动物生理学实验指导
动物生理学实验内容
三. 实验内容实验一生理学实验的基本操作技术1. 目的要求1.1 掌握生理学实验的基本操作技术。
1.2 了解生理学实验的常用仪器。
2. 实验器材手术器械、刺激器、四通道生理记录仪、换能器等。
3. 实验内容了解生理学实验中常用的手术器械及其用途，学习活体解剖技术；了解生理学实验的常用仪器（刺激系统、探测系统、生理信号的显示采集与处理系统）及其用途。
实验二坐骨神经——腓肠肌标本的制备1. 目的要求1.1掌握蛙类动物双毁髓的实验方法。
1.2 掌握坐骨神经——腓肠肌标本的制备方法。
2. 动物与器材蟾蜍、常用手术器械。
3. 实验内容学习蛙类动物双毁髓的实验方法，制备有兴奋性的坐骨神经——腓肠肌标本并检测其兴奋性。
实验三刺激强度与肌肉收缩的关系1. 目的要求1.1 初步掌握神经——肌肉实验的电刺激方法及肌肉收缩的记录方法。
1.2 初步掌握刺激器、四通道生理记录仪、换能器的使用方法。
2. 动物与器材蟾蜍、手术器械、刺激器、四通道生理记录仪、换能器。
3. 实验内容观察刺激强度与肌肉收缩反应的关系并分析，学习刺激器、四通道生理记录仪、换能器的使用方法。
实验四骨骼肌收缩的总和与强直收缩1. 目的要求1.1 掌握神经——肌肉实验的电刺激方法及肌肉收缩的记录方法。
1.2 掌握刺激器、四通道生理记录仪、换能器的使用方法。
2. 动物与器材蟾蜍、手术器械、刺激器、四通道生理记录仪、换能器。
3. 实验内容观察刺激频率与肌肉收缩反应的关系并分析，学习刺激器、四通道生理记录仪、换能器的使用方法。
实验五血红蛋白含量的测定1. 目的要求掌握测定血红蛋白含量的基本方法——比色法。
2. 实验器材采血针、血红蛋白计、0.1mol/L盐酸溶液、一次性20µl定量毛细采血管、滴管、玻璃棒、75％酒精棉、蒸馏水。
3. 实验内容用比色法测定人体血红蛋白含量。
实验六血细胞的计数1. 目的要求学习红细胞、白细胞的人工计数方法。
2. 实验器材采血针、红白细胞稀释液、一次性20µl定量毛细采血管、滴管、玻璃棒、75％酒精棉、显微镜等。
动物生理学实验设计
动物生理学实验设计引言：动物生理学实验是研究动物生理功能和机制的重要手段。
通过设计合理的实验方案，可以揭示动物身体各个系统的运作规律，深入理解生命的奥秘。
本文将从呼吸、循环和消化三个方面，设计一系列动物生理学实验，以探究动物的生理过程。
一、呼吸系统实验1. 实验目的：观察不同动物在不同环境条件下的呼吸变化，并探究呼吸与环境的关系。
2. 实验方法：选取鱼类、昆虫和哺乳动物为实验对象，将它们分别置于水中、低氧环境和正常环境下，测量它们的呼吸频率和呼吸深度。
3. 实验结果与讨论：不同动物在不同环境下的呼吸变化存在差异，鱼类在水中呼吸更为频繁，昆虫在低氧环境下呼吸更加困难。
这些结果表明动物的呼吸与其生活环境密切相关。
二、循环系统实验1. 实验目的：研究动物的心脏功能和血液循环过程，并探究身体活动对循环系统的影响。
2. 实验方法：选取青蛙和大鼠为实验对象，使用心电图和血压测量仪观察它们的心脏运动和血液压力变化，在运动前后进行对比分析。
3. 实验结果与讨论：实验结果显示，运动会导致心率和血压的升高，心脏的收缩力增强。
这说明运动对循环系统有促进作用，有利于保持心血管系统的健康。
三、消化系统实验1. 实验目的：研究动物的消化过程和消化酶的活性，探究食物对消化系统的影响。
2. 实验方法：选取小鼠为实验对象，分别给予其不同种类和含量的食物，观察其摄食量和消化器官的反应，并在不同时间段采集样本进行消化酶活性测定。
3. 实验结果与讨论：实验结果显示，不同食物对小鼠的摄食量和消化酶活性有不同的影响。
高蛋白饮食可以促进消化酶的分泌，高脂饮食会导致摄食量增加。
这些结果揭示了食物对消化系统的重要影响。
结论：通过以上实验设计，我们可以更深入地了解动物的呼吸、循环和消化等生理过程。
这些实验不仅可以为人类生理学研究提供参考，还有助于揭示动物适应环境的生存机制。
动物生理学实验的设计和探究将为人类提供更多关于生命奥秘的启示，推动科学的进步。
动物生理学血液学实验
实验报告课程名称：动物生理学指导老师：实验名称：血液学实验一、实验目的和要求1.掌握实验用兔颈动脉采血的方法2.了解红细胞比容及其测定方法3.血液凝固的基本过程及影响血凝的一些因素装二、实验内容和原理订将抗凝血放在特制有刻度的玻璃管(温氏分血管)中，经过离心沉淀，使血细胞线与血浆分离。
红细胞下沉，彼此压紧而又不改变每个血细胞的正常形态。
根据玻璃管刻度的读数，可以计算出红细胞在全血中所占的容积百分比——即红细胞比容。
血液凝固可分为三个主要步骤:第Ⅰ阶段是凝血因子FX激活成FXa并形成凝血酶原复合物（凝血酶原激活物）第Ⅱ阶段是凝血酶原（Prothrombin，FⅡ）激活成为凝血酶（thrombin，FⅡa）第Ⅲ阶段是纤维蛋白原（FI）转变成纤维蛋白（filbrin，FIa）在这三个主要步骤中都需要Ca离子的参与三、主要仪器设备大兔一只，兔手术保定台，烧杯（500ml，50ml），常用手术器械（手术刀、毛剪、手术剪、止血钳），线动脉套管，动脉夹温氏分血管，长颈滴管，5毫升试管，离心机，天平，5ml 注射器试管，试管架，吸管2％戊巴比妥钠，3.8％柠檬酸钠，肝素，1％氯化钙，5％草酸钾，液体石蜡，带有开叉橡皮管的玻棒等。
四、操作方法和实验步骤手术操作2％戊巴比妥钠按1ml/kg的剂量从耳缘静脉注入实验用兔麻醉后仰卧固定于手术台上（同时准备实验用试管等）剪去颈部术野的被毛，切开皮肤，找出两侧颈动脉将颈动脉剥离2厘米左右，然后在颈动脉下面穿两条线。
将一侧颈动脉在远心端用线结扎，再于近心端用动脉夹夹住。
结扎处与动脉夹之间最好不少于 1.5厘米用眼科剪刀在这段动脉上靠近结扎处1／4的地方，斜向近心方向剪一小口，将动脉套管插入，用线扎好，以免滑脱，待用（需采集血样时打开动脉夹即可）比容的测定：（1）用配有长注射针的注射器吸取含肝素的抗凝血，然后将注射针插入温氏分血管的底部，缓缓地将滴管内的血液注入分血管内(不得有气泡)，使血液正确地装到刻度10处。
动物生理学实验报告
动物生理学实验报告实验目的：本实验旨在探究动物生理学的相关知识，通过对动物进行实验研究，了解和分析不同生理过程对动物的影响。
实验材料和方法：1. 动物：本实验选择小白鼠作为实验对象。
2. 实验组和对照组：将小白鼠分为实验组和对照组，每组各10只。
3. 实验条件：保持实验环境的恒定，包括温度、湿度和光照等。
4. 实验操作：实验组小白鼠接受特定生理刺激，对照组小鼠则不接受任何刺激。
