姜黄素对过度训练大鼠脾脏炎症反应的调控作用及其机制
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姜黄素对过度训练大鼠脾脏炎症反应的调控作用及其机制
王 品1,曹建民2,胡 戈3,周海涛4,5△
,张 静4,5,郭 娴2,牛衍龙6,程鑫云4,李嘉蓓4
(1.北京物资学院,北京101149;2.北京体育大学,北京100084;3.常州大学,江苏常州213164;4.北京联合大学,北京100101;
5.北京联合大学生物活性物质与功能食品北京市重点实验室,北京100191;6.赣南医学院,江西赣州341000)
【摘要】 目的:研究姜黄素调控Toll 样受体4(TLR4) p38丝裂原活化蛋白激酶(p38MAPK)/核因子κB(NF κ
B)信号通路缓解过度训练大鼠脾脏炎症反应的作用及其机制。
方法:7周龄SPF级雄性Wistar大鼠分为安静对照组(C组,n=12)、过度训练模型组(OM组,n=11)、姜黄素+模型组(COM组,n=14)。
C组不进行任何运动干预,OM和COM组进行8周递增负荷游泳训练。
训练期间,COM组以200mg/(kg·d)、5ml/kg姜黄素进行灌胃,其他组灌胃等体积0.5%羧甲基纤维素纳助溶剂。
末次训练后24h,称重计算脾脏指数,光镜观察脾脏组织病理学改变,取血液、脾脏组织检测相关生化指标。
结果:8周递增负荷游泳训练后,光镜下C组大鼠脾脏组织结构正常;OM组较C组脾脏指数极显著降低(P<0.01),并出现典型炎症病理变化;COM组较OM组脾脏指数显著升高(P<0.05),且炎症病理变化有所改善。
与C组比较,OM组血清皮质酮(Cor)、NF κB、肿瘤坏死因子 α(TNF α)、白细胞介素 6(IL 6)水平和脾脏单核细胞表面TLR4表达率、TNF α、IL 6水平均升高(P<0.05或P<0.01),脾脏p38MAPK、磷酸化p38MAPK(p p38MAPK)和NF κB蛋白质表达水平均增强(P<0.05或P<0.01);血清睾酮(T)、血清和脾脏白细胞介素 10(IL 10)水平降低(P<0.01)。
与OM组比较,COM组血清Cor、NF κB、TNF α、IL 6水平和脾脏单核细胞表面TLR4表达率、TNF α、IL 6水平均降低(P<0.05或P<0.01),脾脏p38MAPK、p p38MAPK和NF κB蛋白质表达水平均降低(P<0.05);血清T、血清和脾脏IL 10水平升高(P<0.05或P<0.01)。
组间T/Cor比值变化趋势与T变化相一致。
结论:8周递增负荷游泳训练引发大鼠过度训练,脾脏组织炎症反应加剧,出现炎症病理变化。
训练期间补充姜黄素可以通过下调TLR4 p38MAPK/NF κB信号通路相关蛋白质表达,维护促炎/抑炎因子间动态平衡,保护脾脏。
【关键词】 姜黄素;过度训练;炎症;大鼠;脾
【中图分类号】G804.7 【文献标识码】A 【文章编号】1000 6834(2021)03 281 006【DOI】10.12047/j.cjap.6075.2021.022
Regulatoryeffectofcurcuminonsplenicinflammation
inovertrainingratsanditsmechanism
WANGPin1,CAOJian min2,HUGe3,ZHOUHai tao4,5△
,ZHANGJing4,5,GUOXian2,NIUYan long6,
CHENGXin yun4,LIJia bei
4
(1.BeijingWuziUniversity,Beijing101149;2.BeijingSportUniversity,Beijing100084;3.ChangzhouUniversity,Changzhou213164;4.BeijingUnionUniversity,Beijing100101;5.KeyLaboratoryofBioactiveSubstancesandFunctionalFoods,BeijingUnionUniversity,
Beijing100191;6.GannanMedicalUniversity,Ganzhou341000,China)
