标本采集和送检原则精编版
检验标本采集、运送规范
检验标本采集、运送规范
一、临床检验部门应制定标本采集规范,包括对患者的准备要求、标本采集的方式与途径、标本处理、运送、保存环境等内容,要对相关医务人员进行教育与培训,使员工能知晓和遵循,避免由于标本采集环节因素而影响分析前的质量控制。遵循,避免由于标本采集环节因素而影响分析前的质量控制。
二、标本采集前做好事前向患者告知,正确识别患者无误,按照正确的标本采集途径、规范的操作方法、采集合格的标本。
三、采集到的标本应有唯一性的识别标志。
四、标本应在规定的时限内及时送达检测,避免因采集不当、暂存环境与时间的延缓,而影响标本检测结果的真实性,不得将明知是可能是“失真的”检验标本送检。
五、建立标本验收、登记、处理的工作程序,对不符合标本采集规范的标本应及时通报送检医师或其它相关人员明确处理意见,不得上机检测,更不得将明知是“失真的”检验结果签发报送临床,危及救治质量与病人安全。
六、为确保生物安全性与严防医院感染,应当使用密闭容器收集标本,开放型容器收集标本应当使用加盖的标本运送箱,加盖封闭放置标本及运送,符合生物安全性要求。应当根据不同的检查项目将标本分开放置于标本箱内,避免混淆,血、尿标本分开放置,盛放标本工具应当加盖密闭,检查申请单不得与标本容器卷裹混放。
七、具有高危传染性标本、传染病医院的标本以及急诊抢救病人的标本,在采集后应由专人用专门盛具及时送检。
八、标本运送人员在拿取标本时必须佩带防护手套,接触标本后,按要求彻底清洗双手,防止污染。
九、各类标本在采集、暂存与运送过程中发生标本洒漏、标本容器破损等紧急意外事件,有紧急处理的程序与措施。
标本采集与送检
► 便常规: 要求挑取带有脓血的部位 , 量在0.5~ 1.0g► 便潜血: 要求禁食三天带油腻的食物 , 任意留取0.5~ 1.0g► 注意: 婴幼儿 、 卧床病人留取大便时 , 特别
是稀便不要与尿液混合 , 同时要注意不能用纸巾一类的包裹 , 以免水 分丢失。
≥60min , 必要时24~48h后再抽血
30分钟 , 必要时次日在做
1次抽血阳性率10.8%
2此抽血阳性率
据统计
14.8%
次。
≥
2
5.无菌操作:从皮肤消毒、标本采集、运送、分离各环节都要严格无菌操作 , 避免污染 。用头皮针抽血时 , 应更换针头再将血注入培养瓶。
2小时 , 要求在低室温下要及时送检。
全血标本室温放置1小时 , 血糖值下降
15%
3-6%
► 尿液: 24小时尿糖 、24小时尿蛋白 、肌酐清除率要求病人留取24小时的全部尿液 , 必须向病人讲清楚留尿的方 法 , 其方法是: 晨起6点排净尿液弃去不要 , 开始计时,随后每次排尿都要存放在同一个容器内 , 特别是大便前一定要先排尿后再解大便 , 直到次日早6点排净尿液放入容 器 , 充分混匀后取10ml送检 , 夏季需要在容器内放防腐剂二甲苯10ml 。► 脑脊液 、胸腹水: 要求无菌采集 , 及时送检 , 如果是血性脑脊液或胸腹水 , 可以放肝素抗凝管内混匀后送检 。标本 量不能少于2ml 。
检验标本采集和送检的基本原则
检验标本采集和送检的基本原则
正确的标本采集、储存、运送是保证临床实验结果准确性的关键因素之一,临床患者标本的采集和送检(容器、方法、储存、运送)直接关系到检验结果的准确性。因此,规范的标本采集和送检方式尤为重要。
标本采集的基本原则是保持离体标本质和量的完整性。任何离开人体的标本,要尽可能保持当时的生理或病理的固有状态,使标本的有形部分和无形成分基本不变。因此,标本采集前和采集后需根据检验项目的特点,进行各种方法的处理。标本采集后越能及时送检,检验结果就越可靠。
标本采集和送检的基本原则包括:
①准确、全面、清楚地输入检验申请单和检验项目。
②根据检验项目准确选择收集标本的容器,1份标本附1张检验申请单或1个条码。
③留取、采集标本前后仔细认真核对患者、标本容器、申请单、条码上的姓名及ID号是否一致;确认患者符合检验前要求,例如:禁食、用药情况、在预先规定的时间或时间间隔采集样品等。
④标本采集后按照标本贮存要求立即送检,尽量减少标本贮存和运输时间。
⑤请勿利用患者申请单送检他人或动物等不相符标本,这样会造成难以查找原因的错误,甚至严重误导诊疗过程。
⑥标本送检及报告时间见后续检验项目更新。
检验科标本采集原则
检验科标本采集原则
