动物细胞工程实验室简介
细胞工程 第一章 细胞工程简介
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• 1998年2月，英国宣布克隆出牛犊“杰弗逊”； • 1998年7月，日籍科学家成功地得到3代克隆小鼠，这 是首次用克隆动物克隆出动物； • 2001年1月，美国克隆恒河猴成功，命名为“泰特 拉”，这意味着克隆人不存在技术障碍； • 2002年3月，美国科学家克隆成功猫； • 2005年4月，韩国克隆出狗“首努比”(Snuppy)， 2008年9月4日通过双亲克隆狗生产狗宝宝，证明克隆 狗有繁殖能力。”
生物技术相关的行业涵盖了许多行业。
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Cell engineering
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Cell e指应用细胞生物学和分子生物学的方法，
通过类似于工程学的步骤，在细胞整体水平
或细胞器水平上，按人们的意愿来改变细胞
内的遗传物质并使之增殖，以获得新型生物
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细胞工程是一个非常年轻富有活力的 学科。在它诞生的100多年时间里，细胞 工程技术已经成为世界经济中最具活力的 支柱性产业，产生了巨大的经济效益和社 会影响。随着生命科学的不断深入，细胞 工程技术会得到更快的发展，在解决人类 的资源与环境等重大问题上大要作为。
无菌条件：净化工作室，风淋室，传递窗，高效过滤器，
洁净层流罩，生物安全柜，超净工作台，紫外 灯，电热干燥箱，滤器，高压灭菌器，抗生素
细胞生长条件：纯水蒸馏器，纯水仪，培养板，培养瓶，
CO2培养箱，磁力搅拌器，培养基，血清
动物细胞工程基础实验
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配制液体培养基
1. 将培养基干粉（PRMI-1640）倒入1000 mL烧杯，加 800mL三蒸水，玻棒搅拌充分溶解；再加入加1.8g HEPES和2.2g碳酸氢钠，玻棒搅拌充分溶解，溶液呈 橙色（弱酸性，pH在7.0左右）；再倒入1000 mL容量 瓶，用三蒸水定容至刻度。
9. 接种细胞：吸取4 mL上述的细胞悬液，加入原细胞 培养瓶中，接种后2个培养瓶中的悬液各4 mL；
10. 静置培养：盖上瓶盖，拧紧，标记（包括细胞名称、 代数、传代日期），放入常规的生化培养箱静置培 养；
11. 观察细胞：每天观察细胞生长状况，并确定是否进 行第2代的传代。
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EPC细胞（消化前）
2. PBS用于2胰蛋白酶溶液和3 EDTA溶液的配制，余下高 压灭菌备用；
3. 将PBS分装入试剂瓶中，瓶盖转松，牛皮纸包紧，橡皮 筋加固，装入提篮，121℃，20min灭菌；
4. 自然干燥冷却后，4℃保存备用。
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配制胰蛋白酶（0.25%）
1. 称取0.625g胰蛋白酶于250 mL烧杯，加入1配制 的PBS 200 mL，玻棒搅拌充分溶解后，倒入250 mL容量瓶中，用PBS定容至刻度。
3. 胰蛋白酶（Trypsin）可将贴壁的细胞从培养瓶壁上消 化下来，通常使用浓度为0.25%或0.125%。
4. EDTA溶液 用于清洗细胞表面，螯合Ca2+等二价离 子，使细胞易于为胰蛋白酶消化。
