Western blot详解及问题分析

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WesternBlot常见问题及处理总结

WesternBlot常见问题及处理总结

WesternBlot常见问题及处理总结免疫细胞研究western blotWestern Blot常见问题及处理总结阿木1、western blot得优点答: 灵敏,可达ng级,用Ecl显色法理论上可达pg 级、方便,特异性高。

2、为什么我得细胞提取液中没有目标蛋白?答: 原因有很多: a)您得细胞中不表达这种蛋白质,换一种细胞;b) 您得细胞中得蛋白质被降解掉了,您必需加入PMSF,抑制蛋白酶活性;c)您得抗体不能识别目标蛋白,多瞧瞧说明,瞧就是否有问题。

3、我得细胞提取液有得有沉淀,有得很清亮,为什么呢?答: a)有沉淀可能因为您得蛋白没有变性完全,可以适当提高SDS 浓度,同时将样品煮沸时间延长, b) 也不排除您得抗原浓度过高,这时再加入适量上样缓冲液即可。

4、我做得蛋白质分子量很小(10KD),请问怎么做WB?答:可以选择0。

2μml得膜,同时缩短转移时间。

也可以将两张膜叠在一起,再转移、其她按步骤即可。

5、我得目得带很弱,怎么加强?答:可以加大抗原上样量、这就是最主要得、同时也可以将一抗稀释比例降低。

6、胶片背景很脏,有什么解决方法? 答:减少抗原上样量,降低一抗浓度,改变一抗孵育时间,提高牛奶浓度、7、目标带就是空白,周围有背景,就是为什么?答:您得一抗浓度较高,二抗上HRP 催化活力太强,同时您得显色底物处于一个临界点,反应时间不长,将周围底物催化完,形成了空白即“反亮现象”。

将一抗与二抗浓度降低,或更换新底物。

8、我得胶片就是一片空白,就是怎么回事?答:如果能够排除下面得几个问题那么问题多半出现在一抗与抗原制备上。

a)二抗得HRP 活性太强,将底物消耗光;b)ECM底物中H2O2,不稳定,失活;c) ECL底物没覆盖到相应位置;d) 二抗失活。

9、我在显影液中显影1分钟与5分钟后,底片漆黑一片,就是什么原因呢?答:a)可能就是红灯造成得, 胶片本来就被曝光了,可以在完全黑暗得情况下操作.瞧就是否有改善、;b) 显影时间过长。

WesternBlot详解(原理、分类、试剂、步骤及问题解答)

WesternBlot详解(原理、分类、试剂、步骤及问题解答)

WesternBlot详解(原理、分类、试剂、步骤及问题解答)Western免疫印迹(Western Blot)是将蛋白质转移到膜上,然后利用抗体进行检测。

对已知表达蛋白,可用相应抗体作为一抗进行检测,对新基因的表达产物,可通过融合部分的抗体检测。

本文主要通过以下几个方面来详细地介绍一下Western Blot技术:一、原理二、分类i.放射自显影ii.底物化学发光ECLECFiv.底物DAB呈色三、主要试剂四、主要步骤五、实验常见的问题指南1.参考书推荐2.针对样品的常见问题3.抗体4.滤纸、胶和膜的问题5.Marker的相关疑问6.染色的选择7.参照的疑问8.缓冲液配方的常见问题9.条件的摸索10.方法的介绍11.结果分析一、原理与Southern或Northern杂交方法类似,但Western Blot采用的是聚丙烯酰胺凝胶电泳,被检测物是蛋白质,“探针”是抗体,“显色”用标记的二抗。

经过PAGE分离的蛋白质样品,转移到固相载体(例如硝酸纤维素薄膜)上,固相载体以非共价键形式吸附蛋白质,且能保持电泳分离的多肽类型及其生物学活性不变。

以固相载体上的蛋白质或多肽作为抗原,与对应的抗体起免疫反应,再与酶或同位素标记的第二抗体起反应,经过底物显色或放射自显影以检测电泳分离的特异性目的基因表达的蛋白成分。

该技术也广泛应用于检测蛋白水平的表达。

二、分类现常用的有底物化学发光ECL和底物DAB呈色,体同水平和实验条件的是用第一种方法,目前发表文章通常是用底物化学发光ECL。

只要买现成的试剂盒就行,操作也比较简单,原理如下(二抗用HRP 标记):反应底物为过氧化物+鲁米诺,如遇到HRP,即发光,可使胶片曝光,就可洗出条带。

三、主要试剂1、丙烯酰胺和N,N’-亚甲双丙烯酰胺,应以温热(以利于溶解双丙稀酰胺)的去离子水配制含有29%(w/v)丙稀酰胺和1%(w/v)N,N’-亚甲双丙烯酰胺储存液丙稀酰胺29g,N,N-亚甲叉双丙稀酰胺1g,加H2O至100ml。

Western blot结果异常原因分析及对策(个人总结)