科学的标本采集对于医学检验的准确性和可靠性至关重要。标本采集是整个检验过程中的第一步,其质量对于后续的实验和结果分析有着至关重要的影响。下面将从标本采集的原则、方法、常见的注意事项以及采集过程中的一些常见问题进行详细介绍。
一、标本采集的原则:
1.根据检测项目的要求选择正确的标本类型:不同的检测项目需要不同类型的标本,如血液、尿液、粪便、组织等。
2.标本采集时间:根据不同的检测项目确定采集标本时机,例如是否需要空腹等。
3.标本采集前的准备:按照要求确定是否需要特殊的饮食、服药、饮水等。
4.标本采集方法的选择:根据标本类型和检测项目选择适合的采集方法,例如静脉采血、尿液采集、组织切片等。
5.标本采集的数量:根据检测项目的要求确定采集的标本数量,保证有足够的样本进行检测。
6.标本采集的保存与运输:标本采集后,根据要求进行保存和运输,保证标本的稳定性和完整性。
二、标本采集的方法:
1.血液标本采集:常用的采集方法包括静脉采血和指尖采血,采集前要确保患者的手部干净,使用无菌的采血具进行采集。
2.尿液标本采集:采集前要通知患者对尿液容器进行清洁,采集中尽量避免污染,采集结束后要将标本保存在合适的温度下。
3.粪便标本采集:采集前要告知患者关于饮食和服药的限制,采集时使用无菌容器,尽量避免尿液等其他物质的污染。
4.组织标本采集:常见的采集方法包括活检和手术切除组织,对于手术切除组织的采集要确保组织的完整性和准确性。
三、标本采集的注意事项:
1.标本采集前的准备工作要做好,包括通知患者关于饮食和其他限制的要求、确认采集时间、准备采样工具等。
标本采集与送检
第四篇 第四章 排泄物、分泌物及体液检查
一、尿液一般检查
(四)尿液有形成分检查
4.尿液有形成分定量检查
尿液有形成分定量检查参考区间
检查方法
Fast Read-10尿沉渣计数板 (个/μl)
红细胞
男:0~4 女:0~9
白细胞
男 0~ 5 女0~12
管型
-
1小时细胞排泄率测定(万/h) 男性<3
女性<4
2、尿糖 当血糖浓度>8.8mmol/L(160mg/L),尿中葡萄糖含量 增高,糖定性试验为阳性时称 糖尿。 【参考区间】 定性:阴性。
【临床意义】
第四篇 第四章 排泄物、分泌物及体液检查
(三)化学检查
3、尿酮体检查
酮体:乙酰乙酸、B-羟丁酸、丙酮 酮尿:过多的酮体从尿中排出称酮尿
【临床意义】
①糖尿病酮尿 ②非糖尿病酮尿
(三)化学检查
1、酸碱反应
【参考值】成人:晨尿pH 5.5~6.5,平均pH 6.0 随机尿pH 4.5~8.0;新生儿pH 5.0~7.0
【临床意义】
1)pH减低 2)pH升高 3)药物用量监测
第四篇 第四章 排泄物、分泌物及体液检查
一、尿液一般检查
(三)化学检查 1、尿蛋白 尿中蛋白质的含量>150mg/24h,用一般定性检查呈阳性反 应者,称蛋白尿。 【参考区间】 定量:<150mg/24h;尿蛋白定性:阴性。 【临床意义】 (1)生理性蛋白尿: 1)食入性蛋白尿: 2)功能性蛋白尿: 3)体位性蛋白质尿:
标本送检与保存
标本送检与保存
在诊断科室,检验结果是开展治疗和预后评价的依据,标本的采集、保存、送检、检验,均
会影响检验结果。以常见的血液标本、尿液标本为例,保存和送检的要求有哪些?下面对此
进行简单论述。
1.标本的采集送检原则
总结起来,标本的采集送检原则是:①无菌操作,避免细菌微生物污染。②根据患者的病
情不同,采集不同部位的标本。③采集标本的时间,要在使用药物之前。如果患者使用抗菌素,分离培养时要加入药物拮抗剂;采集时不能使用消毒剂,必要时可用生理盐水冲洗,擦
干后再取材。④为提高样本的代表性、有效性,尽可能采集病变部位的材料。⑤标本必须
新鲜,采集后及时送检。⑥送检过程中,多数菌类需要冷藏送运,少数不耐寒菌类需要保温;粪便标本要放在甘油缓冲盐水保存液中,不要对标本剧烈晃动。
2.血液标本的种类、保存、送检、交接要求
(1)种类。①全血。包括静脉全血、动脉全血、毛细血管全血等,以静脉全血为例,是从肘
静脉、腕静脉、股静脉、颈外静脉等部位采集得到。②血浆。全血经抗凝、离心处理后,就
能得到血浆,用于测定化学成分和凝血试验。③血清。血浆分离后得到的液体,主要用于化
学和免疫学检测。④血细胞成分。在特殊的检验项目中,需要特定细胞作为标本,例如单个
核细胞、粒细胞等。
(2)保存。血液标本采集后,保存要求是:①标本管直立、静置,避免振荡、摔落。②保存
