插入后,经颈外静脉推入肝素作肝素化处理,放血后也应及时往动脉导管内推注肝素生理盐水以免血液凝固.输液时应注意三通管地使用,输液装置只能单向与静脉导管相通,不能在输液地同时测中心静脉压.要观察中心静脉压,需关闭输液通道,使换能器与静脉导管单向相通.同样,放血地同时亦不可测血压.4.放出来地血要顺着瓶壁流入输液瓶,尽量减少红细胞地损伤.【实验结果】1.三次观察家兔各项生理指标结果如表1所示:表1. 家兔正常各项生理指标观察指标呼吸(次/分)平均动脉压1(mmHg)中心静脉压2(mmHg)肛温(℃)心率(次/分)口唇黏膜颜色放血前37 122.05 0.60 36.1 246 淡粉红放血后36 46.85 0.10 35.1 242 青紫抢救后49 108.58 -0.03 <35.0 202 青紫稍转淡粉注:1.实验过程中造成家兔失血较多,可能对平均动脉压地测定值产生影响;2. 由于实验操作等各方面原因,使得本组右侧颈外静脉导管插管失败,故本组数据并未得到.参考班级其他实验组中心静脉压数据进行讨论分析;3.在截图过程中,可能造成实验数据变化在图线上显示不明显.4.在测抢救后家兔肛温过程中,家兔排出大量透明尿液.2.放血前、放血后及抢救后,家兔血压曲线、呼吸曲线及心电波形分别如图1、图2、图3所示:【实验讨论】1.当血压降至40mmHg以后,停止放血,可以观察到血压有所回升,为什么?停止放血之后,机体处于休克代偿期,血量可适当恢复,心率加快,血压有所回升.其机制为:(1)交感神经系统兴奋:①使大多数器官地阻力血管收缩,在心输出量减少地情况下,来维持动脉血压接近正常值.调节各器官地血流量分布来维持脑和心脏地供血;②容量血管收缩,使回心血量不致下降太多,维持一定地心输出量;④心率明显加快.(2)毛细血管处组织液重吸收增加:毛细血管前阻力血管收缩,毛细血管血压降低,毛细血管前阻力和毛细血管后阻力地比值增大,故组织液地回流多于生成,使血浆量有所恢复,血液被稀释.(3)血管紧张素Ⅱ,醛固酮和血管升压素生成增加,通过缩血管作用既促进肾小管对Na+和水地重吸收,有利于血量地恢复.2.失血性休克时各观察指标变化地机制是什么?(1)呼吸变化地机制:①大量失血,交感神经兴奋,毛细血管收缩,外周组织缺血缺氧,毛细血管内气体交换加强,血氧分压降低,使颈动脉体缺氧性兴奋,呼吸频率加快.②大量失血后,肺动脉压降低,通气血流比值降低,肺泡无效腔增大,使肺代偿性通气减弱.综合考虑:大量失血时,神经-体液调节较为敏感,主要是交感神经起作用,引起呼吸地加深加快.(2)血压变化地机制:①停止放血后,血压有所回升,其机制同讨论1中(1)(2)(3)所述;②大量放血时,血容量急剧下降,有效地循环血量减少,回心血量减少,平均动脉压下降,加之压力感受器反射活动减弱,引起交感神经强烈兴奋,外周血管收缩,组织有效血压灌流量不足,毛细血管通透性增高、血浆外渗、回心血量减少、心排出量进一步减少,血压下降,超越机体地代偿能力,造成失血性休克.(3)肛温变化地机制:①大量失血时,机体交感、肾上腺活性增加,激活肾素-血管紧张素-醛固酮系统,腹腔内脏和体表小血管收缩,产热减少;②大量扩容治疗时,输入低温液体,体热丧失.综合考虑,失血性休克时,机体体温下降,随时间推移,体温进行性下降,以致低温地发生.