Western blot结果异常原因分析及对策(个人总结)
Western blot 结果异常原因分析及对策(个人总结)
结果异常
原因
对策
1.假阴性,不出现 ⑴一抗、二抗等不匹配
⑴重新订购试剂,认真选取一抗与组织
蛋白条带或者蛋
种属,并设置内参。
白条带很弱
⑵一抗或/和二抗浓度低
⑵增加抗体浓度,延长孵育时间
⑶封闭剂或无关蛋白与一抗或二抗有交叉反应 ⑶封闭用温和去污剂,如TWEEN 20,
⑷SDS-PAGE 电泳上样 前, 煮沸 10
min,以增强蛋白质解聚变性
⑸蛋白样本降解
⑸新鲜制备标本,使用蛋白酶抑制剂
3. 背 景 非 特 异 染 ⑴封闭不充分
⑴延长封闭时间,更换合适的封闭剂
色过强
(脱脂奶粉,BSA,血清等)
⑵一抗浓度过高
⑵增加一抗稀释倍数
⑶抗体孵育温度过高
⑶4℃孵育
⑷二抗非特异性结合或与封闭剂交叉反应
(无关蛋白中含有与待测抗原结构类似多肽(共 或更换封闭剂(脱脂奶、BSA或明胶)
同抗原表位),与特异抗体发生交叉反应)
⑷一抗不识别目的物种的靶蛋白
⑷检查说明书,或做 ClustalW 比对,
设阳性对照
⑸样本中无靶蛋白或靶蛋白含量过低
⑸模索条件,设置阳性对照,增加标本
(抗原无效)
上样量,样本制备时使用蛋白酶抑制剂,
4. 背景出现不均 匀污点、斑点
5. 转膜不充分
⑴转膜时有气泡或抗体分布不均 ⑵抗体与封闭剂结合 ⑶镊子或玻璃平皿污染 ⑷膜湿润不够 ⑸标记膜采用不规范笔 ⑴膜没有完全均匀湿透 ⑵靶蛋白分子量小于 10,000 ⑶靶蛋白等电点等于或接近转移缓冲 液 pH 值 ⑷甲醇浓度过高 ⑸转移时间不够Thick gel
⑷设置二抗对照(不加一抗),降低二抗

western blot实验技术及常见问题探讨-珍藏版

western blot实验技术及常见问题探讨-珍藏版

6 反应显色
•辣根过氧化物酶法(HRP)
•碱性磷酸酶法(AP)
•化学发光显色法(HRP)
A液
B液
ECL工作 混合 液
暗室操作!
1
:
1

在酶连抗体中使用的酶通常是碱性磷酸酶 或辣根过氧化物酶。碱性磷酸酶可以将无色的 底物5-溴-4-氯吲哚磷酸盐(BCIP)转化为蓝色的 产物;而辣根过氧化物酶可以以H2O2为底物, 将3-氨基-9-乙基咔唑氧化成褐色产物或将4-氯 萘酚氧化成蓝色产物。
膜的选择:
最常用于Western Blot的转移膜主要是 硝酸纤维素(Nitrocellulose,NC)膜和聚 偏二氟乙烯 (Polyvinylidene Fluoride, PVDF)膜,此外也有用尼龙膜、DEAE纤维 素膜做蛋白印迹。尼龙膜和NC膜的特点相似, 主要用于核酸杂交。
几种膜的对比
3
目的蛋白 与其它蛋白 的互作
2
目的蛋 白的表达 量分析
4
二 Western Blot技术流程

蛋白样品的制备
•SDS-PAGE •转膜
•封闭
•一抗杂交
•二抗杂交 •底物显色
1.蛋白样品的制备
通过水溶法或有机溶剂制备总蛋白
水溶液提取法
针对水、稀盐、稀酸或碱溶液中的蛋白
质。稀盐和缓冲系统的水溶液对蛋白质稳定性
一般封闭条件为:室温或者 37℃缓慢摇荡 1~2h,特殊情况也可 4℃过夜,根据结果情况 调整封闭试剂的浓度和类型。比如有时 BSA 比 脱脂奶粉更有利于降低非特异性背景,而有些抗 体则在脱脂奶粉封闭的情况下才能得到清晰的背 景。封闭完成后要进行洗膜,以去除膜上未结合 的封闭试剂。洗涤液使用TBST 或者PBST。

Western Blot 的原理,流程及常见问题分析

Western Blot 的原理,流程及常见问题分析
去除非特异结合位点:Байду номын сангаас
Blocking Buffer :3%BSA
5% Milk Room Temperature 1 h
14
步骤六、抗体孵育
一抗的选择 :