在阴凉处,避免阳光直射,防止胆红素、尿酸等指标分解后,导致含量降低。③如果不能立
即检验,例如生化免疫项目,标本离心后不要开盖,在2-8℃环境下保存,减少温度对标本
的影响;血常规、脑脊液培养标本,则在室温下保存。④特定检测项目的血液标本,要在低
标本采集和送检原则
正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性,同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。
Ø采样时机
抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样
Ø采样方法
采集无菌部位的标本应严格无菌操作,非无菌部位尽量减少正常菌群的污染,采样量足。
Ø采样容器
专用的无菌,防渗漏,有盖,无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
Ø送检
尽快送检,一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存,但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15~30分钟内送检,防止挥发和干燥。微生物检查的标本采集和运送原则
1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查.
2。尽量在抗菌药物使用前,或停药3至5天后采集标本,如不能停用抗菌药物,应于下次抗菌药物应用前采集。应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本.
3.选择正确的解剖部位,并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4。采样时应严格执行无菌操作,将污染可能降至最低.
5。收集真正感染的病灶处的标本,且避免邻近区域常居菌群的污染。6。采用专用无菌容器收集标本。容器须灭菌处理,防止渗漏,但不得使用消毒剂。标本中不可添加防腐剂.
7.采样后应立即送检,最好在2h内。如不能及时送检,应将标本置于适当的储存环境待送,但不超过24小时。对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15~30分钟内送检,防止挥发和干燥。
临床检验标本采集的原则
后按粪便常规标本收集法留取标本及时送检。
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(三)寄生虫与虫卵标本采集法:携用物至床旁,核对床号、 姓名,向患者解释,根据检验目的采取不同的方法。 (1)检查寄生虫虫卯时,应在不同部位取带血及黏液的粪便 标本5~10g送检。 (2)服驱虫剂后或作血吸虫孵化检查,应留全部粪便,及时 送检。 (3)查阿米巴原虫,在采集标本前用热水将便盆加温,便后 连同便盆立即送检,因阿米巴原虫在低温下可失去活力而 难以找到。 (四)培养标本采集法:携用物至床旁,核对床号、姓名,向 患者解释,嘱患者排空膀胱后解便于无菌便盆内,以无菌 棉签取中央部分或脓血黏液部分少许,置于培养瓶内,立 即送检。
(6)整理床单位,清理用物,将标本连同化验单立即送检。
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(三)真空采血法:利用医学检验使用的真空采血器进行采血, 整个采血过程无血液外溢和污染,无容器之间的转移, 减少了溶血现象,使检验结果更加真实,同时能避免对 医护人员的感染和患者血标本间的交叉污染。
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真空采血器
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固醇、17-酮类固醇等
培养标本 查找尿液中的病原体
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二、操作前准确