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浅析动物细胞工程及其在制药工业中的应用
China Science & Technology Overview /学术研究浅析动物细胞工程及其在制药工业中的应用沈睿韬(江苏省苏州中学，江苏苏州215007)摘要：近年来，生物技术的发展十分迅速。
我们可以在体外对动植物细胞进行培养，从而生产特定的生物制品或测试新药的疗 效。
作为生物制药工业中的关键技术，细胞工程在农业、畜牧业及制药工业中都有着十分广泛的应用。
优良品种选育、家畜繁殖、药 物生产，都离不开细胞融合、核移植等技术。
细胞工程的飞速发展，使生物制药进入一个全新的时代。
本文对动物细胞工程的研究现 状进行了简要介绍，并分析了其在医药领域中的应用，以期为相关人员提供参考。
关键词：动物细胞工程；细胞融合；抗体偶联药物；生物制药中图分类号：Q2 文献标识码：A0. 引言作为现代生物技术的重要领域之一，细胞工程的发展 十分迅速，并带动了许多行业的发展。
通过基因工程、细 胞融合等技术，我们可以对动物或植物细胞进行改造，从 而获得所需的产品。
细胞工程在农业、食品工业、医疗领 域都有着广泛的应用。
在生物制药领域，细胞工程更是扮 演着重要的角色。
我们可以利用细胞工程，实现大规模的 细胞改造，以得到所需物质，或者合成一些不存在于自然界的 化合物。
在一些情况下，利用细胞工程，我们虽然不能直 接得到所需要的产物，但是可以获得重要的药物前体w。
相比于传统的生产方式，这些药物前体的纯度更高、安全 性更好，且制备成本较低。
可以说，在生物制药领域，细 胞工程扮演着重要的角色。
1. 细胞工程的简介所谓细胞工程，就是应用细胞融合、核移植、组织细 胞培养等技术，对细胞进行改造，从而改变细胞性状，获 得某些生物制品的技术。
在离体条件下，各种细胞的生 长、繁殖特性不尽相同，因此，需要通过细胞的生长状 态，对细胞生长所需的营养素、调节因子，以及其他培养 条件进行分析，并不断改善其培养环境，从而使细胞的产 出速率更高。
细胞工程的应用十分广泛，它既可以用于培 养作物的新品种，也可以用于药物、疫苗等的生产。
动物细胞工程教案
动物细胞工程教案一、教学目标1. 了解动物细胞工程的基本概念和原理。
2. 掌握动物细胞培养的基本步骤和操作技术。
3. 了解动物细胞融合的方法和应用。
4. 理解动物细胞工程在生物技术和医学领域的应用。
二、教学内容1. 动物细胞工程的定义和原理解释动物细胞工程的概念介绍动物细胞工程的基本原理2. 动物细胞培养的基本步骤动物细胞培养的流程和操作方法培养基的选择和配制细胞的分离和培养3. 动物细胞融合的方法介绍动物细胞融合的原理和方法细胞融合技术的应用和意义4. 动物细胞工程的应用动物细胞工程在生物技术领域的应用动物细胞工程在医学领域的应用三、教学方法1. 讲授法讲解动物细胞工程的基本概念和原理介绍动物细胞培养的基本步骤和操作技术2. 实验法进行动物细胞培养实验展示细胞融合技术的实验操作3. 案例分析法分析动物细胞工程在实际应用中的案例讨论动物细胞工程的优势和局限性四、教学评价1. 课堂参与度学生参与课堂讨论和问题解答的情况2. 实验报告评估学生在动物细胞培养实验中的操作技能和结果分析3. 小组讨论评估学生在案例分析中的思考和团队合作能力五、教学资源1. 教材和参考书籍《动物细胞工程》教材或其他相关书籍2. 实验材料和设备动物细胞培养实验室设备和材料3. 多媒体教学资源教学PPT、视频资料等相关教学资源六、教学步骤1. 引入：通过展示动物细胞工程的实际应用案例，引起学生对动物细胞工程的兴趣和好奇心。
2. 讲解：详细讲解动物细胞工程的基本概念、原理和基本步骤，包括动物细胞培养和细胞融合技术。
