实验样品采集运输保存方法
实验样品采集运输保存方法
实验样品采集运输保存方法1. RNA实验样品采集、保存方法1.1 使用范围及样品量类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service样本量：样本样本量动物组织样品50-100mg哺乳动物培养细胞样品（悬浮细胞）1*107个哺乳动物培养细胞样品（贴壁细胞）15cm2植物组织样品100mg-1g，根据植物不同部位的组织决定组织需要量，尽可能多些，但不必超过1g1.2 动物组织样品1.2.1 新鲜组织样品A. 使用RNAlater试剂取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在0.5cm一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。
4度孵育过夜，此时样品管需要横臵以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。
B. 使用Trizol试剂取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。
匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。
1.2.2 冻存组织生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。
细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全-70保存1.3 贴壁细胞从培养容器中吸出并弃去培养液培养瓶直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。
反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。
-70度保存。
1.4 植物组织样品准确取得所需新鲜组织后，如有必要可用PBS清洗干净，将所用组织切碎，装入冻存管中或者用锡箔包裹好。
现场样品采集、保存与运输PPT课件( 28页)
（6）脑脊液
无菌条件下由腰椎穿刺抽取3-5ml，放于无菌试管。 注意：用于细菌培养时标本采集后应立即送检，用于病毒培养时在4-
8C最多可维持48h，否则在-70C保存。
2、用于病原体抗体检测的标本（血液和脑脊液）
血清标本：将10ml静脉血移入无抗凝剂的无菌螺口管，室温静 置30min使之凝集，然后置4-8C至少1-2h，离心收集血清；脑 脊液的采集方法同前所述，一般于出现神经症状时采集。
悲心，饶益众生为他人。
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14、梦想总是跑在我的前面。努力追寻它们，为了那一瞬间的同步，这就是动人的生命奇迹。
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15、懒惰不会让你一下子跌倒，但会在不知不觉中减少你的收获;勤奋也不会让你一夜成功，但会在不知不觉中积累你的成果。人生需要挑战，更需要坚持和勤奋!
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16、人生在世：可以缺钱，但不能缺德;可以失言，但不能失信;可以倒下，但不能跪下;可以求名，但不能盗名;可以低落，但不能堕落;可以放松，但不能放纵;可以虚荣，
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11、人生的某些障碍，你是逃不掉的。与其费尽周折绕过去，不如勇敢地攀登，或许这会铸就你人生的高点。
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12、有些压力总是得自己扛过去，说出来就成了充满负能量的抱怨。寻求安慰也无济于事，还徒增了别人的烦恼。
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13、认识到我们的所见所闻都是假象，认识到此生都是虚幻，我们才能真正认识到佛法的真相。钱多了会压死你，你承受得了吗?带，带不走，放，放不下。时时刻刻发
3、水样采集（饮用水）
类型：水源水、出厂水和管网水的采集 要求：同一水源、同一时间采集几类检测指
标水样时，应分类采集、分类保存 注意：采集测定溶解氧、生化需氧量和有机
物的水样时，应将水样注满容器，上 部不留空间，并采用水封
关于血培养标本运输和保存中的注意事项
关于血培养标本运输和保存中的注意事项
血培养标本是常见的临床检查物品，正确的保存和运输对于检验
结果至关重要。
以下是关于血培养标本运输和保存的注意事项：
1. 标本应该尽快送达检验实验室，并避免长时间存放。
2. 运输途中应对样品容器进行防护，以避免破损或渗漏。
3. 运输途中应避免样品温度过高或过低。
一般情况下，应该将样品存
放在室温下运输，避免日晒或受热。
4. 标本保存前应尽早进行采集，并注意采集方法、时间和容器的卫生
清洁。
5. 标本在保存前应先进行适当的标识，以避免混淆。
