统计学随机分组(实验动物含小鼠)
实验动物的随机分组方法
实验动物的随机分组方法实验动物在运来之后，要经历什么样的步骤呢？首先，要确认品系、雌雄、数量，并观察有无不良状态。
这相当于一般商品交易中的“验货”环节。
第二，要进行适应性喂养。
在此期间只需按雌雄分笼，每笼饲养适当数目即可。
这个时间至少三天，多则一周。
在前面的专题中已有述及。
第三，对动物进行标号。
有多种方法，下面将一一具体介绍。
第四，随机分组。
注意，不是随机分组再标号，而是标号后再分组。
因为没有标号是没法随机的。
第五，进行实验处理。
从这里开始，才是真正进入主题的实验了。
包括造模、给药、手术等等处理。
分组的设计前已述及，经过适应性喂养、编号之后，我们就可以着手来分组了。
但是，如何分组，要考虑两方面的问题：一是分几组？这涉及到实验设计的问题；二是如何把动物随机地分到这些组中去？下面我们来讨论第一个问题。
如何随机在下一贴中再述。
分几组？每一组的干预处理是如何设计的？这是在还没做实验之前就应该确定好的方案。
至少应是大体确定，一般不允许在实验开始时临时更换，更不允许将动物养了一段时间之后再决定如何分组。
做动物实验，很讲究“齐同对比”。
因此，第一个设计原则就是：要设立对照组。
按对象不同，可分为自身对照和平行对照；按目的不同，可分为空白对照（正常对照）、模型对照和阳性对照。
1自身对照组自身对照是把实验动物本身在动物实验前、后两阶段的各项相关数据，分别作为对照组和实验组的结果并进行统计学处理。
也可以是自身不同部位的对照，如：左侧和右侧，前面和后面等。
2平行对照组平行对照组就是与实验组平行地设置另外的组，使之与实验组能够进行对比。
它可分为分正常对照组、模型对照组和阳性对照组。
空白对照就是对动物不施加任何处理，正常饲养；或者必要时给予蒸馏水、生理盐水或其它药物的溶剂等。
空白对照的设立就是为了突出正常动物与造成疾病的动物之间有何差别？模型对照组通常就是以一定的方法造成动物的疾病，而不施加任何的处理。
也就是说，想看在疾病状态下，没有任何干预措施的动物表现是如何的？模型对照的设立就是为了与空白相对比。
小鼠肝损伤动物模型的建立及在束缚应激研究中的应用
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意义：通过实验设计，可以更加深入地了解肝损伤的发病机制，为肝损伤的预防和治疗 提供更加有效的方案，同时也有助于推动束缚应激相关领域的研究进展。
● 实验目的：建立小鼠肝损伤动物模型，并研究束缚应激对肝损伤的影响。
● 实验材料：小鼠、束缚应激装置、肝损伤检测试剂盒等。
● 实验步骤： a. 选取健康成年小鼠，随机分为两组，对照组和束缚应激组。 b. 对束缚应激组小鼠进行 束缚应激处理，每天固定小鼠2小时，连续处理7天。 c. 在处理前、处理后分别采集小鼠血清和肝脏组 织，检测肝损伤相关指标。 d. 对检测结果进行分析，比较两组之间的差异。
意义：为进一步研究束缚应激对小鼠肝损伤的影响提供实验依据
实验设计：采用束缚应激方法建立小鼠肝损伤动物模型，观察束缚应激对小鼠肝损伤 的影响
实验结果：通过实验数据和图表展示束缚应激对小鼠肝损伤的影响，为后续研究提 供数据支持
实验目的：研究束缚应激对小鼠肝损伤的影响
实验动物：选择健康成年小鼠，随机分组
束缚应激对小鼠肝损伤的 预防和治疗策略
小鼠肝损伤动物模 型在束缚应激研究 中的应用
模型建立：介绍小鼠肝损伤动物模型的建立方法和步骤，包括实验设计、操作过程和评估指标等。
束缚应激研究：介绍束缚应激在小鼠肝损伤动物模型中的应用，包括应激诱导剂的选择、应激诱 导剂的给药方式、应激诱导剂的剂量和时间等因素对小鼠肝损伤的影响。
束缚应激对小鼠 肝组织氧化应激 水平的影响
束缚应激对小鼠 肝组织炎症反应 的影响
束缚应激对小鼠肝损伤的影响 束缚应激与小鼠肝损伤的生理机制 束缚应激与小鼠肝损伤的病理变化 束缚应激对小鼠肝损伤的预防和治疗意义
束缚应激对小鼠肝损伤的 影响
束缚应激对小鼠肝细胞的 损伤机制
实验动物分组和标记编号方法
实验动物分组与标记编号方法作者: 时间:2008-05-15 14:50:29 来源: 生物谷浏览评论一、分组(一) 分组原则实验动物分组应严格按照随机分组的原则进行,使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组中去,尽量避免人为因素对实验造成的影响。
(二) 建立对照组实验动物分组时应特别注意建立对照组。
对照组可分自身对照组与平行对照组。
1.自身对照组自身对照就是把实验动物本身在动物实验前、后两阶段的各项相关数据,分别作为对照组与实验组的结果并进行统计学处理。
2.平行对照组平行对照组分正对照组与负对照组(空白对照组)两种。
正对照组就是对实验动物实施与实验动物相同但排除了所要观察的目的因子(如治疗手段或药物)的处理,负对照组则不作任何处理,这种方法就就是平行对照组。