3. 演示：进行动物细胞培养实验，展示细胞融合技术的实验操作，让学生直观地了解动物细胞工程的技术过程。
4. 实践：学生分组进行实验操作，亲身体验动物细胞培养和细胞融合技术，培养学生的实践能力。
5. 讨论：组织学生进行小组讨论，分析动物细胞工程在实际应用中的案例，探讨动物细胞工程的优势和局限性。
七、教学安排1. 课时：本课程共计15课时，包括9课时理论教学和6课时实验教学。
细胞工程实验室配置及基本技术
用蔗糖调节外，常用的还有甘露醇，山梨
醇等。
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§3.培养条件
六.气体影响
CO2、 O2
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§3. 培养条件
六.气体影响
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§4.离体培养的营养需求
一.无机盐类 二.有机化合物 三.植物激素 四.其它附加成分
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§4.离体培养的营养需求
一.无机盐类
消毒器、紫外灯。
无菌操作设备 净化工作台、接种箱。 光温控制设备 时间程序控制器、空调及温度感应器。 细胞培养设备 培养设备根据需要而定，包括培养架、培养箱、
摇床、 生物反应器等。
细胞学鉴定设备 光学研究显微镜、实体显微镜、倒置显微镜。
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§2.实验室设置
二.基本设备配置
灭菌设备
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§3.培养条件
四.pH值
通常使用的pH值范围是5.0～6.5。pH在 4.0以下或7.0以上培养物就不能正常生长。
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§3.培养条件
五.渗透压
事实上为了某些培养需要，在设计培养基
时就应该考虑渗透压的问题，如White培
养基的渗透压为0.15个大气压，MS培养基
为1.9个大气压。此外，培养基的渗透压除
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§2.基本技术
一.洗涤技术
洗涤方法 玻璃器皿洗涤 新的玻璃器皿 已使用过的试管、烧杯、三角瓶 吸管、滴管等内径狭小的玻璃制品 塑料用品洗涤 一般用合成洗涤剂洗涤，因其附着力较 强，因此冲洗时必须反复多次，最后用 蒸馏水冲洗。 金属用品洗涤 金属用品一般不宜用各种洗涤液洗涤， 需要清洗时，一般用酒精擦洗，然后火 焰干燥。 第12页/共32页
动物细胞工程实验
实验一机械法分离培养动物细胞及计数一.实验目的1.掌握机械法分离培养动物细胞的原理及方法2.掌握细胞计数的方法二.实验原理在机体中，器官通常由几种组织构成，组织又由细胞通过紧密连接锚定连接、通讯连接构成组织。
采用机械法破坏细胞间的连接，能获得单个细胞。
本实验采用剪碎小白鼠肝组织的方法获取单个肝细胞，该方法简单易行。
三.实验材料1.动物：小白鼠（成年）2.试剂：PBS缓冲液，RPMI-1640培养液3.器材：手术器械、试管、滤网、离心管、离心机、显微镜等；四.实验方法1.无菌获取肝组织取成年小白鼠一只，断颈处死，腹部向上置于解剖盘中，碘酒消毒1-2次，75%酒精洗碘。
剪开腹壁，暴露肝脏组织，换手术器材，剪取0.3mm3肝脏组织块，置于培养皿中。
