实验一 植物组织水势的测定
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告实验名称：植物组织水势的测定实验目的：了解各种植物组织中的水势变化规律，学习测定水势的实验操作方法。
实验原理：植物体内水势是维持植物生命活动的重要因素之一，水势可以影响水分的吸收和输送。
本实验采用“压延法”来测定不同植物组织（根、茎、叶）的水势大小。
实验步骤：1. 将需要测定水势的植物材料用钳子夹住，轻轻挥动，然后用手指指甲将其切断，割端要尽量平齐，不要碰到虫眼等杂质。
2. 将切口快速放入水中，利用吸水作用使水分上升，排除空气。
3. 将切口快速从水中取出，然后将其放到压延仪内，尽可能保持植物细胞的原有形态。
4. 向下轻压压延仪的拉杆，停留一段时间几秒钟，等到细胞的状况稳定后，读取示数，记录下此时的长度和标尺读数。
5. 再稍微压紧，停2~3秒左右，再读取示数，再记录下此时的长度和标尺读数。
6. 将杆恢复到原位，并将植物组织切口处擦干净。
7. 分别测定不同植物组织的水势。
根据水势的特点，以水分势值为y轴，切口位移长度为x轴，绘制出水势变化的曲线。
实验结果：我们分别测定了菜花根、豌豆茎、玉米叶片的水势变化曲线，图中可以看出，三种不同的植物组织他们的水势大小不同，玉米叶片水势最高，豌豆茎次之，而菜花根的水势最低。
这说明植物的吸收生长需要水分的支持，不同器官的水势不同。
实验结论：本实验内容重点在于掌握测水势的方法和水势的变化规律，同时还有机会深入了解植物的生长过程。
测定出不同植物组织的水势差异信息，说明不同的植物器官在吸水输液中扮演着不同的角色。
实验有效地理论与实践相结合，深化了我们对植物体内水分代谢的认识。
植物生理学 实验报告--实验1 植物组织水势的测定
实验一植物组织水势的测定（小液流法）1、实验目的了解植物组织中水分状况的一种表示方法及用于测定的方法及其优缺点。
2、实验原理植物组织的水分状况可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势（Ψcell）小于某一溶液的水势（Ψout），则组织吸水，反之组织失水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
液体交换法测定水势的方法有很多种，本实验练习用小液流法测定植物组织的水势，并初步观察其变化情况。
小液流法测定水势的原理判据△Ψ=Ψout-Ψcell组织的水分得失外液的密度变化△Ψ>0吸水升高△Ψ<0失水降低△Ψ=0平衡不变使用器材用滴管测定外液的密度变化适用的材料叶片或碎的组织3、仪器和试剂试管，试管架，移液管，滴管，打孔机或单面刀片，镊子，解剖针，棉花，吸水纸；0.05-0.4mol/L CaCl2溶液，甲烯蓝；土豆4、实验步骤①将16支试管清洗干净，分为两组（实验组和对照组）按编号顺序倒置于试管架上，控净水分。
②配制一系列不同浓度的氯化钙溶液（0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4mol/L），分别注入八支实验组试管中，各10ml左右（体积约为试管的2/3处）。
再将实验组各试管溶液的2/3倒入对应编号的对照组试管中。
两组试管均加盖棉塞。
③将土豆用单面刀片切成0.5cm见方的小块。
将植物组织混匀，分成八份，放入实验组各试管中。
放置20min以上，期间多次摇动实验组试管，以促进水分平衡。
④用解剖针沾取甲烯蓝粉末给实验组各试管染色，摇匀，用滴管由低浓度向高难度顺序吸取实验组的染色液滴移入对照组对应浓度试管内，观察液滴升降变化并记录。
⑤水势计算Ψcell=Ψout=-icRT式中：为植物细胞水势；为外界溶液渗透势；i为解离系数，氯化钙为2.6；c为溶液浓度，单位mol/L；R为摩尔气体常数，0.0083 (L·MPa)/(mol·K)；T为热力学温度，单位为K，即273+t，t为试验温度。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一。
水势是指植物细胞内水分与外界水分之间的压力差，是植物水分平衡的重要指标。
水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
