ICU微生物标本采集PPT课件
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微生物标本的正确采集运送及注意事项PPT课件
管理流程不严密
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
缺乏完善的标本采集、运送和保存流程，以及有效的监督和质量控制 机制。
针对性解决方案提
01
加强人员培训
提高操作人员对微生物标本采集和运送规范的认识和技能水平。
02
完善设备设施
提供适当的采集工具、保存容器和运送设备，确保标本质量。
03
优化管理流程
建立完善的标本采集、运送和保存流程，加强监督和质量控制，确保标
标本标识不清
导致无法准确识别标本来源和 采集时间，影响后续检测和诊 断。
运送条件不符合要求
如温度控制不当、运送时间过 长等，可能导致标本中微生物
的死亡或增殖。
问题产生原因分析
人员操作不规范
缺乏专业培训或经验不足的操作人员可能导致标本采集和运送过程 中的问题。
设备设施不完善
缺乏适当的采集工具、保存容器和运送设备，可能导致标本质量下 降。
微生物标本的正确采 集运送及注意事项 PPT课件
REPORTING
目录
• 微生物标本采集概述 • 微生物标本采集方法 • 微生物标本运送与保存 • 微生物标本处理与检测 • 微生物标本采集运送中常见问题及解决方案 • 总结与展望
PART 01
微生物标本采集概述
REPORTING
采集目的与意义
01
采样方法
使用无菌铁锹或土壤钻进行土壤采 集，将土壤样品装入无菌袋中并标 记相关信息。
人体微生物采集
采样部位选择
根据研究目的选择合适的采样部位，如皮肤、口腔、肠道等。
采样方法
使用无菌棉签或拭子进行皮肤或口腔粘膜的擦拭；或使用无菌粪便收集器进行 肠道微生物的收集。注意避免使用消毒剂或抗生素等药物影响微生物的活性。
标本处理
《微生物标本采集》ppt课件
采集量
成人一般采集5-10ml，儿童根据年龄和体重适 当减少。
尿液标本的采集
01
采集时间
一般选择清晨第一
次尿，即晨尿。
02
采集方法
清洁尿道口后，留 取中段尿于无菌容
器中。
04
注意事项
女性患者应避开月
03
经期；留取尿液前
避免大量饮水。
采集量
一般留取10-20ml 。
粪便标本的采集
采集时间
选择患者腹泻时或怀疑有肠道感染时 进行采集。
微生物标本的安全管理要求
01
严格遵守生物安全相关规定，确保微生物标本 的安全处理和管理。
02
对具有潜在危险的微生物标本进行分类和管理， 采取必要的防护措施。
03
建立微生物标本的登记和追踪制度，确保标本来源 和去向的可追溯性。
04
对废弃的微生物标本进行安全处理，防止对环境造 成污染。
防止微生物标本污染的措施与方法
05
微生物标本的质量控制与安 全管理
微生物标本的质量控制措施
建立完善的微生物标本采集、运输、 保存和处理的操作规程，确保标本 质量。
建立标本质量监测和反馈机制，对 不合格标本进行及时处理和改进。
对采集人员进行专业培训，提高其 操作技能和质量意识。
定期对采集器具、试剂和耗材进行 质量检查和评估，确保其符合相关 标准。
选择合适的容器
根据采集标本的类型和后 续检测需求，选择合适的 容器，如无菌试管、培养 皿等。
准备试剂
根据检测需求，准备相应 的试剂，如培养基、抗凝 剂、保存液等。
检查容器与试剂
在使用前检查容器和试剂 是否完好无损、无污染， 并在有效期内。
告知患者采集标本的注意事项
微生物标本采集及处理医学PPT课件
ห้องสมุดไป่ตู้
18
但就目前来说，判断血培养污染的金标准并不 存在，比如凝固酶阴性葡萄球菌（CNS）既是最 常见的污染菌，也是现在常见的菌血症病原菌 之一，其临床意义的判 定仍是一个世界性难题， 需要临床医生和实验室人员相互沟通，综合分 析。血培养污染的鉴别主要依靠以下几个方面： 微生物鉴定、阳性检出时间、重复培养结果以 及临床特征等。
拒收不符合实验要求的标本，微生物学工作者 应准确、负责地向临床科室阐明和解释标本拒 收条款和正确采集方法。 临床医师不应要求微生物报告包罗万象，因为 提供不相干的信息可能导致不准确或不恰当的 治疗。 标本信息应准确、完整，以便于准确地进行临 床解释，包括详尽的采集部位和临床信息
7
实验室必须严格依照既定的标准操作手册并接 受法律监督。 实验室应建立技术规范，这种规范并不是狭义 地单纯为实验人员设立权限，而是建立更好的 相互交流与尊重，以及良好的协作关系。 实验室需要的标本多样，体液、组织及提取物 是外伤等微生物学常需采集的标本；而拭子一 般用于鼻、咽部和病毒性呼吸道感染标本的采 集。
保存。
采集另外一个血培养标本，以帮助阳性结果判 读。
16
血培养的运送
采集后血培养瓶应立即送往实验室（2小时内） 接种前后的血培养瓶不得冷藏或冷冻。 任何延误送入自动连续监测血培养仪的行为将 会延误或阻止细菌生长的检测； 血培养瓶保留在室温不得超过数小时；
17
血培养污染
污染导致的血培养假阳性是一个较为普遍的问 题，即使采用最好的血培养标本采集方法也很 难将污染率降至2%以下。血培养假阳性结果将 导致不必要的抗生素治 疗，延长住院时间，增 加患者负担和细菌耐药性的选择性压力。准确 辨别污染能极大减少相应的花费，并有利于降 低以后的污染率。
18
但就目前来说，判断血培养污染的金标准并不 存在，比如凝固酶阴性葡萄球菌（CNS）既是最 常见的污染菌，也是现在常见的菌血症病原菌 之一，其临床意义的判 定仍是一个世界性难题， 需要临床医生和实验室人员相互沟通，综合分 析。血培养污染的鉴别主要依靠以下几个方面： 微生物鉴定、阳性检出时间、重复培养结果以 及临床特征等。
拒收不符合实验要求的标本，微生物学工作者 应准确、负责地向临床科室阐明和解释标本拒 收条款和正确采集方法。 临床医师不应要求微生物报告包罗万象，因为 提供不相干的信息可能导致不准确或不恰当的 治疗。 标本信息应准确、完整，以便于准确地进行临 床解释，包括详尽的采集部位和临床信息