2.获取细胞剔除脂肪组织，加PBS缓冲液1ml，反复冲洗2-3次，剪碎组织块至1mm3，加RPMI-1640培养液，滤网过滤至离心管。
平衡、离心（1000rpm,5min），弃上清，加培养液1ml，吹打均匀，成细胞悬液。
3.细胞计数取细胞计数板一个，盖上盖玻片，去细胞悬液，沿盖玻片便于滴1滴，显微镜下计细胞数，原则：计上不计下，计左不计右4.细胞培养加细胞培养液，稀释至1X105个/ml，移入培养皿，37℃，CO25%培养箱中培养四.实验结果实验二酶消化法分离培养小鼠胎儿成纤维细胞一.实验目的掌握消化分离培养小鼠胎儿成纤维细胞的基本方法二.实验原理胰蛋白酶是一种消化酶，它通过作用于精氨酸或赖氨酸之剑的肽键，能破坏细胞间的连接，进而从组织块中分离获得单个细胞；细胞之间是通过CAM相连，而很多粘性分子只有在+2价金属离子，如Ca2+,Mg2+的存在下，才能行使这种功能，在胰蛋白酶中加EDTA的作用是熬合这些二价例子，使细胞被消成单细胞状态；本实验就是采用胰蛋白酶和EDTA消化小鼠胎儿肌肉细胞获得单个细胞。
三.实验器材1.试剂：10%犊牛血清（NBS）的1640培养液，0.25%胰蛋白酶，0.04%EDTA，PBS2.器械：离心机，滴管，普通天平，手术器械，血球计数板，离心管等3.材料：怀孕13-17天母鼠四.实验步骤1.取材：断颈处死怀孕小鼠，腹部向上置于解剖盘中，碘酒消毒1-2次，75%酒精脱碘，剪开腹壁，更换手术器械，取胎儿置培养皿中2.剔除和清洗：从子宫中挤出胎儿，剪去胎儿头、尾、四肢、内脏和脊柱后，反复用PBS冲洗3-4次3.剪碎：将冲洗干净后的胎儿组织块置另一培养皿中，剪碎至1mm3（剪15-20min）4.消化：加入4ml0.25%胰蛋白酶消化液，37℃消化5-7min5.终止：加入4ml含10%NBS的1640培养液终止消化6.收集细胞：离心用100目滤纱将细胞悬液过滤至离心管中，平衡离心（1000rpm,5min）7.制备细胞悬液：弃上清，加1ml1640培养液，吹打成细胞悬液8.细胞形态观察：取载玻片一张，滴细胞悬液一滴，盖上盖玻片，显微镜下观察9.细胞计数：按上一实验介绍方法计数10.培养细胞：将稀释至1X105个/ml细胞悬液加入培养皿中，置于5%CO2，37℃，75%湿度培养箱中培养实验三牛镜子细胞冷冻与活率检验一.实验目的1.掌握细胞冷冻解冻原理及方法2.掌握细胞活率检验原理及方法二.实验原理细胞培养液中加冷冻保护剂，并通过一定的冷冻程序冷冻细胞，一方面使细胞内形成的结晶体积较少，减少对细胞的机械性损坏；另一方面缓解细胞内因结晶引起的局部高渗对细胞的伤害。
010细胞工程-第一章细胞培养室的设置和准备工作
移液器 液体试剂精确 取量 电动移液器、 微量移液器、 多通道可调式 微量移液器
使用与校对 1、枪头：一次性 2、轴芯，密闭性 3、第一档、第二档（深入液体4毫米） 4、校对
培养用器皿： ①培养器皿：供细胞接种、生长等用的器皿，可由透明度好、 无毒的中性硬质玻璃或无毒而透明光滑的特制塑料制成。
精确的pH值测 定
注意事项：
1、不要用滤纸擦拭玻璃膜 2、严禁在脱水性介质如无水乙醇、重铬酸钾等中使 用
3、电极不能用于强酸、强碱或其他腐蚀性溶液
二、动物细胞工程实验室常用设备
• CO2培养箱：温度 湿度 酸度PH
CO2培养箱设定的条件为37 ℃ ，5％ CO2 使用CO2培养箱培养细胞时应注意的问题：
注意事项：压力、消毒、蒸馏水
显微操作仪
细胞核移植、染色体操作、显微注射、胚胎切割必需之设备
细胞电融合仪
采用高频交 流波，使细 胞排列成双 体或串珠状， 再使用直流 方波长脉冲 使细胞融合。
摇 床：进行细胞悬浮培养，水平往复式或回旋式