确定所研究的目的蛋白,根据目的蛋白名称查询相关抗体。
抗体所检测的种属:人、小鼠、大鼠等
注意:抗体的稀释倍数是由底物和目的蛋白质的丰度决定的, 为了获得最佳实验结果,强烈推荐进行预实验,以确定具体的实验参数.
2层滤纸
垫片 黑色夹板(负极)
12
56mA /膜 1h
转膜后确认
丽春红 • 可逆染色,检测转膜效率。 • 与下游WB检测完全兼容,无任何干扰。 蛋白预染Marker • 实时监测
丽春红染色结果
• 分子量参照
• 与目的蛋白同时转秱至印迹膜上,检测 转膜效率。
对转膜后的凝胶进行考染
13
步骤五、封 闭
FITC、Cy2、Dylight488 AMCA
近红外线
Cy5
16
步骤七、检测方法
化学发光法:
HRP酶标系统----ECL鲁米诺(Luminol) 特点:无毒害、灵敏度高、速度快; 特异性好、节省抗体、线性宽; 可重新剥离检测。
化学显色法:
酶标系统HRP----TMB和DAB 酶标系统AP-----BCIP和NBT 特点:方便、便宜; 具有一定毒性、灵敏度较低、反应速度慢; 检测后的膜不可重新剥离检测。
上样前煮沸样品 上样量:30-100 μg 蛋白Marker

8
步骤四、转膜
• 膜的选择:
NC、PVDF、尼龙膜
• 转膜方法:
半干转、湿转
3

Western blot 实验技术及常见问题分析【精选-】

Western blot 实验技术及常见问题分析【精选-】

结合
1. 制备单克隆抗体或者重新选 取合成抗原多肽的位点
2. 设立不加一抗,只加二抗的 平行对照来检测二抗是否有 非特异结合
参照体系
分子量Marker:确定蛋白条带的分子量 已知量标准产物的正对照 空白载体对照:如果是表达蛋白需要做表达前的 内参:看家基因编码表达的蛋白
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WesternBlot详解及常见问题

WesternBlot详解及常见问题

Weste‎rn Blot详‎解Weste‎rn免疫印‎迹(Weste‎rn Blot)是将蛋白质‎转移到膜上‎,然后利用抗‎体进行检测‎。

对已知表达‎蛋白,可用相应抗‎体作为一抗‎进行检测,对新基因的‎表达产物,可通过融合‎部分的抗体‎检测。

该文主要通‎过以下几个‎方面来详细‎地介绍一下‎W e ste‎rn Blot技‎术。

Conte‎n ts:(1)原理(2)分类i. 放射自显影‎ii. 底物化学发‎光ECLiii. 底物荧光E‎C Fiv. 底物DAB‎呈色(3)主要试剂(4)主要程序(5)实验常见的‎问题指南1. 参考书推荐‎2. 针对样品的‎常见问题3. 抗体4. 滤纸、胶和膜的问‎题5. Marke‎r的相关疑‎问6. 染色的选择‎7. 参照的疑问‎8. 缓冲液配方‎的常见问题‎9. 条件的摸索‎10. 方法的介绍‎11. 结果分析(1)原理与Sout‎h ern或‎N o rth‎e rn杂交‎方法类似,但West‎e rn Blot采‎用的是聚丙‎烯酰胺凝胶‎电泳,被检测物是‎蛋白质,“探针”是抗体,“显色”用标记的二‎抗。

经过PAG‎E分离的蛋‎白质样品,转移到固相‎载体(例如硝酸纤‎维素薄膜)上,固相载体以‎非共价键形‎式吸附蛋白‎质,且能保持电‎泳分离的多‎肽类型及其‎生物学活性‎不变。

以固相载体‎上的蛋白质‎或多肽作为‎抗原,与对应的抗‎体起免疫反‎应,再与酶或同‎位素标记的‎第二抗体起‎反应,经过底物显‎色或放射自‎显影以检测‎电泳分离的‎特异性目的‎基因表达的‎蛋白成分。

该技术也广‎泛应用于检‎测蛋白水平‎的表达。

(2)分类weste‎r n显色的‎方法主要有‎以下几种:i. 放射自显影‎ii. 底物化学发‎光ECLiii. 底物荧光E‎C Fiv. 底物DAB‎呈色现常用的有‎底物化学发‎光ECL和‎底物DAB‎呈色,体同水平和‎实验条件的‎是用第一种‎方法,目前发表文‎章通常是用‎底物化学发‎光ECL。