植物组织水势的测定方法有很多种，其中比较常用的是压膜法和压力室法。
压膜法是将植物组织放在一块半透膜上，然后在膜的一侧施加一定的压力，使水分从组织中流出，从而测定组织的水势。
压力室法则是将植物组织放在一个密闭的压力室中，通过改变室内的压力来测定组织的水势。
在进行植物组织水势的测定时，需要注意以下几点。
首先，要选择新鲜的、健康的植物组织进行测定，以保证测定结果的准确性。
其次，要在测定前将植物组织放在水中浸泡一段时间，使其达到水分平衡状态。
最后，在进行测定时要注意操作的精细和准确，以避免误差的产生。
植物组织水势的测定可以帮助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
例如，在干旱地区，可以通过测定植物组织的水势来判断植物是否缺水，从而采取相应的措施，如增加灌溉量、改善土壤水分状况等，以保证植物的正常生长和发育。
植物组织水势的测定是研究植物水分平衡的重要方法之一，可以帮
助我们了解植物的水分状况，从而更好地进行植物生长调控和管理。
在进行测定时，需要注意操作的精细和准确，以保证测定结果的准确性。
《植物生理学实验》实验01 植物组织水势的测定
思考题
试述小液流法测定植物组织水势的原理。 小液流法测定植物组织水势时，为什么操作时，应强调所用试管、毛细管
应保持干燥？打取小圆片并投入到试管中时动作应迅速？加入甲烯蓝时不 能太多？
实验用品
材料：植物叶片 仪器：试管架；试管;打孔器;毛细管；镊子;青霉素瓶 试剂：蔗糖；甲烯
操作步骤
1. 配制不同浓度的蔗糖溶液
试管
1
2
3
4
5
6
7
8
1mol·L-1蔗糖溶液（ml） 140 160
蒸馏水（ml） 浓度
180 160 140 120 100
80
1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：
• 植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS • 植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS • 若两者相等，则水分交换保持动态平衡，外液浓度保持不变； ψ植物＝ψS
2、同一种物质浓度不同时其比重不一样，浓度大的比重大，把高浓度的溶液 一小液滴放到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
毛细管放置稳定
挤出小液滴
取出毛细管 观察液滴升降
液滴 植物材料
ψw >ψS ψw <ψS ψw =ψS
溶液浓度变小 溶液浓度变大 溶液浓度不变 静止不动
6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水分势相当的浓度，根 据原理公式计算出组织的水势。
溶液渗透势的计算： ψS=﹣iCRT 式中 ψS—溶液的渗透势，以MPa为单位；R＝0.008314MPa·L·mol﹣1·K﹣1； T—绝对温度，即273+t℃；C—溶液的摩尔浓度，以mol·kg－1 为单位； i－溶液的等渗系数 ，蔗糖=1。
植物生理学实验报告植物组织水势测定
植物生理学实验报告植物组织水势测定实验目的：本实验旨在通过测量植物组织的水势，了解植物在不同生理状态下的水分状况和水分调节能力。
实验原理：植物组织的水势是一个重要的生理指标，用来描述植物的水分状态。
水势的测定是通过测量植物组织与纯水之间的压力差来实现的。
当植物组织的水势为负值时，说明组织在吸水，而正值则表明组织有排水的趋势。
实验步骤：1.准备材料：取一盆植物，将其叶片切下并放入离心管中；准备一些试管和纯水。
2.测量植物组织的水势：将离心管放入测水袋中，并将测水袋连至一根透气玻璃管，然后将试管插入水槽中以保持温度恒定。
通过气压计记录水势值。
3.测量植物组织在不同条件下的水势：可以在不同的实验条件下测量植物组织的水势，如在光照、温度变化或干旱条件等。
4.数据记录与分析：记录测得的水势数值，并进行统计和比较，以检验不同条件对植物组织水势的影响。
实验结果与讨论：通过对植物组织水势的测定，我们可以得到一些有意义的结果。
首先，测量不同植物组织在水势上的差异。
由于植物不同部位的组织结构和功能不同，其水分状况也会有差异。
比如，叶片的水势可能会更高，因为它们是光合作用和气体交换的主要结构。
