猪饲料利用效率的研究进展

中国农业大学学报　２０１６，２１（４）：７７－
８５Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｃｈｉｎａ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙｈｔｔｐ
：∥ｘｕｅｂａｏ．ｃａｕ．ｅｄｕ．ｃｎＤＯＩ：１０．１１８４１／ｊ
．ｉｓｓｎ．１００７－４３３３．２０１６．０４．１０猪饲料利用效率的研究进展
蒲蕾１　岳慧洁２　张龙超１　王立刚１　施辉毕１　王立贤１＊
（１．中国农业科学院北京畜牧兽医研究所，北京１００１９３；２．河南雏鹰农牧集团股份有限公司研究院，河南开封５４１１６２
）摘　要　为利用科学的指标选育出饲料利用效率高并且综合生产能力好的猪品种，从而解决饲料成本增加的问题，对饲料利用效率指标的演进历程进行研究。

研究显示：剩余采食量性状为目前衡量饲料利用效率的理想指标；饲料利用效率指标与猪生长和肉质特性之间关系紧密；影响饲料利用效率的因素很多包括：摄食、活动、消化和代谢等生物学因素；但是通过饲料利用效率相关基因组学和分子遗传学研究，发现此性状的候选基因的研究结果比较少且并不统一。

这些研究结果表明剩余采食量性状的改良对猪的生长和肉质等具有促进作用，它跟机体的各种生长和代谢机能相关，但其遗传作用的分子机制并不清楚，可作为今后研究的重点。

关键词　猪；饲料利用效率；剩余采食量；饲料转化率；遗传研究
中图分类号　Ｓ　８２８ 文章编号　１００７－４３３３（２０１６）０４－００７７－０９ 文献标志码　Ａ
收稿日期：２０１５－０７－
１０基金项目：中国农业科学院科技创新工程ＡＳＴＩＰ－ＩＡＳ０２第一作者：蒲蕾，博士研究生，Ｅ－ｍａｉｌ：ｐ
ｕｌｅｉ８７＠１２６．ｃｏｍ通讯作者：王立贤，研究员，主要从事肉质分子基础研究及猪新品系选育和养猪生产技术开发研究，Ｅ－ｍａｉｌ：ｉａｓｗｌｘ＠２
６３．ｎｅｔＣｕｒｒｅｎｔ　ｐｒｏｇｒｅｓｓ　ｉｎ　ｆｅｅｄ　ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ　
ｏｆ　ｐｉｇＰＵ　Ｌｅｉ　１，ＹＵＥ　Ｈｕｉ－ｊｉｅ２，ＺＨＡＮＧ　Ｌｏｎｇ－ｃｈａｏ１，ＷＡＮＧ　Ｌｉ－ｇａｎｇ１，Ｓ
ＨＩ　Ｈｕｉ－ｂｉ　１，ＷＡＮＧ　Ｌｉ－ｘｉａｎ１＊
（１．Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ，Ｂｅｉｊｉｎｇ　
１００１９３，Ｃｈｉｎａ；２．Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｉｎｓｔｉｔｕｔｅ　ｏｆ　Ｔｒｕｅｉｎ　Ａｇｒｏ－ｐａｓｔｏｒａｌ　Ｇｒｏｕｐ　Ｃｏ．Ｌｔｄ，Ｋａｉｆｅｎｇ　
５４１１６２，Ｃｈｉｎａ）Ａｂｓｔｒａｃｔ　Ｕｓｉｎｇ　ｓｃｉｅｎｔｉｆｉｃ　ｉｎｄｉｃａｔｏｒ　ｔｈａｔ　ｈａｓ　ｈｉｇｈ　ｆｅｅｄ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ　ａｎｄ　ｇｏｏｄ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｃａｐａｃｉｔｙ　ｏｆ　ｐｉｇ　ｉｓ　ｎｅｅｄｅｄ　ｕｒｇｅｎｔｌｙｔｏ　ｓｏｌｖｅ　ｔｈｅ　ｐｒｏｂｌｅｍ　ｏｆ　ｉｎｃｒｅａｓｅ　ｉｎ　ｆｅｅｄ　ｃｏｓｔｓ．Ｓｏ　ｉｎ　ｔｈｉｓ　ｓｔｕｄｙ，ｗｅ　ｒｅｓｅａｒｃｈｅｄ　ｔｈｅ　ｒｅｖｏｌｕｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｅｅｄ　ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ，ａｎｄ　ｆｏｕｎｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅ　ｔｒａｉｔ　ｏｆ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｓ　ｔｈｅ　ｍｏｓｔ　ｉｄｅａｌ　ｉｎｄｉｃａｔｏｒ　ｍｅａｓｕｒｉｎｇ　ｆｅｅｄ　ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ．Ａｎｄ　ｗｅ　ａｌｓｏ　ｄｉｓｃｏｖｅｒｅｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅｒｅ　ｉｓ　ａ　ｃｌｏｓｅ　ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｇｒｏｗｔｈ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃ　ａｎｄ　ｍｅａｔ　ｑｕａｌｉｔｙ．Ｔｈｅｒｅ　ａｒｅｓｅｖｅｒａｌ　ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｆａｃｔｏｒｓ　ｉｎ　ｆｅｅｄ　ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ，ｓｕｃｈ　ａｓ　ｉｎｇｅｓｔｉｏｎ，ａｃｔｉｖｉｔｙ，ｄｉｇｅｓｔｉｏｎ，ａｎｄ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ．Ｉｎｔｈｅ　ｒｅｓｅａｒｃｈ　ｏｆ　ｇｅｎｏｍｉｃｓ　ａｎｄ　ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｇｅｎｅｔｉｃｓ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｏｎ　ｆｅｅｄ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ，ｗｅ　ｆｏｕｎｄ　ｔｈａｔ　ｔｈｅｒｅ　ａｒｅ　ａ　ｆｅｗ　ｃａｎｄｉｄａｔｅｇｅｎｅｓ　ｉｎｖｏｌｖｅｄ　ｉｎ　ｆｅｅｄ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｃｏｎｃｌｕｓｉｏｎ　ｈａｖｅ　ｎｏｔ　ｂｅｅｎ　ｃｏｎｓｉｓｔｅｎｔ．Ｔｈｅｓｅ　ｓｕｒｖｅｙ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｉｎｄｉｃａｔｅ　ｔｈａｔ　ｔｏｉｍｐｒｏｖｅ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｃｏｕｌｄ　ｐｒｏｍｏｔｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｍｅａｔ　ｑｕａｌｉｔｙ　ｏｆ　ｐｉｇ　ａｎｄ　ｉｔ　ｈａｓ　ｔｈｅ　ｃｌｏｓｅ　ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ　ｗｉｔｈｂｏｄｙ’ｓ　ｇｒｏｗｔｈ　ａｎｄ　ｍｅｔａｂｏｌｉｃ　ｃａｐａｃｉｔｙ，ｂｕｔ　ｔｈｅ　ｍｏｌｅｃｕｌａｒ　ｇｅｎｅｔｉｃｓ　ｍｅｃｈａｎｉｓｍ　ｉｓ　ｓｔｉｌｌ　ｕｎｃｌｅａｒ，ｃｏｕｌｄ　ｔｏ　ｂｅ　ｆｕｒｔｈｅｒｅｍｐ
ｈａｓｉｓ　ｒｅｓｅａｒｃｈ．Ｋｅｙｗｏｒｄｓ　ｐｉｇ
；ｆｅｅｄ　ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ；ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ；ｆｅｅｄ　ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ　ｒａｔｉｏ；ｇｅｎｅｔｉｃ　ｒｅｓｅａｒｃｈ 饲料成本占养猪成本的６
０％以上［１］
，饲料利用效率的高低与养猪成本息息相关。

２００５年邓昌彦［２］发现如果可使育肥猪的饲料转化效率（Ｆｅｅｄ
ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ　
ｒａｔｉｏ，ＦＣＲ）降低０．１，可使出栏一头商品猪节省１０ｋｇ饲料，降低饲料成本１５元。

按年产量７亿头育肥猪计算，可以使中国节省１０５亿元养
猪成本［
３］。

而且，由于近年来人口的增长和平均可耕地面积的不断减少，可用于人类和畜牧业的粮食供应越来越有限，再加之以粮食为原料的生物能源工业的不断发展，更加剧了粮食作物的紧缺状况。

所以，利用科学的指标选育出饲料利用效率高并且综合生产能力好的猪品种成为目前亟待解决的问
中国农业大学学报２０１６年第２１卷　
题。

而饲料利用效率指标经历了多年的选择，也产生了很大的变化。

它与猪的生长和肉质等方面有很大的相关性。

影响这类指标的因素很多，目前对饲料利用效率指标的遗传标记的研究还比较少。

所以笔者就以上方面进行饲料利用效率指标方面的进展研究，以期为猪的选育提供理论依据。

１　饲料利用效率指标演进历程
Ｃｒａｍｐｔｏｎ等［４］利用饲料增重比（Ｆｅｅｄ／Ｇａｉｎｒａｔｉｏ，Ｆ／Ｇ）来表示饲料利用情况。

１９５０年之后，饲料转化率这一名词开始被利用，它通过饲料消耗量与体重变化量相比来表示［５］。

Ｂｒｉｎｋ等［６］利用平均日增重（Ａｖｅｒａｇｅ　ｄａｉｌｙ　ｇａｉｎ，ＡＤＧ）与平均日采食量（Ａｖｅｒａｇｅ　ｄａｙ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ，ＡＤＦＩ）的比值也即增重饲料比（Ｇａｉｎ／Ｆｅｅｄ　ｒａｔｉｏ，Ｇ／Ｆ）来评价单位饲料中锌含量超标后对猪增重的影响。

这一指标也称作饲料效率（Ｆｅｅｄ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｔ，ＦＥ），也即猪采食１ｋｇ饲料后的增重情况，它目前在营养学方面利用较多。

Ｆ／Ｇ和Ｇ／Ｆ指标在２０世纪中后期一直被沿用，后来研究者发现利用Ｆ／Ｇ或者Ｇ／Ｆ研究饲料利用效率的遗传有一定的局限性［７－８］。

２头具有相同Ｆ／Ｇ或者Ｇ／Ｆ的猪，其采食量和日增重可能各不相同；相反，有些遗传背景及采食量都相同的个体，在Ｆ／Ｇ或者Ｇ／Ｆ上却存在差异［７］。

比值性状的直接选择效果取决于构成它的２个组分性状间的遗传相关大小，遗传相关越大，其直接选择效果就越高。

所以从统计学角度考虑，直接利用比值性状制订选择指数是不尽合理的［８］。

此外，有多项研究表明［９－１１］，Ｆ／Ｇ和Ｇ／Ｆ指标与背膘厚度（Ｂａｃｋ　ｆａｔ，ＢＦ）、生长速度及体重是相关的，对背膘厚度、生长速度和体重进行选择后会对饲料利用效率产生积极的影响。

但是，随着猪遗传育种研究人员和养殖企业对猪肉品质以及母猪繁殖性能等性状的遗传改良，猪的饲料利用效率有下降的趋势［１２］。

针对此种情况，科学家们提出了剩余采食量（Ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄｉｎｔａｋｅ，ＲＦＩ）的概念，即畜禽实际采食量与用于维持和增重所需要的预测采食量之差，反映的是动物本身由遗传背景决定的代谢差异［１３－１４］。