例如要观察某种药物的药效,对实验组动物采用肌肉注射的给药方法;正对照组动物同样进行肌肉注射,但注射的不就是药物而就是同等剂量的生理盐水,以便排除肌肉注射生理盐水可能产生的影响;负对照组动物则不进行肌肉注射,并与实验组动物与正对照组动物在相同的环境与条件下饲养,作为空白对照。
二、标记编号对随机分组后的实验动物进行标记编号,就是动物实验准备工作中相当重要的一项工作。
标记编号方法应保证编号不对动物生理或实验反应产生影响,且号码清楚、易认、耐久与适用。
目前常用的标记编号方法有染色法、耳孔法、烙印法、挂牌法等标记编号方式。
此外还有针刺法、断趾编号法、剪尾编号法、被毛剪号法、笼子编号法等。
(一)染色法染色法就是用化学药品在实验动物身体明显的部位,如被毛、四肢等处进行涂染,以染色部位、颜色不同来标记区分实验动物,就是最常用、最易掌握的经济犯罪分子方法。
1. 常用染色剂(1)3% ~ 5%苦味酸溶液,可染成黄色。
(2)0、5% 中性红或品红溶液,可染成红色。
(3)2%硝酸银溶液,可染成咖啡色(涂染后在可见光下暴露十分钟)。
(4)煤焦油酒精溶液,可染成黑色。
实验动物的随机分组方法
实验动物的随机分组方法动物实验时，常常需要将选择好的实验动物，按研究需要分成若干组时为了避免人为的因素影响常应用随机组，分表进行完全随机化的分组。
1．将实验单位随机分成两组设有小鼠14 号，试用随机数字表将其分成两组。
先将小鼠依次编为1、2、3……14 号，然后任意从随机数字表的某一行某一数字开始抄录14 个数，编排如下：全屏显示该表格动物编号随机数目归１１６２２２Ｂ３７７Ａ４９４Ｂ５３９Ａ６４９Ａ７５４Ｂ８４３Ａ９５４Ｂ１０８２Ｂ１１１７Ａ１２３７Ａ１３９３Ａ１４２３Ａ组Ｂ现令单数代表 A 组，双数代表 B 组，结果列入 A 组的动物有8 只，列入 B 组的动物有 6 只。
如要使两组相等，须将 A 组减少一只，划入 B 组。
应把哪一只小鼠划入B 组，仍可用随机数字表，在上述抄录的14个数后面再抄录一个数字为78，此数以8 除之，因为归入 A 组的小鼠有8 只，故以8 除，得余数6。
于是把第6 个A（即编写为第12 号的小鼠）划给 B 组。
经过这样调整，两组小鼠的分配如下。
全屏显示该表格Ａ组：Ｂ组：３１５２６４８１２１１７１３９１４１０2．将实验单位随机分成三组设有动物15 只，随机等分成A、B、C 三组。
将动物编号后，按上述方法，从随机数字表抄录15 个数字，将各数一律以 3 除之，并以余数1、2、3 代表A、B、C，结果归入 A 组的动物 6 只，归入 B 组的动物 4 只，归入 C 组的动物 5 只，即：全屏显示该表格动物号码１２１６８２３２３４４１０９１１ＡＡ５６７１４８２０３３１２ＣＡＢ８９１１１１０１２３１１４５０３３０３３ＣＣ随机数目除了后的余数归９３１４９６５４９４１９２１１２１３ＢＡＡＢＡＣ组ＣＢ要使三组的动物数相等，须把原归 A 组的6 只动物中的1 只改配到B 组去。
可以随机数字表继续按斜角线抄录一个数字，得60，以6 除之，除尽（相当于余数为6），就可以把第六个A（即12 号）动物改为 B 组。
统计学随机分组(实验动物含小鼠)
什么是随机数表？也称乱数表，由计算机随机 生成的从0到9十个数字所组成的数表，每个 数字在表中出现的次数概率基本相同。分组时， 需要借用这个工具，实现随机分配。
方法一：完全随机设计
通过随机数字表或用计算机产生随机数将动物 不加区分地随机分组[5]；
适用范围：所有动物必须是“同质”或者近似 “同质”。也就是说所有的动物性别、体重及 其他相关因素（如荷瘤体积）是一样的，或是
完全随机法分组举例
优点：操作简单，且能实现随机分配的原则； 缺点：一是过程比较繁琐，通常一次操作不能使各组的数 目相等，需要调整；数目太多不易快速实现分组；且若动 物间有较大差异，如体重区间较大，则不适用这种方法。
方法二：随机区组设计
然而如果一批小鼠中，小的有18g的，大的有 30g的，体重相差比较大，若按上述完全随机 方法分配到各组，很可能有的组分到体重特别 大的，有的组分到特别小的。这样难以保证平 均分配，因此随机区组设计应运而生。
阳性对照组：通常是给予疾病模型动物已知应 该有效的药物或者其他有效因素的处理；目的 是对比某受试药物与阳性药物对比，是否有效； 举例：已知阿霉素对乳腺癌肿瘤生长有抑制作 用，因此我们可以选用阿霉素作为阳性对照， 来判断此受试药物的治疗效果。
问题二： 每组几只合适？
动物实验设计应遵循实行“3R原则”，包括 实验动物的替代、减少和优化原则，其中减少 即指尽量减少实验动物的数量。查阅文献，并 未发现对实验动物数目有绝对要求，但在减少 的同时，一定要满足统计学要求。统计学上要 求一般至少每组有6个可用数据，才有意义。
按编号称重，记录每只小鼠体重。
按动物体重顺序依次重新编号。
共分为5个组，分别是空白对照组，模型对照 组，给药组（低剂量），给药组（中剂量）， 给药组（高剂量），每组10只。第一区组 1,2,3,4,5；第二区组6,7,8,9,10，依次类推。
常用实验动物随机分组方法.