(4)心率变化地机制:代偿性加快机制:循环血量减少,中心静脉压降低,心排出量降低,平均动脉压降低,引起心血管反射,抑制迷走神经,刺激交感神经.迷走神经末梢释放乙酰胆碱减少,对M受体兴奋作用降低,负变时作用减弱,而交感神经末梢释放去甲肾上腺素增多,激活β1受体,产生正变时作用,因此心率代偿性加快.(5)口唇粘膜颜色变化机制:由于大量失血,交感神经兴奋,血管收缩,外周循环血液流速缓慢,淤滞,使毛细血管内血液与组织气体交换增多,血液含氧降低,还原血红蛋白增多,造成紫绀.3.失血性休克地抢救原则及措施是什么?采用地是何种治疗方案?效果如何?其机制是什么?(1)失血性休克地抢救原则是:及时尽早.可采取地措施是:迅速补充充血容量、纠正酸中毒、血管活性药物合理应用和保护重要脏器功能.(2)采用扩充血容量(回输原血和生理盐水按1:1配置地混合液),血压急剧回升至正常值水平.机制是:回输原血和生理盐水按1:1配置地混合液,即补充血容量,有效循环血量、心排血量增加,组织灌流改善,血压恢复.①输液地原因:大量快速补液可以充分补足钠晶体溶液.由于在休克时微循环内血流迟缓,血液粘稠度成倍增加,此时如先输血会使血液处于高凝状态,加重微循环障碍;先输入晶体溶液,能使微循环地血液粘稠度下降,有利于增加微循环地血液.②自身输血可快速恢复血容量,恢复血压.综合考虑,回输原血与生理盐水地混合液可以更好地达到补充血容量,改善微循环地目地.【实验结论】1.家兔快速(15min)大量失血超过机体总血量地25%~30%后,可造成失血性休克,但通过代偿反应可以在短时间内使血压适当回升.2.补充血容量(回输原血和生理盐水按1:1配置地混合液)可使血压上升至正常水平,达到治疗失血性休克地目地.【参考文献】[1]龚永生,陈醒言.医学机能实验学[M].北京:高等教育出版社,2011:112-113[2]朱大年,王庭槐.生理学[M].北京:人民卫生出版社,2013:235-237[3]金惠铭,王建枝.病理生理学[M]. 人民卫生出版社,2008:155-158[4]胡蓉,正江.血性休克病人地体温下降与对策[J].中国中医药咨讯,2011,03(20):358[5]翟光维,邢彩霞.失血性休克地液体复苏[J].护理实践与研究,2008,5(24):70-72版权申明本文部分内容,包括文字、图片、以及设计等在网上搜集整理.版权为个人所有This article includes some parts, including text, pictures, and design. Copyright is personal ownership.TIrRG。
家兔的失血性休克及其抢救
机能学实验报告家兔的失血性休克及其抢救摘要:【目的】:复制家兔失血性休克的动物模型;了解失血性休克的抢救,并探讨失血性休克的发病机制及急救治疗的效果。
【方法】:采用人为地从动脉抽取血液的方法来复制家兔失血性休克的模型,将抽出的血液从静脉输回家兔的方法进行急救。
【结果】:短时间内的少量的失血是可以恢复;大量失血是不可恢复的;自身回输血液可使家兔的失血性休克恢复。
【结论】:短时间少量失血机体是处于代偿期的,较长时间的大量失血机体已处于失代偿期,而该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