２０００年以后，随着电子饲喂设备的更新和采食量测定技术的发展，使获得大量而又准确的ＲＦＩ指标成为可能。

至此，ＲＦＩ才逐渐被应用于评价遗传因素造成的饲料转化效率差异的研究中。

在畜牧生产中，ＲＦＩ在肉牛及肉鸡的研究中首先被应用［１５－１６］。

ＲＦＩ与饲喂效
率呈现反向的相关关系，即ＲＦＩ值越低，其饲料利用效率越高。

饲料利用效率指标与ＡＤＦＩ、ＡＤＧ、ＢＦ、眼肌面积（Ｌｏｉｎ　ｅｙｅ　ａｒｅａ，ＬＥＡ）和ｐＨ、系水力和胴体瘦肉率等生长性能及肉质特性方面有关，极大地影响着猪的生产效率。

２　饲料利用效率与猪生长性能及肉质性状的相关性研究
２．１　饲料利用效率与猪的生长特性之间的关系Ｖｏｎ　Ｆｅｌｄｅ等［１７］通过研究发现，大白公猪ＲＦＩ性状和ＤＦＩ性状的遗传相关很高，达到了０．９７，ＲＦＩ与ＤＦＩ表型相关也达到了０．７０［１８］。

ＦＣＲ与ＤＦＩ的遗传及表型相关的争议比较大，１９９６年Ｖｏｎ　Ｆｅｌｄｅ等［１７］的报道称它们近乎无相关性。

但是１９９７年Ｓｕｚｕｋｉ等［１９］和Ｌａｂｒｏｕｅ等［２０］却报道称ＦＣＲ与ＤＦＩ有中等以上的相关性。

ＲＦＩ与ＦＣＲ和ＦＥ的遗传和表型相关比较高，ＲＦＩ比ＦＣＲ更强［２１］。

２０１３年有研究者发现［２２］，与ＲＦＩ高的猪相比ＲＦＩ低的猪ＤＦＩ越低，ＲＦＩ与ＤＦＩ有明显的正相关关系。

ＦＣＲ与ＡＤＦＩ的遗传相关０．２０±０．１４，ＲＦＩ与ＡＤＦＩ的遗传相关达到了０．５２±０．１２，将测试的时间加长后，ＦＣＲ与ＡＤＦＩ的遗传相关增加到了０．５８±０．１１［２３］。

Ｍｒｏｄｅｔ等［２４］发现ＦＣＲ和ＲＦＩ与ＡＤＧ的遗传相关达到了－０．３８和０．４２。

ＲＦＩ与ＡＤＧ的遗传相关表现出较小的负相关关系达到－０．１６±０．１７［１８］。

ＦＥ与ＡＤＦＩ、ＡＤＧ指标的遗传相关表现中等，绝对值均在０．２～０．３［２５］。

２０１４年蔡飞翔等［２６］对军牧一号公猪的研究发现，ＦＣＲ与ＡＤＧ和ＢＦ的遗传相关为－０．６５和－０．１１，而ＲＦＩ与ＡＤＧ和ＢＦ的遗传相关为０．１２和－０．０５。

２．２　饲料利用效率与猪的胴体性状的遗传关系１９９６年，Ｖｏｎ　Ｆｅｌｄｅ等［１７］通过选育构建低ＲＦＩ大白猪群研究发现，低ＲＦＩ动物具有体重更重，瘦肉率更高，肉的ｐＨ
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更低的优点。

此外，多项研究报道指出ＲＦＩ指标和ＦＣＲ指标相似，选育低ＲＦＩ猪和低ＦＣＲ猪，都可以降低背膘厚度和采食量［２１，２７－２８］。

ＲＦＩ低的猪的ＢＦ（（９．０６±１．４２）ｍｍ）与ＲＦＩ高猪的ＢＦ（（９．９２±１．４０）ｍｍ）相比，更薄且它们的差异极显著（Ｐ＜０．０１）。

且ＲＦＩ低的猪比ＲＦＩ高的猪具有更低的代谢体重［２２］。

ＦＣＲ与ＢＦ的遗传相关达到了０．１５［２４］，ＲＦＩ与ＢＦ的遗传相关为０．１５±０．１３［１８］。

Ｓｍｉｔｈ等［２９］发现，低ＲＦＩ猪具有
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　第４期蒲蕾等：猪饲料利用效率的研究进展
更薄的ＢＦ，更宽的腰深，更多的瘦肉，但是同时肌内脂肪含量也减少了，降低了ＲＦＩ后对猪肉的ｐＨ和猪肉的系水力并没有显著变化。

蛋白质的降解速度降低，肌肉嫩度受到影响，但是影响的差异并不显著。

ＬＥＡ与ＲＦＩ的遗传相关都是负值约在－０．３～－０．６［２７，３０－３１］。

Ｇｉｌｂｅｒｔ等［２８］在２００７年发现，大白猪ＲＦＩ与瘦肉含量的相关系数达到－０．５５±０．１４，ＲＦＩ与胴体屠宰率的相关系数达到－０．３６±０．２１。

ＦＥ与ＢＦ、ＬＥＡ和肌肉脂肪（Ｉｎｔｒａｍｕｓｃｕｌａｒ　ｆａｔ，ＩＭＦ）指标的遗传相关表现中等，绝对值均在０．２～０．３［２５］。

２０１１年Ｌｅｆａｕｃｈｅｕｒ等［３２］对ＲＦＩ性状进行选择后发现，低ＲＦＩ猪可表现出如下肉质特征：胴体瘦，肌肉含量多（Ｐ＜０．００１），背膘薄（Ｐ＜０．００１），肌内脂肪含量低，眼肌糖原积累，ｐＨ低，肉色和系水力好等特点。

２．３　饲料利用效率与猪的其他性状
Ｇｉｌｂｅｒｔ等［３３］通过对选择出的６代低ＲＦＩ大白猪群体进行分析，发现低ＲＦＩ大白母猪的脂肪含量和采食量及食欲降低，增加产仔数、仔猪成活数、窝生长能力和２１日龄窝重，泌乳过程中采食量少，增加了机体的能量动员，相同情况下低ＲＦＩ猪的哺乳期体重下降的更慢。

对各项代谢表现的检测说明低ＲＦＩ母猪具有更好的生产能力。

饲料利用效率与生产息息相关，其影响因素是有多方面。

报道显示，影响猪饲料利用效率的主要遗传因素包括：猪的摄食过程、活动量，消化吸收能力，体温调节能力，动物代谢过程和身体组成等。

３　影响饲料利用效率的生物因素
３．１　摄食过程及活动量
当摄食增加，用于消化及摄食过程中的能量需要也增加（摄食过程中心脏的热量效应），也即热增量（Ｈｅａｔ　ｉｎｃｒｅｍｅｎｔ　ｏｆ　ｆｅｅｄ，ＨＩＦ）。

摄食速度和摄食时间是影响ＲＦＩ的重要因素［３４］。

２０１１年Ｙｏｕｎｇ等［２５］发现与高ＲＦＩ大白猪相比低ＲＦＩ猪的日采食量更少，采食速度更快并且每天采食占用的时间更短。

有研究称猪总采食时间和次数与ＲＦＩ性状具有０．６４和０．５１的相关性［３５］。

活动量与单胃动物饲喂效率具有很大的相关性，Ｓａｄｌｅｒ等［３６］对母猪活动行为的研究发现，低ＲＦＩ的母猪表现出少站、多卧，活动量更少的特点。

小鼠高活动量组比低活动量组在采食的活动量上增加了２倍，导致了ＲＦＩ３６％的不同［３７］。

类似的结果在鸡和牛上也得到了证明［３８］。

猪的采食次数与饲料转化率－０．２９的相关性［３９］。

类似的研究也发现，猪的每次采食的时间和每日采食的总时间与ＦＣＲ有０．１８和０．１７的相关性［１７］。

这也就是说，高ＦＣＲ的猪具有采食次数少，采食时间长的特点。

２００７年加拿大拉瓦尔大学发现猪每日的姿势（包括站立、躺卧和坐立）和运动量（包括追逐、打斗、被打斗和爬跨等）可以解释３５．９％的ＲＦＩ表型变异［４０］。

Ｒｏｄｒíｇｕｅｚ－Ｅｓｔéｖｅｚ等［４１］研究发现当猪维持１ｈ站立姿势时需要６．４６～５．４１ｋＪ／ｋｇ体重的代谢净能，对于散养猪来说，这部分能量消耗占了猪总能量消耗的５０％左右。

３．２　消化吸收能力
当摄食相对于维持需要有所增加时，消化食物的能力将有所降低［４２］。

胃和肠道是负责消化和吸收的重要器官，胃肠排空的速度和猪对饲料营养的消化吸收的程度有着直接的关系。

食物在肠胃运行的时间越长，可以促进胃肠内的消化酶与食物接触，增进小肠与消化物接触的时间，最终促进营养的吸收［４３－４４］。

猪小肠的形态结构如：小肠隐窝深度，绒毛高度，绒毛／隐窝比例，小肠的黏性，都是影响猪饲料吸收的重要因素［４５－４６］。

有研究报道称［４７］，低ＲＦＩ品系猪的肠道炎症更少，肠道上皮组织的健康程度，防护能力和解毒能力更强。

单圈饲养的猪和合圈群养的猪的营养消化系数与猪的生长速度没有正相关，但是营养消化系数与猪的饲料转化率有负的相关性，也就是说猪的消化系数越高，ＦＣＲ值越低，饲料利用效率越好［３５］。

Ｒｉｃｈａｒｄ等［４８］发现，年轻的公牛和母牛表型排名靠后（高ＲＦＩ）跟排名靠前（低ＲＦＩ）的干物质消化率相比具有１％的差异，这个差异导致了１４％的采食量差异。

Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ等［１６，４９］也在肉牛和白来航鸡上发现，低ＲＦＩ性状与高饲料消化率有关。

而检测消化效率微小的差异，实施起来尚较为困难，限制了此因素在ＲＦＩ性状上的选育进程。

３．３　温度调节
温度调节方面与环境温度，能量交换，呼吸速率和体型大小及体表面积有关。

能量损失可以通过肺的热量交换和鼻毛细血管损失［５０］。

当猪处于冷或者热的环境中时，猪就有开始调节皮肤保温或散热能力，减少皮下血管的收缩或促进皮下血管的扩增，减小或促进血流速度［５１］。

研究报道称当猪在１８℃以下的环境中为了维持体温，猪需要消耗１７ｋＪ／ｋｇ（ＭＥ）的能量（代谢体重Ｗ０．７５／ｄ·℃），目前饲料利
９
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中国农业大学学报２０１６年第２１卷　
用效率与呼吸速率相关性的研究还比较少［５２］。

有研究表明［５３］高饲料利用效率的牛具有更小的体表面积，这些牛的能量损失更小，被毛好，活动少。

有研究证实高饲料利用效率猪对热环境的适应能力更强［５４］。

当猪从１９℃转到２９℃的环境下，猪维持体温所需要的能量从总能耗６９％降到５５％［５５］。

当猪处于冷环境中，可以使猪的代谢速率增加，猪需要吃更多的能量来增加产热代谢，以维持恒定体温，最终导致猪ＦＣＲ和ＡＤＧ降低［５６－５８］。

Ｂａｒｅａ等［５９］发现，高ＲＦＩ猪比低ＲＦＩ猪产热量高８％，它们各自的产热量分别为１　４９７ｋＪ／ｋｇ（ＢＷ－０．６０／ｄ），１　３８３ｋＪ／ｋｇ（ＢＷ－０．６０／ｄ）；Ｐ＜０．０１）。