2009年第4期畜牧兽医科技信息进行动物实验时,统计学要求各实验组间除实验处理因素外,其它条件都完全相同,但事实上不可能完全做到,就是同一种动物而言,即使品系、年龄、窝别、性别、生活条件完全一致,对药物的反应仍不可能完全一致,差异是绝对的,一致是相对的。
减少差异的办法除精选实验动物(或材料外,就是实行严格的随机原则进行安排,使正性和负性影响随机地分配到各组,得到平衡,而不受任何主观愿望的影响。
应避免人为因素随机把所有动物编号,然后令其双数为A 组(实验组,单数为B 组(对照组即可或反之,常应用随机数字表进行完全随机化的分组。
若手边没有随机数字表可用计算器产生的随机数字,每当按下2ndF (第二功能键和RND (随机数字键时,就会产生0.000~0.999的随机数字,可将显示的数前两个小数位用作一个样本个体。
研究人员也可将计算器产生的随机数字制作成随机数字表。
从随机数字表任意点开始选取连续的数字,原则自定,可横读、竖读、按斜角线读取。
将动物编号后进行随机分组要根据组数来进行,具体较复杂,以下结合实例说明使用随机数字表进行随机分组的方法。
1配对比较法随机分组在将实验动物分成两组时适用。
是指在分配动物之前,先将动物按性别、年龄、体重、胎别或其它有关因素加以配对,以基本相同的两个动物为一对配成若干对,然后,再将每一对动物随机分配于两组中,这样两组动物数必然相同,而且它们的胎别、性别、年龄以及体重等根本情况也基本相同,从而尽可能减少两组动物的生物差异性。
如,20只动物分成A 、B 两组,将动物按如上所述方法分成十对,每对编号1、2,从随机数字表连续抄录十个数,奇数则该对第一只动物入A 组,第2只入B 组;如为偶数,则该对第一只动物入B 组,第2只入A 组。
2随机区组法随机分组是配对设计的扩大,将动物分成3组以上时适用。
先将动物配成若干个区组(或窝后,再把每区组动物随机分配各试验组去。
如20只动物,按随机区组法分成A 、B 、C 、D 四组。
随机分组方法
随机分组方法随机分组是一种常见的实验设计方法，它可以有效地避免实验结果受到外部因素的干扰，确保实验结果的客观性和可靠性。
在科学研究、教育实践、市场调研等领域都有着广泛的应用。
本文将介绍几种常见的随机分组方法，以及它们的优缺点和适用范围。
首先，最简单的随机分组方法是简单随机分组。
在这种方法中，实验对象被随机地分配到不同的实验组中，每个实验组的样本数量可以相等，也可以不等。
简单随机分组的优点是操作简单，易于实施，能够有效地避免实验结果的偏倚。
然而，它也存在着分组不均匀的缺点，可能导致实验结果的可比性受到影响。
其次，分层随机分组是一种更加复杂但也更加精确的随机分组方法。
在这种方法中，实验对象根据某些特定的特征进行分层，然后在每个分层内进行简单随机分组。
这样做可以确保每个实验组在某些特征上的分布是均匀的，从而提高了实验结果的可比性和可靠性。
然而，分层随机分组的实施难度较大，需要充分考虑实验对象的特征和分层标准，否则可能导致分层不准确，影响实验结果的客观性。
另外，双盲随机分组是一种在临床试验中常用的随机分组方法。
在这种方法中，不仅实验对象被随机分组，实验人员也被随机分组，既不知道实验对象的分组情况，也不知道实验对象的分组情况。
这样做可以有效地避免实验结果受到实验人员主观因素的影响，提高了实验结果的客观性和可靠性。
然而，双盲随机分组的实施难度较大，需要严格的实验管理和监督，否则可能导致实验结果的失真。
总的来说，随机分组方法是一种有效地避免实验结果受到外部因素影响的实验设计方法，它在科学研究、教育实践、市场调研等领域都有着广泛的应用。
不同的随机分组方法有着不同的优缺点和适用范围，实验设计者应根据具体的实验目的和条件选择合适的随机分组方法，以确保实验结果的客观性和可靠性。
统计学随机分组(实验动物含小鼠) ppt课件
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PPT课件 2
PPT课件 3
动物分组
PPT课件
一般需要遵循对照和随机的原则，这里主要关 乎2个问题，一是如何设计对照组？二是如何 保证动物随机地分配到这些组中？
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PPT课件
问题一： 如何设置对照组？
为了保证能得到科学有效的数据，分组的第一个设计原则便是要设立对照 组。一般观察一个药物或者某种外界因素对实验动物的影响需要设置3组 对照，空白对照组（负对照组、模型对照组）、模型对照组（正对照组） 和阳性对照组[2]。
PPT课件
按编号称重，记录每只小鼠体重。 按动物体重顺序依次重新编号。 共分为5个组，分别是空白对照组，模型对照组，给药组（低剂量），给
药组（中剂量），给药组（高剂量），每组10只。第一区组1,2,3,4,5；第 二区组6,7,8,9,10，依次类推。 在随机数表上任意指定一个点抄录数字，抄录的数字个数等于区组数减1 并以横向的顺序抄录数字，如5个区组就抄录4个数字。以后的区组按顺 序依次抄录数字。 每个区组的随机数字除以5，得到的余数可为0,1,2,3和4.余数1分配到A组； 余数2分配到B组；余数3分配到C组；余数4分配到D组；余数0分配到E组。 如2个编号的余数相同，后一个编号的分配依次后退1组。区组第5个数字 为填补余缺，组内缺那组就填入哪组。 把上表整理，则各组动物编号为：（见下表），并用苦味酸重新标记；
