重组汉坦病毒核壳蛋白的制备及其单克隆抗体的研制

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重组蛋白、抗体药物的制备

重组蛋白、抗体药物的制备

重组蛋白、抗体药物的制备
重组蛋白和抗体药物的制备是通过基因工程技术来实现的。

1. 首先,从人或动物体内提取目标蛋白或抗体的基因。

这可以通过从细胞中提取RNA并将其转录为cDNA,然后使用聚合酶链反应(PCR)扩增目标基因来完成。

2. 接下来,将扩增得到的基因插入到一个适当的表达载体中,这个载体通常是一个质粒或病毒。

载体中通常也会包含一些调控元件,如启动子和转录因子结合位点,用来控制基因的表达水平。

3. 将构建好的表达载体转染到表达宿主细胞中,常见的宿主细胞包括大肠杆菌、哺乳动物细胞等。

转染后,通过对细胞进行培养和群体的筛选,从中筛选出目标蛋白或抗体的高表达细胞株。

4. 高表达细胞株经过大规模培养,然后用适当的方法提取目标蛋白或抗体。

通常使用离心、超滤、层析等技术来纯化目标蛋白或抗体。

5. 最后,对纯化得到的目标蛋白或抗体进行结构和功能鉴定,确保其质量和活性符合要求。

然后将其经过适当的填充剂和稳定剂进行配方,制备成药物形式,如注射液、片剂等。

总的来说,重组蛋白和抗体药物的制备涉及到基因克隆、表达宿主细胞的培养和筛选、蛋白的纯化和鉴定等多个步骤,最终得到符合要求的药物形式。

这些药物在治疗疾病方面具有广泛的应用,如癌症治疗、免疫疗法等。

以汉坦病毒重组核衣壳蛋白为抗原进行elisa 血清分型的研究重点

以汉坦病毒重组核衣壳蛋白为抗原进行elisa 血清分型的研究重点

・研究原著・文章编号:$%%&’(&)(*5%%$4%)’578’%)以汉坦病毒重组核衣壳蛋白为抗原进行9:!";血清分型的研究刘京梅$<李泉根$<=.<李新军$<张伶$<刘雪林$<李森林5<9.>?@A)<=*$总后勤部防疫队疾病监督监测中心<北京<$%%%)865北京军区联勤部防疫队6)B-CDEF1-3F0G/HIE0JH0.0>K<BHLHMH030G#N, B-G-3I-<B-G-3I-O-M-DEI?9MFDJ.HM?1-3F P1-Q<"R-S-36=B-CDEF1-3F0G THE0.0>K<P1-Q P3HL-EMHFK<P1-Q<"R-S-34关键词:汉坦病毒6重组核衣壳蛋白6血清型6BUN69:!";中图分类号:O)&)A)5文献标识码:;摘要V目的以汉坦病毒重组核衣壳蛋白*#W4为抗原<对陕西、河北两省部分地区X@O"患者的血清进行9:!";分型。

方法用Y种汉坦病毒#W为抗原,建立一种间接9:!";法,并检测上述地区患者血清中特异性!>Z。

结果陕西、河北两省部分地区汉坦病毒的感染以血清型X[#为主,其次为"9U型,并检测出5例疑似BUN型感染的血清。

结论用汉坦病毒#W作抗原进行9:!";血清分型是可行的,并首次发现我国存在BUN血清型的免疫学证据。

PM-0G E-I01JH3D3F32I.-0IDCMHS CE0F-H30G ?D3FDLHE2M DM D3FH>-3H39:!";G0E M-E0FKCH3> M-ED GE01X@O"CDFH-3FM:!P+H3>’1-H$<:!\2D3’>-3$<=.<:!]H3’^23$<_X;#Z :H3>$<:!P]2-’.H3>$<:!"-3’.H35<9.>?@)<=$,-3FE-0G BHM-DM-,03FE0.D3S WE-L-3FH03<B-CDEF1-3F0G Z-3’-ED.:0>HMFHIM<W:;<N-H^H3>$%%%)865,-3FE-0G BHM-DM-,03FE0. D3S WE-L-3FH03<N-H^H3>/H.HFDEK BHMFEHIF6)B-CDEF1-3F0G/HIE0’JH0.0>K<BHLHMH030G#N,B-G-3I-<B-G-3I-O-M-DEI?9MFDJ.HM?’1-3F<"R-S-36=B-CDEF1-3F0G THE0.0>K<P1-Q P3HL-EMHFK<"R-S-3‘-KR0ESMV?D3FDLHE2M6E-I01JH3D3F32I.-0IDCMHS CE0F-H36M-E0FKC-6BUN69:!";;JMFEDIFV;H1[01Da-9:!";FKCH3>0G M-ED GE01X@O"CDFH-3FM GE01CDEFHD.SHMFEHIFM0G X-J-H D3S"?DD3bH WE0LH3I-M2MH3>?D3’FDLHE2M32I.-0IDCMHS CE0F-H3*#W4DM D3FH>-3A/-F?0SM;3H3SH’E-IF9:!";RDM-MFDJ.HM?-S JK2MH3>Y aH3SM0G F?-#W D3FH>-3M D3S MC-IHGHI!>Z H3F?-CDFH-3F c M-ED GE01DJ0L-SHMFEHIFM RDM S-F-IF-SA O-M2.FM[?-FKC-0G XD3FDLHE2M H3G-IFH03RDM1DH3.K M-E0FKC-X[#<M-I03S.K M-E0FKC-"9U D3S MH12.FD3-02M.K D.M0S-F-IF-S FR0 M-ED R?HI?R-E-S02JFG2..K H3G-IF-S RHF?M-E0FKC-BUN LHE2MA ,03I.2MH03!F HM G-DMHJ.-F?DF F?-#W D3FH>-30G?D3FDLHE2M HM2M-S G0E9:!";FKCH3>0G M-ED GE01X@O"CDFH-3FMA[?-GHEMF H11230’.0>HID.-LHS-3I-0G F?-F?HES M-E0F>C-BUN RDM SHMI0L-E-S H3I?H3DA汉坦病毒属布尼亚病毒科*N23KDLHEHSD-4<是引起肾综合征出血热*?D-10EE?D>HI G-L-E RHF?E-3D. MK3SE01-,X@O"4和汉坦病毒肺综合征*?D3FDLHE2M C2.103DEK MK3SE01-,XW"4的病原体。

