His-Tag蛋白纯化步骤

变性条件下从大肠杆菌中纯化多聚组氨酸标签蛋白（主要以包涵体的形式表达）的样品制备
1、用1X PBS重悬细胞沉淀（约每毫升沉淀加5ml 1 MBS）,并按上述方法进行超声破菌。

2、12000 rpm离心10 min收集包涵体。

若有必要，用1 >PBS洗包涵体几次。

3、用Binding/Wash Buffer （约每毫升沉淀加5ml 1 XPBS）溶解包涵体，并在室温下孵育30〜60分钟。

若使沉淀充分溶解，有必要进行机械或超声均质。

4、12000rpm离心30min,取上清至一干净管中。

His 标签蛋白的重力纯化流程
1ml柱子的总体积为10ml，只需加入介质。

如果样品体积大于柱子体积，可重复利用，注意不要超过树脂的结合能力。

1、平衡柱子的工作温度。

应在室温或4C下进行纯化。

2、取出底帽，倒出多余的液体，直立固定好柱子，让柱子顶部朝上。

3、用2 倍树脂体积的Binding/Wash Buffer 平衡柱子，以0.5〜1 ml/min 的流速过柱。

4、从柱子上部加入经Binding/Wash Buffer 处理的大肠杆菌裂解物或蛋白提取物，收集流出液。

若需要，让流出液重新过柱一次，以最大限度地提高结合力。

5、用两倍树脂体积的Binding/Wash Buffer洗涤树脂并收集流出液。

重复该步骤，用一新的收集管收集流出液。

直到流出液的吸光度在280 nm基线处。

6、用两倍树脂体积的Elution Buffer 将His 标签蛋白从树脂上洗脱下来。

重复此步骤两次，并单独收集每次洗脱出来的液体。

7、用Modified Coomassie Bradford Assay Kit （No SK3041）。

洗脱的蛋白可直接进行SDS-PAGE 分析。

注意：洗脱获得的蛋白可用凝胶过滤（如No BSP090 gravity Desalting Column）
或透析去除咪唑以便后续应用。

SDS-PAGE分析前，含6M盐酸胍的样品必须用含8 M 尿素的缓冲液透析。

就地清洗方案
如果背压增加或观察到树脂明显污染，通常进行完全性能恢复流程。

由于所有的
NI-IDA 树脂的高螯合强度和低金属浸出率，就地清洗前不需要进行stripping。

我们建议使用下面的方法，以清除污染物，如沉淀的蛋白、疏水结合蛋白和脂蛋白。

程序
1、用15倍树脂体积的0.5 M NaOH清洗柱子。

考虑到需要30min的接触时间，
因此需相应地调整流量（如用0.5 M NaOH 溶液以0.5ml/min 的流速洗1ml 的NI-IDA柱，需要相当于15ml总体积的量）。

2、用10倍树脂体积的1 X PBS重新平衡后，树脂可马上使用。

若要保存柱子，可加入20〜30%乙醇或10〜100mM氢氧化钠进行4C保存。

通过洗脱（stripping）和离子重填装进行再生
NI-IDA柱的洗脱（stripping）和再填装通常是没有必要的。

如果背压增加或观察到树脂明显污染，就地清洗过程通常可恢复性能。

但若性能仍不令人满意，柱子内的NI-IDA树脂可用下面的程序进行洗脱（stripping）和离子重填装。

程序
1、用10倍树脂体积的洗脱缓冲液（Stripping Buffer）（50 mM磷酸钠；300 mM NaCl ；100 mM EDTA，pH 值8.0）洗涤树脂。

2、用20倍树脂体积的去离子水清洗树脂。

3、用2倍树脂体积的100mM NiSO4 （用去离子水配制）进行离子再填装。

4、10倍树脂体积的去离子水清洗，并用10倍树脂体积的1 MBS重新平衡树脂，树脂可马上使用。

若要保存柱子，可加入20〜30%乙醇或10〜100mM氢氧化钠进行4C保存。

问题解答
问题可能的原因建议
如果纯化是在4C进行，那改为在室温下进行。

样品太黏
流速太慢
纯化过程中目的
蛋白难溶或沉淀
His-Tag蛋白没
有完全被洗脱超声破菌前或超声破菌后增加细胞裂解物的稀释度。

继续超声破菌，直到黏度下降；和/或额外加入DNAse和2+
Mg 。

如果用很黏稠的溶液，将柱子连接到真空管以增加流速
添加去垢剂或其他物质，缓慢混合30min以增加目的蛋白的可溶性。

注意：Triton X-100和NP-40 （不是Tween）在280nm具有高吸光度，此外，去垢剂不能通过缓冲液置换而轻易去除。

包涵体：用常规变性剂如4〜6 M盐酸胍、4〜8 M尿素或强变性剂，蛋白很容易从包涵体中溶解（和去折叠）。

缓慢混合30min或更长时间以助溶目的蛋白。

额外增加几毫升的elution buffer进行洗脱
His-Tag 蛋白产量低样品制备和洗涤过程中发现流出液中存在His-Tag 蛋白
纯化过程中His-Tag蛋白没有被洗脱下来
洗脱的样品和缓冲液His-Tag蛋中咪唑的浓度样品和结合缓冲液中咪唑浓度太高，使用低浓度的咪唑。

确定样品中螯合剂或强还原剂的浓度不要太高。

组氨酸标签可能暴露不充分；对包涵体，可用尿素或盐酸胍对去折叠的蛋白进行纯化。

减少样品的稀释，增加固体尿素或盐酸胍。

组氨酸标签丢失。

检查结构的序列。

His-Tag蛋白仍然被结合。

洗脱液中用高浓度的的咪唑进行洗脱
目的蛋白沉淀在柱子中，减少样品的量；
洗脱过程中降低咪唑的量。

尝试去垢剂或改变NaCl的浓度或在变性（去折叠）条件下洗脱。

非特异性疏水或其它互作。

在洗脱缓冲液中加入非离子去垢剂或增加NaCl的浓度。

样品和缓冲液中使用高浓度的咪唑以阻止杂蛋白结合。

推荐使用20〜40mM，但更高浓度可能也适合。

涤不充分
His-Tag 蛋白被 增加蛋白酶抑制剂（避免含 EDTA ）。

在4 C 进行进行裂解和 蛋白
酶部分降纯化。

超声破菌前，洗涤缓冲液中增加去垢剂的量（如增加到 2%的 Trit on X-100或2%的Tween ），或增加甘油（到 50%）的量, 以
阻断非特异性互作。

（专业文档是经验性极强的领域，无法思考和涵盖全面，素材和资料部分来自网 络，供参考。

可复制、编制，期待你的好评与关注） 未结合物质洗
样品制备后重复洗涤步骤以获得最佳纯度 His-Tag 蛋白有
关的污染。