血培养标本采集
血培养标本的正确采集课件

通过血培养和药敏试验,医生可以了解病原微生物的耐药性,选择 敏感的抗生素进行治疗,提高治愈率。
评估病情
血培养的结果可以反映病情的严重程度和病程进展情况,帮助医生 评估治疗效果和调整治疗方案。
血培养标本采集的发展前景和研究方向
自动化采集技术
01
随着技术的发展,自动化血培养系统逐渐应用于临床,能够提
如采血时用力拍打采血部位、在输液时从输液侧 采血、在同侧手臂同时采血和输液等,可能导致 培养结果不准确。应避免这些不规范操作,确保 采血过程严格遵守无菌原则。
04 血培养标本采集的临床 应用和价值
血培养标本采集在临床中的应用
诊断感染性疾病
血培养是诊断血液感染性疾病的 重要手段,通过培养血液中的病 原微生物,可确诊败血症、菌血
症等严重感染性疾病。
指导抗生素治疗
血培养可以帮助医生了解病原微生 物的种类和药敏情况,从而指导抗 生素的选择和使用,提高治疗效果。
监测治疗效果
通过定期进行血培养检查,可以监 测治疗效果,判断病情是否好转或 恶化,及时调整治疗方案。
血培养标本采集对临床诊断和治疗的价值
明确诊断
血培养能够直接检测到血液中的病原微生物,为临床医生提供确 切的诊断依据,避免误诊和漏诊。
阳性检出率。
采集部位ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
通常选择肘静脉或股静脉作为 采集部位,以保证充足的血量 和避免局部感染。
无菌操作
采集过程中应严格遵守无菌操 作原则,避免污染,减少外界 细菌的混入。
采集量
根据不同培养瓶的要求,采集 适量血液,一般为8-10ml。
采集后标本的保存和处理
及时送检
采集后的血培养标本应尽快送检,避 免长时间放置导致细菌繁殖或死亡。
血培养标本采集

血培养标本采集在临床医学中,血培养标本采集是一项非常重要的检查操作,能够帮助医生迅速准确地判断感染的病原体及其敏感性。
正确的采集方法和操作流程是确保检验结果准确可靠的关键之一。
本文将为您介绍血培养标本采集的步骤和注意事项。
一、准备工作在进行血培养标本采集之前,医务人员需要完成以下准备工作:1.检查所需材料:血培养瓶、采血针、无菌消毒棉球、无菌手套等。
2.确认患者的身份:核对患者的姓名、住院号等重要信息,确保采集的标本与患者对应。
3.告知患者:向患者解释采集血培养标本的目的和过程,并获得其同意。
二、采集步骤1.无菌操作:医务人员需戴上无菌手套,确保采集操作在无菌环境下进行。
同时,注意保持工作区的整洁和清洁。
2.选择合适的采血部位:一般常采用质感好、容易握持的静脉作为采血部位,如患者的前臂外侧静脉。
3.皮肤消毒:采血部位的皮肤需要进行消毒处理,以减少细菌污染。
常用的消毒剂有75%酒精和碘酒,根据患者对消毒剂的过敏情况选择适当的消毒剂。
4.穿刺采血:医务人员用无菌针头在经消毒处理的静脉部位插入静脉,待血液自由流出时开始采集。
5.采集血培养标本:将血培养瓶插入静脉针头上的连接器上,打开瓶盖,让血液自由流入瓶中。
一般情况下,每瓶血培养标本所需血量为8-10ml。
6.采血完成后,轻轻拧紧瓶盖,拔出连接器,用无菌棉球轻压在采血点上,帮助止血。
三、注意事项1.遵循严格的无菌操作:确保操作过程中的无菌环境,减少细菌污染的可能性。
2.插针时注意技巧:确保针头成功插入静脉并定位准确,避免因插针错误而导致血液外溢或组织损伤。
3.血液采集量的控制:不同的血培养瓶需要不同的血液量,医务人员需要根据实际情况确保采集到足够的血液。
4.采血时间和频率:最佳的血培养标本采集时间通常是在患者发热的早晨,此时细菌浓度较高,有助于提高阳性检出率。
同时,根据医生的嘱托,可适当增加血培养的采集频率。
5.采集后标本的处理:采集完成后,将血培养瓶标注患者信息,并尽快送往实验室进行培养和检验。
简述留取血培养标本的方法及注意事项