一种新型冠状病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的制备方法[发明专利]

一种新型冠状病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的制备方法[发明专利]

(19)中华人民共和国国家知识产权局(12)发明专利申请(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 202011002612.6(22)申请日 2020.09.22(71)申请人 通用生物系统(安徽)有限公司地址 239000 安徽省滁州市经济技术开发区祈福寺西路69号(72)发明人 雍金贵 张志鹏 张磊 缪连军 (74)专利代理机构 合肥正则元起专利代理事务所(普通合伙) 34160代理人 杨润 周卫(51)Int.Cl.C07K 16/10(2006.01)C07K 19/00(2006.01)G01N 33/68(2006.01)G01N 33/58(2006.01)G01N 33/577(2006.01)G01N 33/569(2006.01)G01N 33/543(2006.01)(54)发明名称一种新型冠状病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的制备方法(57)摘要本发明公开了一种新型冠状病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的制备方法,包括如下步骤:S1多肽合成、S2免疫原制备、S3制备筛选抗原、S4动物免疫、S5细胞融合、S6筛选检测、S7稳定细胞株建立、S8单克隆抗体生产、S9抗体偶联、S10配对抗体筛选;通过选择了N蛋白两端的不同抗原表位分别合成多肽作为抗原,制备的单克隆抗体可实现直接配对,并在多肽合成的过程中,添加连接桥减少了空间位阻,使抗原表位充分暴露在载体蛋白表面,使得抗原能够快速识别,选择了重组蛋白作为检测抗原,避免了筛选得到的抗体只识别多肽抗原,不识别N蛋白的风险,并且通过检测N蛋白的含量,能够直接检测样品中是否含有新型冠状病毒。

权利要求书3页 说明书6页CN 112111007 A 2020.12.22C N 112111007A1.一种新型冠状病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的制备方法,其特征在于:具体包括如下步骤:1多肽合成:合成N蛋白N端15个氨基酸序列的多肽,并添加连接桥与载体蛋白结合位点,制得NP-N多肽,合成N蛋白C端aa383-aa394序列的多肽,并添加连接桥与载体蛋白结合位点,制得NP-C多肽;2免疫原制备:马来酰亚胺活化载体蛋白匙孔血蓝蛋白后,将NP-N多肽和NP-C多肽分别与活化后的匙孔血蓝蛋白,在室温条件下,进行反应2h,制得KLH-NP-N免疫原和KLH-NP-C免疫原;3制备筛选抗原:构建N蛋白原核表达载体,将表达载体C端添加6*His标签,表达纯化制得NP-His筛选抗原;4动物免疫:分别用KLH-NP-N免疫原和KLH-NP-C免疫原免疫Balb/c小鼠,每只Balb/c小鼠每次免疫100ug,免疫3次,每次间隔时间两周;5细胞融合:第三次免疫后1周,分别取KLH-NP-N和KLH-NP-C组小鼠脾脏,将脾细胞分离成单细胞悬液,与处于对数期的小鼠骨髓瘤细胞SP2/0按1:1比例混合,采用细胞融合仪进行细胞融合,融合后的KLH-NP-N和KLH-NP-C组细胞铺板至96孔细胞培养板中,添加HAT筛选试剂,培养5天后进行一次全换液;6筛选检测:将NP-His筛选抗原包被至酶标板中,分别对KLH-NP-N、KLH-NP-C组融合后的细胞上清利用NP-His筛选抗原进行间接ELISA筛选,保留阳性克隆;7稳定细胞株建立:对阳性克隆进行亚克隆,直至阳性检出率为100%,扩大培养并冻存保种,得到杂交瘤稳定细胞株;8单克隆抗体生产:用无血清发酵培养上述杂交瘤稳定细胞株,收集细胞培养上清,利用Prontein A亲和纯化单克隆抗体,制得初级N蛋白单克隆抗体;9抗体偶联:采用简易过碘酸钠法单克隆抗体与辣根过氧化物酶进行偶联,得到标记抗体;10配对抗体筛选:将未标记的抗体包被至酶标板中作为捕获抗体,将稀释后的NP-His 筛选抗原加入酶标板中,进行培养,再加入标记抗体两两进行配对检测,筛选阳性孔,得到核衣壳蛋白配对单克隆抗体对。

