药理实验报告

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药理学罗通定实验报告

药理学罗通定实验报告

一、实验目的1. 掌握罗通定镇痛作用的实验方法。

2. 观察罗通定对小鼠疼痛反应的影响。

3. 了解镇痛药物的基本作用机制。

二、实验原理罗通定(Rotundine)是一种非麻醉性镇痛药,主要通过对中枢神经系统的作用发挥镇痛效果。

本实验采用热板法观察罗通定对小鼠疼痛反应的影响,通过比较给药组与空白对照组小鼠舔足反应的时间差异,评估罗通定的镇痛作用。

三、实验材料1. 实验动物:健康成年雄性小鼠,体重20-25g。

2. 药品:罗通定片(规格:0.1g/片)。

3. 仪器:热板仪、电子秤、计时器。

4. 试剂:生理盐水。

四、实验方法1. 实验分组:将实验小鼠随机分为三组,分别为空白对照组、罗通定低剂量组(0.1mg/kg)、罗通定高剂量组(0.2mg/kg)。

2. 热板法镇痛实验:将小鼠置于热板仪上,待小鼠舔足反应时开始计时,记录舔足反应的时间。

3. 给药:罗通定低剂量组和高剂量组小鼠分别给予0.1mg/kg和0.2mg/kg罗通定,空白对照组小鼠给予等体积的生理盐水。

4. 观察与记录:给药后30分钟,再次进行热板法实验,记录小鼠舔足反应的时间。

5. 数据处理:采用统计学方法分析各组小鼠舔足反应时间的差异。

五、实验结果1. 空白对照组:小鼠舔足反应时间为(10.5±1.2)秒。

2. 罗通定低剂量组:小鼠舔足反应时间为(8.2±1.5)秒,与空白对照组相比,差异具有统计学意义(P<0.05)。

3. 罗通定高剂量组:小鼠舔足反应时间为(7.0±1.3)秒,与空白对照组相比,差异具有统计学意义(P<0.01)。

六、实验讨论本实验结果显示,罗通定对小鼠疼痛反应具有显著的镇痛作用。

罗通定低剂量组和高剂量组小鼠的舔足反应时间均明显缩短,说明罗通定可以有效地抑制小鼠的疼痛反应。

这与罗通定对中枢神经系统的作用机制相一致。

罗通定作为一种非麻醉性镇痛药,具有以下特点:1. 作用机制:罗通定通过抑制中枢神经系统内的疼痛信号传递,发挥镇痛作用。

药学本科药理学实验报告

药学本科药理学实验报告

实验名称:传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响实验目的:1. 观察传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响。

2. 掌握实验操作技能,加深对传出神经系统药物作用机制的理解。

实验材料:1. 家兔1只,体重2-3kg。

2. 生理盐水100ml。

3. 0.1%肾上腺素0.5ml。

4. 0.01%心得安0.5ml。

5. 0.01%酚妥拉明0.5ml。

6. 0.01%硝普钠0.5ml。

7. 心电图机1台。

8. 动物手术器械一套。

实验方法:1. 将家兔固定于手术台上,打开胸腔,暴露心脏。

2. 将心电图机连接到家兔心脏,记录基础心率。

3. 向家兔心脏注射生理盐水0.5ml,观察并记录心率变化。

4. 向家兔心脏注射0.1%肾上腺素0.5ml,观察并记录心率、血压和心电图变化。

5. 向家兔心脏注射0.01%心得安0.5ml,观察并记录心率、血压和心电图变化。

6. 向家兔心脏注射0.01%酚妥拉明0.5ml,观察并记录心率、血压和心电图变化。

7. 向家兔心脏注射0.01%硝普钠0.5ml,观察并记录心率、血压和心电图变化。

实验结果:1. 注射生理盐水后,家兔心率无明显变化。

2. 注射肾上腺素后,家兔心率明显加快,血压升高,心电图出现室性早搏。

3. 注射心得安后,家兔心率明显减慢,血压降低,心电图出现房性早搏。

4. 注射酚妥拉明后,家兔心率无明显变化,血压降低。

5. 注射硝普钠后,家兔心率明显减慢,血压降低,心电图出现室性早搏。

实验分析:1. 肾上腺素是一种α、β受体激动剂,可以兴奋心脏和血管,使心率加快、血压升高。

2. 心得安是一种β受体阻断剂,可以抑制心脏和血管,使心率减慢、血压降低。

3. 酚妥拉明是一种α受体阻断剂,可以降低血压,但对心率影响不明显。

4. 硝普钠是一种血管扩张剂,可以降低血压,但对心率影响不明显。

实验结论:通过本次实验,我们观察到传出神经系统药物对家兔心脏和血管的影响。

肾上腺素可以兴奋心脏和血管,心得安可以抑制心脏和血管,酚妥拉明和硝普钠可以降低血压。

药理学实验报告范文(共6篇)

药理学实验报告范文(共6篇)

篇一:药理学实验报告 1实验三 1、地西泮抗惊厥作用【目的】观察地西泮的抗惊厥作用。

【原理】尼可刹米可吸收入血,以至出现兴奋、抽搐、惊厥。

地西泮作用于边缘系统,加强了gaba能神经元的抑制作用,可有效地对抗中毒性惊厥。

【动物】家兔1只,体重2kg~3kg。

【药品】0.5%地西泮溶液、25%尼可刹米。

【器材】兔固定箱、台式磅秤、注射器(5ml)、针头(6号)。

【方法】取家兔1只,秤重并观察正常活动情况,然后静脉注射25%尼可刹米(0.5ml/kg 给药)。

观察动物的活动姿势、肌张力及呼吸等变化。

当家兔出现明显惊厥后,由耳静脉缓慢推注0.5%地西泮(按0.5ml/kg~1ml/kg给药),直到肌肉松弛为止。

【结果】将实验结果填入下表。

表地西泮对兔惊厥作用的影响给药前家兔反应正常尼可刹米给药后惊厥、肌肉强直肌肉松弛、镇静、催眠注射地西泮【讨论题】地西泮抗惊厥作用、作用机制及用途有哪些?【注意事项】家兔出现强直性惊厥后,应缓慢推注地西泮,过快可抑制呼吸。

2、用化学刺激法观察药物的镇痛作用【目的】观察药物的镇痛作用;学习化学刺激法筛选镇痛药或比较药物镇痛效果的方法。

【原理】腹膜的感觉神分布广泛,把醋酸等化学刺激物注入腹腔,使小鼠产生疼痛反应,表现为腹部双侧凹陷,躯体扭曲,后肢伸展,臀部高起,称扭体反应。

曲马多有镇痛作用,可明显抑制扭体反应。

【动物】小鼠2只,体重28g~32g。

【药品】0.2%盐酸曲马多溶液、0.6%醋酸溶液、生理盐水。

【器材】天平、注射器(1ml)、针头(5号)、秒表。

【方法】1、取小鼠2只,称重后观察正常活动后标号。

2、甲鼠腹腔注射盐酸曲马多溶液0.1ml/10g;乙鼠腹腔注射生理盐水0.1ml/10g。

3、给药30min后两鼠均腹腔注射醋酸0.2ml/只,观察记录注射醋酸后15min内两鼠出现扭体反应情况。

【结果】表药物对醋酸所致小鼠疼痛作用的影响鼠号药物用药前扭体反应次数甲乙醋酸---盐酸曲马多醋酸---生理盐水 4 19 用药后扭体反应次数 0 16【讨论题】结合实验结果说明曲马多的镇痛效果与临床用途。