7
实验室必须严格依照既定的标准操作手册并接 受法律监督。 实验室应建立技术规范，这种规范并不是狭义 地单纯为实验人员设立权限，而是建立更好的 相互交流与尊重，以及良好的协作关系。 实验室需要的标本多样，体液、组织及提取物 是外伤等微生物学常需采集的标本；而拭子一 般用于鼻、咽部和病毒性呼吸道感染标本的采 集。
保存。
采集另外一个血培养标本，以帮助阳性结果判 读。
16
血培养的运送
采集后血培养瓶应立即送往实验室（2小时内） 接种前后的血培养瓶不得冷藏或冷冻。 任何延误送入自动连续监测血培养仪的行为将 会延误或阻止细菌生长的检测； 血培养瓶保留在室温不得超过数小时；
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血培养污染
污染导致的血培养假阳性是一个较为普遍的问 题，即使采用最好的血培养标本采集方法也很 难将污染率降至2%以下。血培养假阳性结果将 导致不必要的抗生素治 疗，延长住院时间，增 加患者负担和细菌耐药性的选择性压力。准确 辨别污染能极大减少相应的花费，并有利于降 低以后的污染率。
ICU微生物标本采集PPT课件
➢ 另外,由于绝大多数的泌尿系感染是由肠杆菌科细菌引起, 而此类细菌的硝酸盐还原实验为阳性,故可参考尿检查常规 中的硝酸盐还原实验来推断是否有细菌感染。
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24
（二）尿培养标本采集方法
标本采集应在使用抗生素之前，避免消毒剂污染标 本。
1．清洁中段尿 留取清晨清洁中段尿标本，先用 肥皂水仔细清洗会阴部，再用清水冲洗尿道口周围； 将前段尿排去，留取中段尿10ml左右于无菌容器内， 立即加盖送检，2h内接种。该方法简单、易行，是 最常用的尿标本收集方法，但是容易受到会阴部细 菌污染。
3.支气管镜采集法
–-经支气管镜直接吸引
–-支气管肺泡灌洗
–-防污染样本毛刷
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17
4、
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18
（三）注意事项
1. 痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。室温 下耽搁数小时，定植于口咽部的非致病菌过度生 长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出 率则明显降低。
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19
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26
（三）采集时间和标本运送
1.应选择在抗菌药物应用前或停用抗菌药物5天后采集尿液。
2.通常采集清晨第1次尿液送检，确保尿液在膀胱内停留4h 以上，使细菌有足够时间繁殖。嘱患者睡前少饮水以免尿 液稀释。
3.怀疑沙门菌感染时应在发病2周左右采集尿液培养。 4.对无症状的患者应连续采集3天晨尿送检。 5.怀疑结核分枝杆菌感染时，患者应停药1-2天后采集晨尿
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22
（一）尿培养标本送检指征
1. 有典型的尿路感染症状；
2. 有肉眼脓尿或血尿；
3. 尿常规检查白细胞或亚硝酸盐阳性；
4. 有不明原因的发热，无其他局部症状；
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24
（二）尿培养标本采集方法
标本采集应在使用抗生素之前，避免消毒剂污染标 本。
1．清洁中段尿 留取清晨清洁中段尿标本，先用 肥皂水仔细清洗会阴部，再用清水冲洗尿道口周围； 将前段尿排去，留取中段尿10ml左右于无菌容器内， 立即加盖送检，2h内接种。该方法简单、易行，是 最常用的尿标本收集方法，但是容易受到会阴部细 菌污染。
3.支气管镜采集法
–-经支气管镜直接吸引
–-支气管肺泡灌洗
–-防污染样本毛刷
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4、
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（三）注意事项
1. 痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。室温 下耽搁数小时，定植于口咽部的非致病菌过度生 长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出 率则明显降低。
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（三）采集时间和标本运送
1.应选择在抗菌药物应用前或停用抗菌药物5天后采集尿液。
2.通常采集清晨第1次尿液送检，确保尿液在膀胱内停留4h 以上，使细菌有足够时间繁殖。嘱患者睡前少饮水以免尿 液稀释。
3.怀疑沙门菌感染时应在发病2周左右采集尿液培养。 4.对无症状的患者应连续采集3天晨尿送检。 5.怀疑结核分枝杆菌感染时，患者应停药1-2天后采集晨尿
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22
（一）尿培养标本送检指征
1. 有典型的尿路感染症状；
2. 有肉眼脓尿或血尿；
3. 尿常规检查白细胞或亚硝酸盐阳性；
4. 有不明原因的发热，无其他局部症状；