Western blot常见14个问题解决

Western   blot常见14个问题解决

Western blot常见问题解决1. 啥也没有原因:比较多,如果单纯一张没有任何显色的X光片,可能是一抗加成其他抗体,或者二抗种属加错了,比如兔的加成鼠的。

解决办法:仔细检查抗体是否加错,确认转膜没有问题。

经验:上面的图片展示的是一点信号都没有,可能一抗,二抗加错,可能是蛋白浓度太低,上样量太少,一抗浓度过低,ECL发光液失效。

另外如果转膜出现了问题,比如膜放反了,自然是一个白片。

2. 高背景原因:封闭不够好,一抗浓度高,洗膜时间和次数不够解决办法:降低一抗浓度,增加洗膜时间和次数。

经验:高背景可能是WB中最常见出现的问题,目的条带单一清晰,但是其他地方又弥漫性较为均一的背景(比较连续的)。

其实只要我们注意操作规范,不偷工减料就很容易避免,洗膜按照规定来8min*5次或者10min*4次,不要改成5min*3次,或者10min*2次。

3. 非特异性条带原因:一抗非特异性与蛋白结合解决办法:更换一抗或降低一抗浓度经验:此种情况绝大多数是因为一抗不好,你无法判断那一条是目的条带。

如果实在没有更好的抗体,建议采用阴性对照和阳性对照来确定上述哪个条带是目的条带。

当然这种情况下也有可能是一抗浓度太高引起的非特异性结合。

4. 条带中出现边缘规则的白圈原因:电转中膜和胶之间存在气泡。

解决办法:转膜前去掉膜和胶之间的气泡经验:我们常常将电转液倒入一个盘子里,倒入的液体不能太多也不能太少,最好的高度是与放上第一层滤纸齐平,然后往滤纸上浇点转膜液,把电泳胶用清水清洗下,将电泳胶平铺到滤纸上,仔细检查滤纸与胶之间是否有气泡,可以左右前后观察,不同方向观察之后确认无气泡,然后再往胶上面浇点电转液,用两只手的拇指和食指轻轻夹住PVDF膜的两侧,使膜成U型,然后将U型的底部接触胶的中间,慢慢往两边放下膜,这样一般气泡很少。

然后上层滤纸同样用U型的放置方法,用玻璃棒稍微贴实下,然后盖上海绵。

注意不要来回赶气泡,这样反而会带入气泡。

Western Blot常见问题及解决方法

Western Blot常见问题及解决方法

Western Blot(蛋白质印迹)技术是生物医学研究中常用的蛋白质分析技术之一,可以用于检测蛋白质样品中的特定抗原。

然而,在进行Western Blot实验时,可能会遇到一些问题,下面列举了一些常见问题及解决方法:1.电泳条带不清晰或无条带:解决方法:•检查样品质量,确保待检测样品是可用的,无降解或污染。

•调整电泳参数,如电压、电流和时间等,以优化电泳效果。

•更换抗体,确认抗体的特异性,避免非特异性结合。

2.膜上背景过重:解决方法:•在抗体孵育之前,使用封闭剂封闭膜上的非特异性位点,减少抗体非特异性结合。

•减少一抗和二抗的浓度,减轻非特异性结合。

•增加洗涤次数和时间,以清除未结合的抗体和蛋白质。

3.目的蛋白信号弱或无:解决方法:•调整一抗和二抗的浓度,提高特异性结合的信号强度。

•选择更灵敏的显色方法,如化学发光法等。

•在转膜前,优化样品处理,如提取、纯化和浓缩等步骤。

4.非特异性条带:解决方法:•检查抗体特异性,确认抗体的特异性,更换抗体以减少非特异性结合。

•检查样品处理步骤,避免样品中的杂蛋白干扰。

•增加洗涤次数和时间,以清除未结合的抗体和非特异性结合的蛋白质。

5.显影后膜上条带处变为黄色或白色:解决方法:•可能是由于曝光时间过长或显影液浓度过高导致的,可以降低曝光时间和减少显影液浓度来解决问题。

•在膜清洗时使用甲醇或乙醇等有机溶剂,清除膜上的多余抗体和显色剂。

6.条带内无显影的白点:解决方法:•在转膜前检查是否存在气泡,气泡会影响转膜效果和条带形成。

•增加转膜时间和电流,以促进蛋白质的转移。

•检查显影液是否过期或存在质量问题。

7.存在散在小圆斑:解决方法:•这可能是由于封闭液中的杂质颗粒导致的,可以通过过滤封闭液来清除杂质。

•检查一抗和二抗是否含有杂质抗体或存在抗体污染的情况,更换抗体可以解决问题。

•检查显色液是否存在问题,如过期或存在杂质等,更换显色液可以解决问题。

8.条带变形或不均匀:解决方法:•检查电泳胶的质量和制备过程是否存在问题。

western-blot条带分析及解决方法.

western-blot条带分析及解决方法.

*注1 其具体问题有二:一是背景较高,二是没有条带.形成机制为条带处HRP很快将底物耗竭,则不发光不使胶片感光而为白色,周围因背景HRP较低而持续发光一段时间使胶片感光为黑色。

这种常见于高浓度抗体并且封闭/洗脱不好的情况下。

如果没有背景则就是原因3的现象。

在暗室可以看到条带周围荧光而条带处为暗。

如是则要么通过降低抗体解决,要么动作迅速早期未耗竭底物时压片,否则一旦耗竭通过减少压片时间不能解决问题。

也可以过一段时间鼿RP稍减后重加底物迅速压片。

还有另外一种反影现象就是压出条带粗大模糊,但条带中心是空的白色,原因和上面的一样,主要是条带中心耗竭底物引起的,也可以在暗室看到中空的荧光带,但与上面的区别主要在于特异性要好一些,若继续发展则就是原因3的现象。