实验结果：经过实验观察和数据分析，得出以下结论：1. 实验组小白鼠在特定生理刺激下表现出明显的生理反应，如心率增加、呼吸加速等。
2. 对照组小鼠未受到刺激，其生理指标保持在正常范围内。
讨论和分析：基于以上实验结果，我们可以得出以下结论和分析：1. 动物在面对不同生理刺激时会产生特定的生理反应，这些反应有助于适应环境变化和维持生命活动的平衡。
2. 生理反应的强度和持续时间可能与刺激的性质和强度有关，不同动物种类也可能表现出不同的生理反应。
3. 在实验中选择小白鼠作为实验对象，是因为其生理特征和基因组与人类较为接近，可以更好地模拟人体的生理反应。
结论：通过本次实验，我们深入了解了动物生理学的相关知识，对动物在不同生理刺激下的生理反应有了更全面的认识。
动物生理学的研究对人类健康和医学领域具有重要意义，未来可以进一步探索和深入研究动物生理过程中的机制和影响因素。
参考文献：[1] Smith A, et al. Animal Physiology, 2nd ed. New York: Springer, 2015.[2] Wang B, et al. The physiological responses of animals to environmental changes. J Anim Sci. 2018;96(1):26-35.[3] Chen L, et al. Comparative physiology of animal models in biomedical research. Lab Anim. 2018;52(3):225-231.。
动物生理学实验指导书
生理学实验指导目录实验一神经生理实验1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备1.2 神经干动作电位引导 1.3 神经传导速度的测定实验二血液生理实验2.1 红细胞计数 2.2 红细胞渗透脆性试验实验三循环生理实验之蛙心起搏点及心肌特性3.1 蛙心起搏点3.2 心肌特性实验四循环生理实验之蛙心灌流4.1 蛙心灌流实验五循环生理实验之动脉血压的直接测定及其影响因素5.1 动脉血压的直接测定及其影响因素实验六消化生理实验7.1 胃肠运动的直接观察7.2 小肠吸收和渗透压的关系7.3 离体肠段运动描记实验七泌尿生理实验8.1 尿的分泌及其影响与调节实验八泌尿、循环、呼吸生理综合实验（综合计划 07级）实验九肌肉生理实验9.1 阈刺激、阈上刺激与最大刺激9.2 肌肉的单收缩9.3 肌肉的强直收缩和收缩总和实验一神经生理实验年月日星期1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备目的和原理：蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似，它的离体组织所需要的生活条件又比较简单，易于控制和掌握，因此在实验中常用蟾蜍或蛙坐骨神经腓肠肌标本来研究神经肌肉的一般生理，如：神经干动作电位引导、神经传导速度测定、肌肉收缩的机能等。
实验对象：蟾蜍或蛙实验器材和药品：中式剪子，眼科剪，眼科镊，蛙板，玻璃分针（玻璃勾），探针，锌铜弓，培养皿，大头针，棉花，线，任氏液，纱布等。
实验方法：1、破坏脑脊髓取一只蟾蜍或蛙，用自来水冲洗干净。
保定好，用探针从枕骨大孔垂直刺入，然后向前刺入颅腔，左右搅动捣毁脑组织，再向后刺入脊椎管捣毁脊髓。
此时蟾蜍四肢松软，呼吸消失，表示脑脊髓破坏完全。
2、剪除躯干上部及内脏，提起蟾蜍的背部，在骶髂关节水平以上0.5-1.0厘米处剪断脊柱（见图），用左手捏住蟾蜍骶髂关节以下的脊柱，使蟾蜍头与内脏自然下垂，右手持中式剪刀，沿脊柱两侧剪除皮肤肌肉和一切内脏（注意勿损伤坐骨神经），仅留骶尾联合以下的后肢、骶骨、脊柱及由它发出的坐骨神经。
动物生理学实验的设计与实施
动物生理学实验的设计与实施动物生理学实验是研究动物身体功能与机制的重要方法之一。
在实验设计和实施过程中，需要充分考虑动物福利和伦理问题，确保实验结果准确可靠。
本文将介绍动物生理学实验的设计与实施的步骤和注意事项。
一、实验设计1. 确定研究目标：明确想要研究的生理学问题，例如探究动物的呼吸系统对不同刺激的反应。
2. 选择合适的动物模型：根据研究目标选择适合的动物种类，比如小鼠或大鼠等。
3. 确定实验组和对照组：根据需要将动物分为实验组和对照组，对照组为没有接受刺激的正常动物，实验组为接受刺激的动物。
4. 设计实验方案：确定实验的时间、频率、剂量等参数，以及具体的操作步骤。
二、动物选择与操作1. 动物选择：确保选择健康、同龄、同性别的动物，并注意确保实验动物的群体的一致性。
2. 动物饲养：提供合适的饲料和饮水，控制温度、湿度等环境参数，维持良好的动物饲养条件。
3. 植入器械和手术：如果需要在动物体内植入传感器等器械，确保手术过程无创伤，避免感染等风险。
4. 实施实验：按照实验方案进行操作，确保操作精确、规范，避免错误产生。
5. 监测与记录：实验过程中需要监测动物的生理参数，并准确记录数据。
三、动物福利与伦理1. 动物福利：提供合适的饲养环境、饲料和水源，监测动物的健康状况，确保动物没有痛苦和苦难。
2. 伦理问题：在进行实验前，获得伦理委员会的批准，遵守涉及动物实验的法规和道德规范。
四、数据分析与结果解释1. 数据收集：按照实验方案收集实验数据，确保数据完整、准确。
2. 数据分析：使用合适的统计方法对实验数据进行分析，从而得出可靠的结果和结论。
3. 结果解释：根据实验结果，对生理学问题进行解释和讨论，提出可能的机制和研究价值。
动物生理学实验的设计与实施需要科学严谨的态度，严格遵循实验方法和伦理规范。
通过合适的实验设计和操作过程，可以获得准确可靠的实验结果，进一步推动动物生理学的研究和进展。
同时，也需要关注动物福利和伦理问题，保障动物的权益和福利。
动物生理学实验[五篇材料]
![动物生理学实验[五篇材料]](https://img.taocdn.com/s3/m/e1912db5e43a580216fc700abb68a98271feac90.png)
动物生理学实验[五篇材料]第一篇：动物生理学实验• 麻醉注意事项1、麻醉前应正确选用麻醉药品、用药剂量及给药途径。
•2、密切观察动物麻醉状态及反应，以便准确判断麻醉深度。
3、如麻醉较浅，动物出现挣扎或呼吸急促等，需补充麻醉药以维持适当的麻醉。
一次补充药量不宜超过原总用药量的五分之一。
4、麻醉过程中，应随时保持呼吸道通畅，并注意保温。
5、在手术操作复杂、创伤大、实验时间较长或麻醉深度不理想等情况下，可配合局部浸润麻醉或基础麻醉。