一般小鼠的每组一般不少于10只； 一般大鼠每组不少于6只； 大动物等级越高，价格越贵，根据情况可适当
减少，但一般不能少于4-5只。
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PPT课件
问题三： 如何进行随机分配？
根本不同的实验目的，实验对象，分组时常用的 方法有：完全随机设计、随机区组设计等[3-4]。 实现随机分组时需要利用随机数字表以及随机数 余数分组法。
常用实验动物随机分组方法
常用实验动物随机分组方法兽医卫生常用实验动物随机分组方法赵伟，孙国志（佳木斯大学实验动物中心，佳木斯154007）摘要：进行动物实验时，为进行准确的统计检验，动物必须按照随机分配的原则进行随机分组。
其目的是使一切干扰因素造成的实验误差尽量减少，而不受实验者主观因素或其他偏性误差的影响。
随机化的手段通常采用随机数字表法。
关健词：实验动物；随机分组进行动物实验时，统计学要求各实验组间除实验处理因素外，其它条件都完全相同，但事实上不可能完全做到，就是同一种动物而言，即使品系、年龄、窝别、性别、生活条件完全一致，对药物的反应仍不可能完全一致，差异是绝对的，一致是相对的。
减少差异的办法除精选实验动物（或材料）外，就是实行严格的随机原则进行安排，使正性和负性影响随机地分配到各组，得到平衡，而不受任何主观愿望的影响。
应避免人为因素随机把所有动物编号，然后令其双数为A组（实验组），单数为B组（对照组）即可或反之，常应用随机数字表进行完全随机化的分组。
若手边没有随机数字表可用计算器产生的随机数字，每当按下2ndF（第二功能键）和RND（随机数字键）时，就会产生0.000～0.999的随机数字，可将显示的数前两个小数位用作一个样本个体。
研究人员也可将计算器产生的随机数字制作成随机数字表。
从随机数字表任意点开始选取连续的数字，原则自定，可横读、竖读、按斜角线读取。
将动物编号后进行随机分组要根据组数来进行，具体较复杂，以下结合实例说明使用随机数字表进行随机分组的方法。
1配对比较法随机分组在将实验动物分成两组时适用。
是指在分配动物之前，先将动物按性别、年龄、体重、胎别或其它有关因素加以配对，以基本相同的两个动物为一对配成若干对，然后，再将每一对动物随机分配于两组中，这样两组动物数必然相同，而且它们的胎别、性别、年龄以及体重等根本情况也基本相同，从而尽可能减少两组动物的生物差异性。
如，20只动物分成A、B两组，将动物按如上所述方法分成十对，每对编号1、2，从随机数字表连续抄录十个数，奇数则该对第一只动物入A组，第2只入B组；如为偶数，则该对第一只动物入B组，第2只入A组。
统计学随机分组(实验动物含小鼠)
随机区组设计：叫均衡随机化或限制性随机化， 即先将一定数目和比例的动物分为几个区组 （block）（一般＞3），如体重相近的动物、 性别一致的动物等。区组的长度最好为组数的
精品课件
举例：有40只SD大鼠，重量在180-220克之间， 需要分为4组，即每组10只（甲乙丙丁），应 先将动物按体重配成若干个区组，再把每区组 动物随机分配各组。
精品课件
按编号称重，记录每只小鼠体重。 按动物体重顺序依次重新编号。 共分为5个组，分别是空白对照组，模型对照
组，给药组（低剂量），给药组（中剂量）， 给药组（高剂量），每组10只。第一区组 1,2,3,4,5；第二区组6,7,8,9,10，依次类推。 在随机数表上任意指定一个点抄录数字，抄录 的数字个数等于区组数减1并以横向的顺序抄 录数字，如5个区组就抄录4个数字。以后的区 组按顺序依次抄录数字。
[2] Festing M F, Altman D G. Guidelines for the Design and Statistical Analysis of Experiments Using Laboratory Animals[J]. Ilar Journal, 2002, 43(4):
精品课件
一般小鼠的每组一般不少于10只； 一般大鼠每组不少于6只； 大动物等级越高，价格越贵，根据情况可适当
减少，但一般不能少于4-5只。
精品课件
问题三： 如何进行随机分配？
根本不同的实验目的，实验对象，分组时常用 的方法有：完全随机设计、随机区组设计等 [3-4]。实现随机分组时需要利用随机数字表 以及随机数余数分组法。
首先，进行大鼠称重，按顺序排序； 分区组：尝试可将这些大鼠按体重分为4个区
组（假设180~190g/8只，190-200g/12只， 200-210g/16只，210-220g/4只），即4窝，分
实验动物的随机分组方法(优选材料)
实验动物的随机分组方法实验动物在运来之后，要经历什么样的步骤呢？首先，要确认品系、雌雄、数量，并观察有无不良状态。
这相当于一般商品交易中的“验货”环节。
第二，要进行适应性喂养。
在此期间只需按雌雄分笼，每笼饲养适当数目即可。
这个时间至少三天，多则一周。
在前面的专题中已有述及。
第三，对动物进行标号。
有多种方法，下面将一一具体介绍。
第四，随机分组。
注意，不是随机分组再标号，而是标号后再分组。
因为没有标号是没法随机的。
第五，进行实验处理。
从这里开始，才是真正进入主题的实验了。
包括造模、给药、手术等等处理。
分组的设计前已述及，经过适应性喂养、编号之后，我们就可以着手来分组了。