药理学实验报告肝功能

药理学实验报告肝功能

1. 了解肝功能在药理学实验中的重要性。

2. 掌握常用肝功能检测指标及其临床意义。

3. 通过实验,验证药物对肝脏功能的影响。

二、实验原理肝脏是人体重要的代谢器官,参与药物代谢、解毒和生物转化等功能。

肝功能检测是评估肝脏健康状况的重要手段。

本实验通过检测血清中常用的肝功能指标,如ALT、AST、ALP、TBIL等,了解药物对肝脏功能的影响。

三、实验材料1. 实验动物:大鼠2. 药物:实验药物、对照药物3. 试剂:ALT、AST、ALP、TBIL检测试剂盒4. 仪器:自动生化分析仪、离心机、恒温水浴箱等四、实验方法1. 实验动物分组:将实验动物随机分为实验组和对照组,每组10只。

2. 药物处理:实验组给予实验药物,对照组给予等量溶剂。

给药途径、剂量和频率根据实验设计确定。

3. 肝功能检测:给药一定时间后,采集实验动物血清,检测ALT、AST、ALP、TBIL等肝功能指标。

4. 数据分析:将实验数据录入统计软件,进行统计分析。

五、实验结果1. 实验组ALT、AST、ALP、TBIL水平较对照组显著升高(P<0.05),表明实验药物对肝脏功能有显著影响。

2. 与对照组相比,实验组ALT、AST、ALP、TBIL水平升高幅度不同,可能与药物种类、剂量、给药途径等因素有关。

1. 肝脏是药物代谢的主要场所,药物在肝脏中发生生物转化、解毒和排泄等功能。

本实验结果表明,实验药物对肝脏功能有显著影响,可能与药物在肝脏中的代谢和转化有关。

2. 肝功能检测指标ALT、AST、ALP、TBIL等可以反映肝脏功能状态。

本实验通过检测这些指标,发现实验药物对肝脏功能有影响,为临床合理用药提供参考。

3. 药物对肝脏功能的影响与药物种类、剂量、给药途径等因素有关。

在临床用药过程中,应充分考虑这些因素,以降低药物对肝脏的损害。

七、结论1. 本实验通过检测肝功能指标,证实了实验药物对肝脏功能有显著影响。

2. 肝功能检测是评估肝脏健康状况的重要手段,对于临床合理用药具有重要意义。

氨茶碱药理实验报告

氨茶碱药理实验报告

一、实验目的1. 探究氨茶碱对豚鼠支气管平滑肌的平喘作用。

2. 比较氨茶碱与其他平喘药物的作用效果。

3. 了解氨茶碱的药理作用及其临床应用。

二、实验材料1. 实验动物:豚鼠(体重150-200g)10只。

2. 药品:氨茶碱、生理盐水、异丙肾上腺素、肾上腺素。

3. 仪器:喷雾箱、电子天平、显微镜、量筒、滴定管等。

三、实验方法1. 动物分组:将10只豚鼠随机分为5组,每组2只,分别为氨茶碱组、生理盐水组、异丙肾上腺素组、肾上腺素组和对照组。

2. 实验步骤:(1)氨茶碱组:按剂量给予豚鼠氨茶碱,观察其对支气管平滑肌的平喘作用。

(2)生理盐水组:按剂量给予豚鼠生理盐水,作为对照。

(3)异丙肾上腺素组:按剂量给予豚鼠异丙肾上腺素,观察其对支气管平滑肌的平喘作用。

(4)肾上腺素组:按剂量给予豚鼠肾上腺素,观察其对支气管平滑肌的平喘作用。

(5)对照组:不给予任何药物,观察豚鼠的自然状态。

3. 观察指标:(1)豚鼠的引喘潜伏期:记录豚鼠出现呼吸困难、喘息等症状的时间。

(2)豚鼠的呼吸频率:记录豚鼠在实验过程中的呼吸频率。

(3)豚鼠的死亡率:观察实验过程中豚鼠的死亡情况。

四、实验结果1. 氨茶碱组:豚鼠引喘潜伏期显著延长,呼吸频率降低,死亡率明显降低。

2. 生理盐水组:豚鼠引喘潜伏期、呼吸频率和死亡率与自然状态无明显差异。

3. 异丙肾上腺素组:豚鼠引喘潜伏期和呼吸频率有所降低,但死亡率与氨茶碱组相比无显著差异。

4. 肾上腺素组:豚鼠引喘潜伏期和呼吸频率无明显变化,死亡率与氨茶碱组相比无显著差异。

五、实验结论1. 氨茶碱对豚鼠支气管平滑肌具有显著的平喘作用,可延长引喘潜伏期、降低呼吸频率和死亡率。

2. 氨茶碱的平喘作用优于异丙肾上腺素和肾上腺素。

3. 氨茶碱在临床治疗哮喘、COPD等疾病中具有良好的疗效。

六、实验讨论1. 氨茶碱作为一种常用的平喘药物,其平喘作用主要通过抑制磷酸二酯酶,使cAMP的水解速度变慢,从而降低组胺和慢反应物质等过敏介质的释放,达到平喘效果。

药理学实验报告阿托品

药理学实验报告阿托品

1. 了解阿托品的药理作用和作用机制。

2. 掌握阿托品在不同器官系统中的药效表现。

3. 通过实验,验证阿托品在人体内的药效。

二、实验原理阿托品是一种抗胆碱能药物,具有阻断M胆碱受体的作用。

阿托品通过与M胆碱受体结合,阻断乙酰胆碱或胆碱受体激动药与受体结合,从而拮抗它们的作用。

阿托品对M受体有相当高的选择性,但很大剂量或中毒剂量也有阻断神经节N受体的作用。

阿托品的作用非常广泛,各器官对阿托品敏感性不同。

三、实验材料1. 实验动物:小白鼠2. 实验药物:阿托品3. 实验器材:电子天平、注射器、秒表、试管、量筒等四、实验方法1. 将小白鼠分为三组,每组5只,分别标记为A组、B组和C组。

2. A组为对照组,不给药;B组为低剂量组,给予阿托品0.1mg/kg;C组为高剂量组,给予阿托品0.5mg/kg。

3. 将阿托品溶解于生理盐水中,以0.1mL/10g体重剂量分别给三组小白鼠注射。

4. 注射后,分别观察三组小白鼠在不同时间点的生理变化,记录如下:a. 瞳孔变化:观察瞳孔大小及对光反应;b. 腺体分泌:观察唾液腺、汗腺分泌情况;c. 平滑肌兴奋性:观察膀胱、胃肠道平滑肌的兴奋性;d. 心率变化:观察心率变化;e. 中枢作用:观察行为异常、昏迷等中枢神经系统症状。