6. 标本保存期应当根据所需检验项目而定，一般来说，常规血培养保
存时间为7天，而病原菌检测则需要在24小时内完成。
7. 标本保存应在符合相关规定的条件下进行，如避光、密封、冷藏等。
总之，对于血培养样品的运输和保存，我们需要注意适当的采集
方法、标识、保存时间和条件，以保证检验结果的准确和可靠。
样品采集保存和运输
基因芯片样品的采集、保存和运输基因芯片实验、microRNA芯片实验、PCR芯片实验和实时定量PCR实验的样品准备一、动物组织样品保存与运输（每张芯片需50-100mg组织）1、新鲜组织样品的保存与运输A、使用RNA later试剂→取新鲜组织（注：生物体死亡后尽快在10分钟内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在0.5 cm以下（长宽不限），然后放入装有5倍体积RNA later的离心管（或冻存管）中。
→4℃孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNA later，然后转入- 20℃中保存。
样品在- 20℃不会冻结，但是溶液中可能有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。
冻存样品也可以反复冻溶，其RNA含量和完整性不受影响。
→RNAlater处理的标本可用常规冰袋4℃低温运输（无需使用干冰- 70℃运输）。
B、使用Trizol试剂Trizol试剂可抑制RNA酶活性，破坏细胞膜结构以裂解细胞释放出RNA。
→取新鲜组织（注：生物体死亡后1分钟内取材料并保存好），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50~100 mg组织加1 ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，操作最好在冰上进行。
→匀浆的裂解液4℃短期保存（1个月），-20度或- 70℃长期保存。
干冰运输，短期（5天以内）冷藏（4℃）运输亦可。
2、冻存组织的保存与运输生物体死亡后尽快（最好在10分钟内）切取新鲜组织，以PBS或生理盐水清洗干净切为小块，立刻放入液氮中冷冻2-3小时后可转入-70℃冰箱保存或着一直保存在液氮中。
冻存组织可放入干冰中直接运输，或者以Trizol 4℃下匀浆：冻存的组织块以液氮研磨后加Trizol或直接加Trizol以电动匀浆器匀浆，匀浆的裂解液干冰运输或短期（5天以内）冷藏（4℃）运输。
二、哺乳动物培养细胞样品采集、保存与运输——使用Trizol试剂（不建议使用RNAlater）1、悬浮细胞→悬浮细胞培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。
样品管理规范
样品管理规范一、引言样品管理是保证科学研究和实验室工作质量的重要环节。
本文旨在制定一套样品管理规范，确保样品的采集、存储、运输和处理等环节符合科学规范和质量要求，以保证实验结果的准确性和可靠性。
二、样品采集1. 样品采集前，必须对采样现场进行充分调查和评估，确保采样点的选择准确合理。
2. 采集样品前，必须佩戴适当的个人防护装备，如手套、口罩等。
3. 采样器具必须事先消毒，并保持干净。
4. 样品采集必须按照规定的采样方法和采样量进行，避免污染和损坏样品。
5. 采集样品后，必须及时标识和记录样品的相关信息，如采样时间、地点、采样人员等。
三、样品存储1. 样品存储前，必须对样品进行分类和编号，确保样品的追踪和管理。
2. 样品存储容器必须干净、密封，能够保持样品的原样性。
3. 样品存储温度必须符合样品特性和要求，避免样品的变质和降解。
4. 存储样品的库房必须保持干燥、阴凉、通风，避免阳光直射和湿度过高。
5. 存储样品必须定期检查和维护，确保样品的完整性和可用性。
四、样品运输1. 样品运输前，必须对样品进行适当的包装和固定，避免样品的破损和泄漏。
2. 样品运输过程中，必须避免样品与其他物质的接触和污染。
3. 样品运输车辆必须符合运输要求，保持车内的温度和湿度稳定。
4. 样品运输过程中，必须及时记录样品的运输信息，如起始地、目的地、运输时间等。
五、样品处理1. 样品处理前，必须按照实验要求和方法进行样品的预处理，如样品的分离、提取等。
2. 样品处理过程中，必须遵守实验室的操作规程和安全要求，确保实验人员的安全和实验结果的准确性。
3. 样品处理后，必须及时记录样品的处理方法和结果，以备后续分析和评估。
六、样品处置1. 样品处置前，必须对样品的危险性和环境影响进行评估，确保合理、安全地处理样品。
2. 样品处置必须符合相关法律法规和环境保护要求，避免对环境和人体造成损害。
3. 样品处置过程中，必须记录样品的处置方法和结果，以备查证和追溯。
医院实验室强传染性样本的采集、运输、处理与保存制度
7强传染性样本的采集、运输、处理与保存制度7.1目的为有效预防医务人员在工作中发生职业暴露感染，防止实验室污染、交叉污染和周围环境污染，特制定本指导原则。
7.2定义强传染性样本是指含有一类、二类高致病菌的微生物标本，如：含SARS病毒、霍乱弧菌、艾滋病毒、炭疽芽孢杆菌、结核杆菌等具有强致病性病原微生物的样本。