6、实验中注意液体的输入量及排出量，维持体液平衡，防止酸中毒及肺水肿的发生。
实验一血液的组成[实验原理] 血液是由液态的血浆和悬浮于血浆中的血细胞组成。
血细胞占全血的体积比称为红细胞压积，又叫红细胞比容。
要求与思考题1.血浆与血清有哪些区别？血浆与血清的区别是不含纤维蛋白原，某些凝血因子以及血小板释放因子实验二血红蛋白的测定 [实验原理]由于血红蛋白的颜色，常随结合的氧量多少而改变，因而不利于比色，但血红蛋白与稀盐酸作用后，能使亚铁血红素变成不易变色的棕色的高铁血红蛋白，用水稀释后可与标准比色板比色，从而测得血红蛋白含量。
[注意事项]1.血液和盐酸作用的时间不可少于10分钟，否则，血红蛋白不能充分转变成高铁血红蛋白，使结果偏低。
2.加蒸馏水时，开始可以稍多加几滴，随后则不能过快，以防稀释过头。
3.比色时最好在自然光下，而不应在黄色光下进行，以免影响结果。
4.整个实验过程中均应注意避免起泡实验三红细胞的脆性试验 [实验原理]如环境渗透压继续下降，红细胞会因继续膨胀而破裂，释放血红蛋白，称之为溶血。
红细胞膜对低渗溶液具有一定的抵抗力，红细胞膜对低渗溶液的抵抗力越大，红细胞在低渗溶液中越不容易发生溶血，即红细胞渗透脆性越小。
凡上层溶液开始微呈淡红色，而极大部分红细胞下沉，称开始溶血或最小抗力（红细胞的最小抵抗力）。
凡液体呈均匀红色，管底无红细胞下沉，则称完全溶血或最大抗力（红细胞的最大抵抗力）[注意事项] 1.小试管要干燥，加血的量要一致，只加一滴。
动物生理学实验指导书
动物生理学实验指导书生理学实验指导目录实验一神经生理实验1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备1.2 神经干动作电位引导 1.3 神经传导速度的测定实验二血液生理实验2.1 红细胞计数 2.2 红细胞渗透脆性试验实验三循环生理实验之蛙心起搏点及心肌特性3.1 蛙心起搏点 3.2 心肌特性实验四循环生理实验之蛙心灌流 4.1 蛙心灌流实验五循环生理实验之动脉血压的直接测定及其影响因素5.1 动脉血压的直接测定及其影响因素实验六消化生理实验7.1 胃肠运动的直接观察 7.2 小肠吸收和渗透压的关系 7.3 离体肠段运动描记实验七泌尿生理实验8.1 尿的分泌及其影响与调节实验八泌尿、循环、呼吸生理综合实验（综合计划 07级）实验九肌肉生理实验9.1 阈刺激、阈上刺激与最大刺激 9.2 肌肉的单收缩9.3 肌肉的强直收缩和收缩总和实验一神经生理实验年月日星期1.1 蛙坐骨神经腓肠肌标本制备目的和原理：蛙类的一些基本生命活动和生理功能与温血动物相似，它的离体组织所需要的生活条件又比较简单，易于控制和掌握，因此在实验中常用蟾蜍或蛙坐骨神经腓肠肌标本来研究神经肌肉的一般生理，如：神经干动作电位引导、神经传导速度测定、肌肉收缩的机能等。
实验对象：蟾蜍或蛙实验器材和药品：中式剪子，眼科剪，眼科镊，蛙板，玻璃分针（玻璃勾），探针，锌铜弓，培养皿，大头针，棉花，线，任氏液，纱布等。
实验方法：1、破坏脑脊髓取一只蟾蜍或蛙，用自来水冲洗干净。
保定好，用探针从枕骨大孔垂直刺入，然后向前刺入颅腔，左右搅动捣毁脑组织，再向后刺入脊椎管捣毁脊髓。
此时蟾蜍四肢松软，呼吸消失，表示脑脊髓破坏完全。
2、剪除躯干上部及内脏，提起蟾蜍的背部，在骶髂关节水平以上0.5-1.0厘米处剪断脊柱（见图），用左手捏住蟾蜍骶髂关节以下的脊柱，使蟾蜍头与内脏自然下垂，右手持中式剪刀，沿脊柱两侧剪除皮肤肌肉和一切内脏（注意勿损伤坐骨神经），仅留骶尾联合以下的后肢、骶骨、脊柱及由它发出的坐骨神经。
动物生理学实验技术与方法
动物生理学实验技术与方法动物生理学是研究动物机体内各种功能及其相互关系的科学, 通过实验研究可以更深入地了解动物的生理过程。
而在进行动物生理学实验时，正确的技术和方法是非常重要的。
本文将介绍一些常用的动物生理学实验技术与方法。
一、动物模型的选择选择适当的动物模型是进行生理学实验的首要步骤。
常见的动物模型包括小鼠、大鼠、猪等。
选择合适的模型要考虑到实验目的、实验器械的可获得性以及动物的生理特征等因素。
二、动物的麻醉与镇痛在进行动物生理学实验之前，通常需要给动物进行麻醉和镇痛。
常用的麻醉方法包括全身麻醉和局部麻醉。
全身麻醉可以使用吸入麻醉药物或静脉注射麻醉药物，而局部麻醉则通常使用局麻药物。
三、术前制备与术后护理在动物生理学实验中，术前的制备与术后的护理是十分重要的环节。
术前制备包括动物的准备、伤口消毒、实验器械准备等。
术后护理包括动物的康复护理、伤口处理、口服药物给予等。
四、生命体征的监测在动物生理学实验过程中，需要对动物的生命体征进行监测。
这包括对动物的呼吸、心率、体温等生命体征的监测。
常用的监测方法有心电图监测、呼吸监测等。
五、注射与采血技术在一些实验中，常常需要进行注射或采血。
注射技术包括皮下注射、肌肉注射和静脉注射等。
采血技术可以采用尾静脉采血或颈静脉采血等方法。
在进行注射和采血时应当注意操作的准确性和安全性。
六、组织与细胞的分离研究动物器官和细胞功能时，常常需要对组织和细胞进行分离。
组织的分离技术包括机械分离、酶消化分离等。
细胞的分离则常常使用离心分离等技术。
七、数据的处理与分析在动物生理学实验中，采集到的数据需要进行处理与分析。
这包括数据的整理、计算和统计分析等。
常用的数据处理与分析软件有Excel、SPSS等。
总结动物生理学实验技术与方法的正确应用对于获得准确的实验结果非常重要，同时也要确保动物的福利和保护。
本文介绍了一些常用的技术与方法，但并非穷尽所有内容，读者可以根据实际需要进行进一步学习和探索。
大二上学期末动物生理学实践技巧分享
大二上学期末动物生理学实践技巧分享学习动物生理学是大二生物学专业学生的一项重要课程。
在学期末，进行动物生理学实践是必不可少的环节。
通过实践，我们可以更好地理解课堂上所学的理论知识，并掌握实验技巧，提高动手能力。
下面我就分享一些我在学期末动物生理学实践中所掌握的技巧和经验。
一、实验前的准备工作在进行动物生理学实验前，我们首先要做好充分的准备工作。
这包括对实验目的、步骤和相关知识的了解。
在实验动物方面，我们需要提前熟悉动物的种类、饲养环境和饲养技巧，确保动物的健康和安全。
二、动物麻醉技巧在进行动物生理学实验时，常常需要对实验动物进行麻醉操作。
正确的麻醉技巧对于实验的顺利进行至关重要。
我们要掌握合适的麻醉剂量和麻醉方法，确保动物在麻醉状态下不会感觉到疼痛，同时也不会影响实验结果。
三、动物解剖技巧动物生理学实践中，动物解剖是一个重要的环节。
正确的解剖技巧可以帮助我们准确地观察动物的器官结构和功能。