(1)评估患者 患者排尿情况、意识、心理状况、理解与合作 程度,指导患者正确收集尿标本及告知注意事项。 (2)环境准备 关好门窗,屏风遮挡。 (3)护士准备 (4)用物准备 种类 常规标本 12h或24h尿标本 培养标本 护士应着装整洁,掌握沟通交流技巧。 选择规定标本容器并贴好标签。
标本的采集及送检制度
标本的采集及送检制度
一、目的:确保病人及时、安全地接受检查,并保证各项标本的
采集质量符合要求。
二、适用范围
适用于住院病人及急诊科病人的标本送检。
三、要求
1 接到医嘱需求后确认医嘱的有效性。
2 记录识别资料,选择正确的标本容器。
3 检查病人信息,确认采集标本的时间,告知病人注意事项。
4 留取标本前认真核对,正确采集标本。
5 急需检查者,应及时采集和送检标本。
6 各项特殊检查由送、收登记。
7、急需检查采集标本流程图见护理工作流程系列。
见证取样和送检制度
见证取样和送检制度
取样和送检制度是现代科学实验研究的重要环节,其目的是确保实验和检测的结果准确可靠。本文将重点探讨取样和送检制度的原则、方法和实施过程,并以此为基础提出改进措施。
一、取样制度
科学实验研究的取样制度是取得实验样本的过程,其重要性不言而喻。为了确保取样结果的可靠性,我们需要遵循以下原则:
1. 代表性原则:取样应尽量保证样品能够代表整体。具体来说,取样应具备全面性、随机性和平衡性。全面性表示取样应涵盖实验对象的各个方面,随机性表示样品应无规律地选取,平衡性表示样品的数量应合理分配。
2. 大样本原则:样本的数量应足够大,以提高取样结果的可靠性和精确性。大样本可以降低抽样误差的可能性,从而更好地反映实验对象的真实情况。
3. 定量化原则:取样应尽量采用定量化的方法进行,以便更加客观地评估取样结果。常见的定量化方法包括计数法、测量法和问卷调查法等。
为了实施取样制度,我们可以采用以下方法:
1. 确定取样对象:明确实验研究的对象,包括研究的范围、要素和特征等。只有明确对象,才能有针对性地进行取样。
2. 制定取样方案:根据实验研究的目的和要求,制定合理的取样方案。方案中应包含取样的数量、方法、地点和时间等重要信息。
3. 实施取样工作:按照取样方案,进行实际的取样工作。在进行取样时,要严格按照取样原则进行,确保取样结果的准确性。
4. 标识和保存样品:对取样得到的样品进行标识和保存,以便于后续的实验和检测工作。
二、送检制度
科学实验研究的送检制度是将样品送往实验室进行检测分析的过程,其目的是验证实验结果的准确性和可靠性。为了确保送检结果的准确性,我们需要遵循以下原则:
标本采集与送检
血培养采集方法——3.采血
用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头(如行第二次穿 刺,换针头),直接注入血培养瓶。 不应将抗凝血注入血培养瓶。
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血培养采集方法——4.采血后处理
颠倒混匀以防血液凝固
完成工作后洗手
2h之内送至实验室; 如不能及时送检,应室温下保存 切勿冷藏或冷冻 保证运送装置安全
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《WS/T503-2017 临床微生物实验血培养操作规范》
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血培养采集方法——1.采血前准备
采集静脉血
手卫生
去除血培养瓶的塑料瓶帽 瓶口消毒
戴无菌乳胶手套
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血培养采集方法——2.消毒方法
3.6.4 穿刺点皮肤消毒:
a)三步法: 第一 步:75%乙醇擦拭静脉穿刺部位,待干 30s以上; 第二步:1%~2%碘首作用 30s或 1%碘伏作用 60s,从穿刺点向外画圈消毒,消毒区域直径达 3cm 以上; 第三步:75%乙醇擦拭碘首或碘伏消毒过的区域进行脱碘。 对碘过敏的患者,在第一步基础上再用 75%乙醇消毒 60s,待酒精挥发干燥后采血。 b)一 步法: 0.5%葡萄糖酸洗必泰作用 30s(不适用于2个月以内的新生儿); 70%异丙醇消毒后自然干燥(适用于 2个月以内的新生儿)。 注意穿刺点消毒后不可再碰触。 注:其他消毒剂需要进行消毒能力和适用性验证后才可使用。