其分析和解决同上。

*注2 其原因主要是HRP太高超速催化底物生成的产物使膜发黄,压出的片子可以是正常的或和原因1或原因3的现象同时存在,只是一种现象,在压过的膜可以看出来(只在加底物后一段时间出现,几小时后可能还会消退,有时甚至刚加底物1~2min就可以看出来,所以要把握时机)。

如果没有达到原因1和原因3的程度,那么这种情况一定能够看到很强的荧光,是一种良好的状态,是我们所期盼的。

如果压出正常片子而不出现原因1和原因3的现象,可以不予处理。

但因为荧光太强极易导致条带增粗变大,所以也可以不稀释抗体而通过调整压片时间来解决,一般压10s~30s,甚至可以3~5s,即时根据结果在暗室调整,荧光持续时间长的话都可连续压十数张片子而效果良好。

但也有这种情况,就是由于HRP过强无论怎么减少压片时间条带都依然粗大(如果时间过短如<3s则可因感光不足导致条带太淡,这样就不可取了,但依然是粗大的、非条带的本来面目),那么如果想获得漂亮条带则必须通过降低抗体浓度(减少上样量很不稳定且能力有限,故很少使用)来解决。

原因1和3若如是则解决也是一样的。

*注3 这是与1类似但抗体特异性较好时的一种表现,经常与下面的原因4、5、6混淆,特别需要注意。

Western_Blot详解及问题分析

Western_Blot详解及问题分析

Western BlotFra bibliotekSDS:

阴离子去污剂 变性剂 氨基酸侧链与SDS充分结合形成带负电荷的蛋白质-SDS胶束。 蛋白质-SDS胶束所带的负电荷大大超过了蛋白质分子原有的电 荷量,消除了不 同分子之间原有的电荷差异。 与强还原剂一起使蛋白分子氢键、疏水键打开,使蛋白质分子线 性化。

Western Blot
Western Blot
Staking gel Separating gel
注意事项: 1.抗原样品与缓冲液混合水浴加热时不要进水!最好采用空气浴; 2.电泳Buffer最好不要重复利用,因为样品比较珍贵,而电泳液相对廉价; 3.Buffer一定要漫过梳子孔,否则就会发现蛋白跑不动; 4.电泳时先用低电压跑过浓缩胶,再换高电压跑分离胶,不要追求速度, 慢慢跑条带会分离的更好,特别是对于高分子量的目的蛋白。
蛋白质-SDS胶束的特点:
(1)具有相同的形状,形状 像一个长椭圆棒
(2)平均1g 蛋白质结合
1.4g SDS (3)短轴对不同的蛋白质亚 基-SDS胶束基本上是相同的 (4)长轴的长度则与亚基分
子量的大小成正比
Western Blot
SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳

不连续的电泳缓冲体系。 SDS—蛋白质复合物在凝胶电泳时,不再受蛋白质电 荷与形状的影响,而只取决于蛋白质分子量的大小。
Western Blot
Western Blot 流程

蛋白样品的制备
•SDS-PAGE •转膜 •封闭 •一抗杂交 •二抗杂交 •底物显色
Western Blot
蛋白样品的提取
通过有机溶剂或水溶法制备总蛋白

水溶液提取法 针对水、稀盐、稀酸或碱溶液中的蛋白质。稀盐和缓冲系 统的水溶液对蛋白质稳定性好、溶解度大、是提取蛋白质 最常用的溶剂 。

关于westernblot原理和常见故障分析.

关于westernblot原理和常见故障分析.

关于western blot原理和常见故障分析关于western blot原理:通过电泳区分不同的组分,并转移至固相支持物,通过特异性试剂(抗体作为探针,对靶物质进行检测,蛋白质的Western印迹技术结合了凝胶电泳的高分辨率和固相免疫测定的特异敏感等多种特点,可检测到低至1~5ng(最低可到10-100pg中等大小的靶蛋白。

一、抗原的选择和制备A:样品的制备1组织:组织的处理方法:组织洗涤后加入3倍体积预冷的PBS,0℃研磨,加入5×STOP buffer,180W,6mins,0℃超声波破碎,5000rpm,5mins离心,取上清。

加入β-ME(9.5ml加入0.5ml,溴酚蓝(9.5ml加入0.5ml煮沸10min,分装后于-20℃保存,用时取出,直接溶解上样。

2细胞:细胞的处理方法:离心收集细胞或者直接往细胞培养瓶内加入5×STOP buffer,收集,180W,6mins,0℃超声波破碎,5000rpm,5mins离心,取上清。