《微生物标本采集》课件
通过咳嗽咳痰采集痰液样本，用于检测呼吸道感染 相关的微生物。
尿液标本采集
通过清洁尿道后采集中段尿液，用于检测泌尿系统 感染相关的微生物。
粪便标本采集
通过采集大便样本，用于检测消化道感染相关的微 生物。
常见微生物标本及其采集技巧
喉拭子
用于检测咽喉部的细菌和病毒感染。
脑脊液
用于检测中枢神经系统感染相关的病原体。
《微生物标本采集》PPT 课件
在这个PPT课件中，我们将介绍微生物标本采集的重要性、原则、采集方法， 以及常见标本的采集技巧和注意事项。同时，我们还会讨论标本的保存和运 送方法，并总结本次课程。
微生物标本的重要性
微生物标本是诊断和研究微生物性疾病的重要工具。通过采集合适的样品， 我们能获得有关病原微生物的信息，帮助医生诊断疾病并制定合理的治疗方 案。
新生儿臍带血
用于检测新生儿血液传播的微生物。
皮肤刮擦
用于检测真菌和寄生虫感染。
微生物标本采集的常见错误和注意事项
错误1
标本容器选择不当。
错误2
Hale Waihona Puke 标本采集不彻底。错误3标本运送条件不妥。
微生物标本的保存和运送
微生物标本的保存和运送是确保标本质量的重要环节。必须采取适当的方法和条件，确保标本在采集后能保持 活性和完整性，并送达实验室。
总结及参考资料
通过本次课程，我们了解了微生物标本采集的重要性、原则、方法，以及常 见错误和注意事项。希望这些知识对您在微生物实验工作中有所帮助。
采集微生物标本的原则
1 无菌技术
采集标本时必须使用无菌 技术，以避免污染标本和 产生假阳性结果。
2 合适标本
采集合适的标本种类，确 保能检测到目标微生物。
微生物标本检验的采集(共77张PPT)
【标本采集注意事项】
• ①采血培养应尽量在抗菌药物使用之前，在24h内采集2～3份血培养（一次静脉采血注 入到多个培养瓶中应视为单份血培养），每次2瓶。因为研究已证实，2～3份血培养足以 检测所有的菌血症和真菌血症。
• ②入院前2周内接受抗菌药物治疗的患者，连续3天，每天采集2份。
• ③对间歇性寒战或发热的患者，应在寒战或体温高峰到来之前0.5～1h采集血液，或于寒 战或发热后1h采集。因为发热时血液中可能没有细菌。
•
皮肤消毒程序
• 严格按以下三步法进行：
• ①75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上。
•
②用一根碘酊或聚维酮碘（碘伏）棉签消毒皮肤，1～2%碘酊作用30s或碘伏作用
60s，从穿刺点向外以1.5～3cm直径画圈进行消毒
• ③75％酒精脱碘。
•
对碘过敏的病人只能用75%酒精消毒，消毒60s，待穿刺部位酒精挥发干燥后穿刺
支气管刷直接取得标本。 • 3.胃内采痰法：无自觉症状的肺结核病人尤其婴幼儿不会咳嗽，
有时将痰误咽入胃中，可采集胃内容物做结核分支杆菌培养。
• 4.管穿刺法：主要用于厌氧菌培养 • * 小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部，小儿受到
刺激咳嗽时，可喷出肺部或气管分泌物粘在拭子上。
【标本采集注意事项】
【标本的送检地点】 • 检验科微生物室，非正常上班时间送检验
科急诊化验室。
* 标本运送过程中必须保证其安全，防止溢 出，避免细菌污染。
上呼吸道标本的微生物检验
一、检验项目 • 上呼吸道标本的细菌培养、真菌培养、真
菌涂片、结核菌涂片。 二、标本采集
【标本采集前的注意事项】
• 应在抗生素应用前或停药一周后采集标本 ，如不能停用抗生素，应于下次抗生素应 用前采集。
ICU微生物标本采集演稿PPT课件
采集方法不规范
采集过程中操作不规范，导致标本受到污染 或破坏。
送检不及时
标本采集后未能及时送检，导致标本变质或 失效。
问题产生的原因及解决方案
原因
医护人员对采集时机和方法不够 了解或重视。
解决方案
加强培训和教育，提高医护人员对 标本采集的重视和规范操作意识。
原因
采集过程中的操作不够规范和标准。
问题产生的原因及解决方案
在采集过程中，要避免 样本间的交叉污染，确
保样本的纯度。
记录相关信息
详细记录采集时间、采 集部位、患者情况等信 息，为后续分析提供依
据。
采集后的处理和保存
及时送检
采集后应尽快将样本送至实验 室进行检测，确保样本的新鲜
度和活性。
低温保存
如不能及时送检，应将样本保 存在低温环境中，防止微生物 死亡或污染。
送标本等步骤。
采集注意事项
采集过程中需遵循无菌操作原则， 避免交叉感染；采集的标本应具 有代表性，能够真实反映感染情 况；采集后应及时送检，避免标
本变质或污染。
微生物标本采集的注意事项
01
02
03
04
采集时间
采集时间应在抗生素使用前或 停用一段时间后进行，以避免 抗生素对检测结果的影响。
采集部位
采集部位应选择感染部位或病 变组织，避免在正常组织或非
THANKS FOR WATCHING
感谢您的观看
解决方案
制定详细的采集操作规程， 加强操作技能的培训和实 践。
原因
标识系统不够完善或标识 不规范。
解决方案
建立完善的标识系统，统 一标识格式和信息内容， 确保标识清晰、准确。
问题产生的原因及解决方案
微生物标本采集PPT
四、标本运输 ① 标本采集后需尽快送到实验室； ② 不要冷藏标本。
四、标本采集—气道吸取标本
一、临床采样指征 有气管插管或气管切开等人工气道患者，无法自行咳
痰，可通过吸痰管从气道吸取标本。
二、标本采集 通过气管内插管将一次性无菌吸痰管推进呼吸道直至
遇到阻力后开始抽吸，留取标本在吸痰杯内。
四、标本采集—气道吸取标本
二、生物标本运送的基本原则
三、微生物实验室对标本的拒收标准
1. 标本采集至实验室接收过程间隔过长，或无标本采集时 间，或保存的温度不当。
2. 标本运送条件不正确：如厌氧培养标本却在有氧条件下 送检。
3. 容器不规范：如容器有裂缝或被打破导致标本泄露、容 器非无菌等。