高ＲＦＩ组活动相关的产热比低ＲＦＩ猪高１２％，它们各自的产热量分别为８４６和７７１ｋＪ／ｋｇ（ＢＷ－０．６０／ｄ），所以能量消耗的过程中，高ＲＦＩ猪能量消耗更多，并且更高的产热活动与它的生理代谢活动相关。

３．４　动物代谢和身体组成
高饲料利用效率动物线粒体内的电子转运偶联比其他动物更好［６０］。

脂肪酸β氧化是机体利用脂肪酸分解产能的重要环节，２０１１年有研究者发现低ＲＦＩ猪的背最长肌、半膜肌和股二头肌表现出更小的脂肪酸β氧化的能力［３２］。

动物瘦肉和肥肉比例不同，也可使它们拥有不同的能量消耗，猪生产１ｇ脂肪需要５２．３ｋＪ能量，生产１ｇ肌肉需要４４．３５ｋＪ能量［６１］。

但在考虑组织含水量时，生产１ｇ脂肪需要约４７ｋＪ能量，而生产１ｇ蛋白质则只需约１３．５ｋＪ的能量［６１］。

所以合成１ｇ脂肪是合成１ｇ肌肉所需能量的３倍以上。

对ＲＦＩ进行选择，低ＲＦＩ胴体脂肪含量降低。

经过多项关联研究表明猪的ＲＦＩ、ＦＣＲ和ＦＥ指标与ＢＦ、瘦肉率呈现很强的相关性。

这一点在肉牛上也得到证实［６２］。

与正常猪相比低ＲＦＩ猪具有更薄的背部脂肪，更大的眼肌面积，肌内脂肪更少的特点［２９］。

另外有研究显示［６３］胴体成分的差异与机体的产热有关。

机体内脏只占机体体积的百分之１０％，但它确占机体能增耗的５０％［６４］。

因为内脏需要很高的能量需要，所以相同体重的动物，消化器官越小，需要的能量越少。

２０１１有研究发现低ＲＦＩ猪与正常猪相比具有更轻的内脏重（Ｐ＜０．０２），更高的屠宰率（Ｐ＜０．０３）［６５］。

４　饲料利用效率遗传研究
饲料利用效率与多种生产性能相关，也受多种因素影响，在遗传方面如何对其选育是目前比较热
门的研究主题。

多项研究表明，大白猪和杜洛克猪的ＦＣＲ指标的遗传力为０．１５～０．４１［８，３０，６６］，ＦＥ指标的遗传力为０．１７以上［１７］，ＲＦＩ的遗传力达到了０．１４～０．３８［２３，６６－６７］。

Ｓａｉｎｔｉｌａｎ等［６８］发现而皮特兰猪ＦＣＲ的遗传力高达了０．４７±０．０７，ＲＦＩ的遗传力也高达０．４０±０．０６，ＦＣＲ与ＲＦＩ的遗传相关达到了０．８５。

Ｓｈｉｒａｌｉ等［６９］利用皮特兰母×商业杂种公猪的Ｆ
２
代群体进行研究，也发现ＲＦＩ的遗传力在生长后期为０．４７～０．５０，ＲＦＩ与ＦＣＲ的遗传相关也达到了０．８４。

ＦＣＲ、ＲＦＩ、ＦＥ指标具有中等遗传力，都是衡量猪饲料利用效率不同的指标［２８，７０］。

由一定遗传因素控制的指标，就可以找出影响饲料利用效率的主效基因或是遗传标记，用筛选主效基因或遗传标记的方法选育出饲料利用效率高的猪品种。

　
早在２０００年，Ｋｉｍ等［７１］通过研究发现ＭＣ４Ｒ（Ｍｅｌａｎｏｃｏｒｔｉｎ－４Ｒｅｃｅｐｔｏｒ）基因的多态性与ＢＦ、生长速度和饲料利用特性有关。

Ｈｏｕｓｔｏｎ等［７２］在２００４年研究发现大白猪中ＭＣ４Ｒ基因２９８位的天冬氨酸部分被替换为天冬氨酰，且２９８位的天冬氨酸在ＦＣＲ高的猪中表现，天冬氨酸纯合子的动物的ＢＦ、ＡＤＧ和ＤＦＩ比天冬氨酰纯合子动物低。

２００１年辜玉红［７３］对猪外源性注射生长激素释放因子（ＧＲＦ）基因，２ｍｇ剂量时可使猪的ＦＣＲ减低１５．７７％，且在４０ｋｇ以前注射效果显著。

Ｚｈａｎｇ等［７４］，通过对白杜洛克与二花脸猪杂交建立的资源群的ＦＣＲ指标的全基因组关联分析（Ｇｅｎｏｍｉｃ－ｗｉｄｅ　ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ　ｓｔｕｄｙ，ＧＷＡＳ）发现，在２、７、９和１号染色体上存在影响猪ＦＣＲ指标的重要单核苷酸多态性（Ｓｉｎｇｌｅ　ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ　ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ，ＳＮＰ）位点。

２００９年Ｈｏｑｕｅ等［７５］通过对杜洛克猪的ＲＦＩ进行了７代的选择，发现８周和１０５ｋｇ体重时杜洛克猪的ＲＦＩ与血液中ＩＧＦ１的浓度的遗传相关比较弱，而与血液中瘦素的相关性较强，相关系数达到了０．７以上。

爱荷华州立大学Ｂｕｎｔｅｒ等［７６］研究发现，ＩＧＦ－１（Ｉｎｓｕｌｉｎ－ｌｉｋｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ　ｔｙｐｅ　１）与ＲＦＩ的预测遗传相关达到０．６３，检测遗传相关达到了０．８４，ＩＧＦ－１与ＦＣＲ的遗传相关更高达到了０．７８±０．１４，当ＲＦＩ降低，ＩＧＦ－１的水平也降低。

２０１０年，Ｆａｎ等［７７］通过将１１个与ＲＦＩ相关的ＳＮＰ位点进行基因分型和相关性分析，发现ＦＴＯ（Ｆａｔｍａｓｓ　ａｎｄ　ｏｂｅｓｉｔｙ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ）和ＴＣＦ７Ｌ２（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎｆａｃｔｏｒ　７－ｌｉｋｅ　２）基因的一个ＳＮＰ位点与ＲＦＩ分别表
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　第４期蒲蕾等：猪饲料利用效率的研究进展
现出显著相关（Ｐ＜０．０５）和极显著相关（Ｐ＜０．０１）。

２０１３年，爱荷华州立大学研究人员发现，在Ｓｓｃ２染色体接近３２Ｍｂ的区域内包含和影响ＲＦＩ的ＳＮＰ，Ｓｓｃ１３号染色体上的ＫＣＮＫ１５（Ｐｏｔａｓｓｉｕｍ　ｃｈａｎｎｅｌ，ｓｕｂｆａｍｉｌｙ　Ｋ，ｍｅｍｂｅｒ　１５）基因中有一个Ｔ位点的变异与ＲＦＩ指标极显著水平相关；ＲＦＩ在第７号染色体上有几个显著关联区域，其中包含有ＧＮＧ４（Ｇｕａｎｉｎｅ　ｎｕｃｌｅｏｔｉｄｅ　ｂｉｎｄｉｎｇ　ｐｒｏｔｅｉｎ，ｇａｍｍａ　４）、ＣＤＫＡＬ１（ＣＤＫ５ｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ　ｓｕｂｕｎｉｔ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄｐｒｏｔｅｉｎ　１－ｌｉｋｅ　１）、ＧＬＰ１Ｒ（Ｇｌｕｃａｇｏｎ－ｌｉｋｅ　ｐｅｐｔｉｄｅ　１ｒｅｃｅｐｔｏｒ）基因，而７号染色体上的ＥＬＯＶＬ２（ＥＬＯＶＬ　ｆａｔｔｙ　ａｃｉｄ　ｅｌｏｎｇａｓｅ　２）、ＴＦＡＰ２Ａ（Ｔｒａｎｓｃｒｉｐｔｉｏｎ　ｆａｃｔｏｒ　ＡＰ－２ａｌｐｈａ）、ＩＤ４（Ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ　ｏｆＤＮＡ　ｂｉｎｄｉｎｇ　４）和ＧＰＸ２（Ｇｌｕｔａｔｈｉｏｎｅ　ｐｅｒｏｘｉｄａｓｅ　２）基因也是此次ＧＷＡＳ研究发现的与ＲＦＩ相关的重要基因［７８］。

丹麦奥尔胡斯大学研究人员对杜洛克猪进行了ＦＣＲ性状相关的ＧＷＡＳ，结果发现，猪４号染色体上的ＨＩＦ１ＡＮ（Ｈｙｐｏｘｉａ　ｉｎｄｕｃｉｂｌｅ　ｆａｃｔｏｒ１，ａｌｐｈａ　ｓｕｂｕｎｉｔ　ｉｎｈｉｂｉｔｏｒ），和１４号染色体的ＬＢＸ１（Ｌａｄｙｂｉｒｄ　ｈｏｍｅｏｂｏｘ　１）基因和ＮＫＸ２－３（ＮＫ２ｈｏｍｅｏｂｏｘ　３）基因可作为ＦＣＲ性状相关的候选基因［７９］。

哥本哈根大学Ｄｏ等［８０］通过对杜洛克猪进行ＲＦＩ性状的ＧＷＡＳ研究发现，１号染色体上的ＭＡＰ３Ｋ５（Ｍｉｔｏｇｅｎ－ａｃｔｉｖａｔｅｄ　ｐｒｏｔｅｉｎ　ｋｉｎａｓｅｋｉｎａｓｅ　ｋｉｎａｓｅ　５）和ＰＥＸ７（Ｐｅｒｏｘｉｓｏｍａｌ　ｂｉｏｇｅｎｅｓｉｓｆａｃｔｏｒ　７），９号染色体的ＥＮＳＳＳＣＧ００００００２２３３８，１３号染色体上的ＤＳＣＡＭ（Ｄｏｗｎ　ｓｙｎｄｒｏｍｅ　ｃｅｌｌａｄｈｅｓｉｏｎ　ｍｏｌｅｃｕｌｅ）基因与ＲＦＩ性状显著相关。

廖明星［２２］２０１３年经过对大白猪ＲＦＩ性状极端的个体的ＲＮＡ－ｓｅｑ和ｍｉＲＮＡ－ｓｅｑ进行分析，发现了并初步验证了ｍｉＲ－２９ｃ为候选ｍｉｃＲＮＡ，且推断此ｍｉｃＲＮＡ通过靶向调节ＡＲＲＤＣ３、ＣＹＣＳ、ＺＦＰ３６Ｌ１基因来调控ＲＦＩ性状。

成宏等［８１］研究发现猪Ｒｅｓｉｓｔｉｎ基因、ＣＴＮＮＢ１基因、ＭＣ４Ｒ基因的多态位点为ＲＦＩ性状和ＦＣＲ性状均与显著相关性，但是猪Ｏｒｅｘｉｎ基因５１６位Ｇ＞Ａ多态位点与ＲＦＩ性状显著相关（Ｐ＜０．０５），ＧＧ型个体的ＲＦＩ比ＡＡ型个体大切差异显著（Ｐ＜０．０５），ＧＡ型个体ＲＦＩ值也大于ＡＡ型个体，切差异极显著（Ｐ＜０．００１）。