一种甲型流感病毒重组蛋白及其单克隆抗体的制备[发明专利]

一种甲型流感病毒重组蛋白及其单克隆抗体的制备[发明专利]

专利名称:一种甲型流感病毒重组蛋白及其单克隆抗体的制备专利类型:发明专利
发明人:胡祥叶,余铭恩,项美华,朱伟,王璐,刘清泉,吴琼杉
申请号:CN201611096411.0
申请日:20161202
公开号:CN106632619A
公开日:
20170510
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明属于生物技术领域。

本发明提供了一种甲型流感病毒重组蛋白,该重组蛋白主要包含甲型流感病毒核蛋白两个优势抗原表位。

为提高该重组蛋白在原核表达系统中的产量,采用大肠杆菌偏爱密码子将该重组蛋白氨基酸序列转换为对应的核苷酸序列,通过化学合成该核苷酸序列并构建重组表达载体。

本发明还涉及该重组蛋白单克隆抗体的制备,经过抗原免疫、细胞融合及多轮筛选后得到单克隆细胞株,纯化单克隆抗体并分别标记胶体金颗粒,通过正交实验确定最佳单抗配对组合,可用于甲型流感病毒诊断。

申请人:杭州贤至生物科技有限公司
地址:311100 浙江省杭州市余杭区余杭经济开发区振兴东路9号
国籍:CN
代理机构:杭州中平专利事务所有限公司
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一种重组抗病毒蛋白及其制备方法和应用[发明专利]

一种重组抗病毒蛋白及其制备方法和应用[发明专利]

专利名称:一种重组抗病毒蛋白及其制备方法和应用
专利类型:发明专利
发明人:马志永,刘珂,侯凤香,邵东华,魏建超,李蓓蓓,邱亚峰,史子学,缪德年,马改妮,郇贝丽,王飞飞
申请号:CN201610340303.7
申请日:20160523
公开号:CN105968211A
公开日:
20160928
专利内容由知识产权出版社提供
摘要:本发明公开了一种重组抗病毒蛋白、一种编码该重组抗病毒蛋白的核酸、一种包含该核酸的重组表达载体、一种包含该重组表达载体的转化体、一种制备该重组抗病毒蛋白的方法和该重组抗病毒蛋白在制备抗猪繁殖与呼吸综合征病毒的药物中的应用。

该重组抗病毒蛋白包括共价融合的位于N端的P9肽和位于C端的ISG20蛋白,P9肽的氨基酸序列如SEQ ID NO.1所示。

本发明的重组抗病毒蛋白可以有效地抑制PRRSV的RNA的合成并阻断PRRSV的复制,具有非常高的抗病毒能力和高度的靶标特异性,同时对细胞的毒性非常低。

申请人:中国农业科学院上海兽医研究所
地址:200241 上海市闵行区紫月路518号
国籍:CN
代理机构:上海弼兴律师事务所
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单克隆抗体制备方法共24页

单克隆抗体制备方法共24页
免疫原中的一种成分的 一个抗原决定簇
无变化
与其它抗原的交叉反应 免疫球蛋白的种类与亚类
与带有共同抗原决定簇的 抗原有部分交叉
完全是混合的
一般无。结合到共同决 定簇则是完全的
只是一种或几种
免疫球蛋白的物理性质 典型光谱
抗体的单一性质
主要步骤包括:
1)抗原制备; 2)免疫动物; 3)免疫脾细胞和骨髓瘤细胞的制备; 4)细胞融合; 5)杂交瘤细胞的选择培养; 6)杂交瘤细胞的筛选; 7)杂交瘤细胞的克隆化; 8)单克隆抗体的检定; 9)单克隆抗体的大量制备。
7~10天后可产生腹水,密切观察动物的健康状 况与腹水征象,待腹水尽可能多,而小鼠频于死 亡之前,处死小鼠,用滴管将腹水吸入试管中, 一般一只小鼠可获1~10ml腹水。也可用注射器 抽取腹水,可反复收集数次。
八:细胞的冻存与复苏----慢冻快复 (一)保存
连续传代的过程中,可能产生突变或染色体的漂移丢失产生抗体的特性。 所以必须冷藏保存一部分。保存方法如下: 1.材料 (1) 细胞:取对数生长期的细胞。 (2) 10%二甲基亚砜保护液:含10%二甲基亚砜、20%灭活胎牛血清,70 %RPMI—1640液。 (3) 20%FCS—1640培养液:含青霉素100U/ml,链霉素100μg/ml。 (4) 灭菌的2ml安瓶等
用无菌剪刀剪开皮肤,暴露腹膜
↓ 用无菌注射器注入6~8ml培养液
↓ 反复冲洗,吸出冲洗液
↓ 放入10ml离心管,1200转/分离心5~6分钟
↓ 用20%小牛血清(NCS) 的培养液混悬,调整细胞数1×105 /ml
↓ 加入96孔板,100μl/孔
↓ 放入37℃ 孵箱培养
3 免疫脾细胞
免疫脾细胞指的是处于免疫状态脾脏中B淋 巴母细胞。一般取最后一次加强免疫3天以后 的脾脏,制备成细胞悬液,