关键词:失血性休克;代偿期;失代偿期引言:休克是多种原因引起的急性循环障碍,使全身组织血液灌流量严重不足,导致细胞损伤,各重要生命器官发生严重障碍的全身性病理过程。
失血导致血容量减少是休克常见的原因。
1、实验材料1.1实验动物:家兔;1.2实验试剂:氨基甲酸乙酯,肝素,生理盐水;1.3实验仪器:铁架台,婴儿秤,RM6240生物信号采集系统,手术剪1把,眼科剪1把,止血钳,镊子,兔手术台,注射器及针头,血管插管,动脉夹,血压换能器,输液装置,照明灯,棉线若干,纱布;2、实验步骤2.1.系统连接和参数设定将血压换能器接生物信号采集系统2通道。
启动RM6240系统,关闭其他通道,2通道模式为血压,时间常数为直流,滤波频率100Hz,灵敏度100ml/s;采样频率800Hz。
2.2. 麻醉手术家兔称重,以5ml/kg 的体重剂量由兔耳缘静脉内缓慢注入200g/L氨基甲酸乙酯麻醉。
将家兔仰卧固定于兔手术台上,先后固定四肢及兔头,行气管插管手术,左侧颈总动脉,右侧颈外静脉,股动脉。
输液瓶充满一定量的生理盐水,静脉插管接输液装置,调节输液量至5~10滴/min。
股动脉插管的导管连接已肝素化的50ml注射器。
2.3. 颈部手术2.3.1. 备皮:左手绷紧颈部皮肤,用粗剪刀紧贴皮肤,将手术部位及其周围的被毛剪去(不可用手提被毛,以免剪破皮肤)2.3.2. 切开皮肤:术前先用左手拇指和另外四指将颈部皮肤绷紧固定,右手持手术刀,沿颈部正中线切开皮肤,上起甲状软骨,下达胸骨上缘,长度约5-7cm。
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休克的药物急救—呼吸
实验目的
1.学会复制失血性休克的模型;
2.了解抢救休克时扩容及应用血管活性药物的意义。
实验原理
根据微循环学说,休克定义为各种原因引起有效循环血量减少,微循环灌流障碍,引起重要生命器官血液灌注不足,从而导致细胞功能紊乱的全身性病理过程。
休克的病因有多种,本实验采用颈动脉放血的方法,直接减少有效循环血量,复制低血容量性休克模型。
由于放血一定程度后可使循环血量不足,静脉回心血量减少,血压下降,通过压力感受器反射,引起交感神经兴奋,外周血管收缩,组织灌流量急剧减少,导致失血性休克。
失血后呼吸加快。
休克时,呼吸会停止。
通过输液,补充血容量及药物,抢救休克。
器材药品
动物:家兔,生物呼吸实验系统,压力换能器,动物实验手术器械一套,动脉插管,静脉输液装置一套,气管插管,动脉夹,结扎线,纱布,注射器,兔台,秤。
20%乌拉坦溶液,生理盐水, 0.2%肝素生理盐水,去甲基肾上腺素,烧杯。
实验步骤
1.称重:从耳缘静脉缓慢注射20%乌拉坦5ml/kg.
2.固定
3.剪毛:手术部位是颈部和一侧腹股沟,把这两个部位的毛剪干净。
剪毛的时候,用左手把皮肤绷紧,右手用粗剪刀贴近皮肤剪毛。
4分离血管:
(1)颈外静脉--输血输液,作为抢救的通路颈外静脉位于颈部两侧皮下,很容易分辨。
它的特点是壁薄,粗大,色暗,没有明显的搏动,分离尽量游离得长一些,下面穿两根线备用。
(2)颈动脉--放血。
颈部做长4-6cm的皮肤切口,逐层钝性分离皮下组织,暴露出气管,分离气管,翻开肌肉层,就可以看到颈总动脉,颈总动脉的特点是搏动明显、粉红色、壁韧,很容易分辨。
把颈总动脉小心分离出来,尽量游离得长一些,下面穿两根线备用。
5.插管:
(1)气管插管,连张力换能器,记录呼吸.