1. 方法1.1 选取适当的采血管:在留取血培养标本时,首先要选择适当的采血管,通常使用含有抗凝剂的血管,如EDTA管或肝素管。
1.2 消毒皮肤:接下来要对患者的采血部位进行消毒处理,以减少外部细菌的污染。
常用的消毒剂有酒精、碘酒或氯己定等。
1.3 抽取血样:消毒后,使用一次性采血器具,将血样采集到抗凝管内,通常要留取足够的血样做血培养检验。
1.4 标注标本信息:在留取血培养标本后,务必要在标本管上标注患者的相关信息,如尊称、性莂、芳龄、病区、科室等。
2. 注意事项2.1 避免空气污染:在留取血培养标本时,要尽量避免空气污染,避免将外部空气中的细菌带入血样中,尤其在离心和接种血培养时更要注意。
2.2 注意采血技巧:采血人员要有一定的采血技巧,避免在采血过程中对患者造成过多疼痛,也要避免对血样造成不必要的污染。
2.3 避免过度摇晃:在留取血培养标本后,要避免过度摇晃标本管,以免破坏细菌的生长和培养。
轻轻摇匀即可。
2.4 选择合适的培养基:在进行血培养前,要根据临床情况和病原体的猜测,选择合适的培养基,如青霉素富养基或厌氧培养基等。
3. 丰富的续写和扩展内容3.1 血培养标本处理血培养标本的处理是非常关键的环节。
在采集完血样后,需要将标本尽快送到临床微生物实验室进行处理。
在送检前,要确保标本的密封性,避免血样泄漏或被外部污染。
要根据医学实验室的规范和操作流程进行标本的处理和运送,以确保标本的完整性和可靠性。
3.2 血培养标本的保存对于血培养标本的保存,要避免高温、阳光直射、冷冻等不利因素。
通常建议在室温下保存,但也要避免放置在过于潮湿或通风不良的环境中。
保持标本的原有状态,确保在送检前细菌的数量和种类不发生改变。
3.3 血培养标本的接种在进行血培养时,需要根据医学实验室的规范和要求进行标本的接种。
通常情况下,要使用专门的接种环境和设备,如无菌培养皿、接种环、无菌移液器等。
接种时要正确添加培养基,避免过度或不足的添加,同时要确保标本的均匀分布。
血培养标本的采集

血培养标本的采集
1.容器:根据不同血培养的目的,选用不同的培养液,另备酒精灯及火柴。
2.采血环境:要求室内清洁、无尘土飞扬,防污染。
3.采血时,应严格遵守无菌技术操作原则。
并嘱患者头偏向一侧。
4.严格消毒穿刺部位。
用2.5%碘酒消毒一遍待干后,再用75%酒精消毒二遍或用0.5%络合碘消毒二遍。
5.标本宜在患者寒颤、高热时(体温超过38.5℃以上)或使用抗生素前采集,以提高细菌培养的阳性率。
6.血培养取血量为5ml,感染心内膜炎患者,为提高培养阳性率采血量5—10ml。
7.血液注入培养液瓶前后用火焰消毒瓶口和及瓶塞。
8.如患者已用抗生素应在化验单上注明。
9.立即送检。
血培养采集要求及方法

血培养采集要求
1、尽可能在抗菌药物使用前、在寒颤和发热初起时、停药6-8小时后或下次用药前采集标本。
2、每次采集2-3套标本,每套应包括一个需氧培养瓶,一个厌氧培养瓶,儿童只需采集需氧瓶。
一个静脉穿刺点只能采集一套血培养,采集第二套血培养应该选择第2个静脉穿刺点。
3、选择合适的血培养瓶,检查血培养瓶有无破损、过期,培养瓶用75%酒精消毒60秒自然待干,勿用含碘的消毒液消毒。
4、皮肤消毒:
①75%酒精擦拭静脉穿刺部位30s以上。
②1%~2%碘酊作用30s或1%碘伏作用60s,从穿刺点向外画圈消毒,消毒区域直径达3cm以上。
③75%酒精脱碘。
对碘过敏的患者,用75%酒精消毒60秒,待酒精挥发干燥后采血。
5、采血后轻轻颠倒混匀,以防血液凝固。
成人采血量每瓶8-10ML,儿童每瓶1-3ML,采血量不足时应先保证需氧瓶。
血培养标本采集和运送