【ABSTRACT】Objective:Tostudythealleviatingeffectsofcurcuminonsplenicinflammationinovertrainingratsbyregulatingtoll likereceptor4(TLR4) p38mitogen activatedproteinkinase(p38MAPK)/nuclearfactor kappaB(NF κB)signalingpathway.Methods:MaleWistarratsof7 weekoldweredividedintocontrolgroup(Cgroup,12),overtrainingmodelgroup(OMgroup,11),curcumin+overtrainingmodelgroup(COMgroup,14).CGroupdidnotundergoanyexerciseintervention.OMandCOMgroupun derwent8 weekincrementalloadswimmingtraining.Duringthetraining,ratsintheCOMgroupweretreatedwith200mg/(kg·d)curcumininthevolumeas5ml/kg,andtheothergroupsweretreatedwithanequalvolumeof0.5%sodiumcarboxymethylcellulose.24hoursafterthelasttraining,thespleenindexwascalculatedbyweighing,thepathologicalchangesofthespleenwereobservedbylightmicroscopy,andthebiochemicalindicatorsofbloodandspleenweredetected.Results:After8 weekincrementalloadswimmingtraining,thesplenicstructureinCgroupwasnormalunderlightmicroscope;thespleenindexofOMgroupwassignificantlylowerthanthatofCgroup(P<0.01)andpathologicalchangesofinflammationwereobvious;thespleenindexofCOMgroupwassignificantlyhigherthanthatofOMgroup(P<0.05)andpathologicalchangesofinflammationwerealleviated.ComparedwithCgroup,inOMgroup,theserumlevelsofcorticosterone(Cor),NF κB,tumornecrosisfactor alpha(TNF α),interleukin 6(IL 6)andTLR4ex pressionrateonsplenicmonocytessurface,splenicTNF α,IL 6wereincreased(P<0.05orP<0.01),theexpressionsofp38MAPK,phosphorylatedp38mitogen activatedproteinkinase(p p38MAPK)andNF κ
Binspleenwereincreased(P<0.05orP<1
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0.01);serumtestosterone(T),serumandsplenicinterleukin 10(IL 10)weredecreased(P<0.01).ComparedwithOMgroup,inCOMgroup,serumlevelsofCor,NF κB,TNF α,IL 6andTLR4expressionrateonsplenicmonocytessurface,splenicTNF α,IL 6weredecreased(P<0.05orP<0.01),theexpressionsofp38MAPK,p p38MAPKandNF κBinspleenweredecreased(P<0.05);serumT,serumandsplenicIL 10wereincreased(P<0.05).ThetrendofT/Corratiobetweengroupswasconsistentwithtestosteronechange.Conclusion:The8 weekincrementalloadswimmingtrainingaggravatedinflammationofspleeninrats,ledtopathologicalinflammatorychanges.Curcuminsupplementationduringtrainingcandown regulateexpressionsofTLR4 p38MAPK/NF κ
Bsignalingpathway relatedproteins,therebymaintainingadynamicequilibriumbetweenpro inflammatory/anti inflammatorycyto kines,protectingthespleen.
【KEYWORDS】 curcumin; overtraining; inflammation; rat; spleen