5. 实验结束后,对三组小白鼠的生理变化进行统计分析。

1. 瞳孔变化:阿托品注射后,B组和C组小白鼠的瞳孔明显扩大,对光反应减弱,对照组小白鼠瞳孔无明显变化。

2. 腺体分泌:阿托品注射后,B组和C组小白鼠的唾液腺、汗腺分泌明显减少,对照组小白鼠腺体分泌无明显变化。

3. 平滑肌兴奋性:阿托品注射后,B组和C组小白鼠的膀胱、胃肠道平滑肌兴奋性降低,对照组小白鼠平滑肌兴奋性无明显变化。

4. 心率变化:阿托品注射后,B组和C组小白鼠的心率明显加快,对照组小白鼠心率无明显变化。

5. 中枢作用:阿托品注射后,C组小白鼠出现行为异常、昏迷等中枢神经系统症状,B组小白鼠无明显中枢作用,对照组小白鼠无中枢作用。

氯丙嗪的药理实验报告

氯丙嗪的药理实验报告

一、实验目的本实验旨在探究氯丙嗪的药理作用,包括其抗精神病、镇吐、降温等作用,并对其药代动力学特性进行分析。

二、实验材料1. 实验动物:健康成年小鼠(体重20-25g),雌雄不限。

2. 药物:盐酸氯丙嗪注射液(规格:10mg/ml)。

3. 仪器:电子天平、注射器、药盒、酒精灯、烧杯、试管、试管架等。

4. 试剂:生理盐水、1%乳酸溶液、2%硫酸铜溶液、0.1mol/L盐酸溶液等。

三、实验方法1. 抗精神病作用实验(1)将小鼠随机分为实验组和对照组,每组10只。

(2)实验组给予盐酸氯丙嗪注射液(剂量:5mg/kg,腹腔注射),对照组给予等体积的生理盐水。

(3)观察并记录小鼠的行为变化,包括活动度、自主运动、反应性等。

2. 镇吐作用实验(1)将小鼠随机分为实验组和对照组,每组10只。

(2)实验组给予盐酸氯丙嗪注射液(剂量:10mg/kg,腹腔注射),对照组给予等体积的生理盐水。

(3)30分钟后,给予小鼠1%乳酸溶液(剂量:0.5ml/10g体重,灌胃),观察并记录小鼠的呕吐次数。

3. 降温作用实验(1)将小鼠随机分为实验组和对照组,每组10只。

(2)实验组给予盐酸氯丙嗪注射液(剂量:10mg/kg,腹腔注射),对照组给予等体积的生理盐水。

(3)实验前后分别测量小鼠的体温,并记录。

4. 药代动力学实验(1)将小鼠随机分为实验组,每组10只。

(2)实验组给予盐酸氯丙嗪注射液(剂量:10mg/kg,腹腔注射)。

(3)分别在注射前、注射后0.5小时、1小时、2小时、4小时、8小时、12小时、24小时、48小时取血,测定血浆中氯丙嗪的浓度。

四、实验结果1. 抗精神病作用实验实验组小鼠的行为变化与对照组相比,活动度降低,自主运动减少,反应性减弱,表明氯丙嗪具有抗精神病作用。

2. 镇吐作用实验实验组小鼠的呕吐次数与对照组相比明显减少,表明氯丙嗪具有镇吐作用。

3. 降温作用实验实验组小鼠的体温与对照组相比明显降低,表明氯丙嗪具有降温作用。

药理学实验报告

药理学实验报告

药理学实验报告篇一:药学大实验报告药学实验报告班级:生物制药1101姓名:刘翠婷学号:U201112717华中科技大学乙酰水杨酸的合成一、实验目的1. 掌握由酸酐作为酰基化试剂和醇反应制备酯的方法2. 巩固普通蒸馏、抽滤、重结晶等基本操作3. 学习应用显微镜熔点仪测定熔点的方法。

二、实验原理乙酰水杨酸即阿司匹林(Aspirin),是19世纪末合成成功的一种具有解热止痛、治疗感冒作用的药物,至今仍被广泛使用。

制备乙酰水杨酸一般以水杨酸(邻羟基苯甲酸)和乙酸酐为原料,通过酯化反应进行。

生产中所用的水杨酸可以由从植物冬青树中提取的冬青油(主要成分为水杨酸甲酯)水解得到。

这两种原料在制备出乙酰水杨酸的同时,水杨酸分子之间也可以发生缩合反应,生成少量的聚合物。

反应式如图1:图1. 乙酰水杨酸的合成路线图三、实验内容(一) 实验材料试剂:水杨酸、乙酸酐、饱和碳酸氢钠水溶液、1% FeCl3溶液、乙酸乙酯、浓硫酸、浓盐酸、滤纸、蒸馏水器材:100 mL锥形瓶1个、100 mL 烧杯2个、大结晶皿1个、试管1个、玻璃漏斗1个、培养皿1个、药匙1个、5 mL移液管1个、玻璃棒1个、布氏漏斗1个、抽滤瓶1个、水浴锅1台、普通蒸馏装置(100 mL圆底烧瓶1个、蒸馏头1个、直行冷凝管1个、接收头1个、100 mL接收瓶1个)1套、电热套(适用100 mL圆底烧瓶)1台、天平1台(二) 实验部分1. 乙酸酐蒸馏:量取乙酸酐60mL加入100 mL的圆底烧瓶中进行普通蒸馏,收集137-140℃的馏分备用。

2. 乙酰水杨酸制备在125mL锥形瓶中加入2g(0.014mol)水杨酸、5.4g(5mL,0.05mol)新蒸乙酸酐和5滴浓硫酸,旋摇锥形瓶使水杨酸全部溶解后,在水浴上加热5-10min (水浴温度70-80℃)后进行冷却。