血培养标本采集和运送一、采血时机1、尽可能在抗菌药物使用前;2、对已经使用抗菌药物的病人,最好在下次用药前采集;3、寒战和发热初起时采血可提高培养阳性率,心内膜炎(持续性菌血症)例外;4、怀疑血流感染时应尽早采血,不要强调体温超过39℃才抽血,而错过时机。
二、血培养标本采集次数1、留置深静脉导管且怀疑导管相关血流感染(CR-BSI):(1)、希望保留深静脉导管者至少2套(1套血培养定义:从一个部位如静脉穿刺或静脉导管所获血液的培养,不论被接种在1个还是多个血培养瓶内)血培养,其中至少一套来自外周静脉,另一套从导管采集,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),并各自做好标记;(2)、决定拔除深静脉导管者从独立的2个外周静脉部位,无菌采集2套血培养,同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室(实验室采用Maki 半定量平板滚动培养)2、未留置深静脉导管或怀疑的BSI并非导管相关(1)、怀疑血流感染时,独立的外周静脉无菌采集2套血培养(2)、当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时,在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),各自做好标记(3)、对不明原因的发热、亚急性心内膜炎,抽取3套血培养;心内膜炎患者起始采集的3套血培养24小时内报告阴性,则继续采集2套血培养;3、在采血2-5天内,无需重复做血培养,细菌性心内膜炎和金黄色葡萄球菌菌血症除外。
三、皮肤消毒及采血步骤1、皮肤消毒前,先检查血培养瓶有无损坏或超过保质期,用70%酒精消毒血培养瓶橡皮塞并干燥;2、用2根安儿碘棉签,以穿刺点为圆心,以约5cm直径画圈进行皮肤消毒,作用时间至少30s。
注意消毒过的地方不能重复涂抹,在涂抹的过程中棉签必须也要同时旋转。
如果病人手臂皮肤不够干净,则需重新擦拭。
在洁净后不要触摸穿刺部位;3、持穿刺针按常规方法刺入静脉(肘静脉或股静脉),成人一次抽血5~10ml,婴儿为1~5 ml,血液抽出后,立即以无菌操作手续注入血培养瓶。
血培养标本采集ppt课件

与实验室沟通
血培养标本的送检时间对检测结果有重要 影响,因此应确保标本在采集后尽快送至 实验室进行检测。
在血培养标本采集前,与实验室进行沟通 ,了解实验室对标本的要求和注意事项, 确保采集的标本符合实验室的检测要求。
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血培养标本的接收和处理
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标本接收
接收人员需经过专业培训,了解 血培养标本采集、保存和运输的
保存记录
对保存的标本进行详细记录,包括 患者姓名、采集时间、保存条件、 保存时间等信息。确保标本的可追 溯性。
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注意事项
无菌操作
标识清晰
在血培养标本的采集、运送和保存过程中 ,应严格遵守无菌操作原则,避免污染和 交叉感染的发生。
确保标本容器上的标识清晰、完整,以便 实验室人员准确识别和处理。
及时送检
血培养标本采集ppt课件
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目 录
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• 引言 • 血培养标本采集前准备 • 血培养标本采集方法 • 血培养标本的运送和保存 • 血培养标本的接收和处理 • 血培养结果解读与临床应用
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引言
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目的和背景
了解血培养标本采集 的意义和重要性
提高血培养标本采集 的质量和效率,减少 误差和污染
相关知识。
接收时核对患者信息、标本类型 、采集时间等,确保信息准确无
误。
检查标本容器是否完整、无破损 ,标签是否清晰可辨。
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标本处理
在生物安全柜内进行操作,确 保操作过程安全无污染。
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对标本进行外观检查,观察是 否有溶血、凝块等异常情况。
血培养标本采集

血培养概念
将新鲜离体的血液标本接种于营养培养基上,在 一定温度、湿度等条件下,是对营养要求较高的 细菌生长繁殖并对其进行鉴别,从而确定病原菌 的一种人工培养法。用于菌血症、败血症及脓毒 血症的病因学诊断。一般需要5-7天才能出报告。
血培养采集的意义
血流感染严重威胁患者生命 明确诊断是何种病原菌感染 减少抗菌药物的无用和滥用 大大地改善患者的预后 降低患者的病死率,减少医疗花费
寒战或 发热开 始时
血培养的正确采集要求
患者身体双侧采集(2套4瓶),1“份指一次静 脉穿刺,每份血培养间隔不超过5分钟,在抗生素 使用前采集,发热高峰前1小时,寒战或发热开始 时。 双套—两部位采集,左右两侧手臂或其他部位 (可排除感染),单侧表皮葡萄球菌多数为污染。 双瓶—需氧菌和厌氧菌(可提高阳性率)。
血培养采集临床指征
发热≥38.℃或低温≤36℃ 寒战; 肺炎; 留置深静脉导管超过5天; 白细胞>10×109/L; 血小板减少; 收缩压低于90mmHg; 皮肤黏膜出血。 多器官衰竭 呼吸加快(>20/分或CO2分压<32mmHg)
采集时机
抗生素 使用前
发热高 峰前1 小时
则会导致某些病原微生物死亡。 9、送检标本应注明来源、检验目的和采样时间,使实验能 正确选用相应的培养基和适宜的培养环境
血培养的正确采集要求
研究表明:只做1套血培养,病原菌的检出率仅为65%,两套 血培养为80%,三套血培养为96%。单瓶血培养不仅检出率 不高,而且难以区分污染导致的假阳性,结果很难做出临床 解释,应该坚决瓶盖→碘伏消毒血培养瓶皮塞2次,
正确采集血培养标本的方法