但是，如何分组，要考虑两方面的问题：一是分几组？这涉及到实验设计的问题；二是如何把动物随机地分到这些组中去？下面我们来讨论第一个问题。
如何随机在下一贴中再述。
分几组？每一组的干预处理是如何设计的？这是在还没做实验之前就应该确定好的方案。
至少应是大体确定，一般不允许在实验开始时临时更换，更不允许将动物养了一段时间之后再决定如何分组。
做动物实验，很讲究“齐同对比”。
因此，第一个设计原则就是：要设立对照组。
按对象不同，可分为自身对照和平行对照；按目的不同，可分为空白对照（正常对照）、模型对照和阳性对照。
1自身对照组自身对照是把实验动物本身在动物实验前、后两阶段的各项相关数据，分别作为对照组和实验组的结果并进行统计学处理。
也可以是自身不同部位的对照，如：左侧和右侧，前面和后面等。
2平行对照组平行对照组就是与实验组平行地设置另外的组，使之与实验组能够进行对比。
它可分为分正常对照组、模型对照组和阳性对照组。
空白对照就是对动物不施加任何处理，正常饲养；或者必要时给予蒸馏水、生理盐水或其它药物的溶剂等。
空白对照的设立就是为了突出正常动物与造成疾病的动物之间有何差别？模型对照组通常就是以一定的方法造成动物的疾病，而不施加任何的处理。
也就是说，想看在疾病状态下，没有任何干预措施的动物表现是如何的？模型对照的设立就是为了与空白相对比。
实验动物的编号和分组
实验动物的编号和分组实验动物常需要标记以示区别。
编号的方法很多，根据动物的种类数量和观察时间长短等因素来选择合适的标记方法。
(一) 挂牌法将号码烙压在圆形或方形金属牌上(最好用铝或不锈钢的,它可长期使用不生锈),或将号码按实验分组编号烙在栓动物颈部的皮带上，将此颈圈固定在动物颈部。
该法适用于狗等大型动物。
(二) 打号法用刺数钳(又称耳号钳)将号码打在动物耳朵上。
打号前用蘸有酒精的棉球擦净耳朵，用耳号钳刺上号码，然后在烙印部位用棉球蘸上溶在食醋里的黑墨水擦抹。
该法适用于耳朵比较大的兔、狗等动物。
(三) 针刺法用七号或八号针头蘸取少量碳素墨水，在耳部、前后肢以及尾部等处刺入皮下，在受刺部位留有一黑色标记。
该法适用于大小鼠、豚鼠等。
在实验动物数量少的情况下，也可用于兔、狗等动物。
(四) 化学药品涂染动物被毛法(最为常用)经常应用的涂染化学药品有涂染红色：0.5％中性红或品红溶液。
涂染黄色：3-5％苦味酸溶液。
涂染黑色：煤焦油的酒精溶液。
根据实验分组编号的需要，可用一种化学药品涂染实验动物动物背部被毛就可以。
如果实验动物数量较多，则可以选择两种染料。
该方法对于实验周期短的实验动物较合适，时间长了染料易退掉；对于哺乳期的子畜也不适合，因母畜容易咬死子畜或把染料舔掉。
(五) 剪毛法该法适用于大、中型动物，如狗、兔等。
方法是用剪毛刀在动物一侧或背部剪出号码，此法编号清楚可靠，但只适于短期观察。
(六) 打孔或剪缺口法可用打孔机在兔耳一定位置打一小孔来表示一定的号码。
如用剪子剪缺口,应在剪后用滑石粉捻一下,以免愈合后看不出来。
该法可以编至1～ 9999号，此种方法常在饲养大量动物时作为终身号采用。
二、分组(一) 分组的原则进行动物实验时，经常需要将选择好的实验动物按研究的需要分成若干组。
动物分组应按随机分配的原则，使每只动物都有同等机会被分配到各个实验组与对照组中去，以避免各组之间的差别,影响实验结果，特别是进行准确的统计检验,必须在随机分组的基础上进行。
小鼠扭体法实验报告
一、实验目的1. 了解小鼠扭体法在镇痛实验中的应用。
2. 比较不同药物对小鼠的镇痛效果。
3. 掌握小鼠扭体法实验的操作步骤和数据处理方法。
二、实验原理扭体法是一种常用的镇痛实验方法，通过注入化学刺激物引起小鼠腹部疼痛，观察小鼠出现的扭体反应次数来判断镇痛效果。
扭体反应的出现与中枢神经系统中的阿片受体有关，因此扭体法可以用来评估药物的镇痛作用。
三、实验材料1. 实验动物：昆明小鼠10只，体重20-25g。
2. 药物：阿司匹林、度冷丁、罗通定。
3. 试剂：0.6%醋酸溶液、生理盐水。
4. 仪器：扭体反应计数器、电子秤、注射器、试管、剪刀等。
四、实验方法1. 实验分组：将10只小鼠随机分为4组，每组5只。
分别设为阿司匹林组、度冷丁组、罗通定组和生理盐水组。
2. 给药：阿司匹林组小鼠灌胃阿司匹林溶液（100mg/kg），度冷丁组小鼠灌胃度冷丁溶液（1mg/kg），罗通定组小鼠灌胃罗通定溶液（10mg/kg），生理盐水组小鼠灌胃等体积的生理盐水。
3. 观察与记录：给药后30分钟，将小鼠放入扭体反应计数器中，注入0.6%醋酸溶液0.1ml，记录每只小鼠出现的扭体反应次数。
4. 数据处理：计算各组小鼠的平均扭体反应次数，并进行统计学分析。
五、实验结果1. 阿司匹林组：平均扭体反应次数为20次。
2. 度冷丁组：平均扭体反应次数为10次。
3. 罗通定组：平均扭体反应次数为15次。
4. 生理盐水组：平均扭体反应次数为30次。
六、实验讨论1. 通过实验结果可以看出，阿司匹林、度冷丁和罗通定均具有一定的镇痛作用。
其中，度冷丁的镇痛效果最佳，罗通定次之，阿司匹林最差。
2. 镇痛效果可能与药物对阿片受体的激动作用有关。
度冷丁作为一种阿片受体激动剂，具有显著的镇痛效果；罗通定作为非阿片类镇痛药，也能在一定程度上减轻小鼠的疼痛反应；阿司匹林作为非甾体抗炎药，对镇痛作用较弱。
3. 本实验结果表明，扭体法是一种简单、易行的镇痛实验方法，可用于评估药物的镇痛效果。
药品生物检定技术基础知识——实验动物随机分组(随机数字表法).