单克隆抗体的制备(详细材料)之欧阳德创编

单克隆抗体的制备(详细材料)之欧阳德创编

单克隆抗体的研制一、单克隆抗体的概念抗体是机体在抗原刺激下产生的能与该抗原特异性结合的免疫球蛋白。

常规的抗体制备是通过动物免疫并采集抗血清的方法产生的,因而抗血清通常含有针对其他无关抗原的抗体和血清中其他蛋白质成分。

一般的抗原分子大多含有多个不同的抗原决定簇,所以常规抗体也是针对多个不同抗原决定簇抗体的混合物。

即使是针对同一抗原决定簇的常规血清抗体,仍是由不同B细胞克隆产生的异质的抗体组成。

因而,常规血清抗体又称多克隆抗体(polyclonal antibody),简称多抗。

由于常规抗体的多克隆性质,加之不同批次的抗体制剂质量差异很大,使它在免疫化学试验等使用中带来许多麻烦。

因此,制备针对预定抗原的特异性均质的且能保证无限量供应的抗体是免疫化学家长期梦寐以求的目标。

随着杂交瘤技术的诞生,这一目标得以实现。

1975年,Kohler和Milstein建立了淋巴细胞杂交瘤技术,他们把用预定抗原免疫的小鼠脾细胞与能在体外培养中无限制生长的骨髓瘤细胞融合,形成B细胞杂交瘤。

这种杂交瘤细胞具有双亲细胞的特征,既像骨髓瘤细胞一样在体外培养中能无限地快速增殖且永生不死,又能像脾淋巴细胞那样合成和分泌特异性),简称单抗。

与多抗相比,单抗纯度高,专一性强、重复性好、且能持续地无限量供应。

单抗技术的问世,不仅带来了免疫学领域里的一次革命,而且它在生物医学科学的各个领域获得极广泛的应用,促进了众多学科的发展。

Kohler和Milstein两人由此杰出贡献而荣获1984年度诺贝尔生理学和医学奖。

二、杂交瘤技术(一)杂交瘤技术的诞生淋巴细胞杂交瘤技术的诞生是几十年来免疫学在理论和技术两方面发展的必然结果,抗体生成的克隆选择学说、抗体基因的研究、抗体结构与生物合成以及其多样性产生机制的揭示等,为杂交瘤技术提供了必要理论基础,同时,骨髓瘤细胞的体外培养、细胞融合与杂交细胞的筛选等提供了技术贮备。

1975年8月7日,Kohler和Milstein在英国《自然》杂志上发表了题为“分泌具有预定特异性抗体的融合细胞的持续培养”(Continuous cultures of fused cells secreting antibody of predefined specificity)的著名论文。

汉坦病毒重组核蛋白抗体用于鼠肺组织病毒抗原的检测

汉坦病毒重组核蛋白抗体用于鼠肺组织病毒抗原的检测

汉坦病毒重组核蛋白抗体用于鼠肺组织病毒抗原的检测赵凤玲;陈锦英;吕莉琨;杨东靖;李力【期刊名称】《中国人兽共患病学报》【年(卷),期】2008(024)006【摘要】目的纯化汉坦病毒(HV)SEO型L99株重组核蛋白(rNP),制备抗体用于鼠肺组织HV抗原的检测.方法重组菌株E. Coli BL21(DE3)/pET32a-L99S经IPTG 诱导表达rNP,采用Ni亲和层析方法纯化,纯化蛋白免疫日本大耳白兔,获取抗血清用于间接免疫荧光法(IFA)检测鼠肺组织的HV抗原;并与病人混合血清作为一抗的IFA结果进行比较,部分标本进一步用RT-PCR法进行验证.结果 rNP表达量占菌体总蛋白的52.2%,纯化蛋白的总回收率为22.9%;纯化蛋白Western blot分析为单带,纯度达95%以上,用其制备多克隆抗体滴度达1:512000.IFA检测59份鼠肺标本,用兔rNP抗体和病人混合血清作为一抗其阳性率分别为23.7%和16.9%;两者结果不一致的6份鼠肺经RT-PCR检测HV核酸,均与兔rNP抗体的IFA结果相一致.结论采用rNP抗体进行IFA检测,可显著地提高鼠类HV感染监测的准确性,值得推广使用.【总页数】4页(P510-513)【作者】赵凤玲;陈锦英;吕莉琨;杨东靖;李力【作者单位】天津医科大学基础医学院,天津300070;天津医科大学基础医学院,天津300070;天津市疾病预防控制中心;天津医科大学基础医学院,天津300070;天津市疾病预防控制中心【正文语种】中文【中图分类】R511【相关文献】1.重组汉坦病毒核蛋白抗原用于免疫滴金技术检测肾综合征出血热抗体的研究 [J], 李燕婷;周欣;周妍;王霞明;储峰;季青;沈荣明;沈微娟;王耀忠;朱奕奕2.量子点荧光探针用于汉坦病毒重组抗原的检测 [J], 陈琼;张云;郑锦峰;孙军红;姚苹苹;王洁;李晶;邓小昭;王长军;朱函坪3.鼠肺组织直接用于汉坦病毒S基因序列分析 [J], 李力;杨东靖;苏旭;王志锐;丁建清;陈锦英;王撷秀4.汉坦病毒重组蛋白检测血清中特异性IgA、IgM抗体的动态变化 [J], 陈宇萍;安丽敏;牛聪敏;耿志州;郭彦敏;王丽英;马士恒;孟祥芝5.汉坦病毒重组蛋白检测血清中特异性IgA、IgM抗体的动态变化 [J], 陈宇萍;安丽敏;牛聪敏;耿志州;郭彦敏;王丽英;马士恒;孟祥芝因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