在解剖过程中，我们要注意动作轻柔、仔细，避免损伤动物的器官和组织。
四、实验数据记录与分析在动物生理学实验中，准确记录实验数据并进行科学分析是非常重要的。
我们要养成记录数据的良好习惯，确保实验结果的真实性和可靠性。
在数据分析上，我们要掌握相关的统计方法和软件，对实验结果进行合理的解释和总结。
五、实验安全与伦理动物生理学实践中，实验安全与伦理问题也是我们需要重视的方面。
我们要严格遵守实验室的安全操作规程，保障实验人员和实验动物的安全。
在实验过程中，要尊重动物的权益和福利，避免不必要的伤害和痛苦。
通过以上的动物生理学实践技巧分享，我深刻地认识到实践是理论学习的重要补充，只有通过动手操作和实际实践，我们才能更好地理解和掌握知识。
在今后的学习生涯中，我会继续努力，不断提高动物生理学实践的技能，为将来的学术和科研打下坚实的基础。
动物生理学实验指导
绪言动物生理学是一门实验性学科。
因此学习动物生理学必须通过做一定的实验，才能更好地理解和掌握生理学的基本理论知识和知识。
是生理学教学中的一个重要组成部分。
一．实验课的目的生理学实验是以活的动物或人体为对象和材料进行实验，以此来了解和获得生理学知识的科学方法。
通过实验可以验证、巩固和加深课堂中生理学基本理论和知识。
同时，可通过生理实验，初步掌握生理学实验的基本技能和基本操作。
培养学生的科学思维方法和严肃的科学实验态度。
通过实验训练，可提高学生对各种生理现象的观察分析能力，以及解决问题的能力。
同时还可以培养学生的独立思考能力。
二．实验课的要求实验前，必须详细阅读实验指导，了解实验目的、原理和基本操作步骤。
并结合其基本理论，做到充分理解，心中有数。
并能预测实验的正确结果和可能出现的问题。
实验过程中，实验器材力求安放整齐，布局合理，便于操作。
同时要保持桌面清洁。
随时清除实验中的污物。
公用仪器、药品等不得随意挪动。
要爱护仪器。
节省实验动物和药品。
实验中还应注意实验分工交换，人人动手，使每个学生都有学习各种操作的机会。
实验时要认真、仔细、耐心地观察实验中出现的现象，并如实记录。
同时应对各种变化的原因进行分析和处理。
另外仪器发生故障应及时报告。
不得自行拆动。
实验用品损坏也应及时报告和登记。
实验后，将所用物品及器材进行整理和清洗。
实验用过的动物处死后，放在指定处。
最后要认真写出实验报告，及时上交。
三．实验结果的处理实验过程所得的结果都要分析和整理。
凡是属于测量性质的结果，如高低、长短、快慢、轻重、多少等，均应以正确的单位和数值定量。
凡有曲线记录的实验应尽量用曲线记录实验结果，并在曲线上标明各个变化。
如刺激标记，时间标记等。
有些结果为了比较和分析之便，可用表格或绘图表示。
制表时要全面而又简单明确。
绘图时应标出各坐标的意义。
非连续变化可用柱形图表示。
例如：对几个（组）实验对象，分别进行同样系列的实验观察所得结果，最宜制成表格。
动物生理学实验_2
动物生理学实验1.1 反射弧分析 (1)1.2 去一侧小脑动物观察 (2)1.3 红细胞渗透脆性的测定 (4)2.1 蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备 (6)2.2 刺激强度对肌肉收缩的影响 (12)2.3 神经干动作电位的测定 (17)3.1 呼吸运动的调节 (20)3.2 胸内压测定 (22)3.3 血压计的使用 (23)4.1 胃肠运动的观察 (25)4.2 小肠吸收与渗透压的关系 (27)4.3 心电图描记 (29)5 动物血压的测定 (31)1.1 反射弧分析a实验目标学会用蛙作反射弧分析实验；认真观察实验结果；根据实验结果分析脊蛙屈腿反射的反射弧组成以及反射弧的完整性与反射活动的关系；书写实验报告。
实验原理在中枢神经系统参与下，机体对刺激所产生的规律性反应称为反射。
反射活动的结构基础是反射弧，由感受器、传入神经、反射中枢、传出神经和效应器五个部分组成，其中任何一个环节受到破坏，反射活动均不能实现。
实验用品蛙或蟾蜍、蛙类解剖器材一套、铁支架和双凹夹、肌夹、小烧杯、培养皿、滤纸片、药用棉球、0.5%和1.0%H2SO4溶液等。
实验步骤和观察项目1.制备脊蛙用粗剪刀横向伸入口腔，在鼓膜后缘剪去颅脑部，用棉球压迫创面止血。
用肌夹将蛙下颌夹住，挂在铁支架上（实验图-1）。
2.检查右侧屈腿反射待蛙四肢松软后，用盛在培养皿中的0.5%H2SO4溶液刺激蛙右后肢足趾皮肤，观察有无屈腿反射，然后用小烧杯盛清水洗去足趾上的硫酸溶液。
3.剥去右后肢足趾皮肤在右后肢踝关节上方，将皮肤剪一环形切口，剥去切口以下的皮肤，重复步骤2，观察有无屈腿反射。
4.检查左侧屈腿反射用0.5%H2SO4溶液刺激左后肢足趾皮肤，观察有无屈腿反射。
5.剪断左腿坐骨神经在左后腿背面作一纵形皮肤切刀，用玻钩分开股二头肌和半膜肌，钩出坐骨神经并剪断，再用0.5%H2SO4溶液刺激该腿足趾皮肤，观察有无屈腿反射。
6.检查搔扒反射用1%H2SO4溶液浸泡的滤纸片贴在蛙胸腹部皮肤上，观察有无搔扒反射出现。
动物生理学实验指导实验报告
动物生理学实验指导实验报告实验报告：动物生理学实验指导一、实验目的：1.了解动物生理学实验室常用的实验方法和技术。
2.学习动物生理学实验设计的基本原理和步骤。
3.培养动物实验技术操作能力和实验数据分析处理能力。
二、实验原理：实验设计的步骤有如下三个方面：1.确定实验目标：根据实验目的及具体需求，选择合适的动物对象和实验方法。
2.编制实验方案：包括实验流程、动物选择、观察时间和实验操作方法等。
3.建立实验组和对照组：为了验证实验结果的有效性，常常需要建立对照组来进行数据对比和分析。
三、实验步骤：1.动物选择：根据实验目的，选择合适的动物对象，如小鼠、大鼠、兔子等。
2.动物标本采集：选择合适的动物标本以及标本处理方法。
3.实验方案编制：根据确定的实验目标和动物选择，编制实验方案，包括实验流程、观察时间和实验操作方法等。
4.动物实验操作：根据实验方案，进行实验操作，包括给药、观测和记录等。
5.数据处理与分析：对实验获得的数据进行整理和分析，验证实验结果的可靠性。
6.实验记录和总结：将实验操作的过程和结果进行记录和总结，为后续的实验提供参考依据。
7.实验报告：根据实验记录和总结，编写实验报告，包括实验的目的、原理、步骤、结果和结论等。
四、实验数据与结果：实验数据是实验结果得出的基础，对于实验结果的分析和解释具有重要意义。
通过对实验数据的分析和对比，我们可以得出结论是否支持实验目标。
五、实验结论：实验结论是对实验结果和数据的总结和归纳。
实验结论应该明确、准确、简练，能够回答实验目的所提问题，并对实验结果进行合理解释和分析。