如出现三组数字不等，导致每组动物只数不同时，继续用随机方法将动物较多的一 组多余的只数调整给动物较少的一组。仍采用随机法，从最后一个随机数字10接着抄一 个随机数字为61。除以5（因动物较多的一组原分配5只），余数为1，则将第一个C， 即2号鼠调入B组（动物较少的一组）。余此类推，直至最后各组的鼠数相等。
实验动物随机分组
提纲
一、随机分组的意义 二、随机数字表法
一、随机分组的意义
同一种动物即使品系、窝别、年龄、性别、生活条件完全一致，对药物的反应仍不可能完 全一致。差异是绝对的，一致是相对的。减少差异的办法除精选实验动物外，就是实行严格的 随机原则，采用严格按照机遇的顺序进行安排，使正性和负性影响随机地分配到各组，得到平 衡，而不受任何主观愿望的影响。
例2：随机分为三组
动物 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
编号
随机 08 27 01 50 15 29 39 39 43 79 69 10
数字 除3
余数 2 0 1 2 0 2 0 0 1 1 0 1
组别
BCABCBCCAACA
随机分为三组，以3除各随机数字，若余数为1，则归入A组；余数为2， 则归入B组；余数为0，则归入C组。
二、随机数字表法
随机数字表上所有的数字是按随机抽样原理编制的，表中任何一个数字出现在任何一个地 方两组
动物 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
编号
随机 78 38 69 57 91 0 37 45 66 82 65 41
课堂活动： 假设有6只大鼠，如何把它们随机分成6组？
制作人：王丽娟 重庆医药高等专科学校
数字
组别 乙 乙 甲 甲 甲 乙 甲 甲 乙 乙 甲 甲
生物统计学实验报告
生物统计学实验报告注：以下的实验报告是关于“不同剂量甲基苯并芘对小鼠体内DNA氧化损伤的影响”的生物统计学实验报告。
一、实验目的本次实验的目的是探究不同剂量甲基苯并芘对小鼠体内DNA氧化损伤的影响，并借助生物统计学方法对实验结果进行分析。
二、实验方法1. 实验材料实验小鼠：48只，6周龄雄性C57BL/6J小鼠。
试剂：甲基苯并芘（Methyl benzo[a]pyrene, CAS号191-24-2），产地：Sigma-Aldrich；0.9%氯化钠注射液（生理盐水），外包装批号：20180101。
2. 实验设计本实验采用随机分组设计，将48只小鼠随机分为四组：对照组（生理盐水注射）、低剂量组（25 mg/kg甲基苯并芘注射）、中剂量组（50 mg/kg甲基苯并芘注射）、高剂量组（100 mg/kg甲基苯并芘注射）。
每组12只小鼠。
试验过程如下：（1）实验前一个礼拜，小鼠适应环境并饲养。
（2）24 h禁食，但可饮水。
（3）对照组小鼠注射0.9%氯化钠注射液；低、中、高剂量组小鼠分别注射25、50、100 mg/kg甲基苯并芘。
（4）注射后，观察小鼠状况，如出现异常，立即记录和采取措施，并进行后续观察，如小鼠死亡，则进行解剖，收集组织。
实验结束后，取出小鼠肝脏进行实验检测。
3. 检测指标（1）DNA单链断裂指数（Tail moment）：采用碱性单细胞凝胶电泳法（Comet assay）检测DNA单链断裂指数。
（2）抗氧化酶：采用两步法测定小鼠肝脏组织中超氧化物歧化酶（SOD）、谷胱甘肽过氧化物酶（GPx）和谷胱甘肽还原酶（GR）活性。
每个样本均重复三次。
三、实验结果1. DNA单链断裂指数结果经碱性单细胞凝胶电泳法检测后，获得48只小鼠DNA单链断裂指数（Tail moment）数据，结果如下：| 组别 | Tail moment（μm） | 标准差 || :----------: | :-----------------: | :------: || 对照组| 1.59±0.76 | 0.899 || 低剂量组| 2.48±0.83 | 1.094 || 中剂量组| 4.01±1.23 | 1.821 || 高剂量组| 8.16±2.38 | 3.020 |从表格数据可以看出，随着甲基苯并芘剂量的增加，小鼠DNA单链断裂指数逐渐增加。
实验动物的随机分组方法
实验动物的随机分组方法实验动物在运来之后，要经历什么样的步骤呢？首先，要确认品系、雌雄、数量，并观察有无不良状态。
这相当于一般商品交易中的“验货”环节。
第二，要进行适应性喂养。
在此期间只需按雌雄分笼，每笼饲养适当数目即可。
这个时间至少三天，多则一周。
在前面的专题中已有述及。
第三，对动物进行标号。
有多种方法，下面将一一具体介绍。
第四，随机分组。
注意，不是随机分组再标号，而是标号后再分组。
因为没有标号是没法随机的。
第五，进行实验处理。
从这里开始，才是真正进入主题的实验了。
包括造模、给药、手术等等处理。
分组的设计前已述及，经过适应性喂养、编号之后，我们就可以着手来分组了。
但是，如何分组，要考虑两方面的问题：一是分几组？这涉及到实验设计的问题；二是如何把动物随机地分到这些组中去？下面我们来讨论第一个问题。
如何随机在下一贴中再述。
分几组？每一组的干预处理是如何设计的？这是在还没做实验之前就应该确定好的方案。
至少应是大体确定，一般不允许在实验开始时临时更换，更不允许将动物养了一段时间之后再决定如何分组。
做动物实验，很讲究“齐同对比”。
因此，第一个设计原则就是：要设立对照组。
按对象不同，可分为自身对照和平行对照；按目的不同，可分为空白对照（正常对照）、模型对照和阳性对照。
1自身对照组自身对照是把实验动物本身在动物实验前、后两阶段的各项相关数据，分别作为对照组和实验组的结果并进行统计学处理。
也可以是自身不同部位的对照，如：左侧和右侧，前面和后面等。
2平行对照组平行对照组就是与实验组平行地设置另外的组，使之与实验组能够进行对比。
它可分为分正常对照组、模型对照组和阳性对照组。
空白对照就是对动物不施加任何处理，正常饲养；或者必要时给予蒸馏水、生理盐水或其它药物的溶剂等。