7.3适用范围本管理细则适用于检验科各专业组。
7.4具体制度7.4.1标本采集7.4.1.1为避免交叉污染，检验人员原则上不直接进入病区采集标本，如必须进入时，应穿隔离衣和防护服，戴口罩（12-18层或N95口罩）、双层帽、护目镜、面罩、戴三层手套、靴子。
7.4.1.2详细登记有关病例的姓名、性别、年龄、家庭住址、联系电话等基本信息以及标本采集日期。
7.4.1.3采集的标本放入带盖的容器内，盖紧盖子装入标本运送箱，加注特别标识，密封专人送检。
采集标本时不能污染容器外部。
7.4.2标本运输将密封包装好的，放在专门运输用双层标本箱里，加盖，由两人运送。
运送过程严防破碎和外溢。
送入检验科由双人签收。
7.4.3标本前处理标本接种、血清分离等在生物安全柜内进行。
使用专用的离心机，离心时使用密闭的离心机转头或密闭样品杯，离心停止10-30分钟后取出。
7.4.4标本检测标本应在专用区由专人进行检测，以便标本、仪器、环境集中消毒和处理。
尽量避免标本分散到多个实验室。
7.4.5标本检测后处理废弃标本放入带盖套有黄色塑料口袋的专用污物桶内，集中高压灭菌后送到特殊垃圾处进行无害化处理。
所有检测标本后废液都用2500mg/L有效氯消毒液浸泡4小时以上，或直接高压灭菌，再排入医院污水站消毒处理。
7.4.6标本的保存7.4.6.1疑似强致病菌标本保存，应专室专柜，两人管理，每天查看并记录。
明确有高致病菌标本，P2实验室不得保存。
7.4.6.2疑似HIV阳性标本送到东阳市疾控中心确认，先通知保健科，标本应三层包装，专人送到东阳市疾控中心，标本双人交接并签字。
样品采样的保存方法
样品采样的保存方法引言在科学研究、实验室工作等领域中，样品采样是一个非常重要的环节。
正确的样品采样及其保存方法可以确保样品的完整性和可靠性，从而保证实验结果的准确性。
本文将介绍一些常用的样品采样的保存方法，并说明其重要性和操作注意事项。
样品采样的重要性样品采样是一个关键的环节，对于后续实验的结果具有直接影响。
正确的样品采样可以尽可能减少误差，保证实验数据的可靠性和真实性。
样品采样的不当可能导致样品污染、氧化、变质等问题，影响实验结果的准确性。
因此，科研工作者在进行样品采样时需要遵循一定的规范和方法。
样品采样的保存方法1. 现场采样现场采样是指在样品来源地点进行采样的方法。
具体操作步骤如下：- 准备采样设备：根据不同的样品类型和要求，选择合适的采样容器（如玻璃瓶、塑料袋等）、采样工具、标签等。
- 现场处理：根据采样目的和样品特性，进行现场处理。
例如，对于水样品，可以在采样前用滤膜过滤或添加适量的抑制剂。
- 采样过程：进行样品采集，并严格控制样品的接触和受到外界污染的可能性。
避免样品接触到空气、降落灰尘等污染物。
- 样品封存：将采样容器密封，并在标签上清晰地注明样品的采样时间、地点、采样人员等信息。
2. 传统保存方法传统保存方法主要适用于一些较为稳定的样品，如不易变质的固体样品。
具体操作如下：- 清洁容器：使用干净、无残留物的容器进行样品储存。
对于液体样品，可以选择玻璃瓶或塑料瓶；对于固体样品，可以选择密封塑料袋或玻璃瓶。
- 干燥保存：将样品保存在阴凉、干燥的环境中，避免暴露在阳光直射下。
对于一些易吸湿的样品，可以在容器中放置干燥剂。
- 标签记录：每个样品容器都需要贴上清晰的标签，标明样品名称、采样时间、保存人员等信息。
3. 低温保存方法低温保存方法适用于一些需要冷藏或冷冻的样品，如食品、血液等。
具体操作如下：- 冷藏保存：将样品保存在2-8摄氏度的冰箱中。
保持冷藏设备的干净和温度稳定。
- 冰冻保存：对于需要长时间保存或需要快速冷冻的样品，可以使用-20摄氏度或更低的冰箱或冰柜进行冷冻保存。
早期诊断样本的采集运输保存
早期诊断样本的采集运输保存
背景
早期诊断是许多疾病治疗成功的关键，相较于晚期诊断，早期诊断通常能提高
生存率和治疗效果，减轻病人的负担。
现代医学在早期诊断方面做出了许多突破，其中一个关键环节就是样本的采集、运输和保存。
样本的采集
样本的采集一般是由专业的医护人员进行的，样本种类较多，常见的包括血液、组织、尿液、粪便等。
在采集样本时，要做好采集部位的清洁和消毒，避免污染和交叉感染。
另外，不同的样本采集方法也有些许不同。
比如，血液样本通常通过静脉采集，组织样本则需要进行手术切取。
样本的运输
样本采集后，需要进行运输以便进行检测。
样本的运输需要保证其稳定性和准
确性，避免样本在运输过程中出现问题导致检测结果失准。
目前医院一般都有专门的样本运输车，同时也会有规范的运输流程和标识系统。
在运输过程中，还需要注意样本的防护，避免在运输过程中被污染或者破损。
样本的保存
样本的保存也是非常重要的一环。
不同的样本需要不同的保存方式，如干血片
可以通过防潮、防曝光等方式保存；组织样本可以通过固定和包埋等方式进行保存。
在样本保存过程中，要注意存放温度和采用合适的保存方法，避免样本质量变化或者损坏。
在早期诊断中，样本的采集、运输和保存环节非常关键，一旦出现问题就可能
会导致检测结果失准。
因此，医护人员需要严格按照规范进行操作，保证样本的质量和整个检测过程的准确性。