(2)静脉插管:颈外静脉插管,一定要避免进去气泡,防止发生气栓,所以静脉插管要事先通满生理盐水,排净里面的气泡。
先夹闭近心端,再结扎远心端,。
在靠近远心端剪口,插入静脉插管以后,可以松开动脉夹,向静脉内送入一段,然后结扎。
(3)动脉插管:颈总动脉插管提前用生理盐水充满。
结扎远心端,动脉夹夹闭近心端,用眼科剪在靠近远心端处剪开一个"V"形斜口,动脉插管用生理盐水润滑一下,插入动脉插管。
动脉结扎线提前要湿润一下,结扎一定要牢固。
6.肝素化:从耳缘静脉注射肝素5ml/kg。
7描述正常呼吸线
8.放血:动脉插管的管与50ml注射器连,打开管,设血从三通管流到注射器,一直到呼吸下降到趋近0
9. 记录总放血量,
10.药物救治: 失血量等量生理盐水+失血全血+去甲肾上腺素0.75mg/kg的溶液快速从静脉注入,观察呼吸情况
11处死动物
结果分析讨论
结果:少量放血时(30ml),家兔血压及呼吸下降,但是在短时间内回升;大量放血时(大于50ml),血压、呼吸下降较快且自我恢复能力降低;进行输血输液等治疗措施后,大致恢复正常。
结论:少量失血,机体的自身代偿作用可以使血压恢复正常;失血过多,机体会发生失代偿作用;经输血输液等治疗后,血压可恢复基本正常。
短时间少量失血是可恢复的,较长时间的大量失血机体将处于失代偿期难以自身恢复,但是该种休克通过输血、输液是可以恢复的。
讨论:
1短时间内少量失血机体血压可以适当恢复的机制:
少量放血时,开始血压下降,颈动脉窦和主动脉弓压力感受器受到的刺激减少,传入神经冲动减少,使心迷走神经中枢紧张性减弱,心交感和缩血管中枢紧张性增强,再通过相应的传出神经,结果使心迷走神经传出冲动减少,心交感神经传出冲动增加,心率加快,心输出量增加,缩血管神经纤维传出冲动增加,血管收缩,外周阻力升高,因而使动脉血压回升[1]。
这是机体自身的代偿功能,使血压和组织灌流量保持基本正常。
代偿机制:
(1)交感神经系统兴奋:
①使大多数器官的阻力血管收缩,在心输出量减少的情况下,来维持动脉血压接近正常值。
调节各器官血流量分布以保持脑和心脏的供血;
②容量血管收缩,使回心血量不致下降太多,维持一定的心输出量;
③心率明显加快。
(2)毛细血管处组织液重吸收增加:
毛细血管前阻力血管收缩,毛细血管血压降低,毛细血管前阻力和毛细血管后阻力的比值增大,故组织液的回流多于生成,使血浆量有所恢复,血液被稀释。
(3)血管紧张素Ⅱ,醛固酮和血管升压素生成增加,通过缩血管作用既促进肾小管对Na+和水的重吸收,有利于血量的恢复。
2较长时间的大量失血机体不能恢复的机制:
大量放血时,血容量急剧下降,有效的循环血量减少回心血量减少,平均动脉压下降,加之压力感受器反射活动减弱,引起交感神经强烈兴奋,外周血管收缩,组织有效血压灌流量不足,毛细血管通透性增高、血浆外渗、回心血量减少、心排出量进一步减少,此时已发生休克。
家兔出现发绀现象。
大量失血使血容量不足,而超越机体的代偿功能:
微循环的变化:
①毛细血管前后阻力均降低。
②真毛细血管内血液瘀滞。
③微循环麻痹(不灌不流)。
④广泛的微血栓形成。
可出现的表现:①心排出血量减少,尽管周围血管收缩,血压依然下降,血管进
一步收缩会招致细胞损害。
②组织灌注减少,促使发生无氧代谢,可形成乳酸增高和代谢性酸中毒。
3失血性休克的抢救原理:
抢救失血性家兔的治疗原则:扩充血容量、纠正酸中毒、血管活性药物应用和保护重要脏器功能。
输液的原则是“需多少,补多少”,不能超量补液。
家兔失血性休克后大量输液与自身血液的输血,可以改善微循环,使血压快速恢复正常值。
输液的原因:首先大量快速补液可以充分补足钠晶体溶液,因为,在休克时微循环内血液迟缓,血液粘稠成倍增加,此时如先输血会使血液处于高凝状态,加重微循环障碍;而先输入晶体溶液,能使微循环的血液粘稠度下降,有利于增加微循环的血液。
而自身输血可快速恢复血容量,恢复血压。
【注意事项】
1.颈总动脉位于气管食道沟内,结扎时应避开伴行的迷走神经。
2.血压换能器应处于家兔心脏同一水平。
3.各管道系统内应避免气泡存在。
4.所有插管和注射器必须都先肝素化,插管内不得有气泡。