六、实验优化与改进：七、实验安全：八、实验意义与应用：动物生理学实验具有广泛的应用前景和科学意义。
可以通过动物实验来研究动物体内的生理过程和机制，从而为人们提供丰富的科学依据和理论支持。
同时，动物实验还可以应用于药物研发、基因工程等领域，为人类的健康事业做出贡献。
十、致谢：感谢指导老师的悉心指导和同学们的帮助，使得本次实验圆满完成。
人体及动物生理学实验指导
人体及动物生理学 实验指导支立峰 徐平 编著2007 年 3 月实验一动物生理学实验常用仪器和基本技术1.1 动物生理实验常用手术器械1.1.1 常用手术器械的使用方法动物生理学实验常用手术器械与医学外科手术器械大致相同，但也有一些专用器械。
现仅介绍常规的手术器械。
1、手术刀手术刀主要用来切开皮肤和脏器。
手术刀片有圆刃、尖刃和弯刃三种。
刀柄也分多种，最常用的是4号刀柄和7号刀柄（图3.1-1）。
可根据手术部位、性质的需要自由拆装和更换变钝或损坏的手术刀片（图3.1-2）。
持刀的方式有4种(图3.1-3)，其中“执弓式”是一种常用的的持刀方式。
其动作范围广泛而灵活，用于腹部、颈部或股部的皮肤切口。
2、手术剪和粗剪刀手术剪分钝头剪、尖头剪。
其尖端有直、弯之分。
主要用于剪皮肤、肌肉等软组织。
也可用来分离组织，即利用剪刀尖插入组织间隙，分离无大血管的结缔组织。
另外，还有一种小型的眼科剪，主要用于剪血管和神经等软组织。
一般说来，深部操作宜用弯剪，不致误伤。
剪线大多为钝头直剪，剪毛用钝头、尖端上翘的。
正确执剪姿势是用拇指与无名指持剪，食指置于手术剪的上方（图3.1-4）。
粗剪刀，为普通的剪刀。
在蛙类的实验中，常用来剪蛙的脊柱、骨和皮肤等粗硬组织。
3、手术镊手术镊种类很多，名称也不统一，常用的有无齿镊和有齿镊两种,用于夹住或提起组织，以便剥离、剪断或缝合。
有齿镊用于提起皮肤、皮下组织、筋膜、肌腱等较坚韧的组织，使其不易滑脱。
但有齿镊不能用以夹持重要器官，以免造成损伤。
无齿镊用于夹持神经、血管、肠壁或其他脏器,较脆弱组织，而不致使之受损伤。
正确执镊方法如图3.1-5，用力适当地把持着。
4、血管钳血管钳又称止血钳，有直、弯、带齿和蚊式钳等数种。
主要用于夹血管或止血点，以达止血的目的。
也用于分离组织、牵引缝线，把持或拔缝针等。
正确持钳和持剪方法相同（图3.1-6）。
开放血管钳的方法是利用右手已套入血管钳的拇指与无名指相对挤压，继而两指向相反的方向旋开，放开血管钳(图3.1-7)。
动物生理学实验指导书
目录生理学常用实验仪器和手术器械的认识---实验前教育 (1)实验一反射弧的分析 (7)实验二坐骨神经-腓肠肌标本的制备和骨骼肌的特性 (9)实验三刺激的极性法则 (14)实验四鱼类血红蛋白含量测定 (15)实验五红细胞比积（比容）的测定 (17)实验六红细胞的溶解——溶血作用 (19)实验七白细胞机能的实验观察 (21)实验八鱼心期前收缩和代偿间歇 (22)实验九蛙类离体心脏灌流 (23)实验十蛙类心脏的神经支配 (28)实验十一蛙肾小球血流的观察 (30)实验十二迷走神经对鱼胃运动的影响 (31)实验十三鱼类肾小管的主动运输 (34)实验十四胰岛素致低血糖效应 (36)实验十五抗利尿激素（ADH）对蟾蜍膀胱水转运的影响 (37)实验十六腺垂体激素对蛙体色和生殖的影响 (38)附录常用生理溶液的配制 (40)生理学常用实验仪器和手术器械的认识---实验前教育一分组（每班分成6组或8组，每组人数视班级总人数而定）二设备的管理采取登记使用制度，具体方案由实验室管理办公室制定。
三实验课的目的和要求动物及鱼类生理学既是一门理论性学科，也是一门实验性学科。
它的理论和概念都是根据实践观察和科学实验中总结出来的，它的发生和发展都离不开科学实验，因此，实验课在生理学中占有重要的地位，实验课的目的在于：（一）了解获得生理学知识的科学方法，加强理论来源于实践的认识。
（二）熟悉和掌握生理学实验的一般方法及基本操作技能。
（三）亲自动手，直接验证理论，加深印象，以巩固理论知识。
（四）在实验中训练严谨的科学作风和实事求是、一丝不苟的科学态度，加强辨证唯物主义的观点。
（五）培养科学的思维方法和独立地分析问题、解决问题的能力。
为达到以上目的，要求同学们必须做到以下几点：（一）实验前认真做好准备1．仔细阅读实验指导，了解当次实验的目的和要求、方法和步骤，牢记注意事项。
2．结合实验内容认真复习和掌握有关理论，预测各项实验应得的结果和可能产生的误差。
动物生理学实验教学的有效方法
动物生理学实验教学的有效方法动物生理学是研究动物生命活动的科学，广泛应用于医药、农业、生物工程等领域。
实验教学在动物生理学学科中占有重要地位，既可以加深学生对理论知识的理解，又能培养学生的实践动手能力。
本文将介绍一些有效的动物生理学实验教学方法，帮助教师提高教学质量。
一、电生理实验电生理实验是动物生理学中常见且有趣的实验方法，可以通过记录和分析生物体的电生理活动，揭示其生理功能和机制。
在教学过程中，可以使用生物信号采集仪、电极等设备，引导学生进行实验。
例如，教师可以设置小组实验，每个小组使用生物信号采集仪采集小白鼠的心电图信号。
学生们需要安装电极和采集器，正确接线，并观察记录心电信号。
然后，学生可以通过分析波形和计算心率等指标，了解小白鼠的心脏功能。
二、生理药理实验生理药理实验主要研究动物体对药物的反应和影响。
这种实验可以帮助学生掌握基本的生理药理知识，同时了解药物对生物体的作用机制。
比如，教师可以通过实验展示小鼠对某种镇痛药物的反应。
首先，在小白鼠体内注入一定剂量的镇痛药物，观察小鼠的行为变化，如摇头、抖动等。
然后，教师可以引导学生记录不同剂量下的反应程度，并帮助学生分析药物对生物体的影响机制。
三、呼吸生理实验呼吸生理实验可以帮助学生了解动物的呼吸机制和呼吸过程中的相关参数。
通过这种实验，学生可以增强对呼吸生理的理解，以及提高实验技能。
以小白鼠为例，教师可以教学生如何测量小白鼠的呼吸频率和潮气量。
学生需要在小鼠笼中设置特定的装置，使小白鼠呼吸过程中的气流通过装置并记录数据。
然后，学生通过数据计算和分析，了解小白鼠的呼吸情况，并与正常情况进行对比。
四、消化生理实验消化生理实验主要研究动物体的消化系统的功能和调节。
通过这种实验，学生可以了解食物在动物体内的吸收、消化和排泄过程，加深对消化系统的理解。
在消化生理实验中，教师可以引导学生进行小鼠的胃排空实验。
学生需要在小鼠进食后一定时间内，采集小鼠胃内容物，并测量其质量和成分。
水产动物生理学实验指导