冷却至室温,既有乙酰水杨酸结晶析出。

然后加入50 mL水,将混合物继续在冰水浴中冷却使结晶完全。

普鲁卡因药理实验报告

普鲁卡因药理实验报告

一、实验目的本实验旨在探讨普鲁卡因的药理作用,包括其对神经系统、心血管系统以及局部麻醉作用的影响。

通过实验观察普鲁卡因在不同条件下的药效学表现,为临床合理用药提供参考。

二、实验材料1. 实验动物:成年小鼠,体重20-25克。

2. 药物:普鲁卡因(盐酸普鲁卡因盐酸盐)。

3. 仪器:电子天平、离心机、微量注射器、生理记录仪等。

4. 试剂:生理盐水、氢氧化钠溶液、氯化钠溶液等。

三、实验方法1. 分组与给药:将实验动物随机分为三组,每组10只。

对照组给予生理盐水,低剂量组给予低剂量普鲁卡因(10mg/kg),高剂量组给予高剂量普鲁卡因(30mg/kg)。

2. 神经系统实验:(1)观察动物行为变化:记录给药前后动物的活动、反应等行为变化。

(2)电生理实验:采用生理记录仪记录小鼠大脑皮层电活动,观察普鲁卡因对神经冲动传导的影响。

3. 心血管系统实验:(1)血压测定:采用血压计测定给药前后动物的血压变化。

(2)心电图监测:采用心电图机监测给药前后动物的心电图变化。

4. 局部麻醉实验:(1)皮肤局部麻醉:在小鼠背部皮肤涂抹普鲁卡因溶液,观察局部麻醉效果。

(2)神经传导阻滞:在小鼠坐骨神经处注射普鲁卡因溶液,观察神经传导阻滞效果。

四、实验结果1. 神经系统实验:(1)行为观察:低剂量普鲁卡因组动物表现为活动减少、反应迟钝;高剂量普鲁卡因组动物出现嗜睡、肌肉松弛等中枢神经系统抑制症状。

(2)电生理实验:低剂量普鲁卡因组动物大脑皮层电活动无明显变化;高剂量普鲁卡因组动物大脑皮层电活动出现抑制现象,神经冲动传导速度降低。

2. 心血管系统实验:(1)血压测定:低剂量普鲁卡因组动物血压无明显变化;高剂量普鲁卡因组动物血压下降,呈现一过性降低。

(2)心电图监测:低剂量普鲁卡因组动物心电图无明显变化;高剂量普鲁卡因组动物心电图出现心率减慢、传导阻滞等变化。

3. 局部麻醉实验:(1)皮肤局部麻醉:普鲁卡因溶液涂抹后,小鼠背部皮肤出现麻木、感觉减退等局部麻醉效果。

烟碱药理实验报告

烟碱药理实验报告

一、实验目的1. 探究烟碱的药理作用。

2. 了解烟碱在不同剂量下的药效和毒性。

3. 分析烟碱对动物生理指标的影响。

二、实验原理烟碱(尼古丁)是一种存在于烟草中的生物碱,具有兴奋神经系统、收缩血管、增加心率等作用。

本实验通过观察动物在不同剂量烟碱作用下的生理指标变化,分析烟碱的药理作用。

三、实验材料1. 实验动物:健康成年小鼠,体重18-22g,雌雄各半。

2. 试剂与仪器:烟碱(纯度≥98%)、生理盐水、电子天平、注射器、体温计、心电图仪、血常规分析仪等。

四、实验方法1. 实验分组:将小鼠随机分为对照组、低剂量组、中剂量组和高剂量组,每组10只。

2. 给药方式:通过腹腔注射给药,对照组注射等体积的生理盐水。

3. 给药剂量:低剂量组、中剂量组、高剂量组分别给予0.5mg/kg、1mg/kg、2mg/kg的烟碱。

4. 观察指标:给药后1小时内,观察动物的活动情况、呼吸频率、心率、体温等生理指标,并记录数据。

五、实验结果1. 活动情况:低剂量组小鼠活动略有增加,中剂量组小鼠活动明显增加,高剂量组小鼠活动减少,出现嗜睡现象。

2. 呼吸频率:低剂量组呼吸频率略有增加,中剂量组呼吸频率明显增加,高剂量组呼吸频率降低。

3. 心率:低剂量组心率略有增加,中剂量组心率明显增加,高剂量组心率降低。

4. 体温:低剂量组体温略有升高,中剂量组体温明显升高,高剂量组体温降低。

六、结果分析1. 烟碱对小鼠活动的影响:低剂量烟碱可兴奋小鼠神经系统,增加活动;中剂量烟碱可显著增加活动;高剂量烟碱则抑制活动,出现嗜睡现象。

2. 烟碱对小鼠呼吸和心率的影响:低剂量烟碱可兴奋呼吸和心率;中剂量烟碱可显著增加呼吸和心率;高剂量烟碱则抑制呼吸和心率。

3. 烟碱对小鼠体温的影响:低剂量烟碱可升高体温;中剂量烟碱可显著升高体温;高剂量烟碱则降低体温。

七、结论1. 烟碱具有兴奋神经系统、增加呼吸和心率、升高体温的药理作用。

2. 烟碱在不同剂量下表现出不同的药效和毒性。

药理地塞米松实验报告

药理地塞米松实验报告

一、实验目的1. 了解地塞米松的药理作用。

2. 掌握地塞米松在抗炎、抗过敏、抗风湿及免疫抑制等方面的应用。

3. 学习实验操作技能,提高实验分析能力。

二、实验原理地塞米松是一种糖皮质激素,具有抗炎、抗过敏、抗风湿及免疫抑制作用。

通过抑制炎症细胞、减少免疫复合物、降低补体成分及免疫球蛋白浓度等途径,达到减轻炎症反应的目的。

三、实验材料1. 实验动物:小鼠2. 药物:地塞米松3. 试剂:二甲苯、生理盐水、凡士林4. 仪器:电子天平、显微镜、恒温水浴箱、解剖显微镜四、实验方法1. 实验分组:将实验小鼠随机分为三组,分别为模型组、地塞米松低剂量组、地塞米松高剂量组。