【基金项目】北京市朝阳区协同创新项目(CYXC1817);北京市
高等学校高水平人才交叉培养“实培计划”项目;北京联合大学科研项目(ZK70202005);北京联合大学“启明星”大学生科技创新创业项目(202011417SJ136)【收稿日期】2020 04 22【修回日期】2021 01 07 △【通讯作者】Tel:13611383040;E mail:zsettle@sina.com
Toll 样受体4(toll likereceptor4,TLR4)作为炎症反应过程中重要上游启动蛋白,广泛表达于多种免疫细胞表面。
当免疫细胞受到应激刺激时,TLR4可以通过激活TLR4 p38丝裂原活化蛋白激酶(p38mitogen activatedproteinkinase,p38MAPK)/核因子κB(nuclearfactor kappaB,NF κ
B)信号通路,从基因水平诱导多种促炎细胞因子表达,引发炎症反
应[1 2]。
脾脏作为人体最大的免疫器官,是免疫应答
发生的重要基地,在细胞免疫和体液免疫中均发挥着不可替代的作用。
长时程、大强度运动极易引发机体过度疲劳,当疲劳无法得到有效恢复时,机体可能发生过度训练综合症。
研究表明过度训练不仅会影响运动能力,诱发运动性免疫抑制,还会引发运动性脾脏功能障碍和结构损伤,炎症反应是其中主要
影响因素[3 4]。
姜黄素是姜黄中提取的一种植物多
酚,具有抗氧化、抗肿瘤、保护神经等多种药理学作用,亦可通过有效抑制TLR4 MAPK/NF κB信号通路激活,减少肿瘤坏死因子 α(tumornecrosisfactor alpha,TNF α
)及白细胞介素 6(interleukin 6,IL 6)等促炎因子的表达,发挥抑炎作用[5]。
本课题组前期研究[6]亦发现姜黄素可通过抑制炎症,延缓长时
程、大强度运动所致运动性脏器损伤,保护脏器结构和功能正常。
本实验结合前期研究,通过观察脾脏组织病理学改变,计算脾脏指数,结合脾脏组织相关信号通路蛋白表达水平及炎症指标变化,探讨姜黄素通过调控TLR4 p38MAPK/NF κB信号通路,缓解过度训练所致大鼠脾脏炎症反应,保护脾脏的作用机制。
1 材料与方法
1.1 实验动物与分组
63只7周龄雄性Wistar大鼠,SPF级,体重(218.4±10.7)g,北京大学医学部实验动物科学部提供,生产合格证编号:SCXK(京)2016 0010。
北京体育大学SPF级动物实验室正常昼夜节律饲养,温度(22±2)℃,相对湿度65%±10%。
4d适应性饲养后,以20min/d强度进行3d适应性游泳训练,3只大鼠因无法完成训练,剔除后将剩余大鼠随机
分为安静对照组(
C组,n=12)、过度训练模型组(OM组,n=24)和姜黄素+模型组(COM组,n=24
)。
1.2 训练方案与干预
C组不进行运动干预。
OM、COM组大鼠采用8周递增负荷游泳训练方案建立过度训练动物模型,
方案[7]
见图1。
训练过程中,若大鼠下沉不能自主
上浮,计时10s后迅速托出水面,休息5~10min后继续训练直至完成训练计划。
姜黄素购自陕西源泰生物科技公司,纯度≥99%,批号:17012571。
使用0.5%羧甲基纤维素纳作为助溶剂,配制姜黄素混悬液,4℃存放备用。
根
据文献[6]
及预实验结果,COM组大鼠姜黄素干预剂
量为200mg/kg,灌胃体积为5ml/kg;其他组灌胃等体积0.5%羧甲基纤维素纳助溶剂。
训练期间每日灌胃1次,在训练前1h
进行。
Fig.1 Swimmingtrainingprogramofrats
swimmingtime(min)×loadpercentageofthebodyweight
(bodyweight%)×frequencyoftraining
1.3 实验动物取材
受训练量、训练强度、运动疲劳恢复等因素影响,大鼠在游泳训练中易出现意外死亡现象。
OM、COM组取材前分别剩余11只和14只大鼠。
末次
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训练结束后24h,大鼠以乙醚麻醉后称重,颈总动脉取血,4℃离心10min,3000r/min,分离血清冻存待测血清NF κB、TNF α、IL 6、白细胞介素 10(inter leukin 10,IL 10)浓度。
取出脾脏后,小心剥离周围脂肪组织,在经过预冷的生理盐水中洗净血污,滤纸吸取多余液体后称重、记录并计算脾脏指数。
切取1cm×0.5cm×0.2cm脾脏组织浸入4%多聚甲醛常温固定待后期苏木素 伊红(hematoxylin eosin,HE)染色后光镜下观察脾脏组病理变化及检测脾脏组织p38MAPK、磷酸化p38MAPK(phosphorylatedp38mitogen activateclproteinkinase,p p38MAPK)和NF κB蛋白质表达情况;另取0.3g左右脾脏组织,准确称量重量后按照组织块重量W(g)/匀浆介质V(ml)为1/9的比例加入PBS缓冲液,在冰上充分研磨后进行超声破碎,5000r/min离心5min,取上清待测脾脏组织TNF α、IL 6、IL 10浓度;另取部分脾脏放入PBS缓冲液中低温保存,待测脾脏单核细胞表面TLR4表达率。