汉坦病毒核蛋白核心区域高效表达及产物鉴定

汉坦病毒核蛋白核心区域高效表达及产物鉴定

汉坦病毒核蛋白核心区域高效表达及产物鉴定汉坦病毒是引起肾综合征出血热(HFRS)的主要病毒,汉坦病毒的基因由L、M、S 三个片段构成,分别编码病毒RNA聚合酶, 囊膜核蛋白G1和G2及核衣壳蛋白(简称核蛋白,Nucleocapsid Protein, NP)。

血清学研究表明,汉坦病毒核蛋白具有很强的抗原性和免疫原性,同时NP抗原可以与汉坦病毒内的多种血清型病毒的免疫血清产生交叉反应,表明汉坦病毒的NP具有共同的抗原决定族。

有鉴于此,我们对核蛋白的核心区域进行表达和纯化, 并用SDS-PAGE和Western-Blotting 对重组核蛋白进行鉴定,为其应用于诊断抗原提供技术依据。

1材料与方法1.1质粒与菌种汉坦病毒76-118株由本室保存, 表达质粒pGEX-4T-1,菌株BL21从上海申友公司购买。

1.2单克隆抗体和血清单克隆抗体由北京病毒所杭长寿教授和安徽医科大学倪大石教授惠赠;病人血清由上海市南汇区传染病医院提供。

1.3引物的设计与合成上游:GAC CAG GAA TTC GCC CAT GAG GGT CAA TTA G ;下游:TCT GAA CTC GAG GAT GAT GCT CAG CCA GTC T。

其PCR产物长度为334 bp,产物上游酶切位点为EcoRI;下游酶切位点为XhoI。

1.4模板制备从HTNV 76-118株感染的Vero-E6细胞中提取总RNA作为模板。

用引物扩增出汉坦病毒S片段核心区域334 bp的片段,通过PCR反应获得目的片段,反应步骤如下:每10 D引物溶于200 μL水中,模板取1μL溶于10 μL水中, 加样:模板 1 μL, 10X Buffer 5 μL, Mg2Cl (25mM) 3 μL,4dNTP (10 mM)1 μL,Primer-UP 1 μL, Primer-Down1 μL, Taq (5 U/μL)0.5 μL, 加水至50 μL。

猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的制备的开题报告

猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的制备的开题报告

猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的制备的开题报告1. 研究背景和意义猪是我国的重要畜牧业生产动物之一,其养殖和繁殖能力直接影响农业经济的发展。

但是,在养猪过程中,繁殖与呼吸综合征病毒的感染是不可避免的问题,因此对猪繁殖与呼吸综合征病毒的防控研究是至关重要的。

核衣壳蛋白是猪繁殖与呼吸综合征病毒的重要结构蛋白,其在病毒颗粒中起到关键作用。

研究核衣壳蛋白的功能和结构对于了解病毒的生物学特性有重要意义。

同时,开发针对核衣壳蛋白的单克隆抗体有望应用于猪繁殖与呼吸综合征病毒的诊断和防治。

因此,本研究旨在制备针对猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白的单克隆抗体,为研究该病毒的生物学特性提供支持,同时为其防治提供技术支持。

2. 研究内容和方法2.1 研究内容根据猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白的序列信息,设计并合成核衣壳蛋白的多肽抗原。

通过多次免疫小鼠,筛选出具有高水平抗体的小鼠,并从其脾细胞中分离出B细胞。

通过融合B细胞和骨髓瘤细胞,建立猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白单克隆抗体的细胞系。

2.2 研究方法(1)多肽抗原的合成采用固相合成法合成猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白的多肽抗原。

