生化实验六 酵母醇脱氢酶的提取与纯化
合集下载
- 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
- 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
- 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。
总活力=活力单位数/ml 酶液X总体积(ml) 比活力=活力单位数/mg蛋白=总活力/总蛋白mg
每一步总活力 酶的回收率: 第一步总活力 ×100%
实验材料、试剂和器材
材料:酵母 试剂:3.0 mol/L 乙醇 、
0.06 mol/L焦磷酸钠(pH 8.5)、 0.0015 mol/L NAD+ 、 0.01 mol/L K2HPO4、 丙酮 (预冷)、 0.066 mol/L Na2HPO4 仪器:离心机、可见光分光光度计、紫外光分光光度计、水浴锅
(四) 有机溶剂沉淀酶蛋白
在上清中按100 ml加55 ml丙酮的比例,加入 预冷丙酮,混匀,静置5 min,4℃,5000 rpm离 心5 min。弃上清,沉淀溶于5.0 ml 0.01mol/L K2HPO4中,体积为V4,取2个1 ml分别于1.5 ml 离心管中(一管用于测蛋白浓度,一管用于测酶 活力) 。
(二) 热变性去除杂蛋白
剩余的上清在55℃保温15 min,间歇搅拌,冰 浴冷却,5000 rpm离心5 min,取上清,量体积V2 ,取2个1 ml分别于1.5 ml离心管中(一管用于测蛋 白浓度,一管用于测酶活力) , 4℃保存备用, 剩余上清置冰浴中。
(三) 有机溶剂沉淀杂蛋白
将置于冰浴中上清,加上清体积一半的 预冷丙酮,混匀, 4℃静置5 min ,5000 rpm ,离心5 min,取上清,量体积V3,取2个1 ml分别于1.5 ml离心管中,4℃保存备用(一 管用于测蛋白浓度,一管用于测酶活力) , 剩余上清倒入已置于冰浴中的50 ml离心管。
考马斯亮蓝G-250与蛋白质结合,最大 吸收波长在595nm,在0~100μg/ml,吸光度 与蛋白质含量成正比。
蛋白质与G-250反应在2 min内达到平 衡,且稳定,可检测微克级的蛋白质。
1、蛋白质标准曲线的制作
取6个PA瓶,配制0~100μg/ml 蛋白液各1.0 ml。加 5.0 ml G-250试剂,混匀,放置2 min,在595 nm比 色,绘管制号标准曲线。 1 2 3 4 5 6
蛋白质标准液() 0 0.2 0.4 0.6 0.8 1
蒸馏水(ml)
1.0 0.8 0.6 0.4 0.2 0
考马斯亮蓝染液 5 5 5 5 5 5
蛋白质含量(μg) 0 20 40 60 80 100
A595
2、样品提取液中蛋白质浓度的测定
将样品提取液稀释50倍(参考值),吸取 1.0 mL放入PA瓶,加5 mL G-250试剂,混 匀,放置2 min,在595nm比色,记录吸光度 值,通过标准曲线查得蛋白质含量。
1000mL。
F
回收率(%)
蛋白 质
G
酶总 活力
H
1.986
44.6
1450
32625 731.5 100 100
1.15
22.08
1300
24960 1130.4 49.51 76.5
0.468
10.764
800
18400 1709.4 24.1 56.3
0.259
1.295
850
4250 3281.8 2.9 13.0
每分钟A340增加0.001为1个活力单位。
酶活定义:每分钟A340增加0.001为1个活力 酶单液位加。入体积:0.2mL 酶液稀释倍数:10倍
1mL酶原液的酶活=A340*1000*10/0.2
样品编号 V1
A340/min
1mL酶原液的酶活 (U/mL)
V2
V3
V4
蛋白质含量测定(Bradford法)
酵母醇脱氢酶的提取和纯化
实验目的
掌握蛋白质提取、纯化、浓度测定和 酶活性测定的原理和方法。
实验原理
分离纯化
用热变性、有机溶剂沉淀等方法,从酵母中提 取一定纯度的醇脱氢酶。
醇脱氢酶催化的反应
醇脱氢酶可催化醇和醛之间的氧化还原 反应,辅酶是NAD+/NADH。
醇脱氢酶
CH3CH2OH + NAD+
CH3CHO + NADH + H+
乙醇过量时,NAD+被还原成NADH的速度与 酶活力成正比,NADH在340nm有较强吸收,可测 定单位时间内NADH的生成量,确定酶活力。
实验步骤
一、提取纯化酵母醇脱氢酶
(一) 粗提
称酵母粉2g,置研钵中,加半勺石英沙和Na2HPO4溶 液5mL,用力研磨10分钟,转入50 mL离心管,用20 mL Na2HPO4溶液洗研钵,转到离心管中,摇匀,静置5分钟 ,5000rpm离心5 min,取上清液,量取体积V1 ,取2个1 ml分别于1.5 ml离心管中,4℃保存(一管用于测蛋白浓 度,一管用于测酶活力),剩余的上清继续下一步纯化。
(四)计算 (按照测定的数据完成下表) C= A×B E=A×D F= D/B(或E/C)
提纯步骤
总体积 ml A
1.粗提
22.5
2.热变性除 杂
19.2
3.有机溶剂 除杂
23
4.有机溶剂 沉淀蛋白
5
蛋白浓度 (mg/ml)
B
蛋白总量 mg C
1mL酶活力 (U)
D
总活力 U E
比活力 (U/mg)
3.0mol/L 乙醇:174.6mL无水乙醇 0.06mol/L 焦磷酸钠(pH 8.5):22.56g 焦磷
酸钠 0.0015mol/L NAD+:0.995g NAD + 0.01mol/L K2HPO4:1.74g K2HPO4 0.066mol/L Na2HPO4:9.37g Na2HPO4 上述试剂称量后,分别加蒸馏水定容到
仪器和试剂
仪器和用具 可见分光光度计,1.0 mL加液器,200μL加液 器;10 mL PA瓶。
试剂 (1)牛血清白蛋白100μg/mL(标准蛋白质) (2)考马斯亮蓝
100 mg G-250溶于50 mL 90%乙醇,加85% (W/V)磷酸100 mL,用水定容到1000 mL。
试剂配制
酶活力测定方法
1、将前面保存的上清用0.01mol/L K2HPO4稀释 第一步、第二、三、四步的酶液各稀释10倍备用
2、 准备5只试管,编号1-5,加入以下四种试剂
3.0M 乙醇 0.1ml 0.06M 焦磷酸钠 0.5ml 0.0015M NAD+ 0.3ml 蒸馏水 1.6ml
3.逐管加入0.2 mL已稀释的酶液,混匀后立即测定A340