正确采集血培养标本的方法正确采集血培养标本的方法包括以下步骤:1.皮肤消毒:在抽血前,需要用肥皂和水彻底清洁抽血部位的皮肤,然后使用消毒剂进行皮肤消毒。
消毒剂可以使用氯己定乙醇(70%-80%)、碘酊(1%-2%)或碘伏(10%)等。
消毒后等待1-2分钟,待消毒液完全干燥后再进行抽血。
2.抽血:选择合适的静脉进行抽血,通常选择肘部或手部的静脉。
使用一次性注射器或真空采血装置进行抽血。
在抽取第一针血液后,应该更换针头再进行后续的抽取操作,避免交叉感染。
3.混匀:在抽血完成后,需要将血液注入培养瓶中。
在注入前,需要将培养瓶轻轻摇匀,确保其中的营养液和中和剂充分混合。
注入时,应该同时抽取需氧瓶和厌氧瓶,每个培养瓶中的血液量不应少于10毫升。
4.标记:在将血液注入培养瓶后,需要在瓶上标记采血日期、采血时间、患者姓名等信息。
同时,还需要记录采血部位和采血量等信息。
5.送检:在采集完血培养标本后,需要尽快将标本送往实验室进行检查。
如果不能及时送检,应该将培养瓶放置在室温下保存,但不要超过2小时。
需要注意的是,在采集血培养标本时,还需要注意以下几点:6.采集前,患者应该保持正常的生活习惯,避免过度疲劳或剧烈运动,以免影响检查结果。
7.采集前,患者应该避免使用抗生素等药物,以免影响细菌的生长。
8.采集时,应该选择合适的注射器和针头,避免过小或过大的针头导致采血困难或产生气泡。
9.采集时,应该尽可能避免污染样本,如避免在采样过程中交叉感染、保持采样环境和设备的清洁等。
10.标记时,应该准确记录患者的个人信息和采样时间、部位等信息,避免混淆和错误判断。
11.送检时,应该尽快将样本送往实验室进行检查,避免长时间保存和运输导致细菌死亡或污染等问题。
总之,正确采集血培养标本是进行病原菌检测和疾病诊断的重要步骤。
在实际操作过程中,需要严格遵守无菌操作原则,确保样本质量和实验室结果的准确性。
血培养标本的正确采集

患者自身状态(如病情、年龄、营养状况等)以及配合程度可影响血培养标 本采集的质量。
控制措施
全面了解患者的病情,选择合适的采血时机,对于特殊患者需制定相应的采 血方案;同时,加强与患者的沟通,提高其配合程度。
护士因素对采集质量的影响及控制措施
护士因素
护士的采血技术、操作规范、无菌观念、责任心等都会影响血培养标本采集的质 量。
控制措施
加强技术培训,提高护士采血的操作规范和无菌观念;同时,加强对其责任心的 培养,确保采血过程的质量控制。
标本因素对采集质量的影响及控制措施
标本因素
血培养标本的污染、溶血、采血量不足或过多等都会影响血 培养结果。
控制措施
严格控制采血量,避免采血量不足或过多;同时,加强对采 血过程的监控,确保标本的质量控制。
06
血培养标本采集的临床意义与价值
有利于疾病的诊断和鉴别诊断
血液是多种疾病的重要传播途径,如败血症、菌血症等。 通过血培养可以检测血液中的病原体,帮助医生明确诊断 ,从而采取正确的治疗措施。
血培养对于区分细菌性感染和病毒性感染也具有重要意义 ,因为不同的病原体在血液中的反应不同,血培养可以提 供重要的鉴别
目录
• 血培养标本采集的基本信息 • 正确的血培养标本采集流程 • 影响血培养标本采集质量的因素及控制措施 • 血培养标本采集的质控指标与评估方法 • 血培养标本采集的质量管理 • 血培养标本采集的临床意义与价值
01
血培养标本采集的基本信息
什么是血培养标本
血培养标本采集的注意事项
采集血培养标本前,需了解患者的病史、用药情况等 信息,以避免干扰检测结果。
采集后需及时将标本送至实验室进行检测,以确保检 测结果的准确性。
血培养标本采集

72h; ➢ 白细胞>1.8万/mm³
(“核左移” 未成熟的 或带状的白细胞增多); ➢ 感染性心内膜炎; ➢ 收缩压低于90mmHg; ➢ 无其他原因解释的感染
C
其他
➢ 粒细胞减少; ➢ 血小板减少; ➢ 皮肤黏膜出血; ➢ 昏迷; ➢ 多器官衰竭
采血时间
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谢谢大家观看
操作标准
操作前准备 操作标准
皮肤消毒 培养瓶消毒
采血量
询问患者征得患者同意;核对医嘱及患者;
防止皮肤寄生菌污染,用75%酒精消毒培养 儿童(儿童瓶)2-5ml
穿着整齐洗手戴口罩; 消毒培养瓶及患者皮肤;在采集过程中血培养 瓶瓶塞60s,待干 成人8-10ml
清洁安静,无人走动; 带无菌手套采集血液标 的污染一定要减少至
PART 02
Clinical significance
临床意义
临床意义
一
预防败血症
二
确定致病菌正确使用 抗生素
三
监测抗生素浓度和细 菌杀死的情况
四
降低患者的病死率
PART 03
blood collection indication and time
采血指征及时间
采血指征
ALeabharlann B发热≥38.5℃+ 发热≥39.5℃或<36℃
blood culture specimen collection
血培养标本采集
第一部分
血培养定义 01
第二部分
02 临床意义
目录
03 第三部分
采血指征及时间
第六部分
注意事项
06
血培养标本的正确采集