• 细胞冷冻储存器：
• 细胞培养工作中常需储存细胞，常用的是 液氮容器。液氮容器根据使用需要分为不 同的类型及多种规格。
离子交换纯水尚不能有效去除有机物，因此用水 时尚需再次蒸馏。
进行细胞培养时，配制各种培养液及试剂等均 需使用三次蒸馏水：即使是用于玻璃器皿的冲洗， 也应使用2次以上蒸馏水。
• ，使用方便、安全，蒸馏速度快。
自动双重纯水蒸馏器
纯水仪
MRO反渗透系列纯水机 ：出水量（25℃）：8升/小时，15 升/小时 瞬间出水量：1.5升/分(需选配压力储水桶) 出水水质：反渗透水 Millipore公司：MPC超纯水系列标准型水源（一馏水或自 来水）→ 预处理（PP棉滤、活性碳。去除了水中的颗粒与 降低了自来水中余氯的含量） → 反渗透膜（去除绝大部分 的细菌，离子及有机物） → 储水箱 → 4组抛光混柱(除去 残留在水中的离子与有机污染物) → UV紫外灭菌（杀灭细 菌，进一步降低TOC）或超滤UF（滤掉内毒素同时去除大 量有机物） → 终端滤器（彻底除菌、除颗粒，极低TOC的 超纯水）
细胞工程基本技术
四、培养用品的清洗
在培养物中无毒和无菌是保证培养细胞生存的首要条件，因此对培 养器皿的清洗和灭菌是极为重要的环节。
清洗的目的是清除杂质和微生物,使器皿内不残留任何影响细胞生长 的成分(有害物质、微生物、细胞碎片及非营养性化学成分）。
三．电离辐射消毒
○ 适用于消毒量大和不适于做高压或滤过的用品。
三．湿热灭菌
湿热灭菌即高压蒸气灭菌，是最常用和最有效 的一种方法。布类、胶塞、金属器械、玻璃器 皿及某些培养用液都可用此法消毒灭菌。
各种物品有效消毒灭菌压力和时间不同，一般 培养用液、橡胶制品要求10磅(114℃)，10～ 20分钟或8磅(112℃)30分钟。布类、玻璃制 品、金属器械等为15磅(12l℃)20分钟。
玻璃滤器适用于各种培养液的滤过除菌。玻璃滤器根据滤板的孔 径分为G1一G6几种规格，一般采用G6型(孔径在1.5μm以下)， 可达到除菌目的。
微孔滤膜滤器，应选用孔径为0.22μm的滤膜过滤除菌。 各种滤器必须先经高压蒸气消毒、烤干后方可使用。
2. 化学消毒法
3. 消毒剂
○ 细胞培养室的工作面、家具、墙壁、地面和空气等可用消毒剂进 行灭菌处理。如：75％酒精常用于皮肤和瓶皿开口部位的消毒； 0.1％新洁尔灭是目前最常用的消毒剂，可以对器械、皮肤、操 作面进行擦拭和浸泡消毒；乳酸可用于空气消毒：来苏儿可用于 地面消毒；过氧乙酸消毒能力很强，在0.5%的浓度下，10min 就可将芽孢菌杀死。甲醛是一种光谱灭菌剂，其水溶液和气体对 各种细菌、芽孢及真菌等微生物均有杀灭作用。
○ 支原体的污染是一个常见而棘手的问题，外观 上看不出明显的变化，实际上或多或少的影响 到细胞的众多机能。目前尚无有效的防范措施。 可通过支原体培养、PCR及电镜观察等方法进行 检测。
细胞工程(动物部分)
绪论1.细胞培养与组织培养：属于体外培养，是指生物细胞和组织在离体条件下的生长和增值。
细胞的离体培养称为细胞培养，组织的离体培养称为组织培养。
2.细胞融合：又称细胞杂交，是指两个或两个以上的细胞融合形成一个细胞的过程。
3.细胞核移植：是利用显微镜操作技术将细胞核与细胞质分离，然后再将不同来源的核与质重组，形成杂合细胞的过程。
4.干细胞：是动物体内具有分化潜能、并能自我更新的细胞，分为胚胎干细胞和组织干细胞。
5.转基因动物：是通过基因工程技术将外源的目的基因导入受体动物染色体内，外源基因与动物基因整合后随细胞的分裂而扩增，在体内表达并能稳定地遗传给后代的动物。
第一章1.细胞工程实验室与其他一般实验室的区别：要求保持严格无菌环境、避免微生物及其他有害因素的影响。
