流式细胞仪检测胞浆内抗原MPO的实验及临床研究
髓过氧物酶(MPO)孤立表达在急性B淋巴细胞白血病患者生存结局中的临床价值
髓过氧物酶(MPO)孤立表达在急性B淋巴细胞白血病患者生存结局中的临床价值洪俊; 饶永彩【期刊名称】《《中国实验诊断学》》【年(卷),期】2019(023)011【总页数】6页(P1910-1915)【关键词】髓过氧物酶; B淋巴细胞白血病; 流式免疫表型; 累计复发率; 无事件生存率【作者】洪俊; 饶永彩【作者单位】武汉大学人民医院检验科湖北武汉 430060; 武汉生物制品所湖北武汉 430060【正文语种】中文【中图分类】R733.7对急性白血病患者进行正确分类是采用最佳治疗方案的关键。
2008年世界卫生组织(WHO)关于造血和淋巴组织肿瘤中对急性B淋巴细胞白血病(B-ALL)的分类诊断是基于B淋巴细胞早期分化的免疫表型证据进行定义的[1]。
然而,当伴随有显著粒细胞或T系抗原共表达时, 2008版 WHO分类直接将这种情况归为混合表型急性白血病(MPAL)。
在新版的2016 WHO分类中也没有对该分类方式进行修订和更新[2],髓过氧化物酶(MPO)的表达被认为是细胞髓系来源的确凿证据之一;通常,典型的髓系分化往往伴随着除MPO外的其他髓系分化证据。
然而,有研究表明[2-4]部分非典型B-ALL的免疫表型分析中会出现孤立表达MPO的现象(仅MPO表达无其他任何髓系标志表达);尽管这种情况在客观上符合2008年WHO关于MPAL(B系 /髓系)的标准,但不少学者一直不建议在没有其他特征性细胞遗传学异常情况下将这些病例草率归于MPAL,建议慎重诊断[2-4]。
此外,按照欧洲白血病免疫特征分类(EGIL)分类标准,孤立表达MPO 非典型B-ALL免疫表型的髓系标志积分如果达不到诊断MPAL的评分阈值应直接归为B-ALL[5]。
另外,在2016年的WHO分类更新中,提到了非典型B-ALL存在以低水平的MPO表达是其唯一的骨髓特征的现象,并指出“这一发现的临床意义尚未确定[2]。
因此,研究孤立表达MPO的临床意义,对于这种罕见急性白血病的准确分类,从而指导临床治疗至关重要。
FCM(流式细胞术检测)原理及临床应用
流式细胞术(flow cytometry FCM)是利用流式细 胞仪对单个生物颗粒(红细胞、白细胞、各类组织细 胞、血小板、微生物等)以及人工合成微球的物理和 生物学特性进行多参数定量分析,并能对特定细胞 群体加以分选的分析技术。
FCM的工作原理
流式细胞仪组成:
1.液流系统 2.光学系统 3.数据处理系统
双标记或多标记分析:目前使用的流式细胞仪 能用一个激光束激发检测三色甚至四色荧光信 号。检测时需注意荧光补偿。
常用免疫荧光染料组合
荧光染料 FITC+PE
激发波长 (nm)
488
发射波长(nm) 525、575
颜色 绿色、橙色
FITC+PeCy5
488
525、675
绿色、红色
FITC+ECD
488
实体瘤以多倍体居多;
G0 期:DNA 合成静止期 G1 期:DNA 合成前期 S 期: DNA 合成期 G2 期:DNA 合成后期 M 期: 细胞分裂期
DNA 倍体 2N 2N
2N-4N 4N 4N
DNA非2倍体出现是鉴别良性与恶性肿瘤的特异性指 标:
良性肿瘤和正常组织良性增生不出现DNA非2倍体细 胞而恶性肿瘤常可出现异倍体细胞;
过去认为 FCM测定残存白血病细胞不可靠, 因为现用的 McAb不能鉴别正常血细胞与白血 病细胞。虽然至今尚未发现白血病细胞特异抗 原,但近来有人提出根据白血病细胞的以下特 征, FCM检测的敏感度可明显提高
白血病细胞的某些抗原表达量明显高于相应 的正常血细胞
如小儿ALL,其CDl0+细胞的荧光强度可 高达3-4个对数值,而其 CD45则为弱阳性或 阴性。
525、625
流式细胞术检验白血病的基本原理与流程