水产动物生理学实验指导目录第一部分水产动物生理学实验概述一、水产动物生理学实验的目的、任务与要求二、水产动物生理学实验报告的写作第二部分基本生理实验操作第一节组织、器官的机能实验实验1 生理学常用仪器使用方法介绍实验2 坐骨神经—腓肠肌标本的制备实验3 刺激强度对骨骼肌收缩的影响实验4 刺激频率对骨骼肌收缩的影响实验5 蛙心起博点实验6 期前收缩与代偿间歇实验7 蛙心灌流实验8 鱼类心脏灌流实验9 离体小肠平滑肌的生理特性实验10 反射中枢活动的某些基本特征及反射弧分析第二节血液组成成分及其性质的分析、血清中部分物质含量的测定实验11 红细胞与白细胞计数实验12 血红蛋白含量测定实验13 血涂片制作与白细胞分类计数实验14 红细胞沉降率的测定实验15 红细胞比容的测定实验16 红细胞渗透脆性的测定—浓度梯度法实验17 蛋白质含量的测定I—双缩脲法实验18 血清γ—球蛋白的分析测定—盐析法实验19 血清白蛋白和球蛋白的分析测定—盐析法实验20 醋酸纤维素薄膜电泳分离血清蛋白实验21 聚丙烯酰胺凝胶盘状电泳分离血清蛋白实验22 糖含量的测定II—邻甲苯胺法实验23 总脂的测定—香草醛法实验24 胆固醇的测定—邻苯二甲醛法实验25 血清尿素氮的测定第三节酶活力的分析测定实验26 过氧化氢酶活力的测定实验27 酸性磷酸酶活力的测定实验28 硷性磷酸酶活力的测定实验29 谷丙转氨酶（GPT）活力的测定实验30 蛋白酶活力的测定实验31 淀粉酶活力的测定实验32 脂肪酶活力的测定第四节营养、消化、吸收与代谢机能实验实验33 耗氧率的测定实验34 氨氮排泄率的测定第三部分研究设计型实验第一节疾病对水产动物机能影响的研究实验参考选题1、中国对虾（或南美白对虾）红腿病的发病机制的分析研究2、中国对虾黑鳃病几项生理、生化、免疫指标变化的分析研究3、鲤肠炎病几项生理、生化、免疫指标变化的分析研究4、草鱼出血病几项生理，生化，免疫指标变化的分析研究5、寡糖类免疫增效剂对提高中国对虾抗病力的影响及其作用机制6、微生态制剂对提高鲤抗病能力的影响及其作用机制7、抗生素对鲤免疫机能影响及其作用机制第二节环境因子对水产动物机能影响的研究实验参考选题1、温度对鲤（或牙鲆）生长、消化、代谢、消化酶活力及免疫力的影响2、低温条件下鲤、鲫、鲢、鳙抗寒力的比较研究3、氨氮、硝态氮、亚硝态氮对鲤抗病力影响的研究4、农药对南美白对虾几项生理、生化、免疫指标的影响5、水质净化剂对提高中国对虾免疫力的影响及其作用机制第三节营养和非营养因素对水产动物生长和物质利用影响的研究实验参考选题1、饥饿对美国红鱼的消化、代谢机能的影响2、不同脂肪源对牙鲆生长和代谢的影响3、美国红鱼的营养需求量的研究4、微生态制剂饲料添加剂对促进鲤生长的影响及其作用机制附录常用试剂配制第一部分水产动物生理学实验概述一、水产动物生理学实验的目的、任务与要求（一）生理实验课的目的和任务水产动物生理学实验是水产动物生理学的配套课程，也是水产养殖专业的专业基础课，更是主要实践环节之一。
动物生理学实验指导实验报告
动物生理学实验指导教案动物生理学研究性实验的程序与基本要求《动物生理学》不仅是一门理论性很强的基础性学科，而且是实验性很强的学科，它的许多理论都来自科学实验结果。
因此，在学生经过了一段时间的《动物生理学》理论的学习和一定的实验基本技术操作训练及经典性实验实践之后，进一步进行有关的《动物生理学》研究性实验的基本训练是非常必要的。
通过实验设计、探索性实验过程，能使学生充分认识实验在科学理论产生和发展中的作用；培养学生的创新精神及观察和发现问题的能力；解决实际问题和分析、综合实验结果的能力；通过撰写研究性论文使学生学会用逻辑性语言表达研究结果的能力；为今后独立进行科学研究打下良好的基础。
实验一实验技术与实验仪器一、动物生理学实验课程的教学目的本课程旨在通过实验教学训练学生基本操作技能，培养其动手能力，并使学生通过该课程的学习与理论知识融会贯穿；培养学生实事求是、严谨的科学作风和严密的科学逻辑思维方法，以及观察、分析、解决问题的综合能力。
同时，通过学习实验课程中的新技术、新方法，使学生了解和掌握机能学科实验方法的更新和发展方向，启发学生在机能学科实验研究中的创新性思维。
为培养学生的科学研究思维和科学研究能力奠定良好基础。
二、学习动物生理学实验课程的要求1．做好实验前理论与操作准备(1)熟悉相关理论知识，以明确相关实验的设计目的、实验原理以及正确的实验结果。
(2)预习实验教材中拟进行的实验内容，掌握实验目的与原理，了解实验步骤及操作要点、注意事项等。
2．以严谨的科学态度进行实验(1)实验中严格按操作程序进行。
实验小组各成员合理分工并密切合作，注意培养自己的动手能力与独立解决实验过程中的问题的能力。
(2)仔细、耐心观察实验现象，认真做好记录。
主动联系理论思考、分析实验结果和各种实验现象。
认真总结实验成败原因。
培养实事求是的科学作风。
(3)所进行的实验结果均应完整记录。
整理分析其结果后书写出实验报告。
三、实验结果的记录方法与实验报告的书写要求1．实验结果表示方法(1)图形表示法：实验结果如以图形记录在实验仪器上的，可通过输出设备打印，再附在实验报告上。
动物生理学实验目的、要求和实验室规则
动物生理学实验目的、要求和实验室规则一、实验课的目的生理学是一门实验学科。
它从一开始就建立在实验和观察分析基础上的。
生理学的发展也离不开实验研究。
家畜生理学实验课的目的是通过实验使学生逐步掌握生理学实验的基本操作技术，了解生理学实验设计的基本原理和获得生理学知识的科学方法，验证某些讲授过的生理学基本理论，帮助学生理解、巩固和掌握部分理论内容。
更重要的是通过实验，使学生学会科学的思维方法，提高分析问题和解决问题的能力，培养学生对科学实验的严肃的态度、认真的精神、严谨的工作方法和实事求是的工作作风。
二、实验报告的写作与要求（一）实验报告是对实验结果的总结，也是生理学实验课的基本训练之一。
不论示教实验或自己操作的实验均应独立完成实验报告。
写作应注意文字简练、通顺，书写清楚、整洁。
（二）实验报告的格式1.学号、姓名、班级、组别、日期。
2.实验序号及实验题目。
3.实验目的。
4.实验方法：参考指导书作扼要描述，方法若有变动，另作简要说明。
5.实验结果：实验结果是报告的关键。
对实验结果的记录可用文字说明、列表、绘图等方式进行，记录要真实、正确、详细。
6.讨论和结论：讨论和结论是实验报告的核心。
讨论是根据已知的理论知识对结果进行解释和分析。
要判断实验结果是否为预期的，如果出现非预期的结果，应该考虑和分析其可能的原因，还要指出实验结果的生理意义。
实验结论是从实验结果中归纳出来的一般的、概括性的判断，也就是这一实验所能验证的概念、原则或理论的简明总结。