另外２０１３年还有研究者发现ＭＣ４Ｒ基因ｐ．Ａｓｐ２９Ａｓｎ错义突变位点与ＦＣＲ性状显著相关（Ｐ＜０．０５）而另外的一个错义突变ｐ．Ａｒｇ２３６Ｈｉｓ与ＦＣＲ无显著相关［８２］。

从以上文献材料可以看出，饲料转化率相关的基因参与了动物机体代谢和发育的各个方面。

主要包括了甘油三脂的合成，钾离子代谢，调节脂肪细胞中脂滴的分布及肝脏的代谢活动，动物的呼吸，消化道发育，胰岛素和瘦素调节等［８３－８７］。

它们分布的区域和作用各不相同，主效基因还没有统一的认识，所以相关的遗传研究还需要更加深入的开展。

５　结　语
猪的饲料利用效率性状为一个非常重要的经济性状。

经过了近一个世纪的发展，这一指标的衡量也越来越准确，但是这类指标的选育进程并没有明显进展。

饲料利用效率性状与猪的其他经济性状密不可分，对它进行选择后会对其他性状的选育产生重大影响，所以在此性状选育的过程中应综合考虑其他性状的选育进程。

影响饲料利用效率性状因素很多，从遗传学角度，研究者们也根据影响此性状的因素，通过了传统的育种和现代的分子育种技术对这一性状进行了研究，找到部分影响它的候选基因。

但是，目前各研究结果差异较大，并没有很一致的研究结果作为支持，故影响猪饲料利用效率的主效基因尚待进一步深入研究。

参　考　文　献
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中国农业大学学报２０１６年第２１卷　
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［２４］Ｍｒｏｄｅｔ　Ｒ　Ａ，Ｋｅｎｎｅｄｙ　Ｂ　Ｗ．Ｇｅｎｅｔｉｃ　ｖａｒｉａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｍｅａｓｕｒｅｓ　ｏｆｆｏｏｄ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ　ｉｎ　ｐｉｇｓ　ａｎｄ　ｔｈｅｉｒ　ｇｅｎｅｔｉｃ　ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐｓ　ｗｉｔｈｇｒｏｗｔｈ　ｒａｔｅ　ａｎｄ　ｂａｃｋｆａｔ［Ｊ］．Ａｎｉｍａｌ　Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ，１９９３，５６（２）：２２５－２３２
［２５］Ｙｏｕｎｇ　Ｊ　Ｍ，Ｃａｉ　Ｗ，Ｄｅｋｋｅｒｓ　Ｊ　Ｃ　Ｍ．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　ｆｏｒｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｏｎ　ｆｅｅｄｉｎｇ　ｂｅｈａｖｉｏｒ　ａｎｄ　ｄａｉｌｙ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅｐａｔｔｅｒｎｓ　ｉｎ　Ｙｏｒｋｓｈｉｒｅ　ｓｗｉｎｅ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１１，８９（３）：６３９－６４７
［２６］蔡飞翔，王大力，白春艳，孙博兴．提高猪饲料效率的测定与选择［Ｊ］．养猪，２０１４（２）：５５－５６
Ｃａｉ　Ｆ　Ｘ，Ｗａｎｇ　Ｄ　Ｌ，Ｂａｉ　Ｃ　Ｙ，Ｓｕｎ　Ｂ　Ｘ．Ｔｈｅ　ｍｅａｓｕｒｅｍｅｎｔ　ａｎｄｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　ｔｏ　ｉｍｐｒｏｖｅ　ｓｗｉｎｅ　ｆｅｅｄ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ［Ｊ］．ＳｗｉｎｅＰｒｏｄｕｃｔｉｏｎ，２０１４（２）：５５－５６（ｉｎ　Ｃｈｉｎｅｓｅ）
［２７］Ｃａｉ　Ｗ，Ｃａｓｅｙ　Ｄ　Ｓ，Ｄｅｋｋｅｒｓ　Ｊ　Ｃ　Ｍ．Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　ｒｅｓｐｏｎｓｅ　ａｎｄｇｅｎｅｔｉｃ　ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ　ｆｏｒ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　Ｙｏｒｋｓｈｉｒｅ　ｓｗｉｎｅ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００８，８６（２）：２８７－２９８
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２８
　第４期蒲蕾等：猪饲料利用效率的研究进展
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［３０］Ｓａｉｎｔｉｌａｎ　Ｒ，Ｓｅｌｌｉｅｒ　Ｐ，Ｂｉｌｌｏｎ　Ｙ，Ｇｉｌｂｅｒｔ　Ｈ．Ｇｅｎｅｔｉｃ　ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎｓｂｅｔｗｅｅｎ　ｍａｌｅｓ，ｆｅｍａｌｅｓ　ａｎｄ　ｃａｓｔｒａｔｅｓ　ｆｏｒ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ，ｆｅｅｄ　ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ　ｒａｔｉｏ，ｇｒｏｗｔｈ　ｒａｔｅ　ａｎｄ　ｃａｒｃａｓｓ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎｔｒａｉｔｓ　ｉｎ　Ｌａｒｇｅ　Ｗｈｉｔｅ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　ＡｎｉｍａｌＢｒｅｅｄｉｎｇ　ａｎｄ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，２０１２，１２９（２）：１０３－１０６
［３１］Ｈｏｑｕｅ　Ｍ　Ａ，Ｓｕｚｕｋｉ　Ｋ，Ｋａｄｏｗａｋｉ　Ｈ，Ｓｈｉｂａｔａ　Ｔ，Ｏｉｋａｗａ　Ｔ．Ｇｅｎｅｔｉｃ　ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ　ｆｏｒ　ｍｅａｓｕｒｅｓ　ｏｆ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ａｎｄｇｒｏｗｔｈ　ｔｒａｉｔｓ　ｉｎ　ｓｅｖｅｎ　ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎｓ　ｏｆ　Ｄｕｒｏｃ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．ＬｉｖｅｓｔｏｃｋＳｃｉｅｎｃｅ，２００９，１２１（１）：４５－４９
［３２］Ｌｅｆａｕｃｈｅｕｒ　Ｌ，Ｌｅｂｒｅｔ　Ｂ，Ｅｃｏｌａｎ　Ｐ，Ｌｏｕｖｅａｕ　Ｉ，Ｄａｍｏｎ　Ｍ，Ｐｒｕｎｉｅｒ　Ａ，Ｂｉｌｌｏｎ　Ｙ，Ｓｅｌｌｉｅｒ　Ｐ，Ｇｉｌｂｅｒｔ　Ｈ．Ｍｕｓｃｌｅ　ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓａｎｄ　ｍｅａｔ　ｑｕａｌｉｔｙ　ｔｒａｉｔｓ　ａｒｅ　ａｆｆｅｃｔｅｄ　ｂｙ　ｄｉｖｅｒｇｅｎｔ　ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　ｏｎｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１１，８９（４）：９９６－１０１０
［３３］Ｇｉｌｂｅｒｔ　Ｈ，Ｂｉｄａｎｅｌ　Ｊ　Ｐ，Ｂｉｌｌｏｎ　Ｙ，Ｌａｇａｎｔ　Ｈ，Ｇｕｉｌｌｏｕｅｔ　Ｐ，ＳｅｌｌｉｅｒＰ，Ｎｏｂｌｅｔ　Ｊ，Ｈｅｒｍｅｓｃｈ　Ｓ．Ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄ　ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ　ｉｎ　ｓｏｗ　ａｐｐｅｔｉｔｅ，ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ，ｂｏｄｙ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ，ａｎｄ　ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ａｆｔｅｒｄｉｖｅｒｇｅｎｔ　ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　ｆｏｒ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｉｇ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１２，９０（４）：１０９７－１１０８
［３４］Ａｄａｍ　Ｉ，Ｙｏｕｎｇ　Ｂ　Ａ，Ｎｉｃｏｌ　Ａ　Ｍ，Ｄｅｇｅｎ　Ａ　Ａ．Ｅｎｅｒｇｙ　ｃｏｓｔ　ｏｆｅａｔｉｎｇ　ｉｎ　ｃａｔｔｌｅ　ｇｉｖｅｎ　ｄｉｅｔｓ　ｏｆ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｔ　ｆｏｒｍ［Ｊ］．ＡｎｉｍａｌＰｒｏｄｕｃｔｉｏｎ，１９８４，３８（１）：５３－５６