4. 未贴标签或贴错标签：标本与检验目的不符合，如痰培 养送检尿标本；患者信息与标本不符，如女性患者送检 前列腺标本。
四、标本采集—血培养
二、标本采集： 1.菌血症： ① 采血时机：寒战开始时，发热高峰前30-60min内；使用抗菌药物治疗前
采集，如已用药，则在下一次用药之前采集最佳。 ② 采血部位：通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀
疑有导管相关的血流感染，应避免从留置静脉或动脉导管取血，因为导 管常伴有定植菌存在。 ③ 采血工具：真空血培养瓶，如培养瓶的储存温度为2-8℃，应先复温 30min左右，平衡至室温再采血。同一部位双瓶采集时不建议更换针头。 ④ 采血次数、血培养瓶选择：对于成人患者，应同时分别在两个部位采集 血标本；每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶。 ⑤ 采血量：影响阳性率的重要因素，过少明显降低阳性率，5-10ml/瓶。 ⑥ 皮肤、血培养瓶消毒：穿刺前皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥。 ⑦ 避免采血管内空气注入厌氧血培养瓶。
四、标本采集—气道吸取标本
一、临床采样指征 有气管插管或气管切开等人工气道患者，无法自行咳
痰，可通过吸痰管从气道吸取标本。
二、标本采集 通过气管内插管将一次性无菌吸痰管推进呼吸道直至
遇到阻力后开始抽吸，留取标本在吸痰杯内。
四、标本采集—气道吸取标本
二、生物标本运送的基本原则
三、微生物实验室对标本的拒收标准
1. 标本采集至实验室接收过程间隔过长，或无标本采集时 间，或保存的温度不当。
2. 标本运送条件不正确：如厌氧培养标本却在有氧条件下 送检。
3. 容器不规范：如容器有裂缝或被打破导致标本泄露、容 器非无菌等。
4. 未贴标签或贴错标签：标本与检验目的不符合，如痰培 养送检尿标本；患者信息与标本不符，如女性患者送检 前列腺标本。
四、标本采集—血培养
二、标本采集： 1.菌血症： ① 采血时机：寒战开始时，发热高峰前30-60min内；使用抗菌药物治疗前
采集，如已用药，则在下一次用药之前采集最佳。 ② 采血部位：通常为肘静脉，切忌在静滴抗菌药物的静脉处采血。除非怀
疑有导管相关的血流感染，应避免从留置静脉或动脉导管取血，因为导 管常伴有定植菌存在。 ③ 采血工具：真空血培养瓶，如培养瓶的储存温度为2-8℃，应先复温 30min左右，平衡至室温再采血。同一部位双瓶采集时不建议更换针头。 ④ 采血次数、血培养瓶选择：对于成人患者，应同时分别在两个部位采集 血标本；每个部位应需氧和厌氧培养各一瓶。 ⑤ 采血量：影响阳性率的重要因素，过少明显降低阳性率，5-10ml/瓶。 ⑥ 皮肤、血培养瓶消毒：穿刺前皮肤和培养瓶口进行消毒并充分干燥。 ⑦ 避免采血管内空气注入厌氧血培养瓶。
完整微生物标本的正确采集运送ppt课件
05 微生物标本采集的常见问 题及解决方案
采集方法不当导致的问题
采集量不足
采集的微生物标本量过 少，可能导致检测结果
不准确或无法检测。
采集部位不准确
采集的部位与感染病灶 不符，导致检测结果不
准确。
采集时机不当
在感染病灶未形成或已 消退时采集，可能导致
检测结果为阴性。
采集工具污染
采集工具未经过严格消毒 或污染，可能导致交叉感 染或检测结果不准确。
防止污染
在保存和运输过程中要防 止标本受到污染，确保其 无菌性。
03 微生物标本的运送
运送工具的选择
密封容器
冷藏设备
选择密封性好的容器，以防止微生物 泄漏和交叉污染。
如果需要冷藏，应使用适当的冷藏设 备，以确保微生物活性。
防漏容器
使用防漏容器，以避免在运送过程中 发生泄漏。
运送过程中的温度控制
完整微生物标本的正确采集运送 ppt课件
目录
• 引言 • 微生物标本采集的方法和步骤 • 微生物标本的运送 • 微生物标本的质量保证 • 微生物标本采集的常见问题及解决方案 • 结论
01 引言
Байду номын сангаас 目的和背景
微生物标本采集是诊断和治疗感染性 疾病的关键步骤，正确的采集和运送 方法对于确保实验室检测结果的准确 性和可靠性至关重要。
运送过程中出现的问题
运送时间过长
微生物标本在运送过程中停留时 间过长，可能导致微生物死亡或
繁殖，影响检测结果。
温度控制不当
微生物标本需要在一定的温度条件 下保存和运送，温度过高或过低都 可能影响检测结果。
保护措施不当
微生物标本在运送过程中未得到适 当的保护，可能导致标本受到污染 或损坏。
2024版临床微生物学标本采集处理操作规范PPT课件
按照医疗废弃物处理规范，对实验过程中 产生的废弃物进行分类、包装和处理，防 止交叉感染和环境污染。
THANKS
感谢观看
为您生成完整且连贯的PPT课件内容。通常，一个完 整的PPT课件会包含多个章节，每个章节下会有详细 的内容介绍、图表、图片等。如果您需要更详细的 内容，请提供完整的大纲或具体的要求，我会尽力 帮助您。同时，以上内容仅为示例，实际制作时应 根据具体需求和实际情况进行调整。
02
引言
临床微生物学的重要性
临床微生物学是研究微生物与疾 病关系的科学，对感染性疾病的 诊断、治疗和预防具有重要意义。
微生物检测可为临床提供准确的 病原体诊断依据，指导医生合理 使用抗生素，减少耐药菌株的产
生。
临床微生物学的发展推动了医学 科学的进步，为人类的健康事业
作出了巨大贡献。
标本采集处理的意义
标本采集是微生物检测的第一 步，直接关系到检测结果的准 确性和可靠性。
标识明确
在运输容器外标明患者信息、标本类 型、数量及采集时间等。
运输条件
根据标本类型选择合适的运输条件， 如温度、光照等，确保标本在运输过 程中保持稳定。
安全防护
运输过程中需采取必要的安全防护措 施，防止标本泄漏或破损。