其次，测定不同环境条件下植物组织的水势变化。
例如，在干旱条件下，植物会通过减少蒸腾作用和调节根部的水分吸收来保持水势平衡。
因此，测量植物组织在干旱条件下的水势，可以帮助我们了解植物对干旱的应对机制。
此外，还可以通过对不同温度和光照条件下植物组织水势的测定，来研究植物的生长和适应性。
不同的温度和光照条件会影响植物的光合作用和蒸腾作用，从而改变植物的水分平衡。
综上所述，植物组织水势的测定是一个重要的植物生理学实验，在研究植物的水分状况和水分调节能力方面具有重要意义。
通过进行多方面的测定和分析，我们可以更好地了解植物的生理机制和适应性。
实验一水势的测定
实验一植物组织水势的测定12级生科2班组长：孙文文（刘琼后春静冯娟娟）一．实验原理：当植物的组织或细胞分别放在一系列浓度递增的蔗糖溶液中时，植物的组织和蔗糖溶液各具一定的水势，水势总是由水势高的地方流向水势低的地方，因而蔗糖溶液的水势发生变化，用毛细吸管吸取水势变化后的蔗糖溶液（染色），滴入其对应的蔗糖溶液中，观察液滴的流动方向，若向上流动，说明组织的渗透势高于周围的蔗糖溶液的渗透势，因而排水，糖液变稀，比重变小，若向下流动，说明组织的渗透势低于周围的蔗糖溶液的渗透势，因而向内吸水，糖液变浓，比重变大；若糖液停留不动，说明植物组织的水势。
ψw=-icRT向内吸水和向外排水的量相等，则植物组织的水势和周围糖液的水势处于动态平衡，此时植物组织的水势等于周围这糖溶液的水势因溶液的浓度是已知的可根据公式计算出其渗透势，即为植物组织二，试验方法和步骤：①取干燥洁净的试管9个作为甲组，分别加入0.1∽0.9mol/l的蔗糖溶液约4ml,另取9个干燥洁净试管作为乙组，分别依次加入6ml的0.1∽0.9mol/l的蔗糖溶液，上述试管各加标签标明浓度。
②去待测叶片数片，用打孔器打小圆片约100片，放置培养皿中混匀，在装4ml蔗糖溶液的试管中各加10个圆片，使叶片完全浸入到溶液中，加塞放置大约30分钟，期间应经常摇动试管。
③打开塞子，用大头针向各试管中加入少许甲稀蓝粉末，充分摇匀，使溶液变蓝。
④用弯头毛细吸管吸取甲组试管中的蓝色溶液，将弯头滴管插入对应浓度的的乙组的溶液浓度中部，缓慢挤出少许，观察蓝色液流的动向，若上升，则植物组织失水，表明植物组织的水势高于蔗糖溶液的水势；若下降，则植物组织吸水，表明植物组织的水势低于蔗糖溶液的水势；若糖液静止不动，则说明植物组织的水势等于周围蔗糖溶液的水势，此浓度即为与叶片组织细胞水势相等的糖液浓度。
⑤结果计算：将求得的与细胞水势相等的蔗糖溶液浓度值带入下列公式，计算出该溶液的渗透势，即为组织细胞的水势。
小液流法测定植物组织水势
【实验材料】
土豆
【实验试剂与器材】
实验器材： ⑴试管20支；⑵移液管； ⑶毛细滴管；⑷解剖刀；⑸试管架。
实验试剂： ⑴甲烯兰；⑵1M的蔗糖 溶液。
【实验步骤】
1.
配制一系列浓度不同的蔗糖溶液，分别是：0.5, 0.4, 0.3, 0.25, 0.20, 0.15, 0.10, 0.05 M
10-15块片，加塞并经常摇动，30min后，向试验组的每支试管中加一滴甲烯兰溶液，
摇动试管，使溶液均匀着色。
4.Biblioteka 用毛细滴管（或小量程移液管）吸取浸有材料的兰色溶液，然后插入对照组相同编
号的试管，在液体的中部轻轻放出一滴兰色试验溶液，仔细观察液滴移动的方向，
并记录之。
溶液浓度/M 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.4 0.5
II 露点法测定植物叶片水势
【实验原理】
将叶片或组织汁液密闭在体积很小的样品室内，经一 定时间后，样品室内的空气和植物样品将达到温度和 水势的平衡状态。此时，气体的水势（以蒸气压表示） 与叶片的水势（或组织汁液的渗透势）相等。因此， 只要测出样品室内空气的蒸气压，便可得知植物组织 的水势（或汁液的渗透势）。由于空气的蒸气压与其 露点温度具有严格的定量关系，本仪器便通过测定样 品室内空气的露点温度而得知其蒸气压。
【思考与作业】
植物组织切块的大小和数量对组织水 势的测定结果是否有影响？
加入甲烯兰溶液会影响实验结果吗？ 为什么？
该实验具体操作中应该注意的事项主 要有哪些？
各10ml，共8管。注入试管中，各管都加上塞子并编号，按编号顺序排成一列，放
在试管架上，作为对照组。
2.