1.4 指标测试方法
按照试剂盒说明书对各指标进行测试和计算。
主要仪器包括RM2016病理切片机(德国Leica公司),BX51F32H01光学显微镜(日本OLYMPUS公司),PannoramicMIDI全自动数字切片扫描系统(匈牙利3DHISTECH公司),WellscanMK3酶标仪(芬兰ThermoLabsystems公司),CytoFLEX流式细胞仪(美国BeckmanCoulter公司),NR B17CC超低温冰箱(日本Panasonic公司),DY89 Ⅱ电动玻璃匀浆机(宁波新芝生物科技股份有限公司)等。
1.4.1 脾脏指数计算[4] 脾脏指数=脾脏重量(mg)/体重(g)×100%
1.4.2 脾脏病理变化评价 将固定好的脾脏组织取出,经梯度酒精脱水后进行透明处理,浸蜡包埋,冷却后以4μm厚度进行切片。
HE染色,400倍光镜下观察脾脏组织病理变化。
1.4.3 蛋白免疫组化分析 采用免疫组化法检测脾脏p38MAPK、p p38MAPK和NF κB蛋白质表达情况。
石蜡切片经梯度酒精脱蜡后进行抗原修复,加入3%过氧化氢溶液阻断内源性过氧化物酶,血清封闭后加入一抗,4℃孵育过夜,加入对应二抗,室温孵育后进行二氨基联苯胺显色,复染细胞核,脱水封片。
采用数字切片扫描系统对整张切片进行全视野数字扫描,细胞核颜色为深棕色、棕黄色、浅黄色和蓝色分别判定为强阳性、中度阳性、弱阳性和阴性。
应用公式计算H score进行组间分析。
H score=(弱阳性细胞密度×1)+(中阳性细胞密度×2)+(强阳性细胞密度×3)。
抗体由美国Sigma公司提供。
1.4.4 其他指标测试方法 采用放射免疫法测定血清睾酮(testosterone,T)和皮质酮(corticosterone,Cor);采用流式细胞术检测脾脏单核细胞表面TLR4表达率;酶联免疫吸附法检测血清NF κB、血清及脾脏组织TNF α、IL 6、IL 10浓度。
以上试剂盒由北京华英生物技术研究所提供。
1.5 统计学处理
所得数据以均数±标准差(珋x±s)表示,使用SPSS22.0软件进行统计分析。
采用Shapiro Wilk检验对数据进行正态分布检验,组间比较采用单因素方差分析(one wayANOVA),方差齐时采用LSD法,方差不齐采用Tamhane法。
2 结果
2.1 各组大鼠血清睾酮/皮质酮及脾脏指数血清T,与C组相比,OM组极显著降低(P<0.01);与OM组相比,COM组极显著升高(P<0.01)。
血清Cor,与C组相比,OM组极显著升高(P<0.01);与OM组相比,COM组极显著降低(P<0.01)。
组间T/Cor比值变化与T变化趋势一致。
脾脏指数,与C组相比,OM组极显著降低(P<0.01);与OM组相比,COM组显著升高(P<0.05,表1)。
2.2 各组大鼠脾脏组织形态
光镜下观察,大鼠脾脏组织病理学诊断结果显示(图2),C组大鼠脾脏组织形态正常,被膜、小梁、白髓和红髓结构清晰,脾小体未见增大,生发中心明显,脾窦内壁光滑,未见充血和淋巴细胞。
OM组大鼠脾脏组织形态明显改变,红髓和白髓交界处淋巴细胞数量增多,脾小体增大,出现多个生发中心,脾窦内皮细胞肿胀,窦腔充血且可见淋巴细胞增多。
Tab.1 Serumtestosterone/corticosteronelevelsandspleenindexineachgroup(珋x±s)
GroupnT(ng/ml)Cor(ng/ml)T/Cor(10 2)SpleenindexC121.82±0.7123.81±3.918.34±4.371.92±0.24OM110.50±0.12 45.95±6.93 1.14±0.44 1.50±0.23 COM141.22±0.66##30.11±8.41##4.40±4.26##1.84±0.27#
C:Controlgroup;OM:High intensityexercisegroup;COM:Curcumin+high intensityexercisegroup
P<0.01vsCgroup;#P<0.05,##P<0.01vsOMgroup
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COM组大鼠脾脏组织形态较OM组明显改善,仅可
见窦腔轻度充血及少量淋巴细胞分布。
Fig.2 Spleenmorphologyineachgroup(HE×400)
2.3 各组大鼠血清炎症因子水平
血清促炎指标NF κB、TNF α和IL 6,与C组相比,OM组均极显著升高(P<0.01);与OM组相比,COM组均显著降低(P<0.05)。