同时，医院和实验室也需要提供合适的设施和操作规范，保证样本的安全性和可靠性。
样品采集运输保存的管理
病原微生物标本采集中的要求
7、选择合适的采样液：根据检测目的和项目 利于病原或抗体稳定，采样对象易于接 受 、成本低等，但要防止采样液过多。 8、采样人员经过必要的专业培训，对专业熟 悉。 9、样本标识明显、来源明确，信息齐全，并 附送检单，两者标识一致。十分重要！
病原微生物标本采集中的要求
（二）、细菌性疾病的样本采集原则 基本与病毒性疾病一致或相同。但两者又有所不同。表现在： 1、病原学标本：细菌样本怕冷怕热 病毒怕热不怕冷 2、采样液：细菌保护液 病毒细胞培养液，生理盐水等 3、细菌分离样本要求在使用抗生素之前采集。否则这种标本在分离培 养时要加药物拮抗剂，例如使用青霉素的要加青霉素酶，磺胺药的 加对氨苯甲酸 。 4、病毒比细菌更容易失活，保存条件要求更高。 5、病毒样本中组织标本分布相对多一些。而细菌在体液中 分布相对多一些？
病原微生物标本采集中的要求
5、要做好采样器具及剩余动物组织或样本的消毒 等无害化处理，以及对工作场所的消毒灭菌工作。 6、相关人员应尽可能接种相关的疫苗，进行免疫 保护。 7、对采样及相关人员要加强健康监护，一旦出现 身体不适或发热等情况时，要及时就诊和治疗。 8、一旦发生意外事故或暴露，要及时采取相应措 施，并立即向负责人报告。
病原微生物标本采集中的要求
五）、样本采集的安全要求
样本采集过程中，相关人员必须采取相应的个人安 全防护措施： 1、采样人员熟悉采样工作，并能胜任。 2、采样人员要根据采集样本的可能危险度，进行个人防 护，特别是采集疑似高致病性病原微生物样本时，要做好 安全防护工作，按要求穿戴防护用品。 3、采集样本时，尽量避免使用尖锐、锋利、易碎、牢固 不够的器具 4、在采集野外动物组织样本时，要注意采取防虫媒顶咬 措施，如穿高帮胶靴等。
样品采集、运送和保存
二、样品的采集和处理
艾滋病检测最常用的样品：血液，包括血清、
血浆和全血。
唾液或尿液有时也可作为测试样品。
1. 血清样品采集：
用一次性注射器（或真空采血管） 抽出一定量静脉血，一般为5mL，放入 一次性塑料试管，室温下自然放置1-2 小时，待血液凝固和血块收缩后再用 3000rpm离心15分钟，吸出血清备用。
首选EDTA。 肝素是PCR反应的一个潜在的抑制剂，会使核 酸检测出现假阴性结果。且HIV-RNA降解的速 率显著高于EDTA和枸橼酸钠处理的血浆 。 采集样品应避免微生物和核酸污染。
病毒载量测定对样品的要求
血清和血浆的测定结果具有高度的相关性。 血清的检测结果大约是血浆的50%（ 3080% ）。因为部分HIV病毒颗粒被包裹在纤 维蛋白网络中。 首选血浆标本，血清标本也可。但每位病人 每次检测使用的标本类型应始终保持一致。
样品管应为螺旋口的塑料管（1.5ml），检 查有无破损，将螺旋盖旋紧，防止样品渗漏。 血清样品量至少应大于600μ l 。 禁止使用扳盖式样品管。 建议第一层:螺旋口的塑料管（1.5ml） 第二层：血清盒。5份或5份以下可以使 用一次性乳胶手套（每个手指放一个） 第三层：冰瓶（内置冰块） 禁止第二层使用封口塑料袋
普遍性防护原则（WHO推荐）
2.对所有器具严格消毒 为保证消毒效果，器具必须用热水和清洁剂洗干净 后再消毒，所有符合消毒规范的消毒程序都足以杀 灭HIV、乙型肝炎病毒和丙型肝炎病毒。 常用的灭菌方法足以使HIV灭活。常用的两种灭菌 方法是煮沸和化学灭菌。煮沸是有效的灭菌方法， 已清洗过的器具应煮沸20分钟。 医务人员的手常常带有病原微生物，这也是造成病 原体在病人中传播和主要原因之一。医务人员手上 沾着的体液，可以很容易地用肥皂和水清除干净。
1、血液样本的采集、运输、处理、保存
sop 版本号：第五版标准操作规程（SOP）编号：DZJY/ZY450-01题目：血液样本的采集、编号、运输、处理、保存版本：第五版作者：曲文才日期：2010/05/20页数：３修订历史：联系人：曲文才SOP 1 版本号：第五版sop 版本号：第五版一、目的确保样品的采集、运输、处置、保存得到有效的管理, 保证样品的良好、完整、不被污染、且不污染环境, 样品在检测前保存完好、完整, 编号清晰。
保证分析数据、血样的准确性和具有可追溯性。
二、范围适用于HIV实验室样品的采集、运输、处置、保存。
三、责任操作人员严格按要求执行。
四、定义无五、背景本SOP 是为配合HIV实验室检测，现场样品从采集到检测前的工作而制定的, 以确保检测样品良好、完整、不被污染、且不污染环境。
六、程序1、采集(1) 所需材料: 乳胶手套, 工作服, 帽子, 口罩, 注射器, 止血带, 医用酒精棉球, 无菌棉签, 医用酒精, 碘伏, 采血枕, 一次性纸垫, 试管及试管架。
(2) 采血方法:●采血员洗手, 戴手套, 帽子, 口罩。
●70% 酒精清洁采血工作台面, 铺上一次性纸垫。
●在采血枕上铺上一次性纸垫。
●让调查对象坐在凳子上, 露出一只胳膊直至上臂, 袖口不可过紧。
●将胳膊放在采血枕上, 掌心向上, 用止血带在上臂扎紧, 肘部应低于心脏水平线。
●在肘前区寻找鼓起的静脉，并且该静脉与周围组织固定良好，触摸该静脉，确认是静脉。