合成后的多肽抗原通过SDS-PAGE和Western blot进行验证。

(2)小鼠免疫和B细胞分离将多肽抗原通过外周注射的方式免疫小鼠。

多次免疫后,通过脾细胞分离和培养,筛选出具有高水平抗体的B细胞,并进行单克隆B细胞的分离和培养。

(3)单克隆抗体的制备和纯化将B细胞和骨髓瘤细胞融合,得到杂交瘤细胞。

通过筛选和限制性稀释,分离并纯化出猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白单克隆抗体。

3. 预期结果和意义本研究预计成功制备出针对猪繁殖与呼吸综合征病毒核衣壳蛋白的单克隆抗体,为该病毒的生物学研究和防治提供技术支持。

该单克隆抗体还有望广泛应用于猪繁殖与呼吸综合征病毒的诊断和防治,具有重要的社会和经济意义。

SARS冠状病毒核衣壳蛋白的重组表达及其单克隆抗体的制备

SARS冠状病毒核衣壳蛋白的重组表达及其单克隆抗体的制备

SARS冠状病毒核衣壳蛋白的重组表达及其单克隆抗体的制备王平;黄庆生;薛小平;雷迎峰;王海涛;任君萍;丁天兵;徐志凯【期刊名称】《第四军医大学学报》【年(卷),期】2005(026)003【摘要】目的:表达SARS冠状病毒核衣壳蛋白(N蛋白),并以表达产物为免疫原制备特异性单克隆抗体(mAb).方法:采用RT PCR方法,从灭活的病毒抗原标本中扩增编码N蛋白的基因.测序确认后,再亚克隆至原核表达载体中.从SDS PAGE凝胶中回收原核表达产物后免疫BALB/c小鼠,经融合、筛选制备特异性mAb.结果:从标本中扩增出1269bp的DNA,测序结果证实为N蛋白基因.将该基因克隆至原核表达载体中后,在大肠杆菌中获得了较好的表达.表达产物经SDS PAGE后,在Mr约为43000处可见1条明显的诱导表达带.Westernblot的结果表明,该电泳带与SARS 患者的恢复期血清呈特异的免疫反应.从 SDS PAGE凝胶中回收表达产物并免疫BALB/c小鼠,制备出3株抗N蛋白的mAb.这些mAb与SDS PAGE凝胶上Mr 约为 43000的蛋白带也呈现很强的免疫反应.结论:所获的重组N蛋白及特异性mAb,将为进一步建立SARS病毒感染早期诊断的方法奠定了基础.【总页数】1页(P205)【作者】王平;黄庆生;薛小平;雷迎峰;王海涛;任君萍;丁天兵;徐志凯【作者单位】无【正文语种】中文【中图分类】R【相关文献】1.重组SARS-CoV核衣壳蛋白的表达纯化及其单克隆抗体的制备鉴定 [J], 张娟;余晓林;陈维贤;陶鹏;唐霓;黄爱龙;郑建2.SARS冠状病毒囊膜E蛋白的重组表达与单克隆抗体制备 [J], 王平;黄庆生;丁天兵;任君萍;宋建华;徐志凯3.施马伦贝格病毒核衣壳蛋白的表达及单克隆抗体制备 [J], 张永宁;宋姗姗;吴绍强;林祥梅4.抗犬瘟热病毒重组核衣壳蛋白单克隆抗体的制备及鉴定 [J], 周洁;姜骞;张洪英;刘家森;刘立奎;陈洪岩;韩凌霞;司昌德;曲连东5.赤羽病病毒核衣壳蛋白原核表达及单克隆抗体制备 [J], 魏方;陈冬杰;林祥梅;吴绍强因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

汉坦病毒GM04-38株包膜糖蛋白基因表达载体的构建及表达

汉坦病毒GM04-38株包膜糖蛋白基因表达载体的构建及表达

汉坦病毒GM04-38株包膜糖蛋白基因表达载体的构建及表达王炳花;陶泽新;王丽娟;曹海霞;王志玉【期刊名称】《山东大学学报:医学版》【年(卷),期】2008(46)1【摘要】目的构建汉坦病毒GM04-38株包膜糖蛋白G1、G2的真核表达载体并将其在Vero E6细胞中进行表达,观察细胞融合现象。

方法采用PCR和基因克隆技术,将GM04-38株G1、G2基因分别克隆到表达载体pCAGGS/MCS,酶切和测序鉴定正确后,将表达载体pCAGGS-G1、pCAGGS-G2共转染Vero E6细胞,酸性MEM处理后观察细胞融合现象的产生,并以间接免疫荧光试验(IFA)观察糖蛋白的表达情况。