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尿液标本采集方法—清洁中段尿
标本采集和送检
4.采血前禁食8-12h,但禁食不能超过24h;例如胆红素空腹48h可增加 240%,血糖偏低;一般要求晚饭后禁食,次日清晨采血。
5.吸烟饮酒对检验结果都有影响;
6.药物的药理学或毒理学的作用引起生理、生化、病理的变化,从而影 响检验结果;有些药物的物理化学性质与标本中某些成分作用,或者 与试剂发生反应,或者药物本身带有颜色影响比色反应,从而影响检 验结果。 7.体位变化也影响检验结果。从卧位到坐位或站位时,水分从血液向组 织间隙移动,导致大分子物质蛋白质假性增高。
低室温下要及时送检。
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二、痰培养标本的采集和送检
1.标本采集:要求患者清晨留 取,先用清水漱口三次, 之后用力自然咳出。 2.标本运送:标本直接吐在专 用痰盒内立即送检,最好 在20min内送达细菌室。 3.标本质量:显微镜涂片检查
1~3类为唾液不做培养,重留标本; ► 4~5类为合格标本; ► 6类为气管穿刺液,如未见到WBC,而扁 平上皮>10/LP,Leabharlann Baidu应重新留取标本。
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标本采集
1.把握时机:血液中许多成分在一天中会出现周期性生理变 化,如胆红素、铁清晨最高;生长激素入睡后出现短时高 峰;血浆蛋白在夜间降低;心肌标志物cTnT、cTnI在发病 后3h开始升高,1-2周逐渐恢复,采血时机4-6h为宜。此 外,还应考虑到饮食、患者状态、用药、输液等情况,一 般在早晨空腹、安静状态、用药和输液前采集标本。 2.选择适当容器:根据项目需要选择相应的促凝管或抗凝管, 适当的混匀等; 3.止血带时间:不宜超过2min,禁止用力在采血部位拍打, 穿刺后患者不要握拳,皮肤消毒后,用干棉签擦干再行穿 刺,静脉穿刺要求一次成功,避免同一部位反复穿刺。 4.唯一性标志:建立申请单与标本容器的唯一对应标识。 5.送检:要及时、避免污染。
标本采集的原则
标本采集的原则
标本采集是医学检验的重要环节,为保证准确性和安全性,需要遵循以下原则:
1. 确定采集时间和方法:根据检查项目选择最佳采集时间和方法,避免影响结果的因素干扰。
2. 器具准备:准备好所有需要使用的器具,在采集前进行消毒和清洁。
3. 采集部位:根据检查项目选择最佳采集部位,避免影响结果的因素干扰。
4. 采集方法:按照标准的采集方法进行操作,避免采集不足或过度采集。
5. 采集顺序:按照从清洁到脏或从浅到深的顺序进行采集,避免交叉污染。
6. 采集标记:将采集标本的时间、采集部位等信息清晰记录并标记,避免混淆或误判。
7. 采集者要求:采集者应当具有相应的专业知识和技能,操作前应进行充分训练和培训,确保采集的准确性和安全性。
8. 标本保存:采集完成后,立即将标本放入相应的保存液中保存,并按照要求送往医学检验实验室。
检验标本采集及送检要求
谢谢~
前列腺液标本
• 医生通过肛门指诊,用前列腺按摩法采集 前列腺液。在嘱病人排尿后,先自上而下 纵向按摩前列腺左右两叶各2~3次,或从 前列腺的两侧向中间沟各按摩2~3次(不 可往返按摩),再挤压会阴部尿道,使前 列腺液从尿道口滴出。直接将前列腺液 (第一滴弃去)滴于载玻片上及时送检。 如需做细菌培养,应先消毒尿道口(方法 详见尿培养标本采集),用无菌干燥容器 收集标本。
• 尿中盐类因久置而析出结晶干扰显微镜检 查,从而影响尿液的结果判断。
尿液标本的留取
• 2. 乳糜尿标本
• 用于丝虫病和某些肿瘤病人的诊断。尿标 本可随时留取,注意事项同尿常规标本, 切忌混有油迹。
尿液标本的留取
• 3. 24小时尿标本 • 24小时尿标本可用于检测24小时尿生化电 解质(U-K、U-Na、U-Cl、U-Urea、U-Cr和 24小时尿蛋白(U-Pro)定量,需添加防腐 剂;24小时U-Ca、U-P,24小时尿轻链检查 不可添加防腐剂。
检验科标本拒收规则
• 10.出凝血项目标本、血常规标本出现凝块。 • 11.标本离心后出现溶血(除外新生儿、烧 伤及血管内溶血患者) • 12.严重脂血标本,经电话联系正在或刚刚 输完脂肪乳<4h的,若为危急抢救患者, 则仅报告急诊项目,但对高速离心后检测 仪器仍有报警符号的则不能报告。