标本采集后应尽快送检,避免延误。
解读报告需结合临床
解读血培养报告时需结合患者临床表现及其他检查结果进 行综合分析,为临床诊断和治疗提供准确依据。
THANKS
谢谢您的观看
3
鉴定方法
采用生化反应、血清学试验、质谱技术等方法对 菌种进行鉴定。
报告内容
培养结果
阳性或阴性,以及培养 出的微生物种类。
药敏结果
对培养出的微生物进行 药物敏感试验,为临床 治疗提供参考。
其他信息
如患者信息、标本采集 时间、培养基类型等。
注意事项
严格遵守无菌操作
在采集、运输、接种等过程中需严格遵守无菌操作,避免 污染。
保存条件
温度
血培养标本应保存在35-37℃的 环境中,以促进微生物的生长。
容器
血培养标本应使用专用的血培养 瓶或试管进行保存,以确保标本
的密封性和无菌性。
时间
血培养标本应在采集后尽快送检 ,一般不超过2小时,以避免细
菌在体外过度生长。
运输要求
包装
血培养标本应使用专用的血培养运输盒进行包装,以确保标本在 运输过程中的安全和无菌。
抗凝剂
根据需要选择适当的抗凝 剂,如肝素钠或枸橼酸钠 。
采集时间选择
发热时采集
通常在患者发热时采集血培养标本, 因为此时血液中的细菌数量较多。
抗生素使用前采集
间隔采集
对于疑似血流感染的患者,建议间隔 数小时采集多次血培养标本,以提高 阳性检出率。
在患者使用抗生素前采集血培养标本 ,以避免抗生素对细菌的抑制作用。
评估治疗效果
监测病原体清除情况
通过定期进行血培养检查,可以监测病原体是否被清除,从而评估治疗效果。
采集血培养标本与运送流程

实验室接收标本后,需将标本放入自 动血培养仪进行培养,或按照手工培 养方法进行操作。
已接种的血培养瓶应在规定条件下保 存,避免阳光直射和高温环境。
异常情况处理与报告
01
02
03
04
如发现标本存在异常情况,如 溶血、凝血、污染等,应立即 通知临床科室并重新采集标本
。
对于培养结果为阳性的标本, 应立即进行涂片镜检和初步鉴 定,并及时报告临床科室。
有效期内。
采血针和注射器
应选择合适的采血针和 注射器,确保无菌、无
热原。
其他物品
包括棉签、纱布、止血 带、标签等。
患者准备
01
患者应处于安静状态, 避免剧烈运动和情绪波 动。
02
采集前应向患者解释采 集目的、方法和注意事 项,取得患者配合。
03
患者应洗净双手或使用 消毒剂进行手部消毒。
04
对于需要穿刺的部位, 患者应配合采集人员摆 好体位,方便穿刺。
对标本进行外观检查,观察是否有溶血、凝固、污染等现象。
按照实验室规定进行标本处理,如离心、分装等,确保后续检测的准确 性。
持续改进方向与措施
加强人员培训,提高操作人员的专业技能和质量控制 意识。
定期对采集、运送和接收处理过程进行质量评估,发 现问题及时改进。
采用先进的信息化管理系统,实现标本采集、运送、 接收处理全过程的实时监控和数据分析,为持续改进 提供有力支持。
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血培养标本采集流程
消毒与穿刺部位选择
消毒
采用碘伏或70%酒精进行皮肤消 毒,消毒范围直径至少为5cm, 待消毒液干燥后进行穿刺。
穿刺部位选择
成人首选肘部静脉,新生儿和婴 幼儿可选颈外静脉或股静脉。避 免在静脉留置导管或静脉输液的 通路中采集标本。
血培养标本采集一