●用碘伏成同心圆状向外消毒, 不得用手接触己消毒部位。
●用酒精成同心圆状向外消毒。
●待酒精彻底干燥后, 让调查对象用力握拳。
●沿血流方向, 以与前臂成150°将针头插入静脉内。
●血液流入采血管, 松开止血带, 让调查对象慢慢松开拳头, 待血液到达采血量要求后, 将采血针头拔出的同时用无菌棉球按住采血伤口。
●采血管编号后直立、按顺序插入试管架内。
●嘱咐调查对象按住棉球5 分钟以上, 抬起胳膊使之高于心脏水平; 将针头弃入金属制容器桶, 一次性纸垫等放入垃圾桶。
如何做好实验室检测样品采集保存与运输
如何做好实验室检测样品采集保存与运输文│金彩虹（山东省龙口市畜牧兽医站）张碧雪（山东省龙口市新嘉街道畜牧兽医站）曲文（山东省龙口市石良镇畜牧兽医站）在动物疫病防控工作中，疫病监测起着非常重要的作用。
真实可靠的实验室检测数据为动物疫病的预防、诊断、治疗等工作提供了科学依据。
笔者认为，在实验室检测工作中，要想保证检测数据真实有效，首先要确保检测样品的可靠性，因此样品的采集、保存与运输至关重要。
一、样品的采集1.制定合理的采样方案。
采样前，要根据检测要求，制定合理的采样方案，明确采样目的、采样方法、采集对象、采集场所、使用器材、采集份数、数量以及采样人员等。
2.采样技术。
采样人员事先要经过严格培训，熟练掌握采样技术，避免因采样技术不熟练，导致被采样动物遭受过大的应激反应或伤害，甚至死亡。
例如采集幼鸡心脏血时，如果采样人员不熟练采样技术，就有可能造成因扎针位置、深浅度不规范，导致幼鸡内出血甚至死亡。
因此，采样前一定要熟练掌握操作技术。
3.采样原则。
在进行流行病学调查、监督检验工作中，一般采取随机抽样的原则对群体进行评价，根据抗体水平的高低和整齐度，评价疫苗的免疫效果和群体抗感染能力。
在疫病诊断过程中，需要选择有代表性的病死动物的新鲜胴体进行剖检，采取病灶附近的组织作为检验样品。
4.无菌采集。
采集的样品应保证无外源性污染，如在采血前，对进针局部进行酒精棉球擦拭消毒，使用灭菌针头和注射器采样。
采集环境样品和棉拭子时，使用的棉棒要提前进行灭菌，采集后将样品立即放入加盖离心管或密封袋内密封保存。
5.不同样品的采集要求不同。
在采集动物血清样品时，采完血首先要静置，待其完全凝固后再移动，如果采血后立即运输，会极易发生溶血或者呈现胶胨状，影响检测结果；采集含抗凝剂的样品后，应立即晃动采集管，使抗凝剂和样品充分混合，以免血液凝集；采集动物棉拭子时，要确保棉棒蘸取足够多的分泌物或排泄物等，否则视为无效采样；在采取病死动物的组织样品时，要选择刚死亡的新鲜动物胴体，最好不要超过死亡后6小时。
分析样品运输和保存方法及评价采样效率
采样效率评价方法
❖ 相对比较法 配制一个恒定的但不要求知道待测污染物准确浓度的气体样品， 用2 ~ 3个采样管串联起来采集所配制的样品。采样结束后，分
别测定各采样管中污染物的浓度，其采样效率K 为：
K
c1
100 %
c1 c2 c3
式中：c1、c2 、c3 —— 分别为第一、第二和第三个采样管中污
0.0005
查表， t0.05，4=2.776。因t< t0.05，4, 故平均值与标 准值之间无显著性差异,测定不存在系统误差。
质量控制
• ② 两组平均值间显著性差异检验 对同一试样，不同的人或采用不同的方法或采用不同的仪器分析时，所得的 均值一般不会相同，两组平均值间是否存在显著性差异可通过如下方法进行 判断。
• 4、用类似毛细管或限流的临界孔稳流器来稳定和测量采样的 流量。
• 根据理想气体状态方程，将现场采样体积V换算成标准状况下 的采样体积V0。
V0
Vt
T0 T
p p0
Vt
273 273 t
p 101 .325
采样体积的计算
• 三）被动式采样法
❖ 空气采样体积 = 采样速率K 采样时间
污染物浓度表示方法
• 质量浓度 每立方米空气中含有物质的毫克数表示，单位为mg/m3
• 体积分数 每立方米空气中含有检测物的毫升数，单位为mL/m3(百万分之一，ppm)。
C(mg/m3)=C’(ppm)M/22.4
采样效率的评价方法
• 1、影响采样效率的因素
根据污染物的存在状态选择合适的采样方法和仪器 根据污染物的理化性质选择吸收液、填充剂和各种滤料 确定合适的抽气速度 确定适当的采气量和采样时间
检验运送标本流程、制度
检验运送标本流程、制度1. 背景本文档旨在介绍检验运送标本的流程和相关制度，以确保标本的正确运送和安全性。
2. 标本运送流程2.1 收集标本在进行检验之前，需要将样本从患者或样本提供者处收集。
这包括血液、尿液、组织样本等。
2.2 标本标识每个标本都应当进行准确的标识，以便后续的处理和识别。
标识应当包括患者或样本提供者的姓名、生日、性别等基本信息。
2.3 标本选择和准备根据不同的标本类型和检验要求，选择适当的标本，并确保其清洁、无污染。
如果需要，在内添加适当的保存液。
2.4 标本包装将标本放入适当的包装材料中，以保证运输过程中的安全性和卫生性。
包装材料应当符合相关的标准，并严格封闭，以防止泄露或损坏。
2.5 标本运送选择合适的运输方式，将标本送至指定的检验实验室或机构。
在运送过程中，应当严格遵守相关的运输规定和安全要求，确保标本的完整性和准确性。