加入β-ME(9.5ml 加入0.5ml,溴酚蓝(9.5ml加入0.5ml煮沸10min,分装后于-20℃保存,用时取出,直接溶解上样。

3分泌蛋白的提取(特例:直接收集分泌液,加入β-ME、溴酚蓝制样。

B:蛋白的定量方法及影响蛋白定量原因1.双缩脲法:双缩脲法是第一个用比色法测定蛋白质浓度的方法。

在需要快速,但不很准确的测定中,常用此法。

硫铵不干扰显色,这对蛋白质提纯的早期阶段是非常有利的。

双缩脲法的原理是Cu2+与蛋白质的肽键,以及酪氨酸残基络合,形成紫蓝色络合物,此物在540nm波长处有最大吸收。

双缩脲法常用于0.5g/L~10g/L含量的蛋白质溶液测定。

干扰物有硫醇,以及具有肽性质缓冲液,如Tris、Good缓冲液等。

可用沉淀法除去干扰物,即用等体积10%冷的三氯醋酸沉淀蛋白质,然后弃去上清液,再用已知体积的1m NaOH溶解沉淀的蛋白质进行定量测定。

western-blot条带分析及解决方法剖析

western-blot条带分析及解决方法剖析

*注1 其具体问题有二:一是背景较高,二是没有条带.形成机制为条带处HRP很快将底物耗竭,则不发光不使胶片感光而为白色,周围因背景HRP较低而持续发光一段时间使胶片感光为黑色。

这种常见于高浓度抗体并且封闭/洗脱不好的情况下。

如果没有背景则就是原因3的现象。

在暗室可以看到条带周围荧光而条带处为暗。

如是则要么通过降低抗体解决,要么动作迅速早期未耗竭底物时压片,否则一旦耗竭通过减少压片时间不能解决问题。

也可以过一段时间鼿RP稍减后重加底物迅速压片。

还有另外一种反影现象就是压出条带粗大模糊,但条带中心是空的白色,原因和上面的一样,主要是条带中心耗竭底物引起的,也可以在暗室看到中空的荧光带,但与上面的区别主要在于特异性要好一些,若继续发展则就是原因3的现象。

其分析和解决同上。

*注2 其原因主要是HRP太高超速催化底物生成的产物使膜发黄,压出的片子可以是正常的或和原因1或原因3的现象同时存在,只是一种现象,在压过的膜可以看出来(只在加底物后一段时间出现,几小时后可能还会消退,有时甚至刚加底物1~2min就可以看出来,所以要把握时机)。

如果没有达到原因1和原因3的程度,那么这种情况一定能够看到很强的荧光,是一种良好的状态,是我们所期盼的。

如果压出正常片子而不出现原因1和原因3的现象,可以不予处理。

但因为荧光太强极易导致条带增粗变大,所以也可以不稀释抗体而通过调整压片时间来解决,一般压10s~30s,甚至可以3~5s,即时根据结果在暗室调整,荧光持续时间长的话都可连续压十数张片子而效果良好。

但也有这种情况,就是由于HRP过强无论怎么减少压片时间条带都依然粗大(如果时间过短如<3s则可因感光不足导致条带太淡,这样就不可取了,但依然是粗大的、非条带的本来面目),那么如果想获得漂亮条带则必须通过降低抗体浓度(减少上样量很不稳定且能力有限,故很少使用)来解决。

原因1和3若如是则解决也是一样的。

*注3 这是与1类似但抗体特异性较好时的一种表现,经常与下面的原因4、5、6混淆,特别需要注意。

WesternBlot结果条带全面分析

WesternBlot结果条带全面分析

Western Blot 结果条带全面分析Q1. 啥也没有[原因]:比较多,如果单纯一张没有任何显色的X光片,最可能是一抗加成其他抗体,或者二抗种属加错了,比如兔的加成鼠的。

[解决办法]:仔细检查抗体是否加错,确认转膜没有问题。

[经验]:上面的图片展示的是一点信号都没有,如果是这样大部分情况是抗体加错了。

如果中间出现了细微的条带,可能原因是蛋白上样量太少,一抗浓度过低,ECL发光液失效。

另外如果转膜出现了问题,比如膜放反了,自然是一个白片。

Q2. 高背景[原因]:封闭不够好,一抗浓度高,洗膜时间和次数不够[解决办法]:降低一抗浓度,增加洗膜时间和次数。

[经验]:高背景可能是WB中最常见出现的问题,目的条带单一清晰,但是其他地方又弥漫性较为均一的背景(比较连续的)。

其实只要我们注意操作规范,不偷工减料就很容易避免,洗膜按照规定来5min*5次或者10min*3次,不要改成5min*3次,或者10min*2次。

Q3. 非特异性条带[原因]:一抗非特异性与蛋白结合[解决办法]:更换一抗[经验]:此种情况绝大多数是因为一抗不好,你无法判断那一条是目的条带。

如果实在没有更好的抗体,建议采用阴性对照和阳性对照来确定上述哪个条带是目的条带。

当然这种情况下有一种很小几率的可能是一抗浓度太高引起的非特异性结合。

Q4. 条带中出现边缘规则的白圈[原因]:电转中膜和胶之间存在气泡。

[解决办法]:转膜前去掉膜和胶之间的气泡[经验]:我们常常将电转液倒入一个盘子里,倒入的液体不能太多也不能太少,最好的高度是与放上第一层滤纸齐平,然后往滤纸上浇点转膜液,把电泳胶用清水清洗下,将电泳胶平铺到滤纸上,仔细检查滤纸与胶之间是否有气泡,可以左右前后观察,不同方向观察之后确认无气泡,然后再往胶上面浇点电转液,用两只手的拇指和食指轻轻夹住PVDF膜的两侧中间,使膜成U型,然后将U型的底部接触胶的中间,慢慢往两边放下膜,这样一般气泡很少。