检验科标本拒收规则
血液标本的采集
标本采集送检制度
标本采集送检制度
目的:
确保标本采集送检的准确性、正确性和及时性。
内容:
1、申请检验项目必须清楚、完整,标签上应写明标本名称、病区、病人姓名、住院号、床号、采集时间、采集者姓名。
2、护士在采集标本前应仔细查对病人姓名、住院号、标本名称、数量及特殊要求,采集完毕后将标签贴于标本容器上,护士签名,填写采集时间,以防标本混淆。放置稳妥,以防翻倒。
3、如急需检验者,应在申请单右上角加注“急”字。
4、各病区每晨8:00由护理班将标本收集、核对好送检标本和申请单。
5、护士与检验科人员当面点清所送标本数量,并在发送登记本上签名。
标本采集的原则
标本采集的原则
一、按医嘱采集标本按医嘱采集各种标本,由医生填写检验申请单, 要求目的明确、字迹清楚,并签全名。
二、作好采集前准备
1.采集标本前,应明确检验项目、检验目的,选择采集的方法,确定采集标本的量,了解注意事项。
2.根据检验目的,选择适当的标本容器,并在容器外贴上标签,标明科别、病室、床号、姓名、住院号、检验目的、送检日期等。
3.采集标本前应仔细查对医嘱,核对检验申请单,核对病人,以防发生差错。
4.作好解释,向病人说明检验目的及注意事项,以消除顾虑,取得病人配合。
三、确保标本质量
1.要确保标本质量,必须掌握正确的采集方法,及时采集,采集的量要准确。如做妊娠试验要留晨尿,因为晨尿内绒毛膜促性腺激素的含量高,容易获得阳性检验结果。
2.标本采集后,应及时送检,不应放置过久,以免影响检验结果,特殊标本应注明采集时间。
四、培养标本的采集采集细菌培养标本应在病人使用抗生素之前,如已经用药,应在血药浓度最低时采集,并在检验单上注明。采集时严格执行无菌操作,标本应放入无菌容器内,且容器无裂缝,瓶塞干燥,不可混入防腐剂,消毒剂或药物培养液应充足,无混浊、变质,以免
影响检验结果的准确。
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标本采集和送检原则集团企业公司编码:(LL3698-KKI1269-TM2483-LUI12689-ITT289-
正确的标本采集和及时送检是保证细菌学检验质量的关键!其目的是要捕捉到与感染相关的病原菌并保持其活性,同时尽可能的减少其它与感染无关细菌的干扰。采样时机
抗生素使用前(停用抗生素3至5天或下次用药前)采样
采样方法
采集无菌部位的标本应严格无菌操作,非无菌部位尽量减少正常菌群的污染,采样量足。
采样容器
专用的无菌,防渗漏,有盖,无酸、碱、防腐剂及消毒剂污染。
送检
尽快送检,一般不超过2小时。
若不能及时送检可于4-8℃保存,但对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。
当标本量小于1ml时应于15~30分钟内送检,防止挥发和干燥。
微生物检查的标本采集和运送原则
1.发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查。
2.尽量在抗菌药物使用前,或停药3至5天后采集标本,如不能停用抗菌药物,应于下次抗菌药物应用前采集。应在感染的急性期或伤口局部治疗前采集标本。
3.选择正确的解剖部位,并以适当的技术、方法与容器收集足量的标本。
4.采样时应严格执行无菌操作,将污染可能降至最低。
5.收集真正感染的病灶处的标本,且避免邻近区域常居菌群的污染。
6.采用专用无菌容器收集标本。容器须灭菌处理,防止渗漏,但不得使用消毒剂。标本中不可添加防腐剂。
7.采样后应立即送检,最好在2h内。如不能及时送检,应将标本置于适当的储存环境待送,但不超过24小时。对可疑淋病奈瑟菌、脑膜炎奈瑟菌、流感嗜血杆菌、肺炎链球菌等对外界环境敏感的苛养菌感染的患者标本应室温保存。当标本量小于1ml时应于15~30分钟内送检,防止挥发和干燥。
8.尽量不要以一般棉花拭子收集标本,应使用专用的纤维拭子。
9.每份标本都应贴上标签并标明必要信息,在检验申请单上填写足够的有关临床资料。(要标明病区、病人姓名、感染状况、近期抗菌药物使用情况、标本来源、检验目的、采集部位、采集及送检时间等)
10.同一天同一检测目的、相同标本(血液标本除外)一般只需送检一次(份)。涂片检查最好和细菌培养同时做!