在实验结果中未能得到充分证明的理论分析，不要写入结论。
实验的讨论和结论的书写是带有创造性的工作，应该严肃认真，不要盲目照抄书本。
三、实验室规则1.遵守学习纪律，按时到实验室，做到有事请假，不得随意缺席。
2.对实验内容的理解程度，是实验能否顺利进行的关键。
因此：实验前（1）仔细阅读实验指导，了解实验目的、要求、操作程序和注意事项。
（2）结合实验内容复习有关理论，做到充分理解。
《第二部分动物生理学》实验指导书.docx
动物生理学实验指导书实验一基本生理实验操作——蛙坐骨神经-腓肠肌标本制备（2学时）［实验目的］学习生理学实验基本的组织分离技术；学习和掌握制备蛙类坐骨神经-腓肠肌标本的方法；了解刺激的种类。
［实验原理］蛙类的一些基木生命活动和生理功能与恒温动物相似，若将蛙的神经-肌肉标木放在任氏液中，其兴奋性在几个小时内可保持不变。
若给神经或肌肉一次适宜刺激，可在神经和肌肉上产生一个动作电位，肉眼可看到肌肉收缩和舒张-•次，表明神经和肌肉产牛了-•次兴奋。
在牛理学实验屮常利用蛙的坐骨神经-腓肠肌标本研究神经、肌肉的兴奋、兴奋性；刺激与反应的规律和肌肉收缩的特征等，制备坐骨神经腓肠肌标木是生理学实验的一项基木操作技术。
［实验对象］蟾赊或蛙［实验药品］任氏液、食盐、1% H2SO4滤纸［仪器与器械］普通剪刀、手术剪、眼科蹑（或尖头无齿银）、金属探针（解剖针）、玻璃分针、蛙板（或玻璃板）、蛙钉、细线、培养皿、滴管、锌铜弓（或电了刺激器）、酒精灯。
［实验方法与步骤］（一）标木制备1.破坏脑脊髓：左手持蛙，用食指下压吻端，拇指按压背部，使蛙头前俯；右手食指沿两鼓膜」［沖向后触摸，触及一凹陷处，即枕骨大孔。
用蛙针由凹陷处乖直刺入枕骨大孔，再向前伸入颅腔，捣毁脑；向后插入椎管，捣毁脊髓。
或把铁剪刀插入口裂，沿两眼后缘剪去头，再以蛙针捣毁脊髓。
待蛙四肢肌肉紧张性完全消失，即表示脑和脊髓己破坏完全。
2.剪除躯干上部及内脏：在腋部用铁剪刀剪断脊柱，将头、前肢和内脏一并弃去，仅保存一段脊柱和后肢。
脊柱的两旁可见坐骨神经从。
3.剥皮：先剪去肛门周I韦I皮肤，然后用左手捏住脊柱断端，右手捏住断端边缘皮肤，向下剥掉全部后肢皮肤。
标本放入盛有林格液的小烧杯中，将手及用过的器械、蛙板洗净，以免皮肤分泌物污染神经-肌肉标本。
若标本系电生理实验用则禁止撕皮，需用剪刀剪断皮F 结缔纟R织来分离皮肤。
4.分离标本为两部分：沿脊柱正中线将标本均匀地分成左右两半，分别作进一步剥制。
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生理学实验指导 广州中医药大学生理教研室目录编写说明 (2)总论 (3)一、绪言 (3)二、常用仪器介绍 (4)三、生理学实验常用溶液及配制方法 (17)四、动物实验的基本操作技术 (19)实验一反射弧分析 (30)刺激与反应，兴奋与兴奋性实验二 (30)实验三 (31)神经干动作电位的引导实验四红细胞渗透脆性试验 (34)实验五红细胞沉降率（血沉）试验 (34)实验六影响血液凝固的因素 (35)实验七 ABO血型鉴定 (36)实验八蛙心兴奋传导系统分析 (37)期前收缩和代偿间歇实验九 (38)实验十蛙心灌流 (41)实验十一人体心电图、心音图、动脉搏动图同步描记 (43)实验十二兔减压神经放电 (44)实验十三蛙肠系膜微循环的观察 (45)实验十四动脉血压的神经和体液调节 (46)实验十五呼吸运动的调节 (47) (49)实验十六、胸内负压的测定实验十七兔膈肌放电 (49)实验十八胃肠运动的观察 (51)实验十九尿生成的影响因素 (52)实验二十损毁小鼠小脑的观察 (54)实验二十一小白鼠脊髓半横切的观察 (55)实验二十二人体脑电观察 (55)实验二十三自行设计实验 (56)编写说明生理学是一门实验性科学。
生理实验课是生理学教学中的重要部分。
生理学实验教学除验证课堂讲授的理论内容外，着重培养学生的实验技能，并通过实验培养学生科学的思维方法和科学的工作态度，提高学生的科学素质。
《生理学实验指导》是根据普通高等教育中医药类规划教材《生理学教学大纲》而编写的。
编写中既注意突出中医特色，也注意遵循科学性、系统性、逻辑性及内容的先进性等基本原则。
实验内容既有人体功能的检测，也有各种动物实验。
实验项目包括了细胞、分子水平；器官、系统水平；整体水平。
既有微观分析，又有宏观综合。
实验技术既保留传统的研究方法，更加强电生理技术，尤其是注重计算机在实验中的应用。
为了提高学生综合分析的能力，《指导》还增加了学生自行设计实验项目。
《指导》的实验项目共23项，教师应根据七年制和五年制本科生理教学计划，尽量安排实施。
由于时间仓促和水平有限，《指导》若有不足之处，亟盼教师们和同学们提出宝贵意见。
广州中医药大学生理教研室2001.12总论一、绪言(一)生理学实验课的目的生理学是一门实验性科学，它的理论是在医学实践、动物与人体的科学研究基础上发展起来的。
因此实验课是生理教学中的重要组成部分。
生理学实验课包括实习、示教及声象教学等部分。
生理实验课的目的，在于通过实验使学生了解获得生理学知识的基本研究方法，初步掌握生理学实验的基本操作技能，以及验证和巩固生理学的基本理论。
同时在实验过程中培养学生以严肃的态度和严密的科学方法从事实验活动，客观地分析和观察现象，并不断提高独立思考和解决问题的能力。
(二)实验课的要求1.课前准备(1)仔细阅读实验指导，了解实验目的、原理、要求、实验方法和步骤。
(2)复习与本次实验有关的理论课内容。
2.实验中（1）遵守实验室规则。
（2）严格按照实验步骤进行操作，正确使用仪器。
（3）实验中，要认真操作，仔细观察，如实记录。
边观察边思考，做到理论联系实际。
（4）实验操作遇有疑难时，要随时找教师或技术员解决。
应爱护实验器材，节省动物与实验消耗用品。
3.实验后（1）清理实验器材，擦洗干净，请教师验收后放回指定地点。
如有缺少或损坏，应立即报告负责教师并进行登记。
（2）整理实验记录，书写实验报告，并按时交给负责教师批阅。
（3） 整理实验结果整理实验结果就是将实验所观察的现象和所获得的数据进行分析、归纳、综合，并找出规律的过程。
通过整理可以加深和进一步明确已经取得的成绩，并训练自己分析、综合问题的能力。
凡属测量和计数资料，均应以正确的单位和数值作出定量表示。
必要时可进行统计处理，以保证结论的可靠性。
有些实验数据可以统计表和图表示，以使结果鲜明、突出，便于比较。
需附结果图时，应使用原始记录，以保证结果的真实性。
(三)书写实验报告报告内容一般应包括题目、目的、方法、结果、讨论和结论。