另用8支试管，与前一组试管对应编号，作为试验组，然后由对照组各试管中分别
实验一 植物组织水势的测定
实验一植物组织水势的测定一：目的测定植物水势，了解植物水势测定的方法二：原理根据渗透作用的原理，用小液滴法测得蔗糖溶液与植物组织中之间的等渗浓度，根据公式ΨW（细胞水势）=Ψs=-CRT求得溶液的水势。
三：材料与试验器具植物材料：女贞叶片实验器具：细滴管、试管及指形管、烧杯、镊子、剪刀、移液管、标签纸试剂：1mol／L蔗糖溶液、甲烯蓝溶液四：操作步骤1、用移液管吸取1M蔗糖溶液取0.5ml、1ml、2ml、3ml分别放入10ml刻度管中，加蒸馏水至10ml，盖上盖子上下倒转混匀，配成0.05M、0.1M、0.2M、0.3M的糖液。
2、用移液管从浓度各试管中吸取2ml注入对应的指形管中，各管均加塞，并贴上标签。
3、将女贞叶片叠在一起，沿中脉两边用钻孔器打取10片小圆片，分别放入小指形管内，放置20min（期间摇动两至三次）后，加入甲烯蓝1滴摇匀。
4、用长吸管吸取着色溶液放入原相应的蔗糖溶液中，慢慢放出一滴蓝色溶液，在白色纸片上观察小液滴升降情况，并做记录。
五：作业2、按下列公式计算组织的水势ΨW（细胞水势）=Ψs=-CRT式中Ψπ为细胞渗透势，以MPa (兆帕)为单位。
R为气体常数，为=0.008314 MPa.L/(mol.K)T为绝对温度（单位K），即为273+t，其中t为实验温度（℃）。
i为解离系数，蔗糖为1。
C为等渗溶液的浓度，单位为mol/L。
六：思考题1、用小液流法测定植物组织水势时，为什么应强调所用试管，毛吸管应保持干燥。
小液流法的使用与溶液浓度有关，试管上的水珠会影响溶液的浓度，造成实验误差。
2、打取小圆片并投入试管中时动作应迅速，加入甲烯蓝不能太多？防止叶内水分蒸发影响实验数据。
加入甲烯蓝过多会影响溶液比重。
七：注意事项1、取液时应从低浓度到高浓度依次取液2、释放蓝色溶液时要缓慢，防止过急挤压冲力影响液滴移动3、观察液滴情况时放在白色背景下。
植物生理学实验指导
植物生理学实验指导实验一植物组织水势的测定（小液流法）一、实验目的：理解水势、渗透势的概念，掌握植物水势的测定方法。
二、实验原理：当植物组织浸在已知浓度的外液中时，如果组织水势高于外液水势，则组织失水，外液浓度降低，比重变小；如果组织水势低于外液水势，则组织吸水，外液浓度升高，比重变大；如果组织水势和外液水势相等，则外液的浓度和比重都不变，此溶液的渗透势即等于组织的水势。
三、仪器、试剂、材料：青霉素小瓶（带盖）、弯头注射器、打孔器、镊子、培养皿、滴管、甲烯蓝粉末。
0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol/L蔗糖溶液。
植物叶片。
四、实验步骤：1、用滴管取不同浓度（0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol/L）蔗糖溶液各4ml，分别注入6个青霉素小瓶中（甲组）；再另取上面6种溶液各4ml，注入另6个小瓶中（乙组），对应编号标记。
2、用打孔器从植物叶片上取下相同大小的圆叶片，分别放入甲组小瓶中（每瓶10片），加盖，轻轻摇动以使圆叶片浸泡于溶液中。
3、30分钟后，向甲组小瓶加微量甲烯蓝粉末，轻轻摇动使溶液均匀。
4、用注射器从甲组小瓶中吸取蓝色溶液，插入相同编号的乙组小瓶溶液中部，轻轻挤出一小滴，慢慢抽出注射器，观察蓝色液滴升降情况并填入下表。
五、结果计算：植物组织水势按下式计算：Ψw = - iCRT式中：Ψw —水势，i —解离系数（蔗糖为1 ）C —等渗溶液浓度（mol/L），R —气体常数（0.0083L .MPa /moL.K）T —绝对温度( K=273 + t ℃)附：蔗糖分子量：342.29实验二叶绿体色素的提取、分离和性质的观察一、实验目的：掌握叶绿体色素的提取和分离方法，加深对其性质的理解。
二、实验原理：叶绿体色素包括叶绿素a、叶绿素b、胡萝卜素和叶黄素，这四种色素均不溶于水而溶于有机溶剂，故常用丙酮或乙醇等提取。
叶绿体色素可采用纸层析法进行分离，当溶剂不断地从层析滤纸上流过时，由于混合物各成分在两相（即流动相和固定相）间具有不同的分配系数，它们的移动速度不同，因而使样品混合物分离。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定植物组织水势的测定是通过测量植物组织中的水分势来进行的。
水势是指水分在植物组织内的自由能，它是影响水向植物体内运动的重要驱动力。
植物通过根系吸收土壤中的水分，并将其输送到其他组织的细胞中。
测定植物组织水势可以帮助我们更好地理解植物水分运输的机理。