［３５］Ｄｅ　Ｈｅａｒ　Ｌ　Ｃ　Ｍ，Ｌｕｔｉｎｇ　Ｐ　ａｎｄ　Ａｒｔｓ　Ｈ　Ｌ　Ｍ．Ｒｅｌａｔｉｏｎｓ　ａｍｏｎｇｉｎｄｉｖｉｄｕａｌ（ｒｅｓｉｄｕａｌ）ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ，ｇｒｏｗｔｈ　ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　ａｎｄ　ｆｅｅｄｉｎｔａｋｅ　ｐａｔｔｅｒｎ　ｏｆ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｉｇｓ　ｉｎ　ｇｒｏｕｐ　ｈｏｕｓｉｎｇ［Ｊ］．ＬｉｖｅｓｔｏｃｋＰｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９３，３６（３）：２３３－２５３
［３６］Ｓａｄｌｅｒ　Ｌ　Ｊ，Ｊｏｈｎｓｏｎ　Ａ　Ｋ，Ｌｏｎｅｒｇａｎ　Ｓ　Ｍ，Ｎｅｔｔｌｅｔｏｎ　Ｄ，ＤｅｋｋｅｒｓＪ　Ｃ　Ｍ．Ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　ｆｏｒ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｏｎｇｅｎｅｒａｌ　ｂｅｈａｖｉｏｒａｌ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ａｎｄ　ｔｈｅ　ｏｃｃｕｒｒｅｎｃｅ　ｏｆ　ｌｅｓｉｏｎｓ　ｉｎＹｏｒｋｓｈｉｒｅ　ｇｉｌｔｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１１，８９（１）：２５８－２６６
［３７］Ｍｏｕｓｅｌ　Ｍ　Ｒ，Ｓｔｒｏｕｐ　Ｗ　Ｗ，Ｎｉｅｌｓｅｎ　Ｍ　Ｋ．Ｌｏｃｏｍｏｔｏｒ　ａｃｔｉｖｉｔｙ，ｃｏｒｅ　ｂｏｄｙ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ，ａｎｄ　ｃｉｒｃａｄｉａｎ　ｒｈｙｔｈｍｓ　ｉｎ　ｍｉｃｅ　ｓｅｌｅｃｔｅｄｆｏｒ　ｈｉｇｈ　ａｎｄ　ｌｏｗ　ｈｅａｔ　ｌｏｓｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００１，７４（４）：８６１－８６８
［３８］Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ　Ｅ　Ｃ，Ｋｉｌｇｏｕｒ　Ｒ　Ｊ，Ａｒｃｈｅｒ　Ｊ　Ａ，Ｈｅｒｄ　Ｒ　Ｍ．Ｐｅｄｏｍｅｔｅｒｓ　ｍｅａｓｕｒｅ　ｄｉｆｆｅｒｅｎｃｅｓ　ｉｎ　ａｃｔｉｖｉｔｙ　ｉｎ　ｂｕｌｌｓ　ｓｅｌｅｃｔｅｄ　ｆｏｒｈｉｇｈ　ｏｒ　ｌｏｗ　ｎｅｔ　ｆｅｅｄ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ［Ｊ］．Ｐｒｏｃｅｓｓ　Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ　ＳｏｃｉｅｔｙＳｔｕｄｙ　Ａｎｉｍａｌ　Ｂｅｈａｖｉｒ，１９９９，２６：１６
［３９］Ｈａｌｌ　Ａ　Ｄ，Ｈｉｌｌ　Ｗ　Ｇ，Ｂａｍｐｔｏｎ　Ｐ　Ｒ，Ｗｅｂｂ　Ａ　Ｊ．Ｇｅｎｅｔｉｃ　ａｎｄｐｈｅｎｏｔｙｐｉｃ　ｐａｒａｍｅｔｅｒ　ｅｓｔｉｍａｔｅｓ　ｆｏｒ　ｆｅｅｄｉｎｇ　ｐａｔｔｅｒｎ　ａｎｄｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　ｔｒａｉｔｓ　ｉｎ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９９，６８：４３－４８［４０］Ｌｅｐｒｏｎ　Ｅ，Ｂｅｒｇｅｒｏｎ　Ｒ，Ｒｏｂｅｒｔ　Ｓ，Ｆａｕｃｉｔａｎｏ　Ｌ，Ｂｅｒｎｉｅｒ　Ｊ　Ｆ，Ｐｏｍａｒ　Ｃ．Ｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｅｎｅｒｇｙ　ｉｎｔａｋｅ　ａｎｄ　ｔｈｅｂｅｈａｖｉｏｕｒ　ｏｆ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｉｇｓ　ｆｒｏｍ　ｔｈｒｅｅ　ｇｅｎｅｔｉｃ　ｌｉｎｅｓ［Ｊ］．Ｌｉｖｅｓｔｏｃｋ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００７，１１１（１）：１０４－１１３
［４１］Ｒｏｄｒíｇｕｅｚ－Ｅｓｔéｖｅｚ　Ｖ，Ｓ ｎｃｈｅｚ－Ｒｏｄｒíｇｕｅｚ　Ｍ，Ｇａｒｃｉａ　Ａ，Ｇóｍｅｚ－Ｃａｓｔｒｏ　ＡＧ，Ｆｅｅｄ　ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ　ｒａｔｅ　ａｎｄ　ｅｓｔｉｍａｔｅｄ　ｅｎｅｒｇｙ　ｂａｌａｎｃｅ
ｏｆ　ｆｒｅｅ　ｇｒａｚｉｎｇ　Ｉｂｅｒｉａｎ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．Ｌｉｖｅｓｔｏｃｋ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１０，１３２（１）：１５２－１５６
［４２］Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ　Ｃｏｕｎｃｉｌ．Ｆｅｅｄｉｎｇ　Ｓｔａｎｄａｒｄｓ　ｆｏｒＡｕｓｔｒａｌｉａｎ　Ｌｉｖｅｓｔｏｃｋ：Ｒｕｍｉｎａｎｔｓ［Ｍ］．Ｍｅｌｂｏｕｒｎｅ：ＣＳＩＲＯＰｕｂｌｉｃａｔｉｏｎｓ，１９９０
［４３］Ｋｉｌ　Ｄ　Ｙ，Ｓｔｅｉｎ　Ｈ　Ｈ．Ｄｉｅｔａｒｙ　ｓｏｙｂｅａｎ　ｏｉｌ　ａｎｄ　ｃｈｏｉｃｅ　ｗｈｉｔｅｇｒｅａｓｅ　ｉｍｐｒｏｖｅ　ａｐｐａｒｅｎｔ　ｉｌｅａｌ　ｄｉｇｅｓｔｉｂｉｌｉｔｙ　ｏｆ　ａｍｉｎｏ　ａｃｉｄｓ　ｉｎｓｗｉｎｅ　ｄｉｅｔｓ　ｃｏｎｔａｉｎｉｎｇ　ｃｏｒｎ，ｓｏｙｂｅａｎ　ｍｅａｌ，ａｎｄ　ｄｉｓｔｉｌｌｅｒｓ　ｄｒｉｅｄｇｒａｉｎｓ　ｗｉｔｈ　ｓｏｌｕｂｌｅ［Ｊ］．Ｒｅｖｉｓｔａ　Ｃｏｌｏｍｂｉａｎａ　ｄｅ　Ｃｉｅｎｃｉａｓ，２０１１，２４：２４８－２５３
［４４］Ｋｉｍ　Ｂ　Ｇ，Ｌｉｎｄｅｍａｎｎ　Ｍ　Ｄ，Ｃｒｏｍｗｅｌｌ　Ｇ　Ｌ，Ｂａｌｆａｇｏｎ　Ａ，ＡｇｕｄｅｌｏＪ　Ｈ．Ｔｈｅ　ｃｏｒｒｅｌａｔｉｏｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｐａｓｓａｇｅ　ｒａｔｅ　ｏｆ　ｄｉｇｅｓｔａ　ａｎｄ　ｄｒｙｍａｔｔｅｒ　ｄｉｇｅｓｔｉｂｉｌｉｔｙ　ｉｎ　ｖａｒｉｏｕｓ　ｓｔａｇｅｓ　ｏｆ　ｓｗｉｎｅ［Ｊ］．ＬｉｖｅｓｔｏｃｋＳｃｉｅｎｃｅ，２００７，１０９：８１－８４
［４５］Ｍａｎｚａｎｉｌｌａ　Ｅ　Ｇ，Ｎｏｆｒａｒíａｓ　Ｍ，Ａｎｇｕｉｔａ　Ｍ，Ｃａｓｔｉｌｌｏ　Ｍ，Ｐｅｒｅｚ　ＪＦ，Ｍａｒｔíｎ　Ｏｒúｅ　Ｓ　Ｍ，Ｋａｍｅｌ　Ｃ，Ｇａｓａ　Ｊ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｂｕｔｙｒａｔｅ，ａｖｉｌａｍｙｃｉｎ，ａｎｄ　ａ　ｐｌａｎｔ　ｅｘｔｒａｃｔ　ｃｏｍｂｉｎａｔｉｏｎ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌｅｑｕｉｌｉｂｒｉｕｍ　ｏｆ　ｅａｒｌｙ－ｗｅａｎｅｄ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　ＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，２００６，８４（１０）：２７４３－２７５１
［４６］Ａｄｓｏｓ　Ａｄａｍｉ　Ｐａｓｓｏｓ，Ｉｎｋｙｕｎｇ　Ｐａｒｋ，Ｐｅｔｅｒ　Ｆｅｒｋｅｔ，Ｅｌｋｅ　ｖｏｎＨｅｉｍｅｎｄａｈｌ，Ｓｕｎｇ　Ｗｏｏ　Ｋｉｍ．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｄｉｅｔａｒｙ　ｓｕｐｐｌｅｍｅｎｔａｔｉｏｎｏｆ　ｘｙｌａｎａｓｅ　ｏｎ　ａｐｐａｒｅｎｔ　ｉｌｅａｌ　ｄｉｇｅｓｔｉｂｉｌｉｔｙ　ｏｆ　ｎｕｔｒｉｅｎｔｓ，ｖｉｓｃｏｓｉｔｙｏｆ　ｄｉｇｅｓｔａ，ａｎｄ　ｉｎｔｅｓｔｉｎａｌ　ｍｏｒｐｈｏｌｏｇｙ　ｏｆ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｉｇｓ　ｆｅｄ　ｃｏｒｎａｎｄ　ｓｏｙｂｅａｎ　ｍｅａｌ　ｂａｓｅｄ　ｄｉｅｔ［Ｊ］．Ａｎｉｍａｌ　Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ，２０１５，１（１）：９－２３
［４７］Ｙｏｕｎｇ　Ｊ　Ｍ，Ｄｅｋｋｅｒｓ　Ｊ　Ｃ　Ｍ．Ｔｈｅ　Ｇｅｎｅｔｉｃ　ａｎｄ　Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　Ｂａｓｉｓｏｆ　Ｒｅｓｉｄｕａｌ　Ｆｅｅｄ　Ｉｎｔａｋｅ　Ａｓ　ａ　Ｍｅａｓｕｒｅ　ｏｆ　Ｆｅｅｄ　Ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ［Ｍ］．Ｗａｇｅｎｉｎｇｅｎ：Ｗａｇｅｎｉｎｇｅｎ　Ａｃａｄｅｍｉｃ　Ｐｕｂｌｉｓｈｅｒｓ，２０１２［４８］Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ　Ｅ　Ｃ，Ｈｅｒｄ　Ｒ　Ｍ，Ａｒｔｈｕｒ　Ｐ　Ｆ，Ｗｒｉｇｈｔ　Ｊ，Ｘｕ　Ｇ，Ｄｉｂｌｅｙ　Ｋ，Ｏｄｄｙ　Ｖ　Ｈ．Ｐｏｓｓｉｂｌｅ　ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｉｎｄｉｃａｔｏｒｓ　ｆｏｒ　ｎｅｔｆｅｅｄ　ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ　ｉｎ　ｂｅｅｆ　ｃａｔｔｌｅ［Ｊ］．Ｐｒｏｃｅｓｓ　ＡｕｓｔｒａｌｉａｎＳｏｃｉｅｔｙ　Ａｎｉｍａｌ　Ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ，１９９６，２１：１０３－１０６