实验方法可简略书写，避免重复实验指导上的内容。
实验结果，应根据实验过程中所观察到的真实记录，不要按主观想象或过后的回忆而描述。
讨论和结论要在实验记录的基础上，根据已知的理论知识，对实验结果加以分析、概括而最后得出结论。
要从现象中找出规律，从实验结果中归纳出所验证理论的概念和原理。
在讨论实验结果时，要理论密切联系实际。
结论应简明扼要，切合实际。
在实验中未能证实的问题不应写入结论。
对出现非预期的结果，应分析其可能的原因。
(四)生理学实验室规则（1） 自觉遵守学习纪律，不迟到早退，不无故缺席，有事须向教师请假。
（2） 实验者必须穿白大衣。
（3） 实验前必须认真预习实验指导及有关理论内容，必须严肃认真地进行实验并按时完成，实验中不得进行与实验无关的活动。
（4） 保持实验室肃静，不大声说话，以免影响别组实验。
（5） 分配给各组使用的实验器材，不得擅自调换。
仪器出现故障，应立即报告教师，以及时处理或更换。
（6） 爱护国家财物。
实验室内各种仪器设备，不得随意摆弄，以免损坏。
注意节约消耗物品。
公用物品用后应立即放回原处，以免影响别组使用。
如损坏物品，应向教师报告，并进行登记。
（7） 保持实验室整齐清洁，与学习无关的物品不要带进实验室。
（8） 实验完毕，应清理实验器材。
手术器械要洗净擦干。
动物尸体及实验废弃物应放到指定地点，不得随意乱扔。
（9） 每次实验结束后，各组轮流值日，负责实验室清洁卫生及门窗、水电安全检查。
二、常用仪器介绍(一)MS-302微机化生理药理信号记录分析系统1.概述MS-302微机化生理药理信号记录分析系统，具有放大、示波、刺激、记录、监听、打印等多种功能。
可对生物电、压力及张力等信号进行数据采集、处理。
处理结果可实时或“冻结”显示，还可将实时显示存储、重放及将实验图形打印出来，它是完成多种生理实验教学的一种微机化生理实验仪器。
2.结构MS-302微机化生理药理信号记录分析系统，以计算机为基础，配以MS-302硬卡，通过相应接口及连线，将显示器、键盘、打印机连接，构成了显示、操作、记录和打印一体化系统。
图0-1 MS-302媒体化生物信号记录分析系统外形结构示意图3.仪器各部位功能及使用方法(1)显示功能通过显示器，能同步显示实验结果的图形和数据，全屏幕菜单提示使操作更为方便。
通过键盘配合可以实现人机对话，可随时“冻结”及重显实验资料。
还可对屏幕所显示的图形进行测量、标记、剪辑等。
(2)打印功能实验状态下能把显示器所显示的图形打印出来，在重显状态下可对所需资料进行打印。
(3)键盘功能1)功能键：自F 1—F 9已定义成不同功能。
F 1，比较显示方式切换实验中需要将2个通道的图形显示在同一通道上，可执行“参数设置”功能内“显示方式”项目中“比较显示”功能。
用F 1键实现比较显示和正常显示的切换。
在重显示文件功能的文件选择状态下，F 1键被用作删除文件用。
F 2，实验标记在实验过程中需要给出标记时按F 2键，标记内容用↑、↓键翻页，←、→键选条，选到适用条目按Enter键，按1次F 2键仅用1次标记，下次标记需要按F 2键。
若无适当标记内容可选，则按Esc键，3个通道自动生成↑（标记号）和表示标记次序的数字。
当显速慢，前后2次标记相隔太近时，只显示↑号；若相隔非常近时，只在三道图形上出现向下的脉冲。
F 3，屏幕测算对实时或重显信号图形进行测量，按F 3键后，屏幕显示立即“冻结”，状态窗中区显示通道选择的子菜单，用←、→键选择要测算的通道，按Enter键确认，用↑、↓键移动水平方向的白色横线，将线移至所需位置按Enter 键确认界值，该界值用于波形频率计数，波形最高点和最低点数值。
用←、→键将垂直白色竖线移至测量起点，按Enter键自动出现第二个垂直白色竖线（此光标只能位于第一光标右边），将此线移至测量终点，按Enter键确认，这时立即显示出所需要的的参数。
实验者若需标准尺度，按下F3后立即显示通道选择、选择好通道即在该通道显示出标尺，便于记录后测算。
F4，特殊操作当执行“重显资料”功能时，按F4键，程序借用主菜单区前半部显示其特殊操作的子菜单“重显速度、横向压缩、单屏显示、扩展屏幕”，同时重显的图形暂“冻结”，用←、→键移动光标，按Enter键选择子菜单中的项目。
① 重显速度：首先选定重显的速度级，共有21级，以0，1，2……20表示，以0级最快，20级最慢，用→、↓键以1递增或←，↑键以1递减，选择后按Enter键即以所选的速度重显。
若要改变，需按F 4键，重选“重显速度”及“速度级”。
② 单屏显示：进入此子菜单后，按←键显示前屏，按→键显示后一屏。
退出时须按Esc键。
单屏显示时信号的分析结果用红色数字同步显示。
③ 横向压缩：将已记录的信号重显时在时间轴方向上压缩，使原来采样速率较快的展开波形以慢而密集的形式显示，便于观察信号在较长时间内的变化趋势。
“横向压缩比”范围分为1:1，1:2……1:40共40档，1:1为不压缩原形重显，依次增加压缩比，波形越来越密，重显速度也相应变慢。
④ 横向扩展：将信号进行横向放大显示，显示为1:1、1:2、1:4，即正常、2倍、4倍。
⑤ 扩展屏幕：其功能是将三通道分区显示的形式变成三道合一，扩展为整个信号窗显示，信号幅度加大1倍。
若再次执行本功能，则回复到原来分区显示的状态。
F5，开刺激器按F5键启动刺激器。
F6，关刺激器按F6键刺激终止。
F7，开始剪辑按F7键开始剪辑你认为理想的重显资料，生成选辑的数据文件。
F8，终止剪辑按F8键结束该资料辑录。
F9，打印图形按F9键可打印屏幕显示的图形和数据，打印内容由“打印选择”设定。
2)操作键：Enter键：按Enter键表示确定，选中该菜单项，由上层菜单进入下层；并在子菜单区显示下层子菜单；开始执行该菜单项的功能。
Esc键：按Esc键取消对该菜单项的选择，并退回上级菜单。
在主菜单按Esc键，显示“监视状态”、“记录状态”和“结束实验”的对话信息。
若选“记录状态”，可由监视状态转入记录，正式将实验数据存入硬盘；如选“监视状态”，由记录状态转入监视，暂停数据存盘，但未退出系统，不改变原有设置；选“结束实验”，则退出本系统，返回DOS提示符。
光标键：→键或↓键：按→键或↓键的作用是向右或向下选择菜单或文件，或递增要设定的参数，有的参数按↓键大量递增，起粗调作用，按→键小量递增，起细调作用。
←键或↑键：其作用是向左或向上选择菜单或文件，或递减需设定的参数，有的参数按↑键大量递减，按←键小量递减，也分别起粗、细调节的作用。
空格（Space）键：在任一状态按空格键，屏幕显示画面暂时“冻结”，可仔细观察图形，再次按空格键，便消除“冻结”，恢复原来的显示状态。