测定植物组织水势的方法有多种，下面将介绍几种常用的方法：1. 切片法测定：这是一种常用的方法，它可以直接观察到组织中的水势变化。
首先，将植物的组织切成薄片，然后将切片放置在一块干燥的滤纸上。
滤纸会吸收切片中的水分，导致切片的水势下降。
通过观察切片的变化，可以推断出组织中的水势大小。
2. 压蔗液法测定：这是一种基于液体能量传导的方法。
将植物组织放置在一定浓度的糖液中，组织中的水分会向糖液中移动。
根据糖液中的含水量、组织中的水势以及温度等参数，可以计算出组织的水势大小。
3. 压溶液法测定：这是一种通过测量细胞内液体的渗透压来计算水势的方法。
将植物组织放置在一定浓度的溶液中，等待一段时间后，根据细胞内液体的渗透压和环境中液体的渗透压，可以计算出组织的水势大小。
4. 马尼托巴法测定：这是一种利用测定导电率和浓度来计算水势的方法。
通过测量植物组织中的电导率和离子浓度，可以推算出组织的水势大小。
需要注意的是，以上方法只是测定植物组织水势的一些常用方法，实际操作中还可以根据具体情况进行调整和改进。
此外，由于植物组织中水分的运动是一个复杂的过程，测量结果可能会受到一些因素的影响。
因此，在进行测定时，需要进行精确的实验设计和数据分析，以确保结果的准确性和可靠性。
总结起来，测定植物组织水势是一个重要的研究方向，通过对植物组织水势的测量，可以更好地理解植物水分运输及其机理。
在实验中，可以利用切片法、压蔗液法、压溶液法和马尼托巴法等方法进行测定。
然而，在实际操作中需要注意实验设计和数据处理，以确保测定结果的准确性和可靠性。
实验一 植物组织水势的测定
实验一植物组织水势的测定（小液流法）姓名：李丹学号：110103106 时间：2012.9.21一．实验目的：用小液流法（落滴法）测定植物组织的水势，由水势可大致了解植物体内的水分状况。
二．实验原理：水势表示水势的化学式，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物体细胞之间，组织之间以及植物体和环境之间的水移移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在不同的外界溶液中时由于组织与外界溶液存在水势差，因而植物组织与溶液之间便产生水分交换，因此改变了溶液的浓度，而溶液的比重也随之改变。
若将此溶液放入原来相同的溶液中时，便产生液流上升或下降的趋势，从而找出等渗浓度，求得组织水势的大小。
三．材料与设备：植物材料：马褂木实验器具：细滴管一只；试管及指形管各5只（带塞）；100ml 烧杯一只；镊子，剪刀各一把；2ml,5ml移液管各一支；标签纸试剂：1mol/L蔗糖溶液；甲稀蓝溶液四．操作步骤：1.用短滴管吸取1mol/L蔗糖也配制一系列浓度递增的蔗糖溶液（0.05, 0.1，0.2，0.3，0.4mol/L）各10ml,加入干燥刻度试管内，各管都加上塞子，充分混合，并编号。
用移液管从浓度各试管中吸出2ml注入第二指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
2.用钻孔器将叶片（取相同部位）钻取同大小的叶片。
每支指形管中放入15片，加塞，放置20~30分钟（期间摇动2~3次），到时间后，加入2~3滴甲稀蓝溶液于指形管中，使其溶液呈蓝色，以区别原来的颜色。
3.用细长滴管从指形管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入相同编号（原相同浓度）试管的中部，缓慢从细长滴管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，在无色透明背景上观察小液滴移动的方向。
如果有色液滴向上移动，说明细胞液中水分外流，试验液比重比原来小；如果有色液向下移动，则说明细胞从溶液中吸收了水分，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动，向外扩散则说明两者的浓度相等或接近，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
实验一 阿贝折射仪测定植物的水势
实验一阿贝折射仪测定植物的水势一、实验目的1.掌握植物细胞水势的概念及计算公式；2.了解小液流法测定植物组织水势的方法；3.学会使用阿贝折射仪。
二、实验原理植物组织和外界溶液接触时，若组织水势<溶液渗透势，水分进入植物细胞，溶液浓度增高；若组织水势>溶液渗透势，水分进入溶液，使其浓度降低；若二者水势相等，组织既不吸水也不失水，溶液浓度不变。
阿贝折射仪可以通过溶液折光率测出溶液的浓度值，代入水势计算公式后可求出溶液的水势值，进而通过分析比较，溶液水势前后变化最小的就是最贴近植物组织原本水势的。