结果显示在Vero E6细胞中成功表达出糖蛋白G1、G2,IFA显示荧光信号分布在细胞浆中。

二者的共表达可产生良好的生物学活性,在偏酸性条件下引起Vero E6细胞发生融合,而转染pCAGGS-NP的细胞没有融合现象发生。

共表达也未出现明显的促进效应。

结论成功构建了糖蛋白G1、G2的表达载体,并在Vero E6细胞中呈有效表达,二者的共表达可在偏酸性条件下引起Vero E6细胞发生融合。

【总页数】5页(P68-71)【关键词】汉坦病毒;包膜糖蛋白;表达载体;细胞融合【作者】王炳花;陶泽新;王丽娟;曹海霞;王志玉【作者单位】山东大学公共卫生学院病毒学研究室;山东省疾病预防控制中心【正文语种】中文【中图分类】R373.32【相关文献】1.汉坦病毒汉城型浙37株G1、G2包膜糖蛋白基因重组体的构建及在真核细胞中的表达 [J], 黄玉仙;翁心华;朱函坪;瞿涤2.汉坦病毒H8205株包膜糖蛋白G2-IL-2嵌合基因的稳定表达 [J], 朱振华;黄汉菊3.HCV包膜糖蛋白基因真核表达载体的构建及其在HepG2中的瞬时表达 [J], 张建敏;姚敏;吕欣;黄小军;杨敬;雷迎峰;兰海云;汪爱勤;尹文4.汉坦病毒GM04-38株包膜糖蛋白M的基因克隆与序列分析 [J], 宋绍霞;王志玉;毕振强;陶泽新;王志强;王宇露;宋艳艳;王桂亭5.汉坦病毒H8205株G1P基因片段重组杆状病毒表达载体的构建及表达 [J], 谭刚;常国辉;刘伯华;刘洪;韩伟国;吕富双;康晓萍;张雨;杨保安;秦鄂德;祝庆余因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

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论 著重组汉坦病毒核壳蛋白的制备及其单克隆抗体的研制3黄汉菊1 王小红1 杨 泗1 黄庆华1朱慧芬2 沈关心2 郭兆彪3 杨瑞馥31 同济医科大学基础医学院微生物学教研室,武汉 4300302 同济医科大学基础医学院免疫学教研室,武汉 430030 3 军事医学科学院微生物流行病研究所,北京 100071 摘要 将PCR 扩增的H TV 762118RNA 小片段的c DNA 克隆插入到载体pD S 56 RBS 2(O )26H is 中,通过IPT G 诱导表达以及镍螯合层析纯化重组N P ,经过SD S 2PA GE 、免疫转印和EL ISA 方法分析其蛋白特性,证实该重组N P 与毒粒N P 相同,均为49.6ku ,能与肾综合征出血热(H FR S )患者血清产生特异性反应。

以此重组N P 作为抗原制备抗N P 单克隆抗体,获得两株持续稳定分泌单克隆抗体的杂交瘤细胞株。

用抗N P M c A b 建立检测Ig M 抗体的EL ISA 捕获法。

证实纯化重组N P 作为抗原,避免了组织培养病毒的感染性和非特异性以及难以标准化的缺点。

所建立的EL ISA 捕获法检测H FR S 患者血清中Ig M 抗体的方法特异性强、敏感性高,可作为H FR S 的早期诊断试剂。

关键词 汉坦病毒; 重组N P 蛋白; 抗体,单克隆中图法分类号 R 373, Q 51Prepara tion of Recom b i nan t Nucleocapsid Prote i n of Han tav irusand the D evelopm en t of The ir M onoclona l An tibod iesH uang H an ju ,W ang X iaohong ,Yang Si et a lD ep a rt m en t of M icrobiology ,S chool of B asic M ed ica l S ciences , T ongj i M ed ica l U n iversity ,W uhan 430030Abstract T he c DNA ,the s m all fragm en t of H an taviru s (H TV )762118RNA am p lified by reverse tran scri p ti on po lym erase chain reacti on (R T 2PCR ),w as cloned in to the exp ressi on vecto r pD S 56 RB S 2(O )26H is to largely exp ress recom b inan t nucleocap sid p ro tein (r N P ),w h ich induced by IPT G ,and pu ri 2fied by affin ity ch rom atograp hy on a n ickel 2chelate resin ,in E scherich ia coli .T he characteristics of r N P w ere analyzed by SD S 2PA GE ,i m m unob lo t and EL ISA .T he resu lts dem on strated that bo th the r N P and viral N P have the sam e an tigen icity ,m o lecu lar w eigh t (49.6ku )and specific com b inati on w ith the sera from p atien ts w ith hem o rrhagic fever w ith renal syndrom e viru s (H FR S ).W ith the r N P as an tigen ,tw o hyb ridom as secreting an ti 2N P m onoclonal an tibodies persisten tly and stab ly w ere ob tained .A Λ2cap tu re EL ISA w as set up to detect Ig M an tibodies to H TV ,and it w as testified that th is m ethod u tilizing pu rified r N P as diagno stic an tigen cou ld avo id handling the infecti ou s viru s ,non 2specificity and difficu lties of stan 2dardizati on and so on .So ,th is novel Λ2cap tu re EL ISA based on r N P can be taken fo r sen sitive and specific early diagno sis of H FR S .Key words H an taviru s ; recom b inan t p ro tein s ; an tibodies ,m onoclonal3 国家自然科学基金资助项目(N o .39370657)黄汉菊,女,1951年生,副教授。

第28卷第1期第1页1999年 2月 同济医科大学学报A cta U niv M ed Tongji V o l .28 N o.1 P.1Feb . 1999 汉坦病毒(H an taan viru s)又名肾综合征出血热病毒(hem o rrhagic fever w ith renal syndrom e viru s,H FR S),是流行性出血热的病原体。