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目录
CONTENTS
1 痰液培养标本采集 2 尿培养标本的采集
2
血培养标本采集一
血培养标本采集一、血培养的指征:1.心率>90次/min;2.寒战 3.不明原因的发烧(>38℃)或体温过低(<36℃) 4.外周血白细胞增多>10.0×109/L或减少<4.0×109/L 5.C反应蛋白、降钙素原(PCT)、1,3-β-D-葡聚糖(升高)等;6.皮肤黏膜出血,昏迷,多 器官衰竭,血压降低;7.呼吸频率加快>20次/min或动脉血二氧化碳分压(PaCO2)<32 mmHg。二、采集血培养样本的最佳时间1.尽可能在患者寒战或开始发热时采血;2.在患者 接受抗生素治疗前采血;3.如患者已经应用抗菌药物进行治疗,应在下一次用药之前采血 培养
三、采集血培养套数
血培养标本采集一
1.成人每次应采集2-3套,每套从不同穿刺点进行采集,2-5天内无需重复采集。2.如怀疑 感染性心内膜炎,应重复采集多套。3.儿童通常仅采集需氧瓶 四、采集血培养的采血量 成人每瓶采血量8mL-10mL,婴幼儿及儿童采血量不应超过患者总血量的1%,具体采血量参 考说明书。(注:若采血量充足,注射器采集的血液先注入厌氧瓶,后注入需氧瓶,碟形 针采集的血液反之。若采血量不足,优先注入需氧瓶) 五、血培养瓶运送 血培养瓶应在2小时之内送至实验室孵育或上机;如不能及时送检,应将血培养瓶置于室 温下,切勿冷藏或冷冻
第1部分 痰液培养标本采集
痰液培养标本采集
一、痰液培养指征 1.痰液为脓性、血性、铁锈色或红棕色胶胨样痰 2.呼吸急促或哮喘,常伴有胸痛 3.发热伴白细胞增高,特别是中性粒细胞或CRP明显增高 4.胸部影像学检查提示有感染可能 二、痰液培养标本的采集方法 1.痰液标本的采集以清晨为好,因此时痰量多,含菌量大;2.在医生或护士指导下取样; 3.漱口三遍,以除去浅表固有定植菌;4.指导病人深咳以取得下呼吸道标本(而不是唾液 及鼻咽部的分泌物)置于无菌容器 三、痰培养的送检次数 1.对于普通细菌性肺炎,痰标本送检每天1次,连续2-3天。不建议24h内多次采集,除非 痰液外观性状出现改变
血培养标本采集要求

血培养标本采集要求
嘿,朋友们!今天咱来聊聊血培养标本采集要求,这可真的超级重要啊!
你想想看,就好比要建一座坚固的大厦,那材料可得选好啊,血培养标本不就是我们诊断疾病的重要“材料”嘛!比如说,采集前得好好准备吧。
一定要把要穿刺的地方认真消毒,不然带进细菌可就糟糕啦!这就像出门前得把自己收拾干净一样重要呀。
然后呢,采集的时间也有讲究哦!可不能随便什么时候都采。
这就好像做饭得掌握好火候,时机不对,那做出来的菜能好吃吗?比如说怀疑有细菌感染的时候,就得及时采呀,别等错过了最佳时机。
还有呀,采血量也不能马虎。
采少了,可能检测不出来;采多了,又会对患者有影响。
这不就跟做菜放盐一样嘛,少了没味道,多了又太咸。
比如遇到小朋友采集,就更得注意采血量啦。
采集的过程中,动作可得轻柔些呢。
你总不能对血培养标本“粗手粗脚”的吧!这就好像对待一个小婴儿,得小心翼翼的呀。
咱得保证标本不被污染,不被破坏呀。
采集完了还不算完事儿呢,得赶紧送检啊!这就像快递包裹,得快点送
到目的地,不然耽误时间久了,里面的东西可能就坏啦。
总之,血培养标本采集要求真的一点都不能马虎呀!我们要像爱护宝贝
一样对待它,这样才能帮我们准确地诊断疾病,让患者得到最好的治疗。
这就是我的观点啦,大家可千万要记住哦!。
血培养标本采集课件

采血过程中的无创检测技术
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无创检测技术能够减少采血过 程中的创伤和痛苦,提高患者 的舒适度。
无创检测技术能够实时监测患 者的生理参数,为临床提供更 全面的诊断信息。
无创检测技术的发展将有助于 推动医疗技术的进步,提高医 疗水平。
THANKS
解决方案
选择合适的采血部位,避免在皮 肤破损、炎症、疤痕等处采集血 液,同时注意采血针的深度适中
。
采血时机不正确
01
总结词
采血时机不正确可能影响培养结果,如发热时采集可能增加污染菌的检
出率。
02
详细描述
发热时,体内白细胞增多,可能将污染菌误认为是病原菌;而使用抗菌
药物后,可能抑制病原菌生长,导致假阴性结果。
血培养标本采集过程中,需要注意采集时间、采血量、采血 部位以及防止污染等方面的要求,以保证培养结果的准确性 。
抗生素疗效的评估
在使用抗生素治疗血液感染的过程中,血培养可以用于评 估抗生素的疗效。通过定期采集血液样本进行培养,可以 观察病原体数量的变化情况,从而判断抗生素是否有效, 为调整治疗方案提供依据。
05
血培养标本采集的未来发展
自动化采血设备的研究和应用
01
自动化采血设备能够提高采血效率,减少人为 误差,是未来发展的趋势。
02
自动化设备能够实现快速、准确的血样采集, 减少患者等待时间。
03
自动化设备的应用将有助于提高采血质量,为 临床提供更可靠的诊断依据。
个性化采血方案的发展
根据患者的具体情况制定个性化的采血方案,能够更好地满足临床需求。 个性化采血方案能够提高采血效果,减少不必要的采血操作。 个性化采血方案的发展将有助于提高医疗质量和患者满意度。
血培养标本的采集