06
质量控制与安全防护
质量控制
标本采集前准备 确保采集工具无菌、无污染，遵守无菌
使用干净、无菌的容器收集尿液，避免污染。
清洁中段尿是常用的采集方法。女性应先清 洁外阴部，男性应翻转包皮清洁尿道口，然 后排尿弃去前段尿，留取中段尿。
采集时间
采集量
根据需要检测的项目，选择不同时间段的尿 液进行采集。如晨尿、随机尿、餐后尿等。
留取足够量的尿液标本，以满足检测需求。
THANKS
感谢观看
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02
引言
临床微生物学的重要性
临床微生物学是研究微生物与疾 病关系的科学，对感染性疾病的 诊断、治疗和预防具有重要意义。
微生物检测可为临床提供准确的 病原体诊断依据，指导医生合理 使用抗生素，减少耐药菌株的产
生。
临床微生物学的发展推动了医学 科学的进步，为人类的健康事业
作出了巨大贡献。
标本采集处理的意义
标本采集是微生物检测的第一 步，直接关系到检测结果的准 确性和可靠性。
标识明确
在运输容器外标明患者信息、标本类 型、数量及采集时间等。
运输条件
根据标本类型选择合适的运输条件， 如温度、光照等，确保标本在运输过 程中保持稳定。
安全防护
运输过程中需采取必要的安全防护措 施，防止标本泄漏或破损。
06
质量控制与安全防护
质量控制
标本采集前准备 确保采集工具无菌、无污染，遵守无菌
使用干净、无菌的容器收集尿液，避免污染。
清洁中段尿是常用的采集方法。女性应先清 洁外阴部，男性应翻转包皮清洁尿道口，然 后排尿弃去前段尿，留取中段尿。
采集时间
采集量
根据需要检测的项目，选择不同时间段的尿 液进行采集。如晨尿、随机尿、餐后尿等。
留取足够量的尿液标本，以满足检测需求。
培训护士临床微生物标本采集规范ppt课件
血培养检测采血指征
临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者 1. 发热（≥38℃）或低温（≤36℃） 2. 寒战 3. 白细胞增多（>10×109/L、“核左移”、未成熟白 细胞增多） 4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L） 5. 血小板减少 6．皮肤粘膜出血 7．昏迷，休克 8．多器官衰竭 9. CRP升高
擦除过多的分泌物和排出液，用无菌棉拭子 采取阴道口内4cm内侧壁或后穹窿处分泌物
宫颈分泌物
先清除阴道和宫颈局部分泌物，然后轻压宫颈使 宫颈内分泌物流出，用女性拭子插入宫颈管1-2cm转 动并停留10～30s采取分泌物，置入灭菌试管内送检
注意事项
生殖器是开放性器官，标本采集过程中应严格遵
循无菌操作规程以减少杂菌污染
血培养检测消毒程序
皮肤消毒程序
1.75%酒精擦拭静脉穿刺部位待30s以上
2.1%-2%碘酊作用30秒或10%碘伏作用60秒，从穿刺 点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上
3.75%酒精脱碘，待酒精挥发干燥后采血
培养瓶瓶塞消毒
用75%酒精消毒培养瓶塞，充分待干待干60秒
注意：塑料帽下面的橡皮塞并非是无菌的，必须进
抽吸液体
耳
内耳：对复杂的、反复的或慢性顽固的中耳炎做鼓 膜穿刺术，接触耳鼓室先用肥皂水清洗耳道再用 注射器收集液体；对破裂的鼓室，借助耳科诊视
器，用软杆拭子收集液体
外耳：用湿拭子将耳道的任何碎屑或痂皮拭去；在 外耳道用力旋转拭子取样
鼻或鼻咽分泌物
直接用拭子涂抹病灶部位，切勿接触周围粘膜或皮 肤，标本立即送检
9.眼、耳、鼻、咽拭子
标本采集规范
标本采集
眼
结膜：分别用（无菌盐水预湿）拭子绕每一个结
微生物标本采集-PPT
快速、准确、效能
三、痰标本采集方法
➢ 自然咳痰 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入 无菌容器中，尽快送检。否则有的细菌 （如肺炎球菌、流感嗜血杆菌）在外界可 能死亡。痰量极少者可用雾化吸入加温至 45℃的10％NaCl水溶液，使痰液易于排出。 要求采到肺深部的痰液，不要唾液。
快速、准确、效能
一、标本采集和处理的原则
➢‧可能致病源，收集到越多越好，保持 其活性
➢‧非无菌部位，避免污染:消毒 ➢‧减少增生:低温保存及使用输送培养
基 ➢无菌部位‧避免污染:确实消毒
快速、准确、效能
发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查 最好是病程早期、急性期或症状典型时，而且必 须在使用抗生素或其他抗菌药物之前采集 标本采集时应严格无菌操作，采集的标本应无外源 性污染，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染 要收集足够量的标本 标本采集后应立即送至微生物室
➢对于婴幼儿，抽血量不应超过患者总 血量的1%。
➢血标本量不足：血液体积少于血培养 瓶标签上推荐血量的80%
快速、准确、效能
➢对于疑似菌血症者，建议采集2-3套血 培养
➢有研究表明一套血培养阳性率为65%， 2套80%，3套96%
快速、准确、效能
为什么要送检厌氧瓶？
➢正视厌氧瓶的功能！ ➢ 增加采血量 ➢ 增加兼性厌氧菌的分离机会 ➢ 增加厌氧菌的分离机会
制生长 ➢ 在当时所有培养方法不能培养的微生物(局
限性)
快速、准确、效能
临床医生要合理用好两种数据
➢1. 本地区、本单位病原流行病学资 料，指导经验用药。（微生物室、院 感办、临床科室）
➢2.药敏试验报告，纠正经验用药。 重视病原学检查,尽可能在应用抗
三、痰标本采集方法
➢ 自然咳痰 以晨痰为佳。用清水反复漱口， 用力咳出呼吸道深部的痰，痰液直接吐入 无菌容器中，尽快送检。否则有的细菌 （如肺炎球菌、流感嗜血杆菌）在外界可 能死亡。痰量极少者可用雾化吸入加温至 45℃的10％NaCl水溶液，使痰液易于排出。 要求采到肺深部的痰液，不要唾液。