水势计算公式：Ψw =-i RTC式中：Ψw为植物组织水势，单位为bar（1.013bar=101kPa）；R为摩尔气体常数（0.083×105L*Pa/mol*K）；T为热力学温度（K）；i为解离常数，蔗糖为1；C为溶液的摩尔浓度（mol/L）。
三、实验材料、仪器、试剂小麦，阿贝折射仪，系列浓度蔗糖溶液。
四、实验步骤1.练习使用阿贝折射仪；2.读取-4、-6、-8、-10、-12bar蔗糖溶液的折射率；3.将小麦叶片剪成0.5*0.5cm的小片，取叶位相同的50片均置5个小试管，顺序滴加梯度蔗糖溶液各20滴，至液面盖住叶片。
放置20min，期间不断振摇；4.读取浸过小麦叶的-4、-6、-8、-10、-12bar蔗糖溶液的折射率。
五、实验结果编号 1 2 3 4 5水势/(bar) -4 -6 -8 -10 -12折射率前 1.3435 1.3475 1.3484 1.3516 1.3549折射率后 1.3401 1.3479 1.3485 1.3516 1.3540表1.蔗糖溶液浸润组织折射率变化编号 1 2 3 4 5C1/(%mol/L) 7.09 7.75 10.26 12.48 14.50C2/(%mol/L) 9.72 10.00 10.02 12.40 13.80ΔC/(%mol/L) 2.63 2.25 -0.24 -0.08 -0.7细胞变化吸水吸水失水失水失水表2.蔗糖溶液浸润组织浓度变化(%mol/L)由上图可知，小麦叶片细胞的水势介于-6bar和-8bar之间，因为此次试验为验证性粗测实验，故得出粗略的结果为-7bar。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
一、实验原理
植物组织水势的测定是指在化学反应体系中，利用植物组织自主有形成电位差的能力，来检测植物组织中的一种物质的含量。
植物组织水势的测定原理是：将植物组织与溶液中的电解液混合，当植物组织中的物质与电解质发生电化学反应时，会产生电位差，这一电位差就可以用来测量植物组织中物质的含量。
二、实验材料
1、植物组织：取适当数量的植物组织，去除多余水分，石膏伤及部位，研磨后可用于实验。
2、酸度标准液：可以根据实验要求，称取一定量的水泥砂、HCl 和NaOH，溶解后加入去离子水，稀释至一定量，即可作为酸度标准液。
3、电解质溶液：可以根据实验要求，取一定的NaCl和KCl，溶解后，加入去离子水，稀释至一定量，即可作为电解质溶液。
4、电位仪：将电位仪接在实验管中，便可记录出电位变化。
三、实验步骤
1、将植物组织研磨成细末，取0.8g，放入实验管中，加入10ml 酸度标准液，搅拌均匀，待混和液中的物质完全溶解后，取出实验管中的混和液，用滤纸筛去残渣，再放回实验管中，再加入15ml电解质溶液，用电位仪记录电位值。
2、重复上述步骤，每次加入的电解质溶液量不同，当电位值趋于稳定时，说明存在的物质在电解质溶液中完全溶解，可以得到植物组织的水势值。
试验一植物组织水势的测定小液流法
实验一植物组织水势的测定（小液流法）一、原理当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
溶液渗透势的计算：Ψ s = - iCRT式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以MPa为单位。
R ——气体常数，为0.008314MPa·L/（mol·K）。
T ——绝对温度，即273+ t℃。
C ——溶液的质量摩尔浓度，以mol/kg为单位。
i ——为解离系数，CaCl2为2.6。
二、实验目的了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和优缺点。
三、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片或洋葱鳞茎。
（二）试剂1、甲烯蓝粉末。
2、CaCl2溶液：包括0.10、0.15、0.20、0.25、0.30、0.35、0.40、0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。
（三）仪器设备大试管8支，小试管8支，青霉素小瓶8支，移液管（5ml），毛细吸管8支，培养皿，打孔器，剪刀l把，镊子1把，解剖针1支。
四、实验步骤1、编号贴标签取干燥洁净的大试管8支，小试管8支，青霉素小瓶8支，毛细吸管8支，编号贴标签，按序号排好。
2、打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约60片，放在培养皿中，混合均匀。