空白对照的设立就是为了突出正常动物与造成疾病的动物之间有何差别？模型对照组通常就是以一定的方法造成动物的疾病，而不施加任何的处理。
也就是说，想看在疾病状态下，没有任何干预措施的动物表现是如何的？模型对照的设立就是为了与空白相对比。
统计学随机分组(实验动物含小鼠) PPT
药组（中剂量），给药组（高剂量），每组10只。第一区组1,2,3,4,5；第 二区组6,7,8,9,10，依次类推。 在随机数表上任意指定一个点抄录数字，抄录的数字个数等于区组数减1 并以横向的顺序抄录数字，如5个区组就抄录4个数字。以后的区组按顺 序依次抄录数字。 每个区组的随机数字除以5，得到的余数可为0,1,2,3和4.余数1分配到A组； 余数2分配到B组；余数3分配到C组；余数4分配到D组；余数0分配到E组。 如2个编号的余数相同，后一个编号的分配依次后退1组。区组第5个数字 为填补余缺，组内缺那组就填入哪组。 把上表整理，则各组动物编号为：（见下表），并用苦味酸重新标记；
的那组的数字a，得到的余数作为被抽的序号(若整除则余数为a)， 直到调到相等为止。 举例将15只小鼠分为3组：先按体重大小给动物编号，然后利用随 机表连续抄取15个数字，然后以组数3求余数，即除以3，余数1、 2、3分别代表进入甲、乙及丙组。然而得甲组多一只（6只），查 随机数字表，下一个随机数字为55。55/6余1，因此，将第1 例从 甲组调整到丙组中去。
完全随机法分组举例
优点：操作简单，且能实现随机分配的原则； 缺点：一是过程比较繁琐，通常一次操作不能使各组的数 目相等，需要调整；数目太多不易快速实现分组；且若动 物间有较大差异，如体重区间较大，则不适用这种方法。
方法二：随机区组设计
然而如果一批小鼠中，小的有18g的，大的有30g的， 体重相差比较大，若按上述完全随机方法分配到各组， 很可能有的组分到体重特别大的，有的组分到特别小 的。这样难以保证平均分配，因此随机区组设计应运 而生。
常用实验动物随机分组方法.
2009年第4期畜牧兽医科技信息进行动物实验时,统计学要求各实验组间除实验处理因素外,其它条件都完全相同,但事实上不可能完全做到,就是同一种动物而言,即使品系、年龄、窝别、性别、生活条件完全一致,对药物的反应仍不可能完全一致,差异是绝对的,一致是相对的。
减少差异的办法除精选实验动物(或材料外,就是实行严格的随机原则进行安排,使正性和负性影响随机地分配到各组,得到平衡,而不受任何主观愿望的影响。
应避免人为因素随机把所有动物编号,然后令其双数为A 组(实验组,单数为B 组(对照组即可或反之,常应用随机数字表进行完全随机化的分组。
若手边没有随机数字表可用计算器产生的随机数字,每当按下2ndF (第二功能键和RND (随机数字键时,就会产生0.000~0.999的随机数字,可将显示的数前两个小数位用作一个样本个体。
研究人员也可将计算器产生的随机数字制作成随机数字表。
从随机数字表任意点开始选取连续的数字,原则自定,可横读、竖读、按斜角线读取。
将动物编号后进行随机分组要根据组数来进行,具体较复杂,以下结合实例说明使用随机数字表进行随机分组的方法。
1配对比较法随机分组在将实验动物分成两组时适用。
是指在分配动物之前,先将动物按性别、年龄、体重、胎别或其它有关因素加以配对,以基本相同的两个动物为一对配成若干对,然后,再将每一对动物随机分配于两组中,这样两组动物数必然相同,而且它们的胎别、性别、年龄以及体重等根本情况也基本相同,从而尽可能减少两组动物的生物差异性。
如,20只动物分成A 、B 两组,将动物按如上所述方法分成十对,每对编号1、2,从随机数字表连续抄录十个数,奇数则该对第一只动物入A 组,第2只入B 组;如为偶数,则该对第一只动物入B 组,第2只入A 组。
2随机区组法随机分组是配对设计的扩大,将动物分成3组以上时适用。
先将动物配成若干个区组(或窝后,再把每区组动物随机分配各试验组去。
如20只动物,按随机区组法分成A 、B 、C 、D 四组。
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什么是随机数表？也称乱数表，由计算机随机生 成的从0到9十个数字所组成的数表，每个数字在 表中出现的次数概率基本相同。分组时，需要借 用这个工具，实现随机分配。
方法一：完全随机设计 通过随机数字表或用计算机产生随机数将动物不 加区分地随机分组[5]；
适用范围：所有动物必须是“同质”或者近似 “同质”。也就是说所有的动物性别、体重及其 他相关因素（如荷瘤体积）是一样的，或是近似 的。
参考文献
[1] National Research Council. 2011. Guidance for the Description of Animal Research in Scientific Publications. Washington, DC: National Academies Press. Available online (/books/NBK84205/) [2] Festing M F, Altman D G. Guidelines for the Design and Statistical Analysis of Experiments Using Laboratory Animals[J]. Ilar Journal, 2002, 43(4): 244-258. [3] Michael F. W. Festing. Randomized Block Experimental Designs Can Increase the Power and Reproducibility of Laboratory Animal Experiments[J]. ILAR Journal, 2014. [4] 赵伟，孙国志. 常用实验动物随机分组方法，实验动物，2009 年第4期 [5]万霞, 刘建平. 临床试验中的随机分组方法. 中医杂志2007 年第 48 卷第3 期