快速、准确、效能
一、标本采集和处理的原则
➢‧可能致病源，收集到越多越好，保持 其活性
➢‧非无菌部位，避免污染:消毒 ➢‧减少增生:低温保存及使用输送培养
基 ➢无菌部位‧避免污染:确实消毒
快速、准确、效能
发现感染应及时采集微生物标本作病原学检查 最好是病程早期、急性期或症状典型时，而且必 须在使用抗生素或其他抗菌药物之前采集 标本采集时应严格无菌操作，采集的标本应无外源 性污染，减少或避免机体正常菌群及其它杂菌污染 要收集足够量的标本 标本采集后应立即送至微生物室
➢对于婴幼儿，抽血量不应超过患者总 血量的1%。
➢血标本量不足：血液体积少于血培养 瓶标签上推荐血量的80%
快速、准确、效能
➢对于疑似菌血症者，建议采集2-3套血 培养
➢有研究表明一套血培养阳性率为65%， 2套80%，3套96%
快速、准确、效能
为什么要送检厌氧瓶？
➢正视厌氧瓶的功能！ ➢ 增加采血量 ➢ 增加兼性厌氧菌的分离机会 ➢ 增加厌氧菌的分离机会
制生长 ➢ 在当时所有培养方法不能培养的微生物(局
限性)
快速、准确、效能
临床医生要合理用好两种数据
➢1. 本地区、本单位病原流行病学资 料，指导经验用药。（微生物室、院 感办、临床科室）
➢2.药敏试验报告，纠正经验用药。 重视病原学检查,尽可能在应用抗
微生物标本采集技术ppt课件
血培养标本采集
1.手清洁：无明显污染使用速干乙醇消毒液洗手. 2.血培养瓶口消毒：75%乙醇消毒一遍，待干 60 s . 3.静脉穿刺消毒：推荐用三步法 (1).用75％乙醇清毒采集部位 (2).用2%碘酒从穿刺点向外画圈消毒，至消毒 区域直径达3cm以上，涂擦穿刺皮肤2遍，待干。 （3）75%酒精脱碘：用75%酒精由内向外方 向涂抹去碘酒液 ,待酒精挥发干燥后采血 。
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尿标本正确采集---留置导尿
– 消毒导尿管外部(接头上端近会阴部）, 按无 菌操作方法用注射器穿刺导尿管吸取尿液 10ml，操作时注意防止混入消毒剂（推荐用 三步清毒法： 75％乙醇 ----2%碘酒---75%酒精脱碘待干）. – 注意不能从收集袋中采集尿液。
14பைடு நூலகம்
血培养标本 采集与运送
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采血量
成人采血量是10 ml -20 ml /套 婴儿，3－5ml/套
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操作注意事项
（1）从静脉采血，不建议从动脉采血， （2）用注射器无菌穿刺取血后,勿换针头 (如果行第二次穿刺,应换针头) 直接注入 消毒后的血培养瓶。 （3）血抽到培养瓶后,轻轻颠倒混匀以防 血液凝固。立即送检,切勿冷藏！ （4）多次采血应在不同部位的血管穿刺以 排除皮肤菌丛污染的可能。除非无法作
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对可疑中心静脉导管相关血流感染（CRBSI )
保留导管 外周静脉血1份，中心静脉导管血1份, 不用弃去导管起始部分的血液. 拔除导管: 2个外周静脉血、导管尖端5cm.
(在进行中心静脉导管血和 周围静脉血培养时应记录报阳时间)
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导管尖段标本的采集
血管内导管尖段标本的采集、送检程序 ①用75%酒精清洁导管周围皮肤； ②无菌操作移动导管，剪取尖端末端5cm， 直接置入无菌试管内或直接置入血平板 内； ③立即送检（不超过15min），防止干燥。
标本采集培训-微生物室ppt课件
(3) 接触皮肤的医疗用品，细菌菌落总数≤200cfu/g或100cm2； 不得检出致病菌
Part 3 耐药监测现状
前十二位细菌分布
降低检测成本 提高检测质量
合理利用资源 以减少医疗费用
卫生医疗 机构的竞争↑
金黄色葡萄球菌（818株） 抗生素耐药性（R%）统计表
MRSA检出率58% MRCNS检出率81.5%
合理利用资源 以减少医疗费用
降低检测成本 提高检测质量
卫生医疗 机构的竞争↑
肠球菌 抗生素耐药性（R%）统计表
降低检测成本 提高检测质量
HLAR检出率66.7% VRE检出率3.0% 合理利用资源 以减少医疗费用
卫生医疗 机构的竞争↑
大肠埃希菌 抗生素耐药性（R%）统计表
降低检测成本 提高检测质量
糜烂、溃疡等。继发损害由原发损害演变而来，有萎缩或斑痕等，患者 可出现疼痛或瘙痒症状。
3、男/女生殖系统异常表现时。
生殖道标本
尿培养标本 Urine Culture
尿液采集关键环节
1、使用抗菌素前 2、清洁中段尿、导尿导管尿、耻骨穿刺 采集膀胱内尿液 3、晨起第一次尿液为佳 4、尿袋内尿液不能用作培养 5、立即送检：4℃冷藏保存不超过8小时
消毒准备
采血量
血培养瓶口消毒：70%酒精 皮肤消毒（由内向外）
Ⅰ、以采血点为中心，70%酒精涂抹 Ⅱ、碘伏消毒，等待约2-3分钟（碘酊 约30秒）。让碘液干燥以发挥杀菌效果 Ⅲ、70%酒精去除碘酒液，以避免碘酒 液污染血培养液
成年患者：每套不少于10ml，每 瓶不少于5ml
婴幼儿患者：每瓶不少于2ml。 当采血量不能满足推荐的采血量
医疗用品微生物监测
1、采样时间（有效期内） 2、采样方法（5ml0.9%盐水）
Part 3 耐药监测现状
前十二位细菌分布
降低检测成本 提高检测质量
合理利用资源 以减少医疗费用
卫生医疗 机构的竞争↑
金黄色葡萄球菌（818株） 抗生素耐药性（R%）统计表
MRSA检出率58% MRCNS检出率81.5%
合理利用资源 以减少医疗费用