用镊子分别把5-8个小圆片放到盛有4 ml不同质量摩尔浓度CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置30 min，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。
3、染色到预定时间后，用解剖针尖蘸取微量甲烯蓝粉末，加入各青霉素小瓶中，并摇动，使溶液染色均匀。
4、测定把试管中的不同浓度的系列标准液分别倒入相同编号的小试管中，用毛细吸管吸取相同编号青霉素小瓶内的有色溶液少许，插入相同编号的小试管溶液中部，轻轻挤出有色溶液一小滴，小心取出毛细管（勿搅动有色液滴），观察有色液滴的升降情况，并记录于表中。
实验一 植物组织水势的测定
3、将滤纸上的叶绿体色素全部洗入有刻度的试管中。直至滤纸和残渣中无绿色为止。最后用乙醇定容至10ml，摇匀。
4、把叶绿体色素取液倒入光径1cm的比色杯内，以95%乙醇为空白，
如果有色液滴向上移动，说明细胞液中水分外流，试验液比重比原来小；如果有色液向下移动，则说明细胞从溶液中吸收了水分，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动，向外扩散则说明两者的浓度相等或接近，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度，若找不到该浓度，取在下降上升转变时量浓度的均值。
溶液浓度小，溶液浓度大，故植物细胞故植物细胞
故植物细胞从蔗糖溶液从蔗糖溶液
从实验液中失水，使蔗糖中吸水，使蔗中吸水，使蔗中吸水，使蔗
吸水，使蔗糖溶液浓度变糖溶液浓度糖溶液浓度
溶液浓度变小，比重变小变大，比重变变大，比重变变大，比重变
大，比重变大大
注：
打孔的叶片中部分含有叶脉，可能会影响实验结果。我们的实验加入指形管的蔗糖溶液是2mol,而不是1mol,不知道是否会影响实验。实验中所用的试管和指形管都不是干燥的，可能影响了实验结果。
五、实验记录：
用表格记录实验结果，并解释之。
实验三xx含量的测定
一、实验目的：
学习测定叶绿素总量，叶绿素a以及吸收光谱的知识。
二、实验原理：
根据朗伯-比尔定律，某有色溶液的吸光度A与其中溶质浓度C和液层厚度L成正比，A=ɑCL比例常数。当溶液浓度以百分浓度为单位，液层厚度为1cm时，ɑ为该物质的吸光系数。各种有色物质溶液在不同波长下的吸光系数可通过测定已知浓度的蠢物孩子在不同波长下的吸光度而求得。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定小液流法一、实验目的了解织物组织水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法及优缺点。
二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．三、实验器材及试剂试管、毛细滴管、烧杯、移液管、刀片、打孔器、镊子、甲烯蓝、蔗糖溶液(1mol/L)四、实验步骤1. 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4、0.45、0.5mol/l 各10ml，注入9支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。
2. 另取9支试管，编好号，按顺序放在试管架上，作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。
3. 用打孔器在马铃薯上打孔，然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加1０片马铃薯小块，放置３０分钟，在这段时间内摇动数次，到时间后，向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许，并振荡，此时溶液变成蓝色。
4. 用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动。
则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
植物生理学实验
泰山学院生物与酿酒工程学院植物生理学课程实验
淀粉染色观察：取幼芽长至3~5cm的萌发小麦种子，将其 胚乳汁液，涂在载玻片上，加一滴水盖上盖玻片，显微 镜观察淀粉粒形态，加1滴碘液染色，观察色情况；
刮取未萌发小麦胚乳淀粉，进行相同实验操作，并做 比较观察
泰山学院生物与酿酒工程学院植物生理学课程实验
[实验原理] 叶绿素对可见光谱吸收，叶绿素a最大吸收峰在663nm，