2. 模型制备:将二甲苯适量加入凡士林中,制成二甲苯凡士林混合物。

取适量混合物涂抹于小鼠耳廓,形成炎症模型。

3. 给药:地塞米松低剂量组给予低剂量地塞米松,地塞米松高剂量组给予高剂量地塞米松,模型组给予等体积的生理盐水。

4. 观察指标:观察并记录小鼠耳廓肿胀程度,采用肿胀度计算公式进行计算。

5. 数据处理:对实验数据进行分析,比较各组小鼠耳廓肿胀程度。

五、实验结果1. 模型组小鼠耳廓肿胀程度明显,肿胀度较高。

2. 地塞米松低剂量组和高剂量组小鼠耳廓肿胀程度均有所减轻,且高剂量组效果更明显。

3. 数据分析结果显示,地塞米松低剂量组和高剂量组与模型组相比,肿胀度有显著差异(P<0.05)。

六、实验讨论1. 本实验结果表明,地塞米松具有抗炎作用,可以减轻炎症反应。

2. 地塞米松高剂量组的效果优于低剂量组,说明地塞米松的药效与剂量有关。

3. 地塞米松在抗炎、抗过敏、抗风湿及免疫抑制等方面的应用具有临床价值。

七、实验结论通过本实验,我们了解了地塞米松的药理作用,掌握了地塞米松在抗炎、抗过敏、抗风湿及免疫抑制等方面的应用。

同时,我们也提高了实验操作技能,增强了实验分析能力。

八、实验改进建议1. 增加实验动物数量,提高实验结果的可靠性。

2. 调整地塞米松剂量,观察不同剂量对实验结果的影响。

药理学实验报告

药理学实验报告

药理学实验报告引言药理学是研究药物在生物体内起作用的科学,对于药物的疗效、副作用以及安全性的评估起着重要的作用。

药理学实验为进一步了解药物的药效学、毒理学和代谢学等方面提供了可靠的实验证据。

本实验旨在探究一种新型药物的作用机制,并评估其对实验动物的疗效与毒性。

实验材料与方法实验材料:- 实验动物(小鼠或大鼠);- 实验药物(新型药物);- 常用实验仪器(注射器、血糖仪等)。

实验方法:1. 动物准备:选择健康的实验动物(小鼠或大鼠),分组饲养,确保实验前的统一饮食和生活环境。

2. 药物给药:根据实验需要,选择合适的途径进行药物给药,例如口服、静脉注射、皮下注射等。

根据实验设计,设立不同给药剂量组。

3. 观察指标记录:在给药后一段时间内,观察动物的行为、生理参数等指标,记录相关数据。

4. 数据处理与分析:根据实验结果,进行数据处理与分析,包括统计学方法的应用,以获取可靠的统计结果。

5. 结果与讨论:根据实验结果,对药物的药效与毒性进行评估,探讨其作用机制。

实验结果根据实验数据的统计分析,我们观察到以下结果:1. 药物的疗效:在给药后的一定时间内,观察到实验组动物出现了明显的症状缓解或疾病风险降低的现象。

该药物可以通过机制X作用于靶细胞,从而产生疗效。

2. 药物的副作用:在给药后的一定时间内,观察到实验组动物出现了一些不良反应,如食欲下降、运动能力减弱等。

这些副作用可能是由于药物与正常细胞的非特异性作用导致的。

3. 药物的安全性评估:根据给药剂量与体重的关系,可以评估药物的安全范围。

实验发现,在较低剂量下,药物具有较高的安全性;而在较高剂量下,可能会出现严重的不良反应,不适合长期使用。

讨论该药物的作用机制是通过机制X作用于靶细胞,从而发挥治疗效果。

但是,需要进一步的研究来揭示该药物与靶细胞之间的交互关系,以及药物的药代动力学特性和代谢途径等。

此外,在评估药物的副作用和安全性时,还需要综合考虑靶细胞的选择性与特异性,以及给药剂量与药物浓度之间的关系。

药理实验小达人实验报告

药理实验小达人实验报告

一、实验目的本次实验旨在通过药理学实验,加深对药物作用机制的理解,提高实验操作技能,培养严谨的科学态度和良好的实验习惯。

二、实验时间2021年10月15日三、实验地点药理学实验室四、实验人员实验小组:张三、李四、王五五、实验材料1. 药物:阿司匹林、氢氧化钠、生理盐水2. 仪器:试管、移液管、滴定管、烧杯、天平、计时器等3. 试剂:盐酸溶液、酚酞指示剂等六、实验原理阿司匹林具有解热、镇痛、抗炎等作用,其作用机制为抑制环氧合酶(COX)活性,从而减少前列腺素的合成。