［４９］Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ　Ｅ　Ｃ，Ｈｅｒｄ　Ｒ　Ｍ．Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｂａｓｉｓ　ｆｏｒ　ｖａｒｉａｔｉｏｎ　ｉｎｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　ｂｅｅｆ　ｃａｔｔｌｅ．Ｓｙｎｔｈｅｓｉｓ　ｏｆ　ｒｅｓｕｌｔｓ　ｆｏｌｌｏｗｉｎｇｄｉｖｅｒｇｅｎｔ　ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ［Ｊ］．Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ＥｘｐｌｏｒａｔｉｏｎＡｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，２００４，４４（５）：４３１－４４０
［５０］Ｂｌａｘｔｅｒ　Ｋ　Ｌ，Ｗａｉｎｍａｎ　Ｆ　Ｗ．Ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｉｎｃｒｅａｓｅ　ａｉｒｍｏｖｅｍｅｎｔ　ｏｎ　ｔｈｅ　ｈｅａｔ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｅｍｉｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｓｔｅｅｒｓ［Ｊ］．Ｔｈｅ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９６４，６２（２）：２０７－２１４［５１］Ｃｏｌｌｉｎ　Ａ，Ｌｅｂｒｅｔｏｎ　Ｙ，Ｆｉｌｌａｕｔ　Ｍ，Ｖｉｎｃｅｎｔ　Ａ，Ｔｈｏｍａｓ　Ｆ，ＨｅｒｐｉｎＰ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｅｘｐｏｓｕｒｅ　ｔｏ　ｈｉｇｈ　ｔｅｍｐｅｒａｔｕｒｅ　ａｎｄ　ｆｅｅｄｉｎｇ　ｌｅｖｅｌ　ｏｎｒｅｇｉｏｎａｌ　ｂｌｏｏｄ　ｆｌｏｗ　ａｎｄ　ｏｘｉｄａｔｉｖｅ　ｃａｐａｃｉｔｙ　ｏｆ　ｔｉｓｓｕｅｓ　ｉｎ　ｐｉｇｌｅｔｓ［Ｊ］．Ｅｘｐｅｒｉｍｅｎｔａｌ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ，２００１ａ，８６（１）：８３－９１
［５２］Ｃｌｏｓｅ　Ｗ　Ｈ，Ｐｏｏｒｎａｎ　Ｐ　Ｋ．Ｏｕｔｄｏｏｒ　ｐｉｇｓ－Ｔｈｅｉｒ　ｎｕｔｒｉｅｎｔｒｅｑｕｉｒｅｍｅｎｔｓ，ａｐｐｅｔｉｔｅ　ａｎｄ　ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔａｌ　ｒｅｓｐｏｎｓｅ［Ｍ］／／Ｉｎ：Ｇａｒｎｓｗｏｒｔｈｙ　Ｐ　Ｃ，Ｃｏｌｅ　Ｄ　Ｊ　Ａ．Ｒｅｃｅｎｔ　Ａｄｖａｎｃｅｓ　ｉｎ　ＡｎｉｍａｌＮｕｔｒｉｔｉｏｎ．Ｎｏｔｔｉｎｇｈａｍ：Ｎｏｔｔｉｎｇｈａｍ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ　Ｐｒｅｓｓ，１９９３：１７５－１９６
［５３］Ｌｕｔｉｎｇ　Ｐ，Ｕｅｆｆ　Ｅ　Ｍ，Ｖｅｒｓｔｅｇｅｎ　Ｍ　Ｗ　Ａ．Ｂｅｔｗｅｅｎ　ａｎｉｍａｌｖａｒｉａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ　ａｓ　ｒｅｌａｔｅｄ　ｔｏ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄｃｏｎｓｕｍｐｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｎｅｔｈｅｒｌａｎｄｓ　Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒａｌ
３
８
中国农业大学学报２０１６年第２１卷　
Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９４，４２（１）：５９－６７
［５４］Ｃａｍｐｏｓ　Ｒ　Ｆ，Ｎｏｂｌｅｔ　Ｊ，Ｊａｇｕｅｌｉｎ－Ｐｅｙｒａｕｄ　Ｙ，Ｇｉｌｂｅｒｔ　Ｈ，Ｍｏｒｍｅｄｅ　Ｐ，Ｄｏｎｚｅｌｅ　Ｒ　Ｆ　Ｍ　Ｏ，Ｄｏｎｚｅｌｅ　Ｊ　Ｌ，Ｒｅｎａｕｄｅａｕ　Ｄ．Ｔｈｅｒｍｏｒｅｇｕｌａｔｏｒｙ　ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅｒｍａｌ　ａｃｃｌｉｍａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｐｉｇｓｄｉｖｅｒｇｅｎｔｌｙ　ｓｅｌｅｃｔｅｄ　ｆｏｒ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ［Ｊ］．ＩｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌＪｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｂｉｏｍｅｔｅｏｒｏｌｏｇｙ，２０１４，５８（７）：１５４５－１５５７
［５５］Ｑｕｉｎｉｏｕ　Ｎ，Ｒｅｎａｕｄｅａｕ　Ｄ，Ｄｕｂｏｉｓ　Ｓ，Ｎｏｂｌｅｔ　Ｊ．Ｉｎｆｌｕｅｎｃｅ　ｏｆ　ｈｉｇｈａｍｂｉｅｎｔ　ｔｅｍ　ｐｅｒａｔｕｒｅｓ　ｏｎ　ｆｏｏｄ　ｉｎｔａｋｅ　ａｎｄ　ｆｅｅｄｉｎｇ　ｂｅｈａｖｉｏｕｒ　ｏｆｍｕｌｔｉｐａｒｏｕｓ　ｌａｃｔａｔｉｎｇ　ｓｏｗｓ［Ｊ］．Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０００，７０：４７１－４７９
［５６］Ｂｅｃｋｅｒ　Ｂ　Ａ，Ｋｎｉｇｈｔ　Ｃ　Ｄ，Ｖｅｅｎｈｕｉｚｅｎ　Ｊ　Ｊ，Ｊｅｓｓｅ　Ｇ　Ｗ，ＨｅｄｒｉｃｋＨ　Ｂ，Ｂａｉｌｅ　Ｃ　Ａ．Ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ｃａｒｃａｓｓ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ，ａｎｄ　ｂｌｏｏｄｈｏｒｍｏｎｅｓ　ａｎｄ　ｍｅｔａｂｏｌｉｔｅｓ　ｏｆ　ｆｉｎｉｓｈｉｎｇ　ｐｉｇｓ　ｔｒｅａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｐｏｒｃｉｎｅｓｏｍａｔｏｔｒｏｐｉｎ　ｉｎ　ｈｏｔ　ａｎｄ　ｃｏｌｄ　ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆＡｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，１９９３，７１（９）：２３７５－２３８７
［５７］Ｖｅｒｓｔｅｇｅｎ　Ｍ　Ｗ　Ａ，Ｂｒａｎｄｓｍａ　Ｈ　Ａ，Ｍａｔｅｍａｎ　Ｇ，ｖｏｎ　ｄｅｒ　ＨｅｌＷ．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｃｏｌｄ　ｔｈｅｒｍａｌ　ｅｎｖｉｒｏｎｍｅｎｔ　ｏｎ　ｆｅｅｄ　ｒｅｑｕｉｒｅｍｅｎｔｓ，ｇｒｏｗｔｈ　ｒａｔｅ　ａｎｄ　ｓｌａｕｇｈｔｅｒ　ｑｕａｌｉｔｙ　ｉｎ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．ＡｒｃｈｉｖｏｓＥｘｐｅｒｉｍｅｎｔ　Ｖｅｔｅｒｉｎａｒｉａ，１９８４，３８（３）：４３１－４３８
［５８］Ｈｅｒｐｉｎ　Ｐ　Ｒ，ＭｃＢｒｉｄｅ　Ｂ　Ｗ，Ｂａｙｌｅｙ　Ｈ　Ｓ．Ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｃｏｌｄ　ｅｘｐｏｓｕｒｅｏｎ　ｅｎｅｒｇｙ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｙｏｕｎｇ　ｐｉｇ［Ｊ］．Ｃａｎａｄｉａｎ　Ｊｏｕｒｎａｌｏｆ　Ｐｈｙｓｉｏｌｏｇｙ　ａｎｄ　Ｐｈａｒｍａｃｏｌｏｇｙ，１９８７，６５（２）：２３６－２４５
［５９］Ｂａｒｅａ　Ｒ，Ｄｕｂｏｉｓ　Ｓ，Ｇｉｌｂｅｒｔ　Ｈ，Ｓｅｌｌｉｅｒ　Ｐ，ｖａｎ　Ｍｉｌｇｅｎ　Ｊ，Ｎｏｂｌｅｔ　Ｊ．Ｅｎｅｒｇｙ　ｕｔｉｌｉｚａｔｉｏｎ　ｉｎ　ｐｉｇｓ　ｓｅｌｅｃｔｅｄ　ｆｏｒ　ｈｉｇｈ　ａｎｄ　ｌｏｗ　ｒｅｓｉｄｕａｌｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１０，８８（６）：２０６２－２０７２
［６０］Ｋｏｌａｔｈ　Ｗ　Ｈ，Ｋｅｒｌｅｙ　Ｍ　Ｓ，Ｇｏｌｄｅｎ　Ｊ　Ｗ，Ｋｅｉｓｌｅｒ　Ｄ　Ｈ．Ｔｈｅｒｅｌａｔｉｏｎｓｈｉｐ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ　ｆｕｎｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　Ａｎｇｕｓ　ｓｔｅｅｒｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００６，８４（４）：８６１－８６５
［６１］ＮＲＣ．Ｎｕｔｒｉｅｎｔ　Ｒｅｑｕｉｒｅｍｅｎｔｓ　ｏｆ　Ｓｗｉｎｅ　Ｅｌｅｖｅｎｔｈ　ＲｅｖｉｓｅｄＥｄｉｔｉｏｎ．Ｅｘｃｅｌ　Ｐｒｏｇｒａｍ　ｆｏｒ　Ｃａｌｃｕｌａｔｉｏｎ　ｏｆ　ＮｕｔｒｉｅｎｔＲｅｑｕｉｒｅｍｅｎｔｓ［Ｍ］．Ｗａｓｈｉｎｇｔｏｎ　ＤＣ：Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎａｌ　ＲｅｓｅａｒｃｈＣｏｕｎｃｉｌ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｎａｔｉｏｎａｌ　Ａｃａｄｅｍｉｅｓ，２０１２