2.细胞工程能进行的六方面工作：无菌操作、培养、制作、清洗、消毒灭菌处理和储藏。
3.植物细胞工程实验室特殊的设置：光照条件的培养箱、试管苗需要温室和移植驯化室。
4.细胞工程实验室通用的仪器设备：超净工作台、二氧化碳培养箱、倒置显微镜、电热干燥箱、水纯化装置、低温装置、高压蒸汽消毒器。
5.实验室的生物安全分为p1，p2 ，p3 和p4四个生物安全等级，其中P4生物安全实验室等级最高。
第二章1.清洗的主要目的是清除培养器皿中的杂质和微生物等影响细胞生长的成分。
2.细胞培养过程中主要使用两类消毒方法:物理灭菌法法和化学消毒法。
物理法灭菌法：a.紫外线法适用于无菌室或超净工作台的台面等大面积消毒。
紫外线照射工作台面的距离不应超过1.5cm,照射时间以30min左右为宜。
（注意：紫外灯关闭5min后方可进入使用）b. 湿热消毒:适用于含有不耐热成分的培养基和试剂的消毒，为121.3℃，20min .（注意点：加足水、排尽气、气压降到0时才能打开盖）c.干热消毒法:适用于消毒玻璃仪器，160℃以上，并保持90~120min，以杀死细菌和芽孢 d.过滤除菌：是将液体或气体用微孔薄膜过滤,薄膜0.22~0.45um直径。
细胞工程第二章 细胞工程实验室组成及无菌操作技术
实验过程中，实验人员应按照无菌操作规程操作。 4、使用完毕，应擦净工作台面。
2、高压蒸气灭菌锅
用于培养基、蒸馏水和接种器械的灭菌消毒。
(1)高压蒸气灭菌锅工作原理： 在密闭的蒸锅内，0.1MPa的压力下，
主要设备：培养架（控温控光控湿）、摇床、培养箱、紫外光源 等。
二、基本设备及使用
1、接种设备：无菌超净工作台 用于培养材料的消毒及接种。使用前，
将超净工作台上面的排风和杀菌按钮开启， 灭菌15min后，关闭杀菌按钮，打开照明 按钮，即可在上面进行操作。
超净工作台
超净工作台使用注意事项
1、使用超净工作台前，应提前开机并开启紫外灭菌灯30分钟以上。 2、使用超净工作台时，关闭紫外灭菌灯，开启日光灯，并用
光 学 显 微 镜
倒置显微镜
分注器
血球计数器
磁力搅拌器
移液器
8、其它辅助设备
①培养基灌装机及洗瓶机
②空调机：用于接种 室和培养室温度的控 制。
③ 除湿机：使培 养室的湿度保持在
定的范围内。
⑤冰箱：用于在常温下易变 性或失效的试剂和母液的储 藏，细胞组织和试验材料的 冷冻保藏，以及某些材料的 预处理。
③高压灭菌前后的培养基，其pH值下降0.2-0.3单
位。因此，调PH值时，可适当调高0.1－0.3个单 位。
④接通电源前一定要加入足量的水。
3、相关仪器
电炉
推车
酒精灯
封口膜
接种器具
灭菌器
培养瓶
4、接种工具
酒精灯 接种针 镊子 解剖刀
5、培养设备
名词解释(基因工程)
名词解释1细胞工程：指以生物细胞或组织为研究对象，按照人们的意愿进行工程学操作，从而改变生物性状，以获得生物产品，为人类生产和生活服务的科学。
2去分化（脱分化）：在某些特定条件下，分化细胞的表型不稳定，基因活动模式发生可逆的变化，细胞脱离原状态回复到分生状态3再分化：脱分化细胞失去分化特征，但在某些特定条件诱导下，可再次开始新的分化发育进程，最终形成各种组织、器官或胚状体等。
4污染：在组织培养过程中，培养基和培养材料滋生杂菌，导致培养失败的现象。
5褐变：是指组织培养中，由于材料被切割而使多酚氧化酶活化将组织中的酚类物质氧化形成棕褐色的醌类物质，并向培养基中扩散，抑制培养物生长甚至导致其死亡的现象。
6玻璃化：也称超水化作用，是离体培养过程中试管苗发生形态、生理和代谢异常的现象。
7植物细胞培养：在离体条件下对植物单个细胞或小的细胞团进行培养并使其增殖的技术。
8看护培养：在培养中用一块活跃生长的愈伤组织来哺育单细胞，从而使其正常分裂、增殖的方法。
