油梨果肉DNA提取方法的比较
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
油梨果肉DNA提取方法的比较
葛宇;林兴娥;王甲水;臧小平;马蔚红
【摘要】In order to obtain high-quality DNA from the pulp of avocado, three DNA extraction methods, the modified SDS method, the modified CTAB method, and the commercial plant genomic DNA Kit were conducted to compare their effects of DNA extraction from the pulp of avocado. The results showed that all the three methods were available for DNA extraction from the pulp of avocado, but the DNAs extracted by using the modified SDS method and the modified CTAB method were much hig her in concentration (more than 600μg/mL), purity
(OD260nm/OD280nm were at about 1.8) and integrity, and could be used for molecular marker analysis in the future.%为了获取高质量的油梨果肉DNA,以油梨果肉为试材,比较改良SDS法、改良CTAB法和试剂盒法对油梨果肉DNA 的提取效果。
结果表明:上述3种方法均可从油梨果肉中提取DNA,但改良SDS 法与改良CTAB法所获得的DNA浓度都在600μg/mL以上,纯度
(OD260nm/OD280nm)均在1.8左右,纯度高且完整性较好,可用于未来分子标记分析。
【期刊名称】《热带农业科学》
【年(卷),期】2016(036)012
【总页数】4页(P33-36)
【关键词】油梨;果肉;DNA提取;改良SDS法;改良CTAB法
【作者】葛宇;林兴娥;王甲水;臧小平;马蔚红
【作者单位】中国热带农业科学院海口实验站海南海口 570102;中国热带农业科
学院海口实验站海南海口 570102;中国热带农业科学院海口实验站海南海口570102;中国热带农业科学院海口实验站海南海口 570102;中国热带农业科学院
海口实验站海南海口 570102
【正文语种】中文
【中图分类】S667.9
油梨(Persea americana Mill.)为樟科油梨属植物,又名鳄梨、牛油果,英文名为avocado。
油梨起源于中美洲、墨西哥热带湿润地区及海拔较高的山地森林或热
带高原,是著名的热带、亚热带果树,也是一种木本油料作物[1]。
油梨于1918
年被引种到中国台湾省,在海南、广东、广西、贵州、云南、台湾等地均有栽培[2-5]。
油梨果实形状一般为卵圆形、倒卵圆形、圆形及梨形,重量通常为50~2 000 g[6]。
油梨果肉是由果皮发育而成,富含脂肪酸、膳食纤维、蛋白质、多酚、黄酮、叶酸等多种营养物质及活性成分,其中油梨脂肪酸含量根据品种及种植条件的差异可达到其果实重量的15%~30%[7-8]。
但对于DNA提取,多酚、黄酮、
脂肪酸等物质会使DNA氧化成褐色凝胶状物或与DNA结合成黏稠胶状物,阻碍其作为PCR模板进行分析[9-11]。
这就需要对传统的DNA提取方法加以改进,
以提取出高质量的DNA。
周海兰等[12]以油梨叶片为试材,对比了传统CTAB法、改良CTAB法和试剂盒法3种方法的提取效果。
结果显示,通过改良CTAB法所
提取的DNA的浓度和纯度要远高于通过传统CTAB法所提取的DNA。
但周海兰
等[12]仅对传统的CTAB法进行了改良,而未对另一种广泛应用的SDS法进行改
良并分析其效果。
此外,油梨果肉中所含有的影响DNA提取的物质含量,如脂肪
酸、多酚、黄酮等含量,要远高于油梨叶片[6]。
所以提取油梨果肉的难度要远高
于油梨叶片。
提取到高质量的DNA或RNA是许多分子生物学实验(PCR扩增、基因克隆、基因表达等)的初始第一步骤,而油梨作为热带水果,果肉是油梨研究的
主要部位,对油梨果肉组织进行分子生物学实验将有助于深入研究油梨果肉中营养物质及活性成分的生成、代谢等[1,13]。
前人已经发表了有关油梨果肉RNA提取
的优化方案,但对于相对较容易的油梨果肉DNA提取优化方案未见相关报道[13]。
本实验通过比较改良SDS法、改良CTAB法和试剂盒法对油梨果肉DNA的提取
效果,以期获得高效的油梨果肉DNA提取方法,为后续的分子生物学实验提供参考。
1.1 材料
本试验所用优良油梨品系‘RN-5’果实样品于2016年8月在海南省儋州市中国热带农业科学院果树基地采集。
每个DNA提取方法重复3次。
1.2 方法
1.2.1 改良SDS法和改良CTAB法
本实验采用的改良SDS法和改良CTAB法参照朱威龙等[14]的SDS法和CTAB法,改良之处如下:(1)在样品研磨步骤中加入0.03 g聚乙烯吡咯烷酮;(2)在SDS提