本病主要病变是全身小血管和毛细血管广泛受损,临床上以发热、出血、低血压和蛋白尿为特征,病死率高达10%。

患者感染后抗体出现早,发热第2d即可测出血清中的Ig M抗体,第7~10d达高峰。

IgG抗体在第3~4d出现,10~14d达高峰。

因此,抗H FR S Ig M抗体的检测可作为早期诊断指标。

已知H an taan病毒的基因组分为L、M、S3个基因片段,分别编码依赖RNA的RNA多聚酶、G1、G2外膜糖蛋白、核壳蛋白[1]。

S基因片段编码核壳蛋白,是抗体的主要识别抗原,是目前H FR S理想的诊断用抗原,已分别在原核系统、杆状病毒、痘苗病毒中进行了表达[2]。

1 材料与方法1.1 菌株与培养基E.Co li SG13009株,H TV2762118株,载体pD S56 RB S 2(O)26H is(德国Em st2Rodenw aldt 公司产品),L u ria2B ertan i(LB)培养基。

1.2 试剂材料聚乙二醇(PEG,MW20000),T riti on2x2100,三羟甲基氨基甲烷(T ris),中分子量标准蛋白(MW14 286~96233ku),乙二胺四乙酸(ED TA),IPT G (MW238.3),卡那霉素(Kanam ycin30m g L),氨苄青霉素(am p ic2illin100m g L),盐酸胍(Guan i2 dine,HC l,MW95.53),尿素(u rea),以上试剂均购自Sigm a公司,镍螯合凝胶(N i2+2N TA2sepharo se,购自德国Q iaexp ress公司),抗人Ig M HR P购自军事医学科学院微生物流行病研究所。

1.3 血清标本均为H FR S(22例)发病期1~7d的血清,其中湖北省随州市4例,湖北省黄冈地区4例,武汉市黄陂县6例,安徽省8例。

军事医学科学院微生物流行病研究所10例患者作为阳性对照。

正常人血清来自本校职工体检人员。

1.4 方法1.4.1 重组核壳蛋白(recom b inan t N P,r N P)表达载体的构建及r N P的纯化:通过PCR扩增获得H TV2762118RNA小片段的c DNA克隆(图1)经B am H 和B gl 双酶切后插入到载体pD S56 RB S 2(O)26H is中,再通过转化导入E.Co li SG13009株。

将表达克隆接种于含有卡那霉素、氨苄青霉素的LB培养基中旋转培养过夜,并经IPT G诱导培养5h后,收获细菌经溶菌酶裂解和超声粉碎等预处理后,将所获得的非溶解性表达产物溶于含8m o l L 尿素的T ris HC l缓冲液中,以10m l h速度泵进镍螯合柱内,经不同梯度的pH缓冲液洗脱,收集含重组蛋白质的组分,用含1m o l L尿素的9g L N aC l 缓冲液透析后测定其含量。

图1 PCR扩增H TV2762118c DNA片段电泳①汉坦病毒株 ②核酸标准 ③重组质粒1.4.2 N P蛋白的鉴定:采用SD S变性不连续聚丙烯酰胺凝胶电泳(SD S2PA GE)鉴定N P蛋白。

标准分子量蛋白按1Λg Λl的比例配制,加入20Λl。

待检蛋白质样品每孔加入20Λl,电泳约5~6h,直至溴酚蓝指示剂前沿下至凝胶末端1c m处,即停止电泳。

将胶块放在固定液中浸泡1h(57.0g三氯醋酸,17.0g磺基水杨酸,150m l甲醇,加水至500 m l)。

用50m l L甲醇和75m l L乙醇混合液脱色。

蛋白质混合样品经SD S2PA GE后,分离为不同的条带,亦可将PA GE胶上的蛋白条带转移到N C 膜上,将N C膜与抗血清一起孵育,使抗血清(第一抗体)与待检的抗原(特异的蛋白条带)反应,再与酶标记的第二抗体反应1.4.3 抗N P的M c A b的制备:用上述纯化重组蛋白作为抗原,按常规方法免疫B alb c小鼠,取免疫小鼠脾细胞与小鼠骨髓瘤细胞SP2 O融合,共通过4次融合、克隆、亚克隆[3]等过程,筛选出抗体阳性细胞克隆10株,将其制备腹水通过SPA2 sep haro se CL4B层析柱纯化抗N P的M c A b。

1.4.4 EL ISA捕获法:采取2种方法测试,其一,以抗人Ig M抗体包被EL ISA平板孔(1∶1000),4℃过夜,封闭后依次加入患者血清,纯化的N P抗原(10Λg m l,100Λl 孔)、酶标抗N P M c A b(本室标记);其二,以抗N P M c A b包被EL ISA平板孔(1∶1000),4℃过夜,封闭后依次加入纯化的N P抗原,患者血清,酶标抗人Ig M,加底物O PD显色,测定OD值,每次检测均设有阳性和阴性参考血清对・2・同济医科大学学报 1999年2月第28卷第1期照。

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