血培养标本的采集与运送一、采集指征1、寒战、体温超过38℃或低体温,怀疑血流感染时。
2、以下情况时应抽血做细菌和真菌培养,医院内肺炎,留置中心静脉导管超过48h,感染性内膜炎,骨髓炎,有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状,临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况。
二、采集方法1、皮肤消毒程序:消毒液从穿刺点向外画圈消毒,至消毒区域直径达5cm以上,待消毒液挥发干燥后(常规需30s以上)穿刺采血。
2、采血部位:通常以肘静脉,疑为细菌心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜。
3、培养瓶接种:成人用无菌器无菌穿刺取血后,排尽针头内空气,直接注入血培养瓶,勿换针头(如果第二次穿刺或用头皮针取血时,应换针头),先注于厌氧培养瓶,然后注入需氧培养瓶,轻轻混匀以防血液凝固。
推荐采用负压血培养瓶,减少污染环节。
三、标本运送所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在2h内。
如果不能及时送检,宜置于室温环境。
血培养瓶送到检验科前,不应暂存于冰箱内。
四、注意事项1、采血时机:尽可能在抗菌药物使用前或在停用抗菌药物24小时后采集,最好在寒战和发热初期采血。
2、采血次数及间隔:对需马上做抗菌治疗的急性发热性疾病或需紧急手术的患者,应立即从两臂分别取2套标本。
对感染性心内膜炎患者,在24h内取血3次,每次间隔不少于30min,必要时次日再做血培养2次。
对发热原因不明者2次抽血间隔60min,必要时于24-48小时后再抽血2次。
3、不能在静滴抗菌药物的静脉处采血,不应从留置静脉或动脉导管取血。
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血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程
1.目的
规范血培养标本细菌学采集、运送、验收标准操作规程,确保检验结果准确可靠。
2. 范围
微生物实验室受理血培养瓶。
3. 职责
3.1 医护人员正确采集血培养标本送检。
3.2 临床科室标本运输人员负责及时将血培养标本送至检验科微生物室。
2血培养指证
2.1患者出现寒战,发热(≥38℃)或低温(≤36℃).
2.2白细胞增多(>10×109/L,特别有“核左移”未成熟的或带状的白细胞增多)皮肤粘膜出血;血液病患者出现粒细胞减少(成熟的多形核白细胞<1×109/L),血小板减少等.
2.3怀疑血流感染时,医院内肺炎.
2.4留置中心静脉导管超过72h.
2.5感染性心内膜炎、骨髓炎、昏迷。
2.6有严重基础疾病、免疫缺陷伴全身感染症状、多器官衰竭。
2.7临床医生怀疑有血流感染可能的其他情况.(血压降低,CRP升高及呼吸快)。
2.8新生儿菌血症,应同时做尿液和脑脊液培养。
3血培养采集
3.1采集血量:采血量以培养基的 1/10 为宜,成人每瓶采集: 5~10ml,婴儿每瓶采集:1~2ml。
儿童每瓶采集:2~5 ml。
婴幼儿病人,一般只抽一瓶需氧瓶进行培养,无需常规做厌氧瓶。
3.2血培养份数和采血时间
3.2.1对怀疑菌血症的成人患者,推荐同时采集2-3套(不同部位)血培养标本。
婴幼儿患者,推荐同时采集2次(不同部位)血培养标本。
一次静脉采血注入到多个培养瓶中应视为单份培养或一套血培养。
多次采血不应在同一部位进行,应更换部位。
对于间歇性寒颤或
发热应在寒颤或体温高峰到来之前0.5-1小时采集血液。
对于某些全身性和局部感染患者采血培养的建议:(一瓶需氧瓶,一瓶厌氧瓶为一套,或者两套需氧瓶为一套)
3.2.2急性发热怀疑菌血症者,应尽量在抗菌药使用之前,在10分钟内于不同部位采集两套血培养标本。
3.2.3对于非急性感染,怀疑有菌血症者,应在24h内于不同部位采集2-3份血标本,每次采血的间隔不应小于3h,并应于抗菌给药前采血。
3.2.4急性细菌性心内膜炎患者,应在1-2小时内采集3份血标本,并尽量在抗菌药前采血;如果24小时培养阴性,可再采集3份以上的血标本。
入院前两周内接受抗菌药物治疗的患者,连续3天,每天采集2份。