降低检测成本 提高检测质量
卫生医疗 机构的竞争↑
肠球菌 抗生素耐药性（R%）统计表
降低检测成本 提高检测质量
HLAR检出率66.7% VRE检出率3.0% 合理利用资源 以减少医疗费用
卫生医疗 机构的竞争↑
大肠埃希菌 抗生素耐药性（R%）统计表
降低检测成本 提高检测质量
糜烂、溃疡等。继发损害由原发损害演变而来，有萎缩或斑痕等，患者 可出现疼痛或瘙痒症状。
3、男/女生殖系统异常表现时。
生殖道标本
尿培养标本 Urine Culture
尿液采集关键环节
1、使用抗菌素前 2、清洁中段尿、导尿导管尿、耻骨穿刺 采集膀胱内尿液 3、晨起第一次尿液为佳 4、尿袋内尿液不能用作培养 5、立即送检：4℃冷藏保存不超过8小时
消毒准备
采血量
血培养瓶口消毒：70%酒精 皮肤消毒（由内向外）
Ⅰ、以采血点为中心，70%酒精涂抹 Ⅱ、碘伏消毒，等待约2-3分钟（碘酊 约30秒）。让碘液干燥以发挥杀菌效果 Ⅲ、70%酒精去除碘酒液，以避免碘酒 液污染血培养液
成年患者：每套不少于10ml，每 瓶不少于5ml
婴幼儿患者：每瓶不少于2ml。 当采血量不能满足推荐的采血量
医疗用品微生物监测
1、采样时间（有效期内） 2、采样方法（5ml0.9%盐水）
临床微生物标本采集幻灯片
自然咳痰法
以晨痰为佳。采集标本前应用清水漱口或用牙刷〔不用牙 膏〕清洁口腔和牙齿，有假牙者应取下假牙〔为减少口腔 正常菌群污染标本〕，用力咳出呼吸道深部的痰〔非后鼻 局部泌物、非唾液〕，痰液直接吐入无菌容器中，尽快送 检。否那么有的细菌〔如肺炎链球菌、流感嗜血杆菌〕在 外界可能死亡。不能及时送检的标本，室温保存≤2h。
下呼吸道〔痰培养〕标本
采集的临床指征
咳嗽咳痰是下呼吸道感染最常见的病症。 咯血包括泡沫血痰、鲜血和痰中带血等 呼吸困难，呼吸急促或哮喘，常伴有胸痛 发热伴WBC增高尤其是中性粒细胞或CRP 明显增高 胸部影像学检查提示感染可能
标本采集
痰（咳出的）
痰（诱导的）
支气管标本
1. 在护士指导下取 标本
好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及病 患照顾质量，降低医疗本钱。
临床标本的分类
带菌体液 痰液 咽拭子 尿液 粪便
其他类别
无菌体液 血液 脑脊液
关节腔积液 胸腹水、胆汁
其他类别
血培养
采集的临床指征
一般患者出现以下一种体征时可作为采血的重要指征：
发热〔≥38℃〕或〔低温≤36℃〕 寒战 白细胞增多〔特别有“核左移〞未成熟的或杆状核白细胞〕 皮肤黏膜出血、昏迷、多器官衰竭、血压降低、CRP升高及呼吸快 特殊患者〔如血液病〕出现粒细胞减少〔成熟的多形核白细胞＜ 1000×109/L〕、血小板减少等，或同时具备上述几种体征的临床 可疑菌血症应采集血培养 新生儿菌血症，进展血培养同时应增加尿液和脑脊液培养 对入院危重感染患者在未进展系统性抗菌药物治疗之前，应及时采 集血培养
脑脊液标本的运送
采集后应正确盖好，防止泄漏或容器外部留有残留物。常 温立即送检，实验室收到标本后应立即接种。脑脊液标本 送检的理想时间为 15 分钟内，半小时送检是可承受的， 如果送检时间超过 1 小时，那么会影响结果。 注：某些细菌具有自溶酶，放置时间过长易自溶死亡，因 此，标本应立即送检，并且保温〔制止放冰箱，因脑膜炎 双球菌遇冷死亡〕
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血培养检测采血指征
1、发热（T》38°）或低温（《36°） 2、寒战
3、白细胞增多（>10×109/L，特别有“核左移”未成熟的或杆状 核白细胞增多）
4. 粒细胞减少（成熟的多核白细胞<1×109/L）
5. 血小板减少
6．皮肤粘膜出血
7．昏迷，休克
8．多器官衰竭
9. CRP升高
在评估可疑新生儿败血症时，除发热或低烧外，很少培养出 细菌，应该补充尿液和脑脊液培养。
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3
标本规范化采集的重要性
正确采集、处理与运送细菌培养的标本直接关 系到致病菌培养的正确性与阳性率的高低，是 临床细菌检验成功的关键。
标本质量的好坏直接影响诊断结果的正误，不 当的标本可导致假阴性、假阳性结果的出现， 因此标本采集与处理的规范化是准确、及时地 向临床提供重要的临床感染信息的基础。
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（二）采集方法
1、自然咳痰法 以晨痰为佳。用清水反复漱口，用力咳出 呼吸道深部的痰，痰液直接吐入无菌容器中，尽快送检 。否则有的细菌（如肺炎链球菌、流感嗜血杆菌）在外 界可能死亡。不能及时送检的标本，室温保存≤2h。要 求采到肺深部的痰液，不要唾液。
2.小儿取痰法 用弯压舌板向后压舌，用棉拭子深入咽部， 小儿经压舌刺激咳嗽时，可喷出肺部和气管分泌物，粘 在棉拭子上送检。幼儿还可用手指轻叩胸骨柄上方，以 诱发咳痰。
说明：有研究表明，95%-97%的有临床价值的 细菌会在3-4天内被自动血培养系统检出，目 前仍推荐5天的培养周期。特殊情况可适当延 长培养时间。如临床怀疑布鲁菌感染，可延 长培养至28天等。
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血培养假阳性的危害
增加患者抗生素用量，破坏其微生态环境 延长了住院天数 延误病情诊断 增加经济负担
ICU微生物标本采集
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1
"正确的微生物学检验始自正确 的标本采取。临床医师、护师及 检验技师都必须通晓其要领。"
著名的临床微生物检验专著Manual of Microbiology 的主编Patrick Murray