取缓冲液或CTAB提取缓冲液中加入2%(m/V)的聚乙烯吡咯烷酮;(3)在温水水浴前,加入20μLβ-巯基乙醇,并于SDS提取缓冲液或CTAB提取缓冲液混匀;(4)
水浴冷却后加入的提取液中加入酚,并且酚与氯仿和异戊醇的体积比为25∶24∶1;
(5)延长异丙醇沉淀时间到过夜。
1.2.2 试剂盒法
称取幼嫩叶片0.2 g,加入液氮充分研磨,使用天根生化科技(北京)有限公司生产
的DNA secure plant Kit(DP320)新型植物基因组DNA提取试剂盒(离心柱型)进
行提取,具体操作见产品说明书。
1.2.3 DNA质量检测
取DNA样品20μL,用TE缓冲液稀释至10倍,用紫外分光光度计测定其
OD260nm和OD280nm。
DNA浓度=OD260nm×10(稀释倍数)×50(μg/mL);DNA纯度=OD260nm/OD280nm。
取DNA样品10μL,加入5μL溴酚蓝缓冲液,用5%琼脂糖凝胶电泳,15min后拍照,分析DNA的质量和完整性。
1.2.4 EST-SSR分子标记验证提取效果
以3种提取方法所获得的DNA为模板,采用油梨EST-SSR引物SHRSPa003进
行PCR扩增,以检测3种DNA提取方法的效果。
油梨EST-SSR引物
SHRSPa003序列信息来自Bor rone等[15]的文献,油梨EST-SSR引物PCR扩
增反应体系参照Ge等[16]的方法。
扩增反应结束后取10μL扩增产物进行电泳、
染色、拍照分析。
2.1 不同提取方法所得的DNA浓度和纯度
由表1可知,改良SDS法与改良CTAB法提取出的DNA浓度均超过600μg/mL,浓度较高。
2种方法纯度也均超过1.8,表明DNA样品中的蛋白质、酚类和脂肪
酸去除较为充分,杂质较少,其DNA质量满足后续实验的要求。
试剂盒法提取的DNA浓度仅为其他2种方法的十分之一,DNA纯度也较比其他2种方法低近1倍,其DNA质量很难满足后续实验的要求。
2.2 DNA琼脂糖凝胶电泳
由图1可知,改良SDS法、改良CTAB法和试剂盒法3种方法均能从油梨果肉中提取出DNA,其大小均在2.0 kb以上。
改良SDS法与改良CTAB法提取的DNA 量明显高于试剂盒法,其电泳条带也明显比试剂盒法的亮,提取效果的稳定性好。
但改良SDS法提取DNA的3次重复所得的效果并不相同,有些DNA条带较亮,有些较暗,重复性较比改良CTAB法较差。
2.3 EST-SSR标记PCR扩增验证
由图2可知,改良SDS法与改良CTAB法提取的DNA模板均可扩增出比较清晰
的EST-SSR标记条带,且稳定性好;试剂盒法提取的DNA未成功扩增出清晰的EST-SSR标记条带,这可能是含有较多的蛋白质、糖、色素等反应抑制物所导致的。
综上所述,改良SDS法与改良CTAB法提取的油梨果肉DNA纯度高,杂质
去除充分,可满足EST-SSR等分子标记分析的需要。
3.1 讨论
利用紫外分光光度法测定DNA纯度时,如果1.9>OD260nm/OD280nm>1.8时,表明DNA样品受杂质污染少,质量高;如果OD260nm/OD280nm>1.9时,表明DNA样品存在少量RNA;如果OD260nm/OD280nm<1.8时,表明DNA 样品存在蛋白质等杂质[17]。
由于油梨果肉含有大量脂肪酸,利用试剂盒法提取过程中脂肪酸等物质很容易形成粘稠的胶状物质,难于溶解堵塞柱子造成所获得的DNA浓度低,质量不高。
与寒温带水果相比,热带水果叶片、果实等各部位普遍含有更多的多糖、多酚、蛋白质等物质,其中果实内各种物质又比其它部位更多,这些物质对DNA的提取影响较大[11,18-19]。
前人对热带水果DNA的提取,把聚乙烯吡咯烷酮和β-巯基乙醇加入到传统的SDS法和CTAB法中,大幅提高了DNA的浓度与质量,取得了
较好的结果
[10-12,20-23]。
本实验中的改良SDS法和改良CTAB法,在前处理期加入了聚乙烯吡咯烷酮,其可有效防止多酚氧化,并可与酚类、单宁酸、脂肪酸等共沉淀用以去除杂质。
在裂解液中加入了聚乙烯吡咯烷酮和β-巯基乙醇,可进一步抑制多酚
氧化,并去除杂质。
此外,延长异丙醇沉淀时间到过夜。
前人研究结果表明,异丙醇沉淀时间越长,DNA浓度越高[24]。
本实验改良CTAB法与周海兰等[12]的改
良CTAB法略有区别,本实验额外增加了2个步骤,即水浴冷却后加入的提取液
中加入了酚和延长异丙醇沉淀时间到过夜。
这2个步骤前一个可更有效地抽提DNA,而第2个步骤可提高DNA浓度。
虽然油梨果肉的杂质或抑制物质比叶片多,但本实验改良CTAB法增加的2个步骤使得提取的DNA纯度(1.81)与周海兰等[12]的通过改良CTAB法提取的DNA纯度(1.7~2.0)大致相同。
3.2 结论
本实验采取改良SDS法、改良CTAB法和试剂盒法3种DNA提取方案从油梨果实中提取DNA,通过比较DNA的浓度和纯度,进一步通过琼脂糖凝胶电泳检测DNA浓度和纯度,确定了提取DNA质量较高的方法为改良SDS法和改良CTAB 法。
【相关文献】
[1]Ki laru A,Cao X,Dabbs PB,et al.Oi l biosynthesis in a basal angiosperm:transcriptome analysis of Persea Americana mesocarp[J].BMC Plant Biology, 2015,15(1):203.