9植物原生质体：是指除去细胞壁后裸露的具有生命活力的原生质团。
10条件培养法：在进行花粉培养时，利用预先培养过花药的液体培养基，或加入失活的花药提取物的合成培养基进行花粉培养的方法。
11植物胚胎培养：是指在无菌条件下，对植物的胚及胚器官如子房、胚珠和胚乳进行离体培养的技术。
12种质：指亲代通过生殖细胞或体细胞直接传递给子代并决定固有生物性状的遗传物质。
13种质保存：指利用天然或人工创造的适宜环境，借以保存种质资源，使个体中所含有的遗传物质保持其遗传完整性，并且有强的生活力，能通过繁殖将其遗传特性传递下去。
14种质资源的离体保存：指对离体小植株、器官、组织、细胞或原生质体等材料，采用限制、延缓或停止其生长的处理措施使之保存，在需要时可重新恢复其生长，并再生植株的方法。
15同核体：由同一个生物个体的亲本细胞融合形成的含有同型细胞核的融合细胞。
16异核体：由不同种属或同一种属的不同个体的亲本细胞发生融合所形成的含有不同细胞核的融合细胞。
畜牧兽医实验室功能简介（合集五篇）
畜牧兽医实验室功能简介（合集五篇）第一篇：畜牧兽医实验室功能简介畜牧兽医系部分实验室简介家畜病理学实验室简介家畜病理学实验室是畜牧兽医系直属统一建立的实验室，2002年以来，根据专业与课程设置、学科建设等发展方向进行了改造建设。
实验室现设1个实验室，总面积为54m2，实验器材和设备总额约10万元人民币。
实验所用大体标本和病理组织切片都是学生实验自制。
实验室现有工作人员6人，其中专职教师兼主管1人、理论及实验教师4人、管理人员1人。
实验室工作人员名单：陶艳芳副教授、郑锦玲讲师、黄光红助讲、王荣琼助讲、施忠芬助讲、王昌梅中技工。
实验室现承担畜牧兽医系5个专业的家畜病理学和兽医基础（病理）2门实验课程，以及畜牧兽医系的动物防疫与检疫员和动物防疫治疗员的技能鉴定。
实验室注重培养学生的实验操作能力，提高和培养学生的独立工作、科学思维，以及观察问题、分析问题和解决问题的能力。
实验课采取启发式、讨论式教学方法调动学生的学习积极性，强化了实验基本理论和技能的训练，取得了显著的教学效果。
动物生物化学实验室简介动物生物化学实验室是畜牧兽医系于1996年建立的独立实验室。
该实验的主要设备有：高速离心机、分光光度计、电子天平、酸度计、层析系统、电子天平、稳压稳流电泳仪、恒温水浴锅、组织捣碎机、台式PH测试仪；设备价值约为65088元；实验室面积为75.6 m 2左右；管理指导教师有3 名（中级职称 2 人，管理人员 1 人）。
2006学年约接纳13960 人时完成实验，使用率达99% ；实验能同时容纳40 多名学生进行实验。
主要开设实验项目有：生物化学基本操作技能和常用仪器使用方法；血液生化样品的采集及组织匀浆的制备；牛乳中酪蛋白的提取与鉴定；蛋白质等电点的测定；双缩脲测定蛋白质含量；酶的特性—底物专一性；pH对唾液淀粉活性影响；维生素C的提取与含量测定；血清胆固醇的测定——磷硫铁法等。
动物生物化学实验室作用主要是巩固提高学生的理论知识，培养他们实验操作的基本技能，锻炼他们的独立思考能力与原始创新能力。
细胞培养基本技术(3)
◆ 光照：光强、 光质、光照时间
3
一、 动植物细胞工程实验室通用仪器设备
超净工作台
n超净工作台的工作原理是 利用鼓风机驱动空气遁过高 效滤器除去空气中的尘埃颗 粒，使空气得到净化。净化 空气徐徐通过工作台面，使 工作台内构成无菌环境。
4
冰箱
■ 普通冰箱
（4℃，－20 ℃ ）
■ 低温冰箱（－20 ℃ ） ■ 超低温冰箱（－80 ℃ ）
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一、玻璃器皿的清洗
WHY?