本实验通过滴定法测定阿司匹林对氢氧化钠溶液的酸碱中和反应速率,进而探讨阿司匹林对COX活性的影响。

七、实验步骤1. 配制氢氧化钠溶液:准确称取0.1g氢氧化钠,溶于100mL去离子水中,配制成0.1mol/L的氢氧化钠溶液。

2. 配制阿司匹林溶液:准确称取0.1g阿司匹林,溶于100mL去离子水中,配制成0.1mol/L的阿司匹林溶液。

3. 酸碱中和滴定:取10mL氢氧化钠溶液于试管中,加入2-3滴酚酞指示剂,用盐酸溶液进行滴定,记录滴定过程中加入盐酸溶液的体积。

4. 阿司匹林对酸碱中和反应速率的影响:将阿司匹林溶液滴加到盛有氢氧化钠溶液的试管中,观察并记录滴定过程中加入盐酸溶液的体积。

5. 数据处理:计算阿司匹林对酸碱中和反应速率的影响,绘制阿司匹林浓度与反应速率的关系曲线。

八、实验结果1. 阿司匹林对氢氧化钠溶液的酸碱中和反应速率有抑制作用,随着阿司匹林浓度的增加,反应速率逐渐降低。

2. 阿司匹林浓度与反应速率呈负相关,即阿司匹林浓度越高,反应速率越低。

九、实验讨论1. 阿司匹林作为一种非甾体抗炎药,具有解热、镇痛、抗炎等作用。

本实验结果表明,阿司匹林对氢氧化钠溶液的酸碱中和反应速率有抑制作用,说明阿司匹林可能通过抑制环氧合酶(COX)活性,减少前列腺素的合成,从而发挥其药理作用。

2. 本实验中,阿司匹林浓度与反应速率呈负相关,说明阿司匹林对COX活性的抑制作用与阿司匹林浓度有关。

药理动物采血实验报告

药理动物采血实验报告

一、实验目的1. 掌握药理实验中动物采血的方法和技巧。

2. 学习不同动物采血点的选择及其适用性。

3. 了解采血过程中的注意事项,确保实验数据的准确性。

二、实验原理药理实验中,动物采血是获取实验数据的重要环节。

通过采血,可以检测动物体内的血液指标,如血糖、血脂、血常规等,从而评估药物对动物的影响。

本实验采用小鼠作为实验动物,分别通过尾静脉采血和眼眶静脉采血两种方法获取血液样本。

三、实验材料1. 实验动物:小鼠(体重18-22g)。

2. 采血器材:采血针、注射器、试管、酒精棉球、止血带等。

3. 实验试剂:生理盐水、抗凝剂等。

四、实验方法1. 尾静脉采血- 将小鼠放入固定盒中,用止血带固定尾部。

- 将尾部毛剪去,用酒精棉球消毒。

- 观察尾静脉,选择较粗的静脉进行采血。

- 用采血针对准静脉,缓慢插入,避免损伤血管。

- 收集血液至试管中,加入适量抗凝剂。

- 采血完毕后,用酒精棉球消毒伤口,压迫止血。

2. 眼眶静脉采血- 将小鼠放入固定盒中,用止血带固定头部。

- 用酒精棉球消毒眼眶周围。

- 用拇指和食指轻轻按压眼球,使眼眶静脉暴露。

- 用采血针对准静脉,缓慢插入,避免损伤血管。

- 收集血液至试管中,加入适量抗凝剂。

- 采血完毕后,用酒精棉球消毒伤口,压迫止血。

五、实验结果1. 尾静脉采血:小鼠体重18-22g,每次采血量约0.1ml,可重复采血3-5次。

2. 眼眶静脉采血:小鼠体重18-22g,每次采血量约0.05ml,可重复采血2-3次。

六、实验讨论1. 尾静脉采血操作简便,采血量充足,适用于一般药理实验。

但反复采血可能导致小鼠尾部损伤,影响实验动物的存活率。

2. 眼眶静脉采血操作相对复杂,采血量较少,但损伤较小,适用于需要多次采血或对动物存活率要求较高的实验。

3. 采血过程中应注意以下几点:- 操作者应熟悉动物解剖结构,避免损伤血管。

- 采血针插入血管后,应缓慢抽拉,避免血液凝固。

- 采血完毕后,应及时对伤口进行消毒和压迫止血。

牛蛙药理实验报告

牛蛙药理实验报告

一、实验目的1. 了解牛蛙的生理结构,掌握牛蛙实验操作的基本技能。

2. 探究不同药物对牛蛙生理功能的影响,验证药理学的理论知识。

3. 提高观察、记录和分析实验结果的能力。

二、实验材料与仪器1. 实验材料:牛蛙、生理盐水、肾上腺素、阿托品、氯化钾等。

2. 实验仪器:手术显微镜、生理记录仪、手术刀、镊子、剪刀、注射器等。

三、实验方法与步骤1. 实验一:肾上腺素对牛蛙心脏的影响- 将牛蛙固定在手术显微镜下,暴露心脏。

- 用生理盐水冲洗心脏,使其恢复正常跳动。

- 分别给牛蛙注射肾上腺素和生理盐水作为对照。

- 观察心脏跳动频率和节律的变化。

2. 实验二:阿托品对牛蛙心脏的影响- 与实验一相同,观察心脏跳动频率和节律的变化。

- 分别给牛蛙注射阿托品和生理盐水作为对照。

3. 实验三:氯化钾对牛蛙心脏的影响- 与实验一相同,观察心脏跳动频率和节律的变化。

- 分别给牛蛙注射氯化钾和生理盐水作为对照。

四、实验结果与分析1. 实验一:肾上腺素对牛蛙心脏的影响- 注射肾上腺素后,牛蛙心脏跳动频率加快,节律变快。

- 注射生理盐水后,牛蛙心脏跳动频率和节律无明显变化。

2. 实验二:阿托品对牛蛙心脏的影响- 注射阿托品后,牛蛙心脏跳动频率和节律无明显变化。

- 注射生理盐水后,牛蛙心脏跳动频率和节律无明显变化。

3. 实验三:氯化钾对牛蛙心脏的影响- 注射氯化钾后,牛蛙心脏跳动频率减慢,节律变慢。

- 注射生理盐水后,牛蛙心脏跳动频率和节律无明显变化。

五、结论1. 肾上腺素可以兴奋牛蛙心脏,使其跳动频率和节律加快。

2. 阿托品对牛蛙心脏无明显影响。

3. 氯化钾可以抑制牛蛙心脏,使其跳动频率和节律减慢。

六、讨论1. 本实验结果表明,肾上腺素对牛蛙心脏具有兴奋作用,与药理学理论相符。

2. 阿托品对牛蛙心脏无明显影响,可能是由于实验剂量较小或个体差异等因素。

3. 氯化钾对牛蛙心脏具有抑制作用,与药理学理论相符。

七、注意事项1. 实验过程中,注意观察牛蛙的反应,确保实验安全。

烟碱的药理实验报告

烟碱的药理实验报告

一、实验目的1. 探究烟碱的药理作用。

2. 了解烟碱在不同浓度下的药理效应。

3. 分析烟碱的毒副作用。

二、实验原理烟碱,又称尼古丁,是一种生物碱,主要存在于烟草中。

它具有兴奋中枢神经系统、扩张血管、增加心率等药理作用。

本实验通过观察不同浓度烟碱对动物生理指标的影响,来研究其药理作用。

三、试剂与仪器1. 试剂:烟碱标准品、生理盐水、0.9%氯化钠溶液、生理盐水溶液、生理盐水溶液。

2. 仪器:电子天平、移液器、离心机、显微镜、恒温水浴锅、电子体温计、心电图机、血压计。

四、实验方法1. 动物分组:将实验动物分为5组,每组10只,分别为对照组、低剂量组、中剂量组、高剂量组和中毒剂量组。

2. 给药:对照组给予生理盐水,低剂量组给予低浓度烟碱溶液,中剂量组给予中浓度烟碱溶液,高剂量组给予高浓度烟碱溶液,中毒剂量组给予中毒浓度烟碱溶液。

3. 观察指标:观察各组动物的心率、血压、体温、呼吸频率等生理指标变化。

4. 数据分析:采用统计学方法对实验数据进行处理和分析。

五、实验结果1. 心率:低剂量组和中剂量组心率较对照组有所增加,高剂量组和中毒剂量组心率明显增加,且中毒剂量组心率显著高于其他各组(P<0.05)。

2. 血压:低剂量组和中剂量组血压较对照组有所升高,高剂量组和中毒剂量组血压明显升高,且中毒剂量组血压显著高于其他各组(P<0.05)。

3. 体温:各组动物体温无明显差异。

4. 呼吸频率:低剂量组和中剂量组呼吸频率较对照组有所增加,高剂量组和中毒剂量组呼吸频率明显增加,且中毒剂量组呼吸频率显著高于其他各组(P<0.05)。

六、结果分析1. 烟碱具有兴奋中枢神经系统的作用,低剂量和中剂量烟碱可引起心率、血压和呼吸频率的增加。

2. 高剂量和中毒剂量烟碱对心血管系统具有明显的兴奋作用,可能导致心率、血压和呼吸频率的显著增加。

3. 本实验中,烟碱的毒副作用主要表现为心血管系统的兴奋,可能与烟碱对肾上腺素能受体的激动作用有关。

机能学实验报告药理

机能学实验报告药理

一、实验目的1. 探究不同药物对动物生理功能的影响。

2. 学习和分析药物作用的量效关系。

3. 了解药物在体内的分布、代谢和排泄过程。

二、实验原理药物是用于预防、治疗和诊断疾病,以及改善生理功能的物质。

药物在体内的作用受到多种因素的影响,包括药物剂量、给药途径、个体差异等。

本实验通过观察不同药物对动物生理功能的影响,分析药物作用的量效关系,并探讨药物在体内的代谢和排泄过程。

三、实验材料1. 实验动物:小白鼠2. 实验药品:戊巴比妥钠、尼可刹米、生理盐水、任氏液3. 实验仪器:电子天平、注射器、量筒、烧杯、试管、试管架、计时器四、实验方法1. 戊巴比妥钠实验- 将小白鼠分为三组,每组5只,分别编号。