［６２］Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ　Ｅ　Ｃ，Ｈｅｒｄ　Ｒ　Ｍ，Ｏｄｄｙ　Ｖ　Ｈ，Ｔｈｏｍｐｓｏｎ　Ｊ　Ｍ，ＡｒｃｈｅｒＪ　Ａ，Ａｒｔｈｕｒ　Ｐ　Ｆ．Ｂｏｄｙ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｍｐｌｉｃａｔｉｏｎｓ　ｆｏｒ　ｈｅａｔｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｏｆ　Ａｎｇｕｓ　ｓｔｅｅｒ　ｐｒｏｇｅｎｙ　ｏｆ　ｐａｒｅｎｔｓ　ｓｅｌｅｃｔｅｄ　ｆｏｒ　ａｎｄａｇａｉｎｓｔ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ［Ｊ］．Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ　ＪｏｕｒｎａｌＥｘｐｌｏｒａｔｉｏｎ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ，２００１，４１（７）：１０６５－１０７２
［６３］Ｒｉｃｈａｒｄｓｏｎ　Ｅ　Ｃ，Ｈｅｒｄ　Ｒ　Ｍ．Ｂｉｏｌｏｇｉｃａｌ　ｂａｓｉｓ　ｆｏｒ　ｖａｒｉａｔｉｏｎ　ｉｎｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　ｂｅｅｆ　ｃａｔｔｌｅ［Ｊ］．Ｔｅｘａｓ　Ａ＆Ｍ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，２００４，４４（５）：４３１－４４０
［６４］Ｋｏｏｎｇ　Ｌ　Ｊ，Ｎｉｅｎａｂｅｒ　Ｊ　Ａ，Ｍｅｒｓｍａｎｎ　Ｈ　Ｊ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ｐｌａｎｅ　ｏｆｎｕｔｒｉｔｉｏｎ　ｏｎ　ｏｒｇａｎ　ｓｉｚｅ　ａｎｄ　ｆａｓｔｉｎｇ　ｈｅａｔ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｉｎｇｅｎｅｔｉｃａｌｌｙ　ｏｂｅｓｅ　ａｎｄ　ｌｅａｎ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ｎｕｔｒｉｔｉｏｎ，１９８３，１１３（８）：１６２６－１６３１
［６５］Ｂｏｄｄｉｃｋｅｒ　Ｎ，Ｇａｂｌｅｒ　Ｎ　Ｋ，Ｓｐｕｒｌｏｃｋ　Ｍ　Ｅ，Ｎｅｔｔｌｅｔｏｎ　Ｄ，ＤｅｋｋｅｒｓＪ　Ｃ．Ｅｆｆｅｃｔｓ　ｏｆ　ａｄ　ｌｉｂｉｔｕｍ　ａｎｄ　ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｏｎ　ｇｒｏｗｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　ａｎｄ　ｂｏｄｙ　ｃｏｍｐｏｓｉｔｉｏｎ　ｏｆ　Ｙｏｒｋｓｈｉｒｅ　ｐｉｇｓ　ｓｅｌｅｃｔｅｄｆｏｒ　ｒｅｄｕｃｅｄ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　ＡｎｉｍａｌＳｃｉｅｎｃｅ，２０１１，８９（１）：４０－５１［６６］Ｈｅｒｍｅｓｃｈａ　Ｓ，Ｌｕｘｆｏｒｄｂ　Ｂ　Ｇ，Ｇｒａｓｅｒａ　Ｈ　Ｕ．Ｇｅｎｅｔｉｃ　ｐａｒａｍｅｔｅｒｓｆｏｒ　ｌｅａｎ　ｍｅａｔ　ｙｉｅｌｄ，ｍｅａｔ　ｑｕａｌｉｔｙ，ｒｅｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｆｅｅｄｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ　ｔｒａｉｔｓ　ｆｏｒ　Ａｕｓｔｒａｌｉａｎ　ｐｉｇｓ　１Ｄｅｓｃｒｉｐｔｉｏｎ　ｏｆ　ｔｒａｉｔｓ　ａｎｄｈｅｒｉｔａｂｉｌｉｔｙ　ｅｓｔｉｍａｔｅｓ［Ｊ］．Ｌｉｖｅｓｔｏｃｋ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｓｃｉｅｎｃｅ，２０００，６５：２３９－２４８
［６７］Ｎｇｕｙｅｎ　Ｎ　Ｈ，Ｍｃｐｈｅｅ　Ｃ　Ｐ，Ｗａｄｅ　Ｃ　Ｍ．Ｒｅｓｐｏｎｓｅｓ　ｉｎ　ｒｅｓｉｄｕａｌｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　ｌｉｎｅｓ　ｏｆ　Ｌａｒｇｅ　Ｗｈｉｔｅ　ｐｉｇｓ　ｓｅｌｅｃｔｅｄ　ｆｏｒ　ｇｒｏｗｔｈｒａｔｅ　ｏｎ　ｒｅｓｔｒｉｃｔｅｄ　ｆｅｅｄｉｎｇ　ｍｅａｓｕｒｅｄ　ｏｎ　ａｄ　ｌｉｂｉｔｕｍ　ｉｎｄｉｖｉｄｕａｌｆｅｅｄｉｎｇ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｂｒｅｅｄｉｎｇ　ａｎｄ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，２００５，１２２（４）：２６４－２７０
［６８］Ｓａｉｎｔｉｌａｎ　Ｒ，Ｍéｒｏｕｒ　Ｉ，Ｓｃｈｗｏｂ　Ｓ，Ｓｅｌｌｉｅｒ　Ｐ，Ｂｉｄａｎｅｌ　Ｊ，ＧｉｌｂｅｒｔＨ．Ｇｅｎｅｔｉｃ　ｐａｒａｍｅｔｅｒｓ　ａｎｄ　ｈａｌｏｔｈａｎｅ　ｇｅｎｏｔｙｐｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｆｏｒｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　Ｐｉéｔｒａｉｎ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．ＬｉｖｅｓｔｏｃｋＳｃｉｅｎｃｅ，２０１１，１４２（１－３）：２０３－２０９
［６９］Ｓｈｉｒａｌｉ　Ｍ，Ｄｏｅｓｃｈｌ－Ｗｉｌｓｏｎ　Ａ，Ｄｕｔｈｉｅ　Ｃ，Ｋｎａｐ　Ｐ　Ｗ，Ｋａｎｉｓ　Ｅ，ｖａｎ　Ａｒｅｎｄｏｎｋ　Ｊ　Ａ　Ｍ，Ｒｏｅｈｅ　Ｒ．Ｅｓｔｉｍａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｅｎｅｒｇｙｉｎｔａｋｅ　ａｎｄ　ｉｔｓ　ｇｅｎｅｔｉｃ　ｂａｃｋｇｒｏｕｎｄ　ｄｕｒｉｎｇ　ｔｈｅ　ｇｒｏｗｉｎｇ　ｐｅｒｉｏｄ　ｉｎｐｉｇｓ［Ｊ］．Ｌｉｖｅｓｔｏｃｋ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１４，１６８：１７－２５
［７０］Ｃｌｕｔｔｅｒ　Ａ　Ｃ，Ｒｏｔｈｓｃｈｉｌｄ　Ｍ　Ｆ，Ｒｕｖｉｎｓｋｙ　Ａ．Ｇｅｎｅｔｉｃｓ　ｏｆｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　ｔｒａｉｔｓ［Ｃ］．Ｉｎ：Ｂｒｕｎｓ　Ａ　Ｒ．Ｇｅｎｅｔｉｃｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　Ｐｉｇ２ｎｄ．Ｗａｌｌｉｎｇｆｏｒｄ：ＣＡＢ　Ｉｎｔｅｒｎａｔｉｏｎａｌ，２０１１：３２５－３５４
［７１］Ｋｉｍ　Ｋ　Ｓ，Ｌａｒｓｅｎ　Ｎ，Ｓｈｏｒ　Ｔ，Ｐｌａｓｔｏｗ　Ｇ，Ｒｏｔｈｓｃｈｉｌｄ　Ｍ　Ｆ．Ａｍｉｓｓｅｎｓｅ　ｖａｒｉａｎｔ　ｏｆ　ｔｈｅ　ｐｏｒｃｉｎｅ　ｍｅｌａｎｏｃｏｒｔｉｎ－４ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＭＣ４Ｒ）ｇｅｎｅ　ｉｓ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｆａｔｎｅｓｓ，ｇｒｏｗｔｈ，ａｎｄ　ｆｅｅｄｉｎｔａｋｅ　ｔｒａｉｔｓ［Ｊ］．Ｍａｍｍａｌｉａｎ　Ｇｅｎｏｍｅ，２０００，１１（２）：１３１－１３５［７２］Ｈｏｕｓｔｏｎ　Ｒ　Ｄ，Ｃａｍｅｒｏｎ　Ｎ　Ｄ，Ｒａｎｃｅ　Ｋ　Ａ．Ａ　ｍｅｌａｎｏｃｏｒｔｉｎ－４ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＭＣ４Ｒ）ｐｏｌｙｍｏｒｐｈｉｓｍ　ｉｓ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｗｉｔｈｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ　ｔｒａｉｔｓ　ｉｎ　ｄｉｖｅｒｇｅｎｔｌｙ　ｓｅｌｅｃｔｅｄ　ｌａｒｇｅ　ｗｈｉｔｅ　ｐｉｇｐｏｐｕｌａｔｉｏｎｓ［Ｊ］．Ａｎｉｍａｌ　Ｇｅｎｅｔｉｃｓ，２００４，３５：３８６－３９０
［７３］辜玉红．ｐＧＲＦ基因对猪生产性能、胴体品质及血液生化指标影响的研究［Ｄ］．成都：四川农业大学，２００１
Ｇｕ　Ｙ　Ｈ．Ｔｈｅ　ｅｆｆｅｃｔ　ｏｆ　ｇｅｎｅ　ｐＧＲＦ　ｏｎ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｐｅｒｆｏｒｍａｎｃｅ，ｃａｒｃａｓｓ　ｑｕａｌｉｔｙ　ａｎｄ　ｂｌｏｏｄ　ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ｉｎｄｅｘ　ｉｎ　ｐｉｇ［Ｄ］．Ｃｈｅｎｇｄｕ：Ｓｉｃｈｕａｎ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，２００（ｉｎ　Ｃｈｉｎｅｓｅ）［７４］Ｚｈａｎｇ　Ｚ　Ｙ，Ｒｅｎ　Ｊ，Ｒｅｎ　Ｄ　Ｒ，Ｍａ　Ｊ　Ｗ，Ｇｕｏ　Ｙ　Ｍ，Ｈｕａｎｇ　Ｌ　Ｓ．Ｍａｐｐｉｎｇ　ｑｕａｎｔｉｔａｔｉｖｅ　ｔｒａｉｔ　ｌｏｃｉ　ｆｏｒ　ｆｅｅｄ　ｃｏｎｓｕｍｐｔｉｏｎ　ａｎｄｆｅｅｄｉｎｇ　ｂｅｈａｖｉｏｒｓ　ｉｎ　ａ　Ｗｈｉｔｅ　Ｄｕｒｏｃ×Ｃｈｉｎｅｓｅ　Ｅｒｈｕａｌｉａｎｒｅｓｏｕｒｃｅ　ｐｏｐｕｌａｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００９，８７（１１）：３４５８－３４６３