◆ 浸泡 新瓶使用前用自来水简单刷洗，后用稀盐酸浸泡过夜。
使用过的器皿应立即浸入水中，避免干涸难洗
◆ 刷洗 软毛刷沾洗涤剂洗涤 ◆ 浸酸 关键一环。时间不少于于小6 时，一般过夜。清洁液变
绿应重新配制。
◆ 冲洗 洗涤装置与手工
◆ 烘干、包装、高压（15磅20分钟）或干热（160度2小时）
生物安全四级(BSL—4)：处理特别危险的传染源
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Summary：细胞培养的基本条件
无菌条件 ：净化工作室，高效过滤器 ，生物安全柜， 超净工作台， 紫外灯 ，电热干燥箱，滤器， 高压灭菌器，抗生素
细胞生长条件 ：纯水蒸馏器， 纯水仪，培养板，培养瓶， CO2培养箱， 培养基，血清
细胞检测条件 ：倒置显微镜， 酶标仪 ，微孔板震荡器， 高速离心机， 移液器
塑料 制品
橡胶 制品
＋
培养 用液
＋
布类 棉类
＋
干热
＋ ＋
＋
过滤
消毒剂
电离 辐射
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重要概念
消毒与灭菌
1.消毒 2.灭菌 3.防腐
杀死物体上病原微生物的方法；并不一定能 杀死含芽胞的细菌或非病原微生物 杀死物体上所有微生物的方法。
细胞实验室简介
未来发展方向与前景
发展方向
随着生物技术的不断发展，细胞实验室将朝着自动化、智能化、个性化方向发展。同时，细胞治疗、 再生医学等领域的应用也将进一步拓展细胞实验室的研究范围和应用领域。
前景展望
细胞实验室在未来的发展中将发挥越来越重要的作用，为人类健康和医疗事业的发展提供有力支持。 同时，随着技术的不断进步和应用领域的拓展，细胞实验室将有望成为生物技术领域的重要发展方向 之一。
功能
细胞实验室的主要功能包括细胞培养 、细胞生物学研究、药物筛选、基因 编辑等，旨在探索细胞生长、发育、 代谢和疾病机制等方面的问题。
细胞实验室的历史与发展
历史
细胞实验室的建立可以追溯到20世纪初，随着显微镜技术和细胞培养技术的不 断发展，细胞实验室逐渐成为生物学和医学研究的重要领域。
发展
随着分子生物学、基因组学和生物信息学等新兴技术的引入，细胞实验室的研 究范围和深度不断拓展，为生命科学领域的发展提供了有力支持。
肿瘤细胞研究是细胞实验室中 的重要实践案例，涉及肿瘤发 生、发展和转移等多个方面。
实验室通过观察肿瘤细胞形态、 生长特性、基因表达和信号转 导等方面的变化，深入了解肿 瘤的生物学特征。
研究肿瘤细胞对药物的反应， 为药物研发和个性化治疗提供 实验依据。
案例三：基因编辑在细胞实验室的应用
基因编辑技术如CRISPR-Cas9 在细胞实验室中广泛应用于基因
04 细胞实验室的挑战与前景
技术挑战与解决方案
技术挑战
细胞培养技术需要高标准的无菌操作，以防止微生物污染。此外，细胞培养过程 中需要精确控制温度、湿度、气体浓度等环境因素，以确保细胞的正常生长和功 能。
解决方案
采用先进的细胞培养技术和设备，如细胞培养箱、显微镜、离心机等，以实现自 动化和精确控制。同时，加强操作人员的培训和规范操作流程，提高细胞培养的 成功率和稳定性。