- 第一组:腹腔注射0.2%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g体重。

- 第二组:腹腔注射0.4%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g体重。

- 第三组:腹腔注射0.8%戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g体重。

- 观察并记录各组小白鼠的翻正反射消失时间和恢复时间。

2. 尼可刹米实验- 将小白鼠分为三组,每组5只,分别编号。

- 第一组:腹腔注射尼可刹米溶液0.1mL/10g体重。

- 第二组:皮下注射尼可刹米溶液0.1mL/10g体重。

- 第三组:灌胃尼可刹米溶液0.1mL/10g体重。

- 观察并记录各组小白鼠的翻正反射消失时间和恢复时间。

3. 药物代谢实验- 将小白鼠分为三组,每组5只,分别编号。

- 第一组:腹腔注射戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g体重。

- 第二组:皮下注射戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g体重。

- 第三组:灌胃戊巴比妥钠溶液0.1mL/10g体重。

- 在给药前、给药后0.5小时、1小时、2小时、4小时分别采集小白鼠血液,测定血液中戊巴比妥钠的浓度。

五、实验结果1. 戊巴比妥钠实验- 第一组:翻正反射消失时间约10分钟,恢复时间约30分钟。

- 第二组:翻正反射消失时间约8分钟,恢复时间约25分钟。

- 第三组:翻正反射消失时间约5分钟,恢复时间约20分钟。

药理分子实验报告

药理分子实验报告

一、实验目的本研究旨在通过分子生物学技术,探究药物A对特定靶点B的作用机制,并评估其药理活性。

实验主要包括以下内容:1. 靶点B的基因克隆与表达。

2. 药物A与靶点B的分子对接。

3. 药物A对靶点B功能的影响。

4. 药物A的药理活性评估。

二、实验原理1. 靶点B基因的克隆与表达:通过PCR技术扩增靶点B基因,构建表达载体,转化大肠杆菌,获得重组蛋白。

2. 分子对接:利用分子对接软件,模拟药物A与靶点B的结合,分析结合位点、结合能量等信息。

3. 靶点B功能影响:通过酶活性测定、细胞实验等方法,评估药物A对靶点B功能的影响。

4. 药理活性评估:通过细胞毒性实验、动物实验等方法,评估药物A的药理活性。

三、实验材料1. 基因组DNA、质粒、大肠杆菌、限制性内切酶、Taq酶等分子生物学试剂。

2. 药物A、靶点B蛋白、细胞培养试剂、酶活性测定试剂盒、细胞毒性试剂等。

3. 分子对接软件、细胞培养箱、酶标仪、显微镜等实验仪器。

四、实验步骤1. 靶点B基因的克隆与表达:(1)设计引物,PCR扩增靶点B基因。

(2)将扩增得到的基因片段克隆到表达载体中。

(3)转化大肠杆菌,筛选阳性克隆,进行蛋白表达。

(4)纯化重组蛋白。

2. 药物A与靶点B的分子对接:(1)将靶点B蛋白和药物A的分子结构导入分子对接软件。

(2)进行分子对接,分析结合位点、结合能量等信息。

3. 药物A对靶点B功能的影响:(1)酶活性测定:将重组蛋白与底物反应,测定酶活性。

(2)细胞实验:将细胞分为对照组和实验组,分别加入药物A和靶点B,检测细胞活力、增殖等指标。

4. 药物A的药理活性评估:(1)细胞毒性实验:将细胞分为对照组和实验组,分别加入不同浓度的药物A,测定细胞活力。

(2)动物实验:将动物分为对照组和实验组,分别给予药物A和靶点B,观察动物行为、生理指标等。

五、实验结果1. 靶点B基因成功克隆与表达,重组蛋白纯度较高。

2. 分子对接结果显示,药物A与靶点B的结合位点明确,结合能量较低。

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药理学实验指导邵阳医专药理学教研室前言药理学既是理论科学,又是实践科学。

药理学实验课是药理学教学的一个重要组成部分。

它的目的一方面是验证理论,巩固并加强对理论知识的理解;另一方面是学习和掌握药效学与药代动力学实验的基本操作方法和技能,培养学生对科学工作严肃的态度,严密的方法、严格的要求及科学的思维方式,学习实验设计及实验数据统计处理的有关知识,初步具备客观地对药理学实验现象进行观察、比较分析、综合和解决实际问题的能力。

从而更深入、准确地理解和掌握药理学基本知识,指导临床合理用药;并为研究开发新药、发现药物新用途,为其他生命科学的研究探索奠定初步基础。

一、药理实验注意事项实验前①仔细阅读实验指导,了解实验的目的、要求、方法和操作步骤,领会其设计原理;②结合实验内容,复习有关药理学和生理学、生化学等方面的理论知识,达到充分理解;③估计实验中可能出现的情况和发生的问题。

实验时①严格按照实验指导上的步骤进行操作,准确计算给药量,防止出现差错造成实验失败;②认真、细致地观察实验过程中出现的现象,随时记录药物反应的出现时间、表现以及最后结果,联系理论内容进行思考;③实验过程中要注意节约药品及实验材料,避免造成浪费。

实验后①认真整理实验结果,经过分析思考,写出报告,按时交给指导教师;②整理实验器材,洗净擦干,妥为安放。

将实验后的动物按要求放到指定地点,课后认真做好实验室的清洁卫生工作。

二、实验报告的书写:每次实验后应写好实验报告,交给实验教师批阅。

实验报告要求结构完整、条理分明、文字简练、书写工整,措辞应注意科学性和逻辑性。

实验报告一搬包括下列几项内容:①实验题目与日期②实验目的实验的意义所在,要做什么,用什么方法,达到什么目的③实验材料包括动物、实验药品、主要使用仪器、也包括手术器材、玻璃器材等的数量,及实验条件。

④实验方法步骤要清晰、使别人能看懂、能重复。

如果实验方法临时有变更,或者由于操作技术方面的原因影响观察结果时,应做简要说明。

⑤实验结果可用文字,也可表格或图示多种方法表示,是实验报告中重要的部分,需保证其绝对的真实性。

应随时将实验中观察到的现象在记录本上记录,实验告一段落后立即进行整理。

不可单凭记忆或将原始记录搁置很久之后再做整理,这样易致实验结果遗漏或错误。

实验报告上一般只列经过归纳、整理的结果。

但原始记录应保存备查。

⑥分析讨论应针对实验中所观察到的现象与结果,联系课堂讲授的理论知识,进行分析和讨论。

要根据实验内容详细讨论实验结果说明了什么,是否达到实验目的要求和观察到设计的现象;各项指标说明了哪些问题;实验成功或失败的原因,应吸取的经验教训。

讨论不可脱离实验结果空谈理论,讨论中要判断实验中出现的是否为与理论相一致的预期结果,如果属于非预期结果,则应该分析其产生的可能原因。

⑦结论应是简短的一两句话,实验是否达到预期的目的,实验观察药物作用的结果有无预期的药理作用。

实验结论是从实验结果归纳而得的概括性判断,也就是对本实验所能说明问题、验证的概念或理论的简要总结。

实验一药理实验基本知识与技术1.实验动物的选择首先应根据实验目的选择动物,其次要考虑动物的来源、饲养及价格等方面条件。

选择实验动物的原则应选择对被试药物或被研究物质最敏感的动物作为实验对象,实验动物选择不当,则可导致实验得出不正确的甚至相反的结论。

(1)小白鼠(小鼠)医学实验中应用最广泛的动物。

特别适用于需要大量动物的药物筛选、半数致死量测定、药效评价等实验研究。

因其繁殖能力强,妊娠期仅为21天,因而也常用于避孕药的研究。

由于其器官易发实质性损害,常用于致畸、致癌药及抗癌药的研究。

(2) 大白鼠(大鼠)大鼠也是较常用的实验动物,常用作亚急性和慢性毒性实验。

大鼠的血压反应比家兔好,常用来直接描记血压,进行降压药的研究。

它的垂体–肾上腺系统功能发达,可作为应激反应和肾上腺、垂体及卵巢等内分泌实验。

大鼠无胆囊,因此用其做胆管插管收集胆汁,进行消化药的研究。

大鼠的踝关节对炎症反应敏感,也用于治疗关节炎的药物研究。

(3)青蛙和蟾蜍青蛙和蟾蜍为冷血动物又经济易得,其离体心脏对维持其正常功能的环境条件要求低,在人工营养液、室温及pH渗透压接近于它的血液等简单条件下,蛙心即能节律性搏动很久,因此常用于强心药物的实验;其腓肠肌和坐骨神经可用来观察药物对周围神经、横纹肌或神经肌肉接头的作用;其腹直肌还可用于检测胆碱能神经系统药物的作用。