血清抑炎指标IL 10
,与C组相比,OM组极显著降低(P<0.01);与OM组相比,COM组显著升高(P<0.05,表2)。
Tab.2 Seruminflammatorycytokineslevelineachgroup(ng/L,珋
x±s)GroupnNF κBTNF αIL 6IL 10C121.11±0.30
6.87±1.78
20.11±7.38
430.31±9.54
OM111.84±0.21
21.40±9.33
61.24±11.93
281.43±12.53
COM
14
1.35±0.25
#9.38±3.05
#39.68±6.96
#363.35±9.26
# C:Controlgroup;OM:High intensityexercisegroup;COM:Curcumin+high intensityexercisegroup;NF κB:NuclearfactorkappaB;TNF α:Tumornecrosisfactor α
;IL 6:Interleukin 6;IL 10:Interleukin 10
P<0.01vsCgroup;#P<0.05vsOMgroup
2.4 各组大鼠脾脏单核细胞TLR4表达率及炎症因子水平
脾脏单核细胞TLR4表达率、TNF α和IL 6,与C组相比,OM组均极显著升高(P<0.01);与OM组
相比,COM组均显著降低(P<0.05或P<0.01)。
脾脏IL 10,与C组相比,OM组极显著降低(P<0.01);与OM组相比,COM组极显著升高(P<0.01,表3)
Tab.3 TLR4expressionratesonsplenicmonocytesurfaceandlevelofinflammatorycytokinesinspleenineachgroup(珋
x±s)GroupnTLR4expression
(%)TNF α
(pg/mg)IL 6
(pg/mg)IL 10
(pg/mg)C1224.81±0.76
6.02±0.16
17.17±1.59
2.20±0.08
OM1129.14±1.06 7.07±0.34 23.93±2.50 1.55±0.13 COM
14
26.71±0.87
#6.31±0.20
##19.09±2.09
#1.91±0.12
## C:Controlgroup;OM:High intensityexercisegroup;COM:Curcumin+high intensityexercisegroup;TLR4:Toll likereceptor4;TNF α:Tumornecrosisfactor α
;IL 6:Interleukin 6;IL 10:Interleukin 10
P<0.01vsCgroup;#P<0.05,##P<0.01vsOMgroup
2.5 各组大鼠脾脏p38MAPK、p p38MAPK和NF κ
B蛋白质表达水平脾脏组织p38MAPK、p p38MAPK和NF κB蛋白质表达水平,与C组相比,OM组均显著上调(P<0.05或P<0.01);与OM组相比,COM组均显著下调(P<0.05,表4,图3)。
Tab.4 H scoreofp38MAPK,p p38MAPKandNF κ
Binspleenofeachgroup(珋
x±s)Groupn
p38MAPK
p p38MAPK
NF κBC1294.61±18.6514.62±4.5976.85±16.86
OM11155.05±31.57 40.05±12.09 136.12±27.47
COM
14101.66±24.88#
17.92±5.52
#
88.76±23.58
#
C:Controlgroup;OM:High intensityexercisegroup;COM:Curcumin+high intensityexercisegroup;p38MAPK:p38mitogen activatedproteinkinase;p p38MAPK:phospho rylatedp38mitogen activatedproteinkinase;NF κB:NuclearfactorkappaB
P<0.05, P<0.01vsCgroup;#P<0.05vsOMgrou
p
Fig.3 Theexpressionsofp38MAPK,p p38MAPKandNF
κ
BinspleenineachgroupThecolorofnucleiwasdarkbrown,brownishyellow,lightyellowandblue,whichwerejudgedasstrongpositive,moderatepositive,weakpositiveandnegative
,respectively3 讨论
脾脏作为最大的淋巴器官,在局部和全身免疫反应调节中发挥重要整合作用。
同时脾脏也是血液循环系统主要的过滤器。