2.6 标本接收和记录检验实验室或机构应当及时接收标本，并进行准确的记录，包括收到标本的时间、数量、来源等信息，并确认收到的标本是否符合要求。
3. 相关制度3.1 标本处理规范检验实验室或机构应当制定相应的标本处理规范，明确标本的收集、保存、运送和处理等环节的操作要求，以确保整个流程的标准化和规范化。
3.2 标本监管措施检验实验室或机构应当建立标本监管措施，包括标本接收、记录、存储和销毁等环节的监管措施，以确保标本的安全性、保密性和完整性。
3.3 培训和培训记录为了提高工作人员的标本运送技能和意识，检验实验室或机构应当定期进行培训，并记录相关的培训内容和结果，以便追溯和监督。
4. 结论通过建立标本运送的流程和相关制度，可以保证标本的正确运送和安全性，从而提高检验结果的准确性和可靠性。
同时，对标本的处理和监管也能够保障患者的隐私和权益。
检验实验室或机构应当严格遵守相关的规定和要求，确保标本运送流程的顺利进行。
检验科标本采集、运输管理
检验科标本采集运输指南1目的对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以及样品在实验室内的传输过程进行控制，以保证检验前样品的质量。
2 范围适用于检验科受理的标本。
3 职责3.1临床医师负责检验的申请，申请单的格式由技术管理层和医院医教部共同制定。
3.2检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。
3.3医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留取标本。
3.4门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医生采集。
3.5检验科标本收集人员负责定时到临床各科室收集标本和运输；急诊检验标本和值班时采集的标本由临床科室护理人员直接送检验科。
3.6相关检验人员负责样品在实验室内的传输。
4、内容第一部分标本采集一血液检验标本采集方法血液检验标本分为全血、血浆、血清等。
全血标本主要用于临床血液学检查,例如血细胞计数和分类、形态学检查等；血浆标本适合内分泌激素、血栓和止血检测血清标本多适合于临床化学和免疫学的检测。
按照血标本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。
绝大多数检查采用静脉血,少数检查如血气分析、乳酸和丙酮酸测定等需要采集动脉血，毛细血管血主要用于各种微量法检查或大规模普查。
静脉血是最常用的实验室检查标本，真空采血法是最好的静脉血采集技术。
基本原理是双向针的一端插入真空试管内，另一端在持针器的帮助下刺入静脉，血液在负压作用下自动流入试管内。
由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本的转运和保存。
标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和检测用途，可根据需要选择相应的盛血试管。
（一）静脉血采集方法、注意事项和采集样品所用材料的安全处置：1止血带或压脉器：采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过40秒为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果,如乳酸升高、pH 值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。
2 采血时间与部位：大多数化验检查要求清晨、空腹、采集静脉血应尽可能避免在输液同时取血,输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。
临床样本的采集运输和保存及核酸提取课件
3、核酸的浓缩、沉淀与洗涤
沉淀可去除部分杂质与某些盐离子 加入一定的盐类（醋酸钠、氯化钠等）后
使用有机溶剂（如乙醇、异丙醇等） 少数盐类可使用70-75%的乙醇洗涤
4. 核酸的鉴定
浓度鉴定 纯度鉴定 完整性鉴定
浓度鉴定
DNA：
1）紫外分光光度法：测定DNA在A260nm的光吸收值。 如计算DNA浓度
酚 抽 提 法 提 取 步 骤：
DNA酚抽提法示意图
主要试剂的作用：
EDTA：1. 二价金属螯合剂，抑制核酸酶； 2. 降低细胞膜的稳定性
SDS的作用： 1. 溶解膜蛋白和脂肪，从而使细胞膜破裂 2. 溶解核膜和核小体，使其解聚，将核酸
释放出来 3. 对RNA、DNA酶有抑制作用 4. 与蛋白质形成R-O-SO3 ….R蛋白质复合物，
2）荧光光度法 荧光染料溴化乙锭，可嵌入到碱基平面，而发 出荧光，且荧光强度与核酸含量呈正比。 适用于低浓度核酸溶液的定量分析（1-5ng）
EB与DNA的结合
纯度鉴定
紫外分光光度法：
在260nm和280nm处测定DAN溶液的光吸收，纯的DNA A260与A280之比 应在1.80 (1.60~1.80)，低于此值表明制备物中留有蛋白质成份。高 于此值表明有RNA的残留量
研究背景
样本的采集、处理 样本的保存 样本的运输 DNA的提取 RNA的提取