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Western Blot
【SDS-PAGE基本原理】
SDS-PAGE 是在蛋白质样品中加入SDS和含有巯基乙醇的 样品处理液,SDS是一种很强的阴离子表面活性剂,它可 以断开分子内和分子间的氢键,破坏蛋白质分子的二级 和三级结构。 强还原剂巯基乙醇(或二硫苏糖醇,DTT)可以断开二硫
键破坏蛋白质的四级结构。使蛋白质分子被解聚成肽链 形成单链分子。解聚后的侧链与SDS充分结合形成带负电 荷的蛋白质-SDS复合物。 蛋白质分子结合SDS阴离子后,所带负电荷的量远远超 过了它原有的净电荷,从而消除了不同种蛋白质之间所 带净电荷的差异。蛋白质的电泳迁移率主要决定于亚基 的相对分子质量,而与其所带电荷的性质无关。

Western Blot
Western Blot结果分析

目的蛋白的灰度值除以内参的灰度值以校正 误差,所得结果代表某样品的目的蛋白相对 含量。 Western Blot结果分析软件Gel-Pro Analyzer 4 绿色版(附动画演示教程)
/thread-44929-1-1.html
蛋白质-SDS胶束的特点:
(1)具有相同的形状,形状 像一个长椭圆棒
(2)平均1g 蛋白质结合
1.4g SDS (3)短轴对不同的蛋白质亚 基-SDS胶束基本上是相同的 (4)长轴的长度则与亚基分
子量的大小成正比
Western Blot
SDS聚丙烯酰胺凝胶电泳

不连续的电泳缓冲体系。 SDS—蛋白质复合物在凝胶电泳时,不再受蛋白质电 荷与形状的影响,而只取决于蛋白质分子量的大小。
• 催化剂:过硫酸胺或核黄素(AP); • 加速剂:四甲基乙二胺(TEMED);
• 产物:三维网状结构凝胶
• 聚丙烯酰胺凝胶聚合机理是通过提供氧游离基(free radicals) 的催化,使体系发生氧化还原作用(catalyst-redox systems)来
完成的。催化体系主要有化学催化(AP—TEMED)和光化学催化


确保膜和胶块之间没有气泡
缓冲液中离子浓度太低,电流或电压 太高。转膜过程注意降温
Western Blot
转移到膜上的蛋白很少 原 因 蛋白分子量< 10KD
蛋白的等电点< 9 SDS浓度不合适 凝胶太厚 蛋白分子量<10KD时,减 少转膜时间;使用小孔径 的膜 2. 更换高pH值Buffer 3. 在阴极buffer中加入 0.005 - 0.01% SDS 可提 高转膜效率 4. 延长转膜时间
条带比正常的窄? “微笑”或“倒微笑” 条带?
Western Blot
转膜及抗体检测
凝胶肿胀或卷曲? 可将凝胶在转膜之前放到转膜缓冲液 中浸泡5-10min
条带歪斜或漂移?
单个或多个白点? 转膜缓冲液过热?

电转仪长期使用导致海绵变薄,“三
明治”结构不紧凑导致。可在两块海 绵之间垫上少许普通的草纸
Western Blot
灌制积层胶
插入梳子
Western Blot
Staking gel
Separating gel
Western Blot
转膜

要将电泳后分离的蛋白质从凝胶中转移到固 相载体(例如NC膜)上,通常有两种方法: 毛细管印迹法和电泳印迹法。 常用的电泳转移方法有湿转和半干转。两者 的原理完全相同,只是用于固定胶/膜叠层和 施加电场的机械装置不同。
Western Blot
不连续电泳:
作用
浓缩胶 分离胶 使蛋白样品浓缩 使蛋白样品分离
缓冲液PH
pH6.8TrisCl pH8.8TrisCl
凝胶浓度
低,2-5% 高,根据蛋 白大小
电泳缓冲液:pH8.3 Tris-甘氨酸系统。
Western Blot
灌制分离胶
隔绝空气
ddH2O 0.1%SDS:<8% 异丁醇:>8%

有机溶剂提取法 对于分子中非极性侧链较多的蛋白质可用有机溶剂提取,
包括乙醇、丙酮和丁醇等。
通过层析或电洗脱法制备目的蛋白
Western Blot
蛋白样品的定量