过度训练可破坏促炎/抑炎因子间的动态平衡,降低人体免疫防御活性,诱发
482ChinJApplPhysiol,2021,37(3)
脾脏功能障碍和结构损伤[3 4]。
血清T/Cor比值在体育科学领域是判断过度训练的常用指标[8]。
脾脏指数则可间接反映脾脏功能[4]。
本研究中与C组相比,OM组大鼠血清T水平极显著降低,Cor水平极显著升高,T/Cor比值极显著降低,同时脾脏指数出现极显著降低,HE染色后光镜下观察发现脾脏组织出现典型慢性炎症病理变化,说明本研究通过8周递增负荷游泳训练,成功建立过度训练动物模型,并引发脾脏结构/功能异常。
TLR4 p38MAPK/NF κB信号通路与炎症调节和控制机制密切相关。
TLR4作为跨膜蛋白Toll样受体家族的成员,其激活具有双向作用。
适度表达的TLR4可以启动机体防御机制,在自身免疫中发挥关键作用;而过量运动诱发TLR4过度表达,又会成为炎症性疾病发展的助推因素[9]。
p38MAPK通路可对多种应激刺激产生广泛应答,在炎症反应中发挥关键作用,是多种炎症疾病的治疗靶点。
TLR4[10]和运动应激[11]均可通过增加p p38MAPK表达,诱导炎症反应。
NF κB在哺乳动物先天免疫反应和慢性炎症中发挥关键作用,也是TLR4诱导炎症反应的重要靶点。
TLR4表达上调将促使NF κB与NF κB抑制蛋白(inhibitorofNF κB,IκB)解离,转位至胞核内与DNA特定序列结合,调节炎症因子基因转录,参与炎症发展与转归等生理过程[1]。
而活化的p38MAPK也可通过磷酸化修饰或促进炎症因子表达激活NF κB,后者又能够通过TNF α、IL 6等炎性产物进一步激活p38MAPK信号通路[12]。
本研究中,与C组相比,OM组大鼠脾脏单核细胞表面TLR4表达率、p38MAPK、p p38MAPK以及NF κB蛋白质表达水平均显著升高,同时脾脏及血清促炎因子TNF α、IL 6水平同步显著升高,抑炎因子IL 10水平同步显著降低。
上述结果说明8周大强度游泳训练激活TLR4 p38MAPK/NF κB信号通路,打破促炎/抑炎因子间的动态平衡,致使脾脏慢性炎症反应加剧,炎症因子释放入血,引发血清炎症水平同步升高。
姜黄素是一种食源性多酚类化合物,具有多个功能基团,可与多种分子靶标结合,发挥抑炎作用[5]。
姜黄素及其类似物可以与脂多糖竞争结合TLR4的共受体蛋白髓样分化蛋白2,抑制两者形成信号转导复合物,减轻TLR4介导的炎症过程[13]。
p38MAPK是姜黄素发挥抑炎作用的又一重要靶点。
Guimar es等[14]的研究中,利用大肠杆菌脂多糖建立大鼠巨噬细胞炎症模型,发现姜黄素通过阻止p38MAPK的磷酸化和核易位,抑制脂多糖诱导的TNF α和IL 6表达。
Song等[15]的研究也认为,姜黄素的抑炎作用可归因于对p38MAPK磷酸化的抑制。
同时,姜黄素作为一种有效的NF κB抑制剂,可以通过抑制IκB磷酸化、IκB激酶活性以及NF κB核易位,直接发挥抑炎作用[5]。
本研究发现,COM组大鼠脾脏单核细胞表面TLR4表达率、p38MAPK、p p38MAPK以及NF κB蛋白质表达水平较OM组均显著降低,同时伴随脾脏及血清促炎因子水平同步显著降低,抑炎因子水平同步显著升高,说明补充姜黄素可以改善TLR4 p38MAPK/NF κB通路介导的炎症过程,调节相关炎症因子的合成与分泌,这与相关研究结果基本一致[16 17]。
炎症反应通常伴随巨噬细胞向M1型极化,导致促炎因子过度表达,而姜黄素可以通过抑制巨噬细胞向M1型极化,增加M2型巨噬细胞数量,直接减少促炎因子基因表达,减轻炎症反应[18]。
IL 10作为一种有效的抑炎因子,在抑制免疫反应和预防过度炎症反应诱导的器官损害中发挥重要作用[19]。
细胞实验证实[20],巨噬细胞摄取负载姜黄素的纳米颗粒后显著增加IL 10的释放。
Larmonier等[21]的研究发现,在IL 10缺陷小鼠结肠炎模型中,姜黄素对NF κB活性无显著影响,这提示本研究中COM组大鼠脾脏及血清IL 10浓度均较OM组显著升高,可能不仅是姜黄素发挥抑炎作用的结果,也是姜黄素发挥抑炎作用的中介途径之一。
上述结果结合COM组大鼠脾脏指数及组织病理学诊断结果的改善,充分说明在8周递增负荷游泳训练期间对大鼠进行一定剂量姜黄素干预,可以通过多靶点调控,有效恢复失衡的炎症介质网络,维护促炎/抑炎因子间的动态平衡,通过减轻过度炎症反应保护脾脏。
综上所述,8周递增负荷游泳训练引发大鼠脾脏组织炎症反应加剧,出现炎症病理变化。
训练期间补充姜黄素可以通过下调TLR4 p38MAPK/NF κB信号通路相关蛋白质表达,维护促炎/抑炎因子间的动态平衡,保护脾脏。
本研究将为运动性炎症反应诱发脏器损伤提供实验依据,相关信号转导通路之间的交互作用有待进一步研究。
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