研究背景
一、样本的采集、处 理、保存及运输
临床标本的正确采集、运送、保存 的重要性
临床检验的质量保证关键性环节 解决涉及实验室检验的医患纠纷的方法之一
（一）、样本的采集
地贫检测样品采集： 外周血: ≥5mL 脐带血: 0.5~1mL 羊 水：20～30mL 绒 毛：≥15mg 唾 液 组 织
课件病原微生物样本的采集、保存与运输定稿
•
•
病原微生物样本
基本原则 采集条件 采集要求 采样时间 样本种类 样本数量 采集方法
其他 食品制作环境
采 集
保 存
运 输
样本来源
病人 从业人员 可疑食品
可采集的样本和样品类型
粪便、血液、尿液、呕吐物、洗胃液、肛拭子、咽拭子 粪便、肛拭子、咽拭子、皮肤化脓性病灶样本 可疑食品剩余部分及同批次产品、半成品、原料 加工单位剩余的同批次食品，使用相同加工工具、同期制 作的其他食品 使用相同原料制作的其他食品 加工设备、加工用具、容器、餐饮具上的残留物或物体表 面涂抹样品或冲洗液样品；食品加工用水 刚被稀便污染的尿布、衣服、床单等 宿主动物粪便、昆虫等媒介生物 由毒蕈、河豚等有毒动植物造成的中毒，要搜索废弃食品 进行形态鉴别
将洗漱液吐入试管内。
痰液
以清晨采集为佳，病人用清水充分漱口后，用力自气管深处咳出痰液，吐
至无菌容器中，加盖，标识，塑料袋密封，冷藏条件下送检。
下呼吸道样本（适用于气管插管病人）
只采集重症病人，无时间限制。收集气管吸取液或支气管灌洗液5-10mL 放入无菌、带垫圈的50mL螺口塑料管中。
病原微生物样本
样品种类
饮用水 液体食品 固体食品
采 集
保 存
运 输
检验目的
全分析及致病菌 致病菌或毒物分析 致病菌或毒物分析
样品量
>5 L 可疑食物>200mL 可疑食物>200g
呕吐物
洗胃液 腹泻物 血液
致病菌或毒物分析
致病菌或毒物分析 致病菌或毒物分析 病原分离、抗体分析
>50g(mL)
>200mL >50g(mL) >5mL
病原微生物样本
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放入-70度冰箱保存。
贴壁细胞
约1*107个贴壁细胞，胰酶消化；
加入PBS悬浮细胞，低速离心收集，弃去液体；
加入2-5 ml PBS 悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS
放入-70度冰箱保存。
组织
采集新鲜组织（生物体死亡后10min内取材并保存好）
组织块以PBS或生理盐水清洗干净，切为小块
血清
使用凝血管采集全血，采血后两小时内分离血清；
采血后轻轻倒转采血管混合4-5次，直立置于室温待血液完全凝固，1000g离心10min，分离血清。
将采集好的血清转移至单独的冻存管，按照每400-500ul/管分装。
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
从全血中提取白细胞
抗凝血收集
15cm2
植物组织样品
100mg-1g，根据植物不同部位的组织决定组织需要量，尽可能多些，但不必超过1g
动物组织样品
新鲜组织样品
A. 使用RNAlater试剂
取新鲜组织（注：动物死亡后尽快在10min内取材），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，所用组织必须切至厚度在一下，然后放入装有5倍体积RNAlater的离心管（或冻存管）中。
将离心管置于室温放置10min
将离心管以2500g 离心5min
弃上清，尽可能将上清吸净，勿吸到管底白色斑块细胞
弃去上清后在管底出现可见的白色斑块，此斑块为富集的白细胞。如果裂解不完全加入1mlPBS缓冲液重悬，然后重复第一步
充分裂解后，加入1mlPBS缓冲液清洗一次 2500g离心5min
弃上清，可获得血液样品中全部白细胞的80%以上，而后可加入适量的Trizol，用移液枪充分吹打，混匀，直至出现清亮不粘稠的液体。
取无菌的15ml离心管一只，首先用EDTA或者柠檬酸钠溶液充分吹打管壁，使离心管壁完全接触到该溶液，而后在管底留下少许该溶液（200ul左右）收集5ml全血后迅速用枪混匀或用手指拨动离心管底部混匀。防止部分血液凝固。
全血白细胞分离（以3ml抗凝血为例说明）
向一只15ml离心管中加入3ml抗凝血，而后加入9ml红细胞裂解液。盖紧管盖，温柔的颠倒混匀数下，不要剧烈震荡
样本
样本量
全血
1-2ml （即每份样品2-4管）
血浆
1-2ml （即每份样品2-4管）
血清
1-2ml （即每份样品2-4管）
在样品保存及转移过程中，应避免反复冻融样品
一般建议用新鲜的血液标本进行试验，如果标本已经保存较长时间，请先联系技术部门确认样本是否适合进行实验。
全血
采集好全血，转移至单独的冻存管中，按照每400-500ul/管分装。
低速离心沉淀细胞，弃去PBS
放入-70度冰箱保存。
对于ChIP-chip实验为了获得理想结果，建议根据下述方法处理及保存贴壁细胞样品
组织
采集新鲜组织（生物体死亡后10min内取材并保存好）
组织块以PBS或生理盐水清洗干净，切为小块
放入液氮或-70度冰箱保存
4.蛋白实验样品采集、保存方法
适用范围及样品量