流式细胞术检验白血病的基本原理与流程Flow cytometry is a technique used to analyze the physical and chemical characteristics of particles in a fluid as it passes through at least one laser. 流式细胞术是一种用于分析液体中颗粒的物理和化学特征的技术,它通过至少一个激光来实现。
This technique is commonly used in the diagnosis of various medical conditions, including leukemia. 这种技术通常用于诊断多种疾病,包括白血病。
Flow cytometry is based on the principle that cells, when suspended in a fluid and passed through the path of a laser beam, scatter light in patterns that correlate with specific properties of the cells. 流式细胞术的基本原理是,当细胞悬浮在液体中,并通过激光束路径时,它们以与特定细胞特性相关的方式散射光线。
This allows for the identification and analysis of different types of cells, including cancerous cells. 这使得可以鉴定和分析不同类型的细胞,包括癌细胞。
In the context of leukemia, flow cytometry plays a crucial role in the diagnosis and classification of the disease. 在白血病的背景下,流式细胞术对于该疾病的诊断和分类起着至关重要的作用。
细胞功能的流式细胞仪检测
细胞功能的流式细胞仪检测细胞功能检查在近几年来由于流式细胞仪技术的开展有了很大的提高,不同于其它技术,最大的一点在于流式细胞仪能快速、定量地检测,分析单个不同细胞的功能,并且获得大量同一细胞或不同细胞总体的状况,也就是说常规的一些标本检测即可满足多人份的不同细胞群体的检查结果。
本章节主要涉及的是吞噬细胞(包括巨噬细胞和多形核细胞)。
影响吞噬细胞的数量和功能的因素很多,其中包括各种药物作用,例如皮质类固醇药物常常引起循环血液中白细胞数量的升高,其机理是主要促进骨髓中的白细胞释放,同时降低白细胞粘附血管内皮的能力至减少了白细胞的血管外移,还有轻℃提高了白细胞在循环血液中的半衰期。
正常情况下,中性粒细胞在骨髓中需5-7天后释放至循环血液中,其半衰期仅为7h,当趋向和进入各种组织中,在1至2天内发挥其生理功能,最终不管其功能状况如何(静止或激活),主要经过巨噬细胞的吞噬和粘膜表面的降解来完成。
由于中性粒细胞在人体中数量大、半衰期短,在微环境中稍微有变化,即会产生一些复杂的生理作用。
本节目的是介绍用流式细胞仪检测及阐述中性粒细胞和巨噬细胞的功能。
吞噬功能一般来说,吞噬过程大致分为几步:首先是识别,然后相互间接触、结合,最后才是内吞与消化。
其中关键的一步在于它们之间的正常接触。
当机体调理作用的紊乱和吞噬细胞的分解作用的缺陷,常引起吞噬的异常现象。
介导吞噬的细胞表面受体主要是C3b(CR)和FcR 受体。
Bassoe和 Berbnes运用流式细胞法很好地分析了细菌吞噬现象,指出流式细胞仪测定的两大优点:1. 要求的细胞数量相对较少;2. 白细胞分离步骤不多。
因此它特别适用于儿童等低年龄患者。
其检测原理是利用吞噬细胞内吞标记了FITC的细菌,并且保持吞噬细胞细胞膜的完整性,使后加入的EB染料只能结合未被吞噬的细菌,这样通过流式细胞仪可以区分已吞噬细菌和末吞噬细菌的吞噬