T4 DNA 连接酶 #EL0011 Thermo scientific
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T4 DNA Ligase ——Thermo scientific #EL0011
产品信息
特点
快速–室温下10分钟内完成粘末端的连接反应。
•该酶在Fermentas公司限制酶、PCR和RT缓冲液(添加ATP)中活性。
•配套提供聚乙二醇溶液以有效进行平末端连接。
应用
克隆酶切产生的DNA片段。
•克隆PCR产物。
•连接双链寡聚核苷酸街头或连接物。
•定点诱变。
•扩增片段长度多态性(AFLP)。
•连接酶介导的RNA 检测(3)。
•双链DNA,RNA 或DNA/RNA 复合体中缺口的修复。
•线性DNA自身环化。
说明
T4� DNA Ligase催化双链DNA或RNA中毗邻的5’ -磷酸基团和3’-羟基末端之间形成磷酸二酯键。
酶还可以修复双链DNA、RNA或DNA/RNA复合体中的单链切口,连接DNA 的粘性和平末端,但是该酶对单链核酸无酶活性(1, 2)。
T4 DNA Ligase需要辅因子ATP。
浓度
1 Weiss u/µl = 200 CEU*/µl
5 Weiss u/µl = 1000 CEU*/µl
30 Weiss u/µl = 6000 CEU*/µl
*一个粘性末端连接单位的是指在16°C 、30分钟内50%连接HindIII酶切的lamda DNA产物所需要的酶的量。
来源
含有T4噬菌体克隆基因30的大肠杆菌。
分子量
55.3 kDa,单体。
活性单位定义
1个活性单位是指在ATP-PPi交换反应中,37°C、20分钟内将1nmol [32PPi]转换为Norit 可吸收形式所需的酶量(Weiss单位**(4)。
酶活性分析混合物:66 mM Tris-HCl (pH 7.6), 6.6 mM MgCl2, 0.066 mM ATP, 10 mM DTT, 3.3�µM [32PP i].
** 1个Weiss单位相当于约200个粘性末端连接单位。
1个粘性末端连接单位:20�μl反应体系(50 mM Tris-HCl�(pH�7.5), 10 mM燤gCl2, 10 mM燚TT, 1 mM ATP, 25
µg/ml燘SA, 0.12 µM (300�µg/ml)的5’-DNA末端)中,在16°C、30分钟内50%连接HindIII酶切的Lambda DNA产物所需要的酶量。
保存缓冲液
保存缓冲液组分:
20 mM Tris-HCl (pH 7.5), 1 mM DTT, 50 mM KCl, 0.1 mM EDTA和50% (v/v)甘油。
10X T4 DNA Ligase 缓冲液(#B69)
400 mM Tris-HCl, 100 mM MgCl2, 100 mM DTT, 5 mM ATP (pH 7.8, 25°C)。
质量控制
相关测试表明无内切和外切脱氧核糖核酸酶、核糖核酸酶、磷酸酶污染。
功能检测:粘性末端或平末端DNA的连接能力。
抑制与失活
•抑制剂:当反应体系中NaCl或KCl的浓度超过200� mM时,可强烈抑制T4 DNA Ligase活性。
•失活:65°C加热10分钟或者70°C加热5分钟。
备注
•聚乙二醇(PEG) 极大地增加平末端连接效率(5) 。
反应体系中的PEG 4000的建议浓度为5% (w/v)。
•T4 DNA Ligase与DNA结合会改变条带的琼脂糖凝胶电泳迁移率。
为避免此现象,电泳前需处理样本或分子量标准。
样本处理方法如下:样本或分子量标准与Fermentas 公司6X DNA Loading Dye & SDS溶液(#R1151)混合;70°C加热5分钟或65°C加热10分钟后冰浴保存。
•转化时,连接产物的体积不能超过感受态细胞体积的10%。
•电转化之前,先用氯仿抽提方法除去连接混合物中的T4 DNA Ligase。
然后经乙醇沉淀纯化抽提产物。
备注
:如需增加转化子数量:
•如果连接产物的产量不够,建议4°C孵育连接过夜。
•采用氯仿抽提替换热失活方法,平末端连接产物建议采用电转化方法。
连接后酶切可产生与克隆载体匹配的粘性末端。
此外接头也可直接带有匹配的粘性末端,与克隆载体直接连接,无需额外操作。
1.根据应用不同,准备下列的反应体系:
50% PEG 4000 溶液** 2 µl
T4 DNA Ligase (#EL0334) 或(#EL0335) 0.4 µl 或2 µl (2 u)
水,无核酸酶(#R0581) 至20 µl
总体积至20 µl 至20 µl
*混合10 μl 100 mM ATP溶液(#R0441)和90 μl水(无核酸酶,#R0581)制备10 mM ATP溶液。
** 50% PEG 4000溶液随Fermentas T4 DNA Ligase配套提供(#EL0335,#EL0334)。
2.充分混匀后短暂离心,22°C孵育1小时。
3.65°C热失活10分钟。
备注
连接产物酶切前无需纯化,可将限制酶直接加入连接反应混合物中。
T4 DNA Ligase活性分析对照反应
连接酶失活或样本DNA中的杂质会导致连接失败。
推荐采用对照DNA(如:Lambda DNA/HindIII DNA Marker (#SM0101))的连接实验分析T4 DNA ligase的活性。
1.对照连接混合物准备:
Lambda DNA/HindIII DNA Marker
1 µl (0.5 µg)
(#SM0101)
10X T4 DNA Ligase Buffer 2 µl
T4 DNA Ligase 1 u
水,无核酸酶(#R0581)至20 µl
总体积至20 µl
2.充分混匀后短暂离心,22°C孵育10分钟。
3.制备上样混合物:
连接产物10 µl
6X DNA Loading Dye & SDS Solution 2 µl
图 1.对照实验评价T4 DNA Ligase活性。
1– Lambda DNA/HindIII fragments, 未连接
2–连接后的Lambda DNA/HindIII
结果解释
●出现更高分子量条带且低分子量条带变弱,表明连接酶有活性。
●连接后条带不发生变化,说明连接酶失活。
参考文献:
1Rossi, R., et al., Functional characterization of the T4 DNA Ligase: a new insight into the mechanism of action, Nucleic Acids Res., 25, 2106-2113, 1997.
2Cherepanov, A.V., et al., Binding of nucleotides by T4 DNA Ligase and T4 RNA Ligase: optical absorbance and fluorescence studies, Biophys. J., 81, 3545-3559, 2001.
3Nilsson, M., et al., RNA-templated DNA ligation for transcript analysis, Nucleic Acids Res., 29, 578-581, 2001.
4Weiss, B., et al., Enzymatic breakage and joining of deoxyribonucleic acid, J. Biol. Chem., 243, 4543-4555, 1968.
5Pheiffer, B.H., Zimmerman, S.B., Polymer-stimulated ligation: enchanced blunt- or cohesive-end ligation of DNA or deoxyribo-oligonucleotides by T4 DNA ligase in polymer solutions, Nucleic Acids Res., 11, 7853-7871, 1983.。