标本的采集方法与运送

穿刺液标本的送运
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外 部留有残留物。
保温立即送检，保证在≤15min内送至 实验室，实验室收到标本后应立即接种。
为提高阳性率，像胸腹水等标本，可接 种到血培养瓶中送检。
手术切口与软组织感染标本
采集与运送
采集方法
未破裂脓肿：不能用拭子。消毒覆于脓肿表面 的皮肤，用注射器将脓肿内容物吸出。然后切 开脓肿、引流，取部分脓肿壁送检。用于厌氧 培养。
皮肤消毒程序：严格按照“酒精、含碘消毒剂、酒精” 的消毒步骤操作，并等待足够的消毒时间。
培养瓶接种程序：抽取血液后，不要换针头，直接注 入血培养瓶中，轻轻颠倒混匀，以防血液凝固。
血培养标本的运送
采集后的血培养瓶应在1小时之内送往 实验室。
血培养瓶在采血接种后在室温不超过 数小时。
血培养瓶在接种前和接种后均不得冷 藏或冷冻。
谢谢!
正确的微生物标本采集和运送， 是准确的病原学诊断的前提！
采集与运送
采集指征：
当腹泻患者出现以下任何一种情况时建议采集
粪便标本，进行细菌培养：
• 粪便涂片镜检白细胞＞5/HP • 体温＞38.5℃ • 重症腹泻 • 血便或便中有脓液 • 未经抗菌药物治疗的持续性腹泻病人 • 来自肠道传染疫区的患者
粪便标本的采集方法
自然排便采集标本时，取有脓血、粘液、组织 碎片部份的粪便1～3g（花生米大小）。
血培养瓶标识
标识内容应包括病人姓名、病员号、标 本种类、采集时间。
病人标识不可黏贴在血液培养瓶上。
感染性细菌性心内膜炎
急性：在经验性抗生素用药前30min之 内采集血培养。
亚急性：在30分钟至1小时之内连续抽 取数套血培养。
最初采集3套血培养。 假如这些血培养在24小时之内结果是阴
液体粪便则取絮状物，一般取1～3ml，直接 装入粪便容器或运送培养基中送检。
直肠拭子采集粪便标本：先以肥皂、水和70% 酒精，将肛门周围洗净，然后用经无菌盐水湿 润的棉拭子插入肛门超越肛门括约肌约2-4cm， 与直肠粘膜表面接触，轻轻旋转，必须将棉拭 子置于运送培养基中送检。
粪便标本的运送
血培养的采血量
成年患者：推荐采血量为每套不少于 10ml，每瓶不少于5ml。
婴幼儿患者：推荐采血量每瓶不少于 2ml。（少于病人总血容量的1%）。
采集方法
防止皮肤寄生菌或环境微生物引起的污染是血培 养的关键问题，采血前严格执行消毒程序。
培养瓶消毒程序：在采血之前，血培养瓶的橡皮塞需 使用70%酒精消毒并干燥。然后再进行穿刺部位的皮 肤消毒。
性的，再采集2套血培养，总共5套。
导管相关的血流感染
短期外周导管：通过静脉穿刺获得病人 的两套外周血培养。无菌操作拔去导管 并半定量培养。
中心静脉导管及静脉留置口：至少两套 血培养，其中至少一套采集自外周血静 脉，另一套应该从导管口或VAP隔膜无 菌采集，两套血培养采集时间应相近。
痰培养标本
不能把导尿管与尿袋拔开后收集尿液。 采样端口用酒精消毒；必要时，可先夹住导尿
管但不能超过30分钟；将注射器针头插入采样 端口，抽吸出尿液；注入无菌杯或试管中
标本运送
收集中段尿液5-10ml，及时送检。 室温保存下不得超过2小时，否则应置于 4℃
冰箱保存，保存时间不得超过24h。
粪便培养标本
发热（≥38℃）或低温（≤36℃）. 寒战。 白细胞增多（计数大于10×109/L，特别有“核
左移”未成熟的或带状的白细胞）。 粒细胞减少（成熟多核白细胞小于1×109/L） 血小板减少。
皮肤黏膜出血。 昏迷. 多器官衰竭 血压降低 呼吸加快 降钙素原升高（PCT） C反应蛋白升高（CRP）
除婴儿和有活动性腹泻症状的患者外不推荐 用拭子做常规病原检测。
有腹部痉挛的患者在发病6h内采集到的血便 或液状便的效果最好。
疑似致病性大肠埃希菌，气单胞菌，邻单胞 菌，弧菌，小肠结肠炎耶尔森菌感染的病人， 需要培养时，须另外提出申请。
脑脊液标本
采集与运送
脑脊液标本的采集方法
按脊椎穿刺操作规程，采集约3-5ml脑脊液于 3支无菌试管中，每支试管至少1-2ml，然后 马上将第2支（或第1支）送至实验室。
采集与运送
咳痰途经口咽部
不可避免地受到污染
唾液中口咽部定植菌的浓度可达 108-109/ml。
研究显示，国内常规痰标本中约半 数存在唾液严重污染现象。
痰标本的采集方法
自然咳痰：采集标本前，应冷开水漱口刷牙 ，然后用力从气管深部咳出痰液，放入痰杯 内。