叶绿素b最大吸收峰在645nm，吸收曲线彼此又有重叠。根 据Lambert-Beer定律，最大吸收峰不同的两组分混合液， 它们的浓度C（mg/L）与光密度（OD）有如下关系：
Ca=12.7OD663-2.69OD645—（1） Cb=22.9OD645-4.68OD663—（2） CT=Ca+Cb=8.02OD663+20.21OD645—（3）
植物材料马铃薯
泰山学院生物与酿酒工程学院植物生理学课程实验
[操作步骤]
1、粗酶液的提取 称取植物材料0.5g，加20mmol/L KH2PO4 5mL，于研钵中研磨成匀浆，以4000r/min离 心10min，收集上清液保存在冷处，所得残渣再用 20mmol/L KH2PO45mL溶液提取一次，合并2次上清液。
泰山学院生物与酿酒工程学院植物生理学课程实验
叶绿体植物进行光合作用的器官,在制备的叶绿体悬浮溶 液中加入电子受体2，6-二氯靛酚（DCIP）后，光照时叶绿 体对水进行光解，并放氧气，同时电子受体DCIP被还原，溶 液颜色从蓝色变为无色。
[仪器与试剂] 1.仪器 分光光度计，天平，研钵，剪刀，移液管 2.试剂 80%丙酮，碳酸钙，2，6-二氯靛酚 3.材料 新鲜菠菜叶片
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实验一植物组织水势的测定（小液流法）
1、实验目的
了解植物组织中水分状况的一种表示方法及用于测定的方法及其优缺点。
2、实验原理
植物组织的水分状况可用水势来表示。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体与环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
将植物组织放在已知水势的一系列溶液中，如果植物组织的水势（Ψcell）小于某一溶液的水势（Ψout），则组织吸水，反之组织失水。
若两者相等，水分交换保持动态平衡。
组织的吸水或失水会使溶液的浓度、密度、电导率以及组织本身的体积与质量发生变化。
根据这些参数的变化情况可确定与植物组织等水势的溶液。
液体交换法测定水势的方法有很多种，本实验练习用小液流法测定植物组织的水势，并初步观察其变化情况。
小液流法测定水势的原理
判据
△Ψ=Ψout-Ψcell
组织的
水分得失
外液的密度变化
△Ψ>0吸水升高
△Ψ<0失水降低
△Ψ=0平衡不变
使用器材用滴管测定外液的密度变化
适用的材料叶片或碎的组织
3、仪器和试剂
试管，试管架，移液管，滴管，打孔机或单面刀片，镊子，解剖针，棉花，吸水纸；
0.05-0.4mol/L CaCl2溶液，甲烯蓝；
土豆
4、实验步骤
①将16支试管清洗干净，分为两组（实验组和对照组）按编号顺序倒置于试管架上，控净水分。
②配制一系列不同浓度的氯化钙溶液（0.05、0.1、0.15、0.2、0.25、0.3、0.35、0.4mol/L），分别注入八支实验组试管中，各10ml左右（体积约为试管的2/3处）。
再将实验组各试管溶液的2/3倒入对应编号的对照组试管中。
两组试管均加盖棉塞。
③将土豆用单面刀片切成0.5cm见方的小块。
将植物组织混匀，分成八份，放入实验组各试管中。
放置20min以上，期间多次摇动实验组试管，以促进水分平衡。
④用解剖针沾取甲烯蓝粉末给实验组各试管染色，摇匀，用滴管由低浓度向高难度顺序
吸取实验组的染色液滴移入对照组对应浓度试管内，观察液滴升降变化并记录。
⑤水势计算
Ψcell=Ψout=-icRT
式中：为植物细胞水势；为外界溶液渗透势；i为解离系数，氯化钙为2.6；c为溶液浓度，单位mol/L；R为摩尔气体常数，0.0083 (L·MPa)/(mol·K)；T为热力学温度，单位为K，即273+t，t为试验温度。
5、数据记录
外液浓度
0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.35 0.4 （mol/L）
升降情况
注：↑↓表示升降情况，移动不明显的以—表示。
6、注意事项
①甲、乙组溶液顺序标注清晰，避免混乱；
②两组试管均须加棉塞，以隔绝空气中的水分；
③方法一：叶片打孔时应避开叶脉及破损处，切口边缘整齐无缺损；方法二：土豆切块均匀，不宜过碎；
④在平衡期间多次摇动试管，以加速水分平衡；
⑤只给甲组各试管中的溶液染色，甲烯蓝染色深浅适宜，染色后摇匀，并立即取液观察；
⑥由甲组各试管顺序吸取液滴，滴入乙组对应试管的液层中部，液滴须圆实，滴后观察液滴移动方向3秒以上再记录现象。
7、问题
土豆块/叶圆片的多少是否影响计算结果？为什么？
不影响。
水势测定结果仅取决于有色液滴的升降情况，而该现象仅取决于土豆块/叶圆片与外液的水势差异。
土豆块/叶圆片多少仅能影响现象的明显与否。