[2]李家兴.油梨在贵州亚热带地区的适应性及发展前景分析[J].贵州农业科学,2010,38(2):165-167.
[3]何国祥.广西油梨科研生产的现状及发展前景[J].广西职业技术学院学报,2012,5(1):1-6.
[4]张良,张德生,刘康德.海南省油梨产业发展的环境分析与对策[J].中国农业资源与区划,2015,36(4):78-84.
[5]Papademet riou M K.Avocado production in Asia and the Paci fic[M].Bangkok:FAO Publ isher, 2000.
[6]Schaf fer B,Wolstenholme BN,Whi ley AW.The avocado:botany,production and
uses(2nd Edition) [M].Croydon:CPI Group(UK)Ltd,2012.
[7]Meyer MD,Ter ry L A.Development of a rapid method for the sequential ext raction and subsequent quanti f ication of fatty acids and sugars f rom avocado mesocarp
tissue[J].Journal of Agricul tural Food Chemist ry,2008,56(16):7 439-7 445.
[8]Dreher M L,Davenpor t A J.Hass avocado composition and potential heal th ef
fects[J].Critical Reviews in Food Science and Nut rition,2013,53(7): 738-750.
[9]段婧婧,肖琳,陈军.用于转基因检测的水果果肉总DNA提取法[J].食品科学,2009,30(3):231-234.
[10]林兴娥,葛宇,周兆禧,等.一种高质量的红毛丹基因组DNA提取方法[J].热带农业科学,
2015,35 (8):16-20.
[11]齐玲倩,刘秀,丁梦璇,等.水果果肉中总DNA提取方法的比较研究[J].食品研究与开发,2016,37 (5):55-58.
[12]周海兰,李绍鹏,李卫亮,等.油梨基因组DNA提取、SSR-PCR反应体系优化及引物筛选[J].
生物技术通报,2016,32(4):143-150.
[13]Djami-Tchatchou A T,St raker C J.The isolation of high qual ity RNA f rom the f ruit of avocado(Pesea americana Mil l.)[J].South Af rican Journal of Botany,2012,78(1):44-46. [14]朱威龙,闫硕,石冀哲,等.棉花不同组织DNA的不同提取方法比较[J].安徽农业科学,2015,43 (2):16-18.
[15]Borrone J W,Brown J S,Tondo C L,et al.An EST-SSR-based l inkage map for Persea Americana Mi l l.(avocado)[J].Tree Genetics&Genomes, 2009,5(3):553-560.
[16]Ge Y,Ramchiary N,Wang T,et al.Development and l inkage mapping of unigene-derived microsatell ite markers in Brassica rapa L.[J].Breeding Science,2011,61(2):160-167.
[17]贝盏临,张欣,杜进,等.不同方法提取牛心朴子基因组DNA效果的比较研究[J].北方园艺,2011,18(1):135-137.
[18]李武,李艳君,杨瑞丽.热带水果多酚提取物的抗氧化和抗增殖活性研究[J].现代食品科技,2013,29(10):2 383-2 387.
[19]Chen GL,Chen SG,Zhao YY,et al.Total phenolic contents of 33 f ruits and their antioxidant capacitiesbefore and af ter in vitro digestion[J].Industrial Crops and Products,2014,57(1): 150-157.
[20]余志雄,欧高政,陈清西,等.火龙果总DNA提取方法比较研究[J].中国农学通报,2010,
26(4):300-303.
[21]赵志常,陈业渊,高爱平,等.改良CTAB法提取番石榴总DNA的初步研究[J].北方园艺,2013,9(1):123-125.
[22]林方养,杨耀东,万婕,等.棕榈科植物DNA的提取及SRAP引物筛选[J].江西农业学报,2014,26 (7):115-117.
[23]罗意,范海阔,黄绵佳,等.3种椰子基因组DNA提取方法的比较[J].中国农学通报,2013,29(27):154-158.
[24]Ramos-Gómez S,Busto MD,Perez-Mateos M,et al. Development of a method to recovery and ampli fication DNA by real-time PCR f rom commercial vegetable oi
ls[J].Food Chemistry,2014,158(2): 374-383.。