目前常用比色法测定样品蛋白的含量:Bradford 法(考马斯亮蓝法)、Lowry法(Folin-酚试剂 法)、 BCA法等。但各有优缺点,大家可以根据 具体情况选取。按相应蛋白质定量试剂盒操作说 明操作,测定样品浓度。
Western Blot
杂交信号很弱
原 因 抗体保存不当
抗原不充足 膜的漂洗过度
1.
1. 2. 3.
对 策
2.
3.
抗体长期保存应在-70℃ ,使用前做效价检测 增加蛋白上样量,做已知 标准量蛋白的对照 减少漂洗的时间和次数
Western Blot
出现非特异带
原因
1.
2.
一抗不是唯一特 异的 二抗出现非特异 结合
① 100mM Tris-HCl(pH6.8) ② 200mM DTT ③ SDS ④ 0.2%溴酚兰 ⑤ 20%甘油 ⑥ ddH2O

DTT可临用前以1:4比例混合加入,亦可全部配好分装,-20℃冻存。

按1:1比例与蛋白质样品混合,95~100℃加热5~15min, 冰上冷却后再上样,上样量一般为20-25μl,总蛋白量20~ 50μg。
Western Blot
SDS-PAGE电泳

凝胶聚合不均匀,灌胶时候尽量混合 均匀,动作轻缓 拔梳子要迅速,清洗加样孔要小心, 以免把上样带扭曲 样品盐浓度过高会挤压其他条带导致 宽窄不一,纯化样品,调整盐浓度 胶板底部有气泡会影响电泳效果,应 赶走气泡。同时注意电泳槽装置是否 合适
N,N’-亚甲基双丙烯酰胺(N,N’-methylenebisacylamide,
简称Bis)在催化剂和加速剂作用下聚合交联而成的三维网
状结构的凝胶。化学惰性强,具有一定的机械强度和透明
度。是良好的电泳介质。
Western Blot
聚丙烯酰胺凝胶的聚合方式:
• 单体:丙烯酰胺(Acr);
• 交联剂:甲叉双丙烯酰胺(Bis);

1975年,Southern建立了将DNA转移到硝酸纤维素膜(NC
膜)上,并利用DNA-RNA杂交检测特定的DNA片段的方 法,称为Southern印迹法。

而后人们用类似的方法,对RNA和蛋白质进行印迹分析,
对RNA的印迹分析称为Northern印迹法,对单向电泳后的 蛋白质分子的印迹分析称为Western印迹法,对双向电泳后 蛋白质分子的印迹分析称为Eastern印迹法。

回收一抗溶液,用TBST漂洗膜3次,每次10min。 最后用TBS漂洗膜2次,每次10min。
Western Blot
二抗与底物反应显色
•辣根过氧化物酶法(HRP)
•碱性磷酸酶法(AP)
•化学发光显色法(HRP)
Western Blot
膜解吸方法(膜的重复利用)

通过加热和去污剂进行解吸 原理:组合使用去污剂和加热使抗体解离, 适用于任何化学发光底物系统。 酸解吸 原理:使用低pH改变抗体结构从而使结合位 点失活,从而将抗体与抗原分离,适用于任 何化学发光底物系统。
(核黄素——TMTED)体系。
Western Blot
凝胶浓度与蛋白分离范围
凝胶浓度(%)
15
线性分离范围(KD)
12-43
10
7.5 5.0
16-68
36-94 57-212
SDS-PAGE浓缩胶(5% Acrylamide)及分离胶配方 表:/thread-20726-1-1.html
/bio101/2008/21461_2.htm


Western Blot
湿转系统
Western Blot
半干转移系统
Western Blot
转膜后检测(此步可以省略)
丽春红染色 蛋白带出现后,于室温用去离子水漂洗硝酸纤 维素滤膜,换水几次。 印度墨汁染色 只用于放射性标记抗体或放射性标记A蛋白探 针的Western印迹过程。
蛋白质免疫印迹技术及
常见问题分析
张绍进
Western Blot

Western Blot简介

Western Blot一般流程 Western Blot常见问题分析

Western Blot
Western Blot 简介:

印迹法(blotting)是指将样品转移到固相载体上,而后利 用相应的探测反应来检测样品的一种方法。
Western Blot
一抗、二抗孵育

把NC膜放在密闭塑料袋或者培养皿中,根据膜面积以 0.1mL/cm2的量加入一抗溶液,摇床上平缓摇动,于室 温孵育1-2小时或4℃过夜。

回收一抗溶液,用TBST漂洗膜3次,每次10min。
加入用封闭液配制的二抗,摇床上缓慢摇动,于室温 孵育1-2小时或4℃过夜。

Western Blot
Western Blot常见问题分析
Western Blot
SDS-PAGE电泳
胶不平? 凝胶漏液? 胶板洗刷干净


加入AP和TEMED的量要合适
加入试剂后摇匀,使其充分混合,防 止部分胶块聚合不均匀


温度合适,受热不均匀导致胶聚合不
均匀 两块玻璃板底部要对齐

蛋白质浓度测定的各种方法汇总:
/thread-23639-1-1.html
Western Blot
蛋白样品的变性

2×SDS-PAGE上样缓冲液:
1M Tris-HCl(pH6.8) 1M DTT SDS 甘油 溴酚蓝 总体积 10 ml 20 ml 4g 20 ml 0.2 g 100ml
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