可选用中和或吸附抗菌药物的培养瓶。
3.2.5亚急性细菌性心内膜炎患者,在24小时内不同部位采集血液标本2或3份,每次间隔大于1h;如果24小时培养阴性,可再采集2或3份以上的血标本进行培养。
3.2.6不明原因发热,可在24小时内不同部位采集血液标本2或3份,每次间隔大于1h;如果24~48小时培养阴性,可再采集2或3份以上的血标本。
3.2.7可疑菌血症或真菌菌血症,但血培养持续阴性,改变血培养条件和方法,以获得罕见的或苛养的微生物。
3.2.8儿童菌血症患者在24小时只需要采一次血标本进行培养,需特别注意穿刺部位的消毒,以区别感染菌和污染菌,由于儿童厌氧菌菌血症罕见,常规血培养不做厌氧培养。
3.3血培养瓶类型:
3.3.1蓝色:成人需氧血培养瓶。
3.3.2结红色: 成人厌氧血培养瓶。
3.3.3黄色:儿童需氧血培养瓶。
3.4采血操作流程
3.4.1.手卫生:七步洗手后手消毒。
3.4.2.血培养瓶消毒:根据检验申请单,选择合适的血培养瓶,检查血培养瓶有无破损、保质期等。
用75%酒精消毒血培养瓶塞,作用60s,待干。
3.4.3.皮肤消毒:按常规消毒穿刺部位皮肤(用70%酒精檫拭静脉穿刺点为中心向外螺旋式消毒穿刺部位皮肤作用60秒以上。
再用10%碘伏以穿刺点为中心向外螺旋式消毒穿刺部位皮肤作用60秒,同时旋转棉签,保证穿刺点及周围皮肤无菌状态,防止皮肤寄生菌或环境引起的污染),消毒范围为8×10cm,待干。
3.4.4.持穿刺针按常规方法刺入静脉,另一头刺入相应血培养瓶内,利用瓶内真空抽取血标本,如用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头直接注入血培养瓶。
3.4.5.建议每套血培养同时接种至需氧瓶和厌氧瓶,有利于微需氧菌和厌氧菌的检出。
当厌氧菌感染不能除外的病人,如腹部手术合并感染的病人,必须同时做厌氧菌血培养。
3.4.6如果不能满足推荐的采血量时,应首先满足需氧瓶;
3.4.7血液注入血培养瓶后轻摇瓶子以防血液凝固。
4运送要求
4.1所有标本采集后都应立即送往实验室,最好在2h内。
如果不能及时送检,宜置于室温环境。
血培养瓶送到检验科放入培养箱前,禁止暂存于冰箱内。
4.2送检标本应正确标注相关信息,注明采样时间和送检时间。
4.3安全防护:放标本的容器必须防漏,禁止将渗漏的标本送往实验室。
5拒收不合格血培养:
5.1检查培养瓶是否有渗漏、破损或明显污染;注意采血量不足或过多情况。
5.2检查瓶子上的标签与申请单是否相符;并在申请单上注明采血量,抗生素使用情况以及采血部位(如静脉、导管)
5.3对于延迟送检的血培养瓶应注意肉眼观察微生物生长可视信号,如发现可视信号提示有微生物生长,应该立即直接涂片镜检和划线转种。
6注意事项
6.1检验单需注明抗菌药物使用情况、血液采集时间和部位、临床诊断等患者信息。
6.2采血部位通常为肘静脉,疑为细菌性心内膜炎时以肘动脉或股动脉采血为宜,切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。
除非怀疑有导管相关的血流感染,否则不应从留置静脉或动脉导管取血因为导管易被皮肤正常菌群污染。
6.3采血次数:对于成年患者,应该同时分别在两个部位采集血标本,在两个部位分离到同样菌种才能确定时病原菌。
标本采集和运送均应在防止污染的原则一下认真进行。
6.4 当怀疑骨髓炎、脑膜炎、肺炎和肾盂肾炎合并菌血症时,在抗菌药物使用前从不同部位抽取2套血培养,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),各自做好标记。
6.5对不明原因的发热、亚急性心内膜炎,由三个?同的部位抽取3套血培养,每套间隔时间≥1小时,当培养24~48h后若为阴性,则继续采集2套血培养。
6.6导管相关血流感染:
6.6.1希望保留深静脉导管者至少采集2套血培养,其中至少一套来自外周静脉,另一套从导管采集,两个来源的采血时间必须接近(建议≤5分钟),并各自做好标记。
6.6.2决定拔除深静脉导管者从独立的2个外周静脉部位,无菌采集2套血培养,同时无菌下取出导管并剪下5cm导管末梢送实验室。
(学习的目的是增长知识,提高能力,相信一分耕耘一分收获,努力就一定可以获得应有的回报)。