动物分组
一般需要遵循对照和随机的原则，这里主要关 乎2个问题，一是如何设计对照组？二是如何 保证动物随机地分配到这些组中？
问题一： 如何设置对照组？
为了保证能得到科学有效的数据，分组的第一个设计原则便是要设立对照 组。一般观察一个药物或者某种外界因素对实验动物的影响需要设置3组 对照，空白对照组（负对照组、模型对照组）、模型对照组（正对照组） 和阳性对照组[2]。 空白对照组：指不经任何处理的实验动物，目的是为了突出正常动物与疾 病动物之间有何差别；如研究某种药物对糖尿病小鼠的治疗效果，该组即 为未患有糖尿病的野生型小鼠，必要时可以给予生理盐水或其它药物的溶 剂等。 模型对照组：即疾病动物模型，给予阴性处理；目的是观察与治疗组相比， 药效如何及在疾病状态下的动物表现；如要观察某种药物是否对乳腺癌有 治疗效果，治疗组动物需要腹腔给药，模型组则是注射同等剂量的不包括 药物的溶剂，如生理盐水； 阳性对照组：通常是给予疾病模型动物已知应该有效的药物或者其他有效 因素的处理；目的是对比某受试药物与阳性药物对比，是否有效；举例： 已知阿霉素对乳腺癌肿瘤生长有抑制作用，因此我们可以选用阿霉素作为 阳性对照，来判断此受试药物的治疗效果。
一般小鼠的每组一般不少于10只； 一般大鼠每组不少于6只； 大动物等级越高，价格越贵，根据情况可适当 减少，但一般不能少于4-5只。
问题三： 如何进行随机分配？
根本不同的实验目的，实验对象，分组时常用的 方法有：完全随机设计、随机区组设计等[3-4]。 实现随机分组时需要利用随机数字表以及随机数 余数分组法。
完全随机法分组举例
优点：操作简单，且能实现随机分配的原则； 缺点：一是过程比较繁琐，通常一次操作不能使各组的数 目相等，需要调整；数目太多不易快速实现分组；且若动 物间有较大差异，如体重区间较大，则不适用这种方法。
方法二：随机区组设计
然而如果一批小鼠中，小的有18g的，大的有30g的， 体重相差比较大，若按上述完全随机方法分配到各组， 很可能有的组分到体重特别大的，有的组分到特别小 的。这样难以保证平均分配，因此随机区组设计应运 而生。 随机区组设计：叫均衡随机化或限制性随机化，即先 将一定数目和比例的动物分为几个区组（block）（一 般＞3），如体重相近的动物、性别一致的动物等。区 组的长度最好为组数的2倍以上，太小易造成不随机， 如有4个组，则区组长度最好选择8以上。
阳性对照组：通常是给予疾病模型动物已知应 该有效的药物或者其他有效因素的处理；目的 是对比某受试药物与阳性药物对比，是否有效； 举例：已知阿霉素对乳腺癌肿瘤生长有抑制作 用，因此我们可以选用阿霉素作为阳性对照， 来判断此受试药物的治疗效果。
问题二： 每组几只合适？
动物实验设计应遵循实行“3R原则”，包括 实验动物的替代、减少和优化原则，其中减少 即指尽量减少实验动物的数量。查阅文献，并 未发现对实验动物数目有绝对要求，但在减少 的同时，一定要满足统计学要求。统计学上要 求一般至少每组有6个可用数：有40只SD大鼠，重量在180-220克之间，需要分为4组，即 每组10只（甲乙丙丁），应先将动物按体重配成若干个区组，再把 每区组动物随机分配各组。 首先，进行大鼠称重，按顺序排序； 分区组：尝试可将这些大鼠按体重分为4个区组（假设 180~190g/8只，190-200g/12只，200-210g/16只，210220g/4只），即4窝，分区时每窝的数量至少大于4； 编号：依次对这4窝大鼠编号，第一窝1、2、3、4…8，以此类推， 编号到40； 随机分配区组1：将这8只随机分配给4组，每组各2只，分组方法 即采用上述随机数字表，按随机数余数分配到每个组； 随机分配剩余3个区组，方法同上
按编号称重，记录每只小鼠体重。 按动物体重顺序依次重新编号。 共分为5个组，分别是空白对照组，模型对照组，给药组（低剂量），给 药组（中剂量），给药组（高剂量），每组10只。第一区组1,2,3,4,5；第 二区组6,7,8,9,10，依次类推。 在随机数表上任意指定一个点抄录数字，抄录的数字个数等于区组数减1 并以横向的顺序抄录数字，如5个区组就抄录4个数字。以后的区组按顺 序依次抄录数字。 每个区组的随机数字除以5，得到的余数可为0,1,2,3和4.余数1分配到A组； 余数2分配到B组；余数3分配到C组；余数4分配到D组；余数0分配到E组。 如2个编号的余数相同，后一个编号的分配依次后退1组。区组第5个数字 为填补余缺，组内缺那组就填入哪组。 把上表整理，则各组动物编号为：（见下表），并用苦味酸重新标记；
优势：区间分组将保证了实验组间的生物差异减到了 最小，遵循了一致性原则与随机性原则，使实验结果 更具有统计学意义。 注：有时候我们会碰到多个因素，则需要依次分区， 如：40只体重差异较大的小鼠，雌雄不一，此时我们 不能只按照体重区组分配，需要先把雌雄分开，然后 各自按体重分层。即它要求随机先按某一因素分成相 等的几组，再在组内按另一因素分成几个区。 注：当数目较少时，我们可以手动计算分组；但是当 数目太多时，我们需要借助软件如excel或SPSS，省去 了去查阅随机数字表的麻烦，几分钟就可完成一个随 机分配过程。
操作步骤：
编号: 将实验动物从1 到N 编号，一般可以可按体重大小编号； 获取随机数字: 从随机数字表中任意一个数开始，沿同一方向顺序 获取N个随机数字； 求余数: 随机数除以组数求余数，若整除则余数取组数； 分组: 按余数分组； 调整: 如不均分，继续按顺序抄下一个随机数，除数变为数目最多 的那组的数字a，得到的余数作为被抽的序号(若整除则余数为a)， 直到调到相等为止。 举例将15只小鼠分为3组：先按体重大小给动物编号，然后利用随 机表连续抄取15个数字，然后以组数3求余数，即除以3，余数1、 2、3分别代表进入甲、乙及丙组。然而得甲组多一只（6只），查 随机数字表，下一个随机数字为55。55/6余1，因此，将第1 例从 甲组调整到丙组中去。