下呼吸道肺泡灌洗，支气管刷洗，气管抽吸 ：将抽吸物或灌洗液直接放入痰杯内，刷出 物放入1ml无菌生理盐水的痰杯中。
个+号） 不明原因的发热，无其他局部症状 留置导尿管时间超过48h的患者出现发热 膀胱排空功能受损 泌尿系统疾病手术前。
采集方法：
尽量取早晨第一次尿液
弃去开始流出的尿液，以冲刷尿道口的细菌，取能代 表膀胱部位病原菌的中段尿
详细告知病人以下操作步骤 女性病人
➢ 收集标本前用清洗液冲洗干净，从前向后仔细擦洗 尿道区域
一般粪便标本装于无菌封闭广口塑料杯；直肠 拭子置于肠道运送培养基。做霍乱弧菌检查的 粪便标本置于碱性蛋白胨水试管中。
粪便标本：室温1小时内送至。 直肠拭子：室温1小时内送至。 高度怀疑霍乱弧菌感染的标本室温1小时内送
至，运送必须符合特殊标本的安全要求。
你知道吗？
住院超过3d或入院诊断不是胃肠炎的患者不 做常规粪便培养。
开放病灶和脓肿：尽量去除表面菌群，用拭子 采集病灶及底部或边缘的标本，置于需氧培养 基中。开放病灶不能做厌氧培养。
脓疱或水疱：酒精消毒使之干燥，对于患儿用 23号针头挑破脓疱，拭子采集脓疱液和基底部 标本。
注意事项
迅速送往实验室，1小时内不能培养应将标本 冷藏。
皮肤消毒对培养结果至关重要。 革兰染色对标本进行评估。涂片中如出现上皮
➢ 分开阴唇，开始排尿 ➢ 排出几毫升后，不停止尿流，采集中段尿 男性病人 ➢ 回缩包皮并清洗龟头 ➢ 排出几毫升后，不停止尿流，采集中段尿
导尿管尿液
集尿袋内的尿液不能用作培养； 导尿管末端的尿液也不能用于培养，因为很难
避免没有尿道菌群污染。 留置导管尿液标本常通过专门的采样端口采集，
临床微生物标本的采集与运送
检验科细菌室
基本原则
及时采集微生物标本作病原学检查 在抗菌药物使用前采集标本 采样时严格执行无菌操作 采样后立即送检 棉拭子标本宜用运送培养基 混有正常菌群污染标本，不可置肉汤培养
血培养标本
采集与运送
血培养的养：
穿刺液标本
采集与运送
穿刺液标本的采集方法
由临床医生进行。
胆汁的采集方法有三种：十二指肠引流法（以 “B”管—来自胆囊，做细菌培养意义较大）、 胆囊穿刺法及手术采取法，由临床医生采取， 约2ml左右放入无菌密封容器立即送检。
其它穿刺液的采集方法：2%碘酊消毒要穿刺 的皮肤后，由临床医生穿刺采集标本（2ml左 右），装入无菌密封容器立即送检。
细胞提示标本已被污染。没有上皮细胞而有白 细胞说明标本采集正确。 不要仅送检脓液。脓液不能代表伤口特点，应 在病灶活动区域或基底部采集标本。
生殖道标本
采集与运送
生殖道标本的采集方法
不建议做常规培养。（此部位容易被正 常菌群污染，培养结果很难解释甚至误 导）。
应根据感染的部位和可能的病原体决定 采集方法。
做脑脊液培养时，建议同时做血培养。腰穿时 必须作彻底消毒和无菌操作。
脑脊液标本的运送
常温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。 脑脊液标本送检的理想时间为15分钟内，半小
时送检是可接受的，如果送检时间超过1小时， 则会影响结果，在结果报告时，在备注处注明 此情况。
如不能及时送检，可使用血培养瓶（怀疑脑膜 炎奈瑟菌和淋病奈瑟菌感染时，请勿使用血培 养瓶）
诱导咳痰：刷完牙龈和舌头后让患者用水漱 口，借助喷雾器使患者吸入约25ml 3%～ 5%的无菌盐水诱导咳痰。
痰标本的采集量
≥1ML，支气管肺泡灌洗，应采集10100ML
痰标本运送
尽快（<2h）送至实验室。 如不能及时送达，应将标本暂存于4℃，但放
置时间不可超过24h。 合格的痰标本应≤10个鳞状上皮细胞/LPF。
血培养的采集时间
对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在 考虑使用抗菌药物之前，应立即采集 血培养标本。
必须同时或间隔短时间内采集２套以 上血培养标本。
血培养的采集次数
患者：推荐同时采集２－３套（不同部 位）血培养标本。（即双瓶双臂同时采 集血培养标本。）
婴幼儿患者：推荐同时采集２次（不同 部位）血培养标本。
痰培养的拒收
光学显微镜细胞学检查发现口咽分泌物 污染明显。
没有标签或贴错标签。 运送容器选择不当或有渗漏。 同一天同一试验重复送检2次。 标本采集不符合要求。 延时送至实验室的标本。
尿培养标本
采集与运送
采集指征：
有典型的尿道刺激症状 肉眼脓尿或血尿 尿常规检查表现为白细胞或亚硝酸盐阳性（几