而后可以将以上的Trizol试剂存在生物冰（0-4度）寄送，或者直接干冰寄送。
实验样品采集、保存方法
适用范围及样品量
适用范围：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Service
样品量
样本
样本量
细胞
1*107个
组织
50-100mg
悬浮细胞
约1*107个细胞，低速离心收集，弃去培养液；
适用范围：Microarray Service Other Service
样本量：
样本
样本量
血清和血浆
100-200ul
细胞
107个
组织
50-100mg
血清和血浆
采集新鲜血液，分离血清或血浆，放入-20度或者-70度冰箱保存
悬浮细胞
约1*107个细胞，低速离心收集，弃去培养液；
加入2-5ml PBS悬浮细胞，转入小离心管中；
立即投入液氮中保存。
2.血液类样品采集、保存方法
适用范围及样品量
全血/血细胞：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service
血清/血浆：Microarray Service；PCR Array& PCR Service
样本量
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
血浆
使用抗凝管采集全血，并尽快进行血浆分离：1000g 离心10min，分离血浆和细胞组分（抗凝剂一定不能是肝素）
将采集好的血浆转移至单独的冻存管中，按照每400-500ul/管分装。
短期保存可以再-20度或者-70度冰箱；长期保存放入液氮。
常温运输
本市内细胞样品也可以直接常温运送，运送时在培养瓶中装满培养液并以封口膜封口，然而某些实验条件中包含时间限制，建议冻存后运输。
样品运输注意事项
打包好的样品交于快递公司，不提及干冰等字样
快递寄出，将快递单号告知销售，以便跟踪快递进程
务必在周日、周一、周二寄出快递，以免到达上海的时间是周末，公司无法查收。
匀浆的裂解液4度短期保存（1month），-20或者-70度长期保存。
冻存组织
生物体死亡后尽快（10min以内）切取新鲜组织，并以PBS或生理盐水清洗干净切成小块；培养液倒入离心管中，离心沉淀细胞，弃去上清液。
细胞沉淀（1*107个）中加入1ml Trizol裂解液
反复吸打几次后，目视可见细胞层溶液完全
放入液氮或-70度冰箱保存
5. 样品保存和运输
注意事项
将收集的各类样品用冻存管或离心管装好，保存在低温冰箱或者液氮中。
所使用的冻存管或离心管、枪头等必须高温灭菌处理，装好样品后管口需要以封口膜封好。
注意已保存的样品不要反复冻融。
干冰运输
根据干冰量准备大小适当的泡沫盒，在其中放入干冰（需要10公斤，至少为8公斤）和标本（用塑料袋或者塑胶手套装好），盒子内的空隙用旧报纸塞满，以防干冰挥发后有液体流出。
加入1ml 的甘氨酸，轻轻混匀，室温孵育5min，中和甲醛；
2000g离心5min，弃上清，用预冷的 PBS/EDTA 洗细胞两遍
2000g 离心5min，弃上清；
收集到的样品-80度冻存。
贴壁细胞
约1*107个贴壁细胞，胰酶消化；
加入PBS悬浮细胞，低速离心收集，弃去液体；
加入2-5 ml PBS 悬浮细胞，转入小离心管中；
-70保存瓶直接加入Trizol试剂，Trizol用量与细胞贴壁面积有关，15cm2细胞贴壁面积加入1mlTrizol。
反复吸打几次后，目视可见细胞层溶解完全。
-70度保存。
植物组织样品
准确取得所需新鲜组织后，如有必要可用PBS清洗干净，将所用组织切碎，装入冻存管中或者用锡箔包裹好。
泡沫盒须选择较厚的，以免在运输过程中破碎导致样品丢失，分别用封箱带密封。最后在外面套上一个纸盒子，也要用胶带密封。
冰袋运输
保存在RNAlater中的组织样本；
保存于Trizol中的细胞样本或经过匀浆的组织样本在短期（5day）可使用冰袋运输。
液氮运输
冻存组织需要干冰或液氮运输。液氮无法快递，适合市内运输。
1. RNA实验样品采集、保存方法
使用范围及样品量
类别：Microarray Service；Sequencing Service; PCR Array& PCR Service
样本量：
样本
样本量
动物组织样品
50-100mg
哺乳动物培养细胞样品（悬浮细胞）
1*107个
哺乳动物培养细胞样品（贴壁细胞）
加入2-5ml PBS悬浮细胞，转入小离心管中；
低速离心沉淀细胞，弃去PBS；
放入-70度冰箱保存。
对于ChIP-chip实验为了获得理想结果，建议根据下述方法处理及保存悬浮细胞样品
取107个悬浮细胞低速离心，用10ml培养基将细胞沉淀重悬于50ml离心管中；
加入270ul 37%的甲醛，轻轻混匀，室温孵育10min；该步骤最好在通风橱完成
4度孵育过夜，此时样品管需要横置以便组织块充分接触到RNAlater，然后转入-20中保存，样品在-20不会冻结，但溶液中可能会有一些晶体出现，这并不影响后续的RNA抽提。
B. 使用Trizol试剂
取新鲜组织（1min以内），组织块以PBS或生理盐水清洗干净，每50-100mg组织加入1ml Trizol溶液匀浆裂解组织样品，最好冰上进行操作。