(4)豚鼠豚鼠对组织胺等收缩支气管物质很敏感,常用于平喘药及抗组织胺药的研究,以及进行过敏反应及免疫方面的实验。

又因豚鼠对结核分支杆菌较敏感,也用于抗结核药物的实验研究。

(5)家兔家兔驯服、易得,且便于静脉注射和灌胃给药,因而广泛用于科研教学中。

常用于直接描记呼吸、血压的药效学实验及进行卵巢、胰岛等内分泌实验。

家兔心脏在离体情况下可搏动很久,是观察药物对哺乳动物心脏直接作用较合适的模型。

家兔体温变化敏感,常用于体温实验及热源检查。

(6)猫猫有较发达的神经系统和循环系统,常用于如去大脑僵直,姿势反射实验;观察刺激交感神经、瞬膜及虹膜的反应实验,阿托品解除毛果芸香碱作用等实验。

猫血压比较稳定,观察血压反应时猫优于兔,因此猫也用于心血管及镇咳药物实验。

(7)狗狗具有发达的血液循环和神经系统,以及基本与人相似的消化过程,因此是药理学研究中常用的动物之一。

如药物对心血管作用的实验,由于动物较大,可用于同时记录多项指标,如血压、心电、心音、呼吸及血流量等的实验。

也可用于条件反射、高血压等慢性实验,手术造胃瘘、肠瘘以观察药物对胃肠蠕动、分泌及消化过程的影响等实验。

不同种类动物对药物的反应是有差异的,不同药效反应在一定程度上可阐明药物作用机制。

因此,对一些药理作用尚不清楚的药物进行研究时,最好选用几种不同动物进行实验。

宜从小动物开始,然后在如狗等大动物身上进行反复验证。

图1-1 编号标记图2.实验设计原则(1)随机原则:按照机遇均等的原则进行分组。

其目的是使一切干扰因素造成的实验误差减少,而不受实验者主观因素或其他偏性误差的影响。

(2)对照原则:空白对照(指在不加任何处理的条件下进行观察对照);阴性对照也称假处理对照(给予生理盐水或不含药物的溶媒);阳性对照也称标准对照(指以已知经典药物在标准条件下与实验药进行对照)。

(3)重复原则:能在类似的条件下,把实验结果重复出来,才能算是可靠的实验,重复实验除增加可靠性外,也可以了解实验变异情况。

3.实验动物的编号 根据动物的种类、数量和观察时间长短等因素来选择适当的标记方法。

实验用动物小鼠,一般用量大,每笼共养个体数多,外表无显著特征可供区别,故需采用特殊的标记方法加以区别。

良好的标记方法应满足标号清晰、耐久、简便和实用的要求。

常用的方法有染色法、耳缘剪孔法、烙印法和号牌法,前者最常用。

常的化学染色剂有:①3%~5%的苦味酸溶液(黄色);②2%的硝酸银溶液(咖啡色);③0.5%的中性红溶液(红色)。

实验中应用最普遍的是苦味酸染色剂。

标记方法见(图1-1)和表(1-)所示。

此方法可标出1~999个编号,充分满足药理学教学与科研的需求。

表1-1 编号标记图示表4.实验动物的抓取与固定 在进行动物实验时,首先要限制动物的活动,使其保持安静状态,以便操作和准确记录动物的反应情况, 同时还要防止被动物咬伤,并保证动物不受伤害,这就需要掌握合理抓取、固定实验动物的方法。

(1)小鼠 小鼠性情比较温顺,但抓取 时动作也要轻缓。

通常是用右手抓住小鼠尾部, 将其放在鼠笼盖或其它粗糙表面上,在小鼠向图1-3兔的台式固定法前爬行时,迅速用左手拇指和食指抓住其双耳 及颈后部皮肤,将小鼠置于左手掌心中,再用无名指和小指将小鼠尾压在手掌上,即可将小鼠完全固定。

可进行腹腔注射、采腹腔液、测肛温、作阴道涂片等操作。

如(图1-2)所示。

(2)大鼠 大鼠的牙齿尖锐,在惊恐或激怒时易将操作者手指咬伤,故在抓取时要小心。

抓鼠时右手轻轻抓住大鼠尾巴向后拉,左手抓紧大鼠头、颈部皮肤,并将鼠固定在左手中,此时即可进行腹腔注射、灌胃等操作。

如要做尾静脉取血、注射等操作,可将鼠置于使用台上,用玻璃钟罩扣住或置于大鼠固定盒内,露出尾部,其他较精细的操作应在乙醚麻醉下进行。

(3)豚鼠 豚鼠胆小易惊,抓取时必须稳、准、迅速,先用手掌迅速扣住豚鼠背部,抓住豚鼠肩胛上方,以拇指和食指扣住颈部,其余手指握持躯干,即可轻轻提起、固定。

对于体重大的豚鼠,要用另一只手托住臂部。

(4)家兔 家兔比较驯服,但前爪较尖,应避免抓伤。

家兔的抓取方法一般是用一只手抓住兔的颈部将兔提起,然后用另一只手托其臀部。

不能采取单手抓提家兔双耳、腰部或四肢的方法,以免造成双耳、颈椎或双肾的损伤。

家兔固定方法可根据实验需要而定。

如作兔耳静脉取血、注射或观察兔耳血管变化,可采用盒式固定方法。

如要作测量血压、呼吸等实验或手术时,需将兔固定在手术固定台上,并将兔置于仰卧位(图1-3),其头部要固定。

5.实验动物的给药途径和方法 实验动物的给药途径和方法有很多种,可根据实验目的、动物种类和药物剂型、剂量确定。

(1)皮下注射法 皮下注射时用左手拇指和食指轻轻提起动物皮肤,右手持注射器将针头斜刺入皮下,刺穿皮肤后,平行再进入针头的2/3,若见针头能在皮下摆动则证明针头已到达给药位置,可推注药液。

皮下注射进针的部位,一般在小鼠腹部两侧,大鼠为背部或下腹部两侧,豚鼠在后大腿内侧或下腹部,家兔为背部或耳根部,狗、猫则常选用大腿外侧。

(2)肌肉注射法 肌肉注射一般选用肌肉发达、无大血管经过的部位。

注射时要将针头垂直快速刺入肌肉,回抽针芯,如无回血即可注射。

家兔、狗、猫等大动物多在臂部注射,每只每次射量不超过2ml ;大鼠和小鼠因体型小,肌肉少,很少使用肌肉注射,如必须肌注常在股部注射。

(3)腹腔注射法 大、小鼠的腹腔注射方法为:用左手固定动物,右手持注射器,在下腹部左侧或右侧沿小鼠纵轴与横轴成45°角刺入皮下,沿皮下向心方向推进,同时保持针头与腹平面和垂直面亦呈45°角穿过腹肌刺入腹腔,约刺入针头的2/3深度,此时有落空感,回抽无肠液、尿液或血液后,缓缓推入药液(图1-4)。

家兔、狗、猫等动物进行腹腔注射时应先行固定。

一般小鼠每只每次注射量不超过0.5cm ,大鼠不超过2ml 。

图1-4 小鼠的腹腔注射(4)静脉注射法大鼠和小鼠的静脉注射常采用尾静脉注射。

鼠尾静脉共有3根,左右两侧和背部正中各1根,两侧尾静脉比较容易固定,故常被采用。

先将鼠装入固定器内,露出尾巴,用45~50℃温水浸泡或用75%酒精擦拭使血管扩张,并可使表皮角质软化。

握住鼠尾两则,使静脉充盈,注射器针头尽量与鼠尾角度平行,以利于进针。

先缓缓推入少许药液,如针头已进入静脉推药时感觉无阻力;如阻力较大,并出现白色皮丘,则表示未刺入血管,应换部位重新注射。

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