［７５］Ｈｏｑｕｅ　Ｍ　Ａ，Ｋａｔｏｈ　Ｋ，Ｓｕｚｕｋｉ　Ｋ．Ｇｅｎｅｔｉｃ　ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎｓ　ｏｆｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｗｉｔｈ　ｓｅｒｕｍ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｌｉｋｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ－Ｉ　ａｎｄｌｅｐｔｉｎ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎｓ，ｍｅａｔ　ｑｕａｌｉｔｙ，ａｎｄ　ｃａｒｃａｓｓ　ｃｒｏｓｓ　ｓｅｃｔｉｏｎａｌｆａｔ　ａｒｅａ　ｒａｔｉｏｓ　ｉｎ　Ｄｕｒｏｃ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２００９，８７（１０）：３０６９－３０７５
［７６］Ｂｕｎｔｅｒ　Ｋ　Ｌ，Ｃａｉ　Ｗ，Ｊｏｈｎｓｔｏｎ　Ｄ　Ｊ，Ｄｅｋｋｅｒｓ　Ｊ　Ｃ．Ｓｅｌｅｃｔｉｏｎ　ｔｏｒｅｄｕｃｅ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ｉｎ　ｐｉｇｓ　ｐｒｏｄｕｃｅｓ　ａ　ｃｏｒｒｅｌａｔｅｄｒｅｓｐｏｎｓｅ　ｉｎ　ｊｕｖｅｎｉｌｅ　ｉｎｓｕｌｉｎ－ｌｉｋｅ　ｇｒｏｗｔｈ　ｆａｃｔｏｒ－Ｉ　ｃｏｎｃｅｎｔｒａｔｉｏｎ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１０，８８（６）：１９７３－１９８１
［７７］Ｆａｎ　Ｂ，Ｌｋｈａｇｖａｄｏｒ　Ｊ　Ｓ，Ｃａｉ　Ｗ，Ｓｍｉｔｈ　Ｒ　Ｍ，Ｄｅｋｋｅｒｓ　Ｊ　Ｃ，ＨｕｆｆＥ，Ｌｏｎｅｒｇａｎ　Ｓ　Ｍ，Ｒｏｔｈｓｃｈｉｌｄ　Ｍ　Ｆ．Ｉｄｅｎｔｉｆｉｃａｔｉｏｎ　ｏｆ　ｇｅｎｅｔｉｃｍａｒｋｅｒｓ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ａｎｄ　ｍｅａｔ　ｑｕａｌｉｔｙ
４８
　第４期蒲蕾等：猪饲料利用效率的研究进展
ｔｒａｉｔｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｉｇ［Ｊ］．Ｍｅａｔ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１０，８４（４）：６４５－６５０
［７８］Ｏｎｔｅｒｕ　Ｓ　Ｋ，Ｇｏｒｂａｃｈ　Ｄ　Ｍ，Ｙｏｕｎｇ　Ｊ　Ｍ，Ｇａｒｒｉｃｋ　Ｄ　Ｊ，Ｄｅｋｋｅｒｓ　ＪＣ，Ｒｏｔｈｓｃｈｉｌｄ　Ｍ　Ｆ．Ｗｈｏｌｅ　ｇｅｎｏｍｅ　ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ　ｓｔｕｄｉｅｓ　ｏｆｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ　ａｎｄ　ｒｅｌａｔｅｄ　ｔｒａｉｔｓ　ｉｎ　ｔｈｅ　ｐｉｇ［Ｊ］．ＰｌｏＳ　Ｏｎｅ，２０１３，８（６）：１－１３
［７９］Ｓａｈａｎａ　Ｇ，Ｋａｄｌｅｃｏｖａ　Ｖ，ＨｏｒｎｓｈｏＪ　Ｈ，Ｎｉｅｌｓｅｎ　Ｂ　ａｎｄＣｈｒｉｓｔｅｎｓｅｎ　Ｏ　Ｆ．Ａ　ｇｅｎｏｍｅ－ｗｉｄｅ　ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ　ｓｃａｎ　ｉｎ　ｐｉｇｉｄｅｎｔｉｆｉｅｓ　ｎｏｖｅｌ　ｒｅｇｉｏｎｓ　ａｓｓｏｃｉａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ｆｅｅｄ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ　ｔｒａｉｔ［Ｊ］．Ｊｏｕｒｎａｌ　ｏｆ　Ａｎｉｍａｌ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１３，９１（３）：１０４１－１０５０
［８０］Ｄｏ　Ｄ　Ｎ，Ｏｓｔｅｒｓｅｎ　Ｔ，Ｓｔｒａｔｈｅ　Ａ　Ｂ，Ｍａｒｋ　Ｔ，Ｊｅｎｓｅｎ　Ｊ，Ｋａｄａｒｍｉｄｅｅｎ　Ｈ　Ｎ．Ｇｅｎｏｍｅ－ｗｉｄｅ　ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ　ａｎｄ　ｓｙｓｔｅｍｓｇｅｎｅｔｉｃ　ａｎａｌｙｓｅｓ　ｏｆ　ｒｅｓｉｄｕａｌ　ｆｅｅｄ　ｉｎｔａｋｅ，ｄａｉｌｙ　ｆｅｅｄｃｏｎｓｕｍｐｔｉｏｎ，ｂａｃｋｆａｔ　ａｎｄ　ｗｅｉｇｈｔ　ｇａｉｎ　ｉｎ　ｐｉｇｓ［Ｊ］．ＢＭＣＧｅｎｅｔｉｃｓ，２０１４，１５：２７
［８１］成宏．猪４个候选基因ＳＮＰ检测及与饲料转化效率性状的关联性分析［Ｄ］．武汉：华中农业大学，２０１３
Ｃｈｅｎｇ　Ｈ．Ｓｎｐ　Ｄｅｔｅｃｔｉｏｎ　ｏｆ　ｆｏｕｒ　ｐｏｒｃｉｎｅ　ｇｅｎｅｓ　ａｎｄ　ｔｈｅａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ　ａｎａｌｙｓｉｓ　ｗｉｔｈ　ｆｅｅｄ　ｃｏｎｖｅｒｓｉｏｎ　ｅｆｆｉｃｉｅｎｃｙ［Ｄ］．Ｗｕｈａｎ：Ｈｕａｚｈｏｎｇ　Ａｇｒｉｃｕｌｔｕｒｅ　Ｕｎｉｖｅｒｓｉｔｙ，２０１３（ｉｎ　Ｃｈｉｎｅｓｅ）［８２］Ｆｏｎｔａｎｅｓｉ　Ｌ，Ｂｕｔｔａｚｚｏｎｉ　Ｌ，Ｇａｌｉｍｂｅｒｔｉ　Ｇ，ＣａｌòＤ　Ｇ，Ｓｃｏｔｔｉ　Ｅ，Ｒｕｓｓｏ　Ｖ．Ａｓｓｏｃｉａｔｉｏｎ　ｂｅｔｗｅｅｎ　ｍｅｌａｎｏｃｏｒｔｉｎ　４ｒｅｃｅｐｔｏｒ（ＭＣ４Ｒ）ｇｅｎｅ　ｈａｐｌｏｔｙｐｅｓ　ａｎｄ　ｃａｒｃａｓｓ　ａｎｄ　ｐｒｏｄｕｃｔｉｏｎ　ｔｒａｉｔｓ　ｉｎＩｔａｌｉａｎ　Ｌａｒｇｅ　Ｗｈｉｔｅ　ｐｉｇｓ　ｅｖａｌｕａｔｅｄ　ｗｉｔｈ　ａ　ｓｅｌｅｃｔｉｖｅ　ｇｅｎｏｔｙｐｉｎｇａｐｐｒｏａｃｈ［Ｊ］．Ｌｉｖｅｓｔｏｃｋ　Ｓｃｉｅｎｃｅ，２０１３，１５７（１）：４８－５６
［８３］Ｇｉｒａｒｄ　Ｃ，Ｄｕｐｒａｔ　Ｆ，Ｔｅｒｒｅｎｏｉｒｅ　Ｃ，Ｔｉｎｅｌ　Ｎ，Ｆｏｓｓｅｔ　Ｍ，ＲｏｍｅｙＧ，Ｌａｚｄｕｎｓｋｉ　Ｍ，Ｌｅｓａｇｅ　Ｆ．Ｇｅｎｏｍｉｃ　ａｎｄ　ｆｕｎｃｔｉｏｎａｌ
ｃｈａｒａｃｔｅｒｉｓｔｉｃｓ　ｏｆ　ｎｏｖｅｌ　ｐａｎｃｒｅａｔｉｃ　２Ｐｄｏｍａｉｎ　Ｋ（＋）ｃｈａｎｎｅｌｓ［Ｊ］．Ｂｉｏｃｈｅｍｉｃａｌ　ａｎｄ　Ｂｉｏｐｈｙｓｉｃａｌ　Ｒｅｓｅａｒｃｈ　Ｃｏｍｍｕｎｉｃａｔｉｏｎｓ，２００１，２８２（１）：２４９－２５６
［８４］Ｄｏｈａｒａ－ｉｍａｉｚｕｍｉ　Ｍ，Ｙｏｓｈｉｄａ　Ｍ，Ａｏｙａｇｉ　Ｋ，Ｓａｉｔｏ　Ｔ，ＯｋａｍｕｒａＴ，Ｔａｋｅｎａｋａ　Ｈ，Ａｌｉｍｏｔｏ　Ｙ，Ｎａｋａｍｉｃｈｉ　Ｙ，Ｎｉｓｈｉｗａｋｉ　Ｃ，Ｋａｗａｋａｍｉ　Ｈ，Ｋａｔｏ　Ｎ，Ｈｉｓａｎａｇａ　Ｓ，Ｋａｋｅｉ　Ｍ，Ｎａｇａｍａｔｓｕ　Ｓ．Ｄｅｌｅｔｉｏｎ　ｏｆ　ＣＤＫＡＬ１ａｆｆｅｃｔｓ　ｍｉｔｏｃｈｏｎｄｒｉａｌ　ＡＴＰ　ｇｅｎｅｒａｔｉｏｎ　ａｎｄｆｉｒｓｔ－ｐｈａｓｅ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｅｘｏｃｙｔｏｓｉｓ［Ｊ］．ＰＬｏＳ　Ｏｎｅ，２０１０，５（１２）：ｅ１５５５３
［８５］Ｐｈｉｌｉｐｐｅ　Ｊ，Ｍｏｊｓｏｖ　Ｓ，Ｃｈｉｃｋ　Ｗ　Ｌ，Ｈａｂｅｎｅｒ　Ｊ　Ｆ．Ｇｌｕｃａｇｏｎ－ｌｉｋｅｐｅｐｔｉｄｅ　Ｉ　ｓｔｉｍｕｌａｔｅｓ　ｉｎｓｕｌｉｎ　ｇｅｎｅ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ａｎｄ　ｉｎｃｒｅａｓｅｓ　ｃｙｃｌｉｃＡＭＰ　ｌｅｖｅｌｓ　ｉｎ　ａ　ｒａｔ　ｉｓｌｅｔ　ｃｅｌｌ　ｌｉｎｅ［Ｊ］．Ｐｒｏｃｅｅｄｉｎｇｓ　ｏｆ　ｔｈｅＮａｔｉｏｎａｌ　Ａｃａｄｅｍｙ　ｏｆ　Ｓｃｉｅｎｃｅｓ　ｏｆ　ｔｈｅ　ＵＳＡ，１９８７，８４（１０）：３４３４－３４３８
［８６］Ｚｈａｎｇ　Ｎ，Ｆｕ　Ｚ，Ｌｉｎｋｅ　Ｓ，Ｃｈｉｃｈｅｒ　Ｊ，Ｇｏｒｍａｎ　Ｊ　Ｊ，Ｖｉｓｋ　Ｄ，Ｈａｄｄａｄ　Ｇ　Ｇ，Ｐｏｅｌｌｉｎｇｅｒ　Ｌ，Ｐｅｅｔ　Ｄ　Ｊ，Ｐｏｗｅｌｌ　Ｆ，Ｊｏｈｎｓｏｎ　Ｒ　Ｓ．Ｔｈｅ　ａｓｐａｒａｇｉｎｙｌ　ｈｙｄｒｏｘｙｌａｓｅ　ｆａｃｔｏｒ　ｉｎｈｉｂｉｔｉｎｇ　ＨＩＦ－１ａｌｐｈａ　ｉｓａｎ　ｅｓｓｅｎｔｉａｌ　ｒｅｇｕｌａｔｏｒ　ｏｆ　ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ［Ｊ］．Ｃｅｌｌ　Ｍｅｔａｂｏｌｉｓｍ，２０１０，１１（５）：３６４－３７８
［８７］Ｂｕｃｈｂｅｒｇｅｒ　Ａ，Ｐａｂｓｔ　Ｏ，Ｂｒａｎｄ　Ｔ，Ｓｅｉｄｌ　Ｋ，Ａｒｎｏｌｄ　Ｈ　Ｈ．ＣｈｉｃｋＮＫｘ－２．３ｒｅｐｒｅｓｅｎｔｓ　ａ　ｎｏｖｅｌ　ｆａｍｉｌｙ　ｍｅｍｂｅｒ　ｏｆ　ｖｅｒｔｅｂｒａｔｅｈｏｍｏｌｏｇｕｅｓ　ｔｏ　ｔｈｅ　Ｄｒｏｓｏｐｈｉｌａ　ｈｏｍｅｏｂｏｘ　ｇｅｎｅ　ｔｉｎｍａｎ：ｄｉｆｆｅｒｅｎｔｉａｌ　ｅｘｐｒｅｓｓｉｏｎ　ｏｆ　ｃＮＫｘ－２．３ａｎｄ　ｃＮＫｘ－２．５ｄｕｒｉｎｇｈｅａｒｔ　ａｎｄ　ｇｕｔ　ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ［Ｊ］．Ｍｅｃｈａｎｉｓｍｓ　ｏｆ　Ｄｅｖｅｌｏｐｍｅｎｔ，１９９６，５６（１／２）：１５１－１６３
责任编辑：苏燕
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