Clinical
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标本采集和运送是细菌培 养成功的最重要的关键。
3.支气管镜采集法
–-经支气管镜直接吸引
–-支气管肺泡灌洗
–-防污染样本毛刷
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4、
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（三）注意事项
1. 痰标本不能及时送检者，可暂存4℃冰箱。室温 下耽搁数小时，定植于口咽部的非致病菌过度生 长而肺炎链球菌、葡萄球菌和流感嗜血杆菌检出 率则明显降低。
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说明：不建议采集
（1）动脉血，因其诊断价值没有比静脉血更大；
（2）静脉留置导管，因其常伴有高污染率。如果必 须从留置导管内采血，也应同时从外周静脉采集另 外一个血培养标本，以帮助阳性结果的判读。
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3.采血量 要求： 成年患者推荐的采血量为5ml，亚急
性心内膜炎患者采血量为10-15ml. 婴幼儿患者推荐的采血量为每瓶不少于2ml。 血培养瓶-抗凝剂试管-干燥试管
对入院危重感染患者未进行系统性抗菌药物治疗之前，应及时 采集血培养。
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Байду номын сангаас
血培养检测消毒程序
1、培养瓶消毒程序：用消毒液消毒培养瓶橡 皮塞，待干燥后使用。 2、皮肤消毒程序：用消毒液从穿刺点向外画 圈消毒，至消毒区域直径达5cm以上，待消毒 液挥发干燥后（常需30s以上）穿刺采血。
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好的微生物检验标本可提升实验室工作效率及 病患照顾质量，降低医疗成本。
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如何提高细菌阳性检出率
标本采集时机 标本采集方法 标本的质与量 标本的运送与保存 镜检筛选合格标本 高质量、多种分离培养基 培养环境
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血培养标本采集
血培养检测采血指征 血培养检测消毒程序 血培养标本采集方法 血培养标本运送 血培养的培养周期
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要求： 1、严格无菌操作，不允许在皮肤消毒后
用手按压静脉，除非带有无菌手套。 2、不推荐采血和接种血培养瓶更换注射
器针头，采用真空采血装置能降低污染 率。 3、说明：无论采用何种采血方法，血培 养可接受的污染率通常是≤3%。
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血培养标本采集
1.采集时间
要求：对怀疑菌血症、真菌血症的患者，在考虑使用抗 菌药物之前，应立即采集血培养标本。必须同时或间隔 短时间内采集2套（每套包括1只普通血培养瓶及1只厌 氧血培养瓶）以上血培养标本。
说明：研究表明细菌入血后约1小时，寒战和发烧开始出 现2小时内，此时为采集血培养标本进行病原菌培养的 最佳时机。在不同的时间点采血只有在以下情况才有必 要：疑似感染性心内膜炎或其他血管内（如导管相关性 感染）感染患者的连续性菌血症。
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2.采集部位
要求：从两侧上肢静脉采血，“双瓶双侧”采血 培养。至少做到“双侧双瓶”。必要时从下肢静脉 采血做第三套血培养。
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4、血培养标本运送 要求：（1）采集后的血培养瓶应在1小时之
内送往实验室。
（2）血培养瓶在接种前和接种后均不 得冷藏和冷冻。
说明：血培养瓶冷藏或冷冻会将一些微生物 杀灭，将装着液体的容器冰冻也会使容器破 裂。
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5、血培养的培养周期
要求：自动化血培养仪的标准血培养周期为5 天。
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（一）采集指征
凡是发热、咳嗽和咳痰，痰呈脓性、粘稠或血性， 并伴有胸痛、气急，肺部闻及湿罗音，外周白细胞 总数及中性粒细胞比例明显增高，X线检查提示肺部 有炎性浸润或胸腔积液，甚至出现感染性休克和呼 吸衰竭等患者，应采集痰液或下呼吸道标本。
对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS、肺炭疽、肺鼠 疫等）患者采集检验标本时必须注意生物安全防护。
3.由于口腔和咽部存在大量的革兰阳性和革兰阴性 厌氧细菌，而且缺乏可靠的方法区分它们究竟是 致病菌还是定植菌，因此不主张对咳痰标本进行 厌氧菌培养。
4. 约有1/4-1/2肺部感染患者可能发生菌血症，应 同时做血培养。
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要求
在抗生素应用前采集痰标本; 标本采集后1-2h内必须立即进行实验室处理； 对于细菌性肺炎，痰标本送检每天1次，连续2～3
天；不建议24h内多次采集，除非痰液外观性状改 变； 怀疑分枝杆菌感染者，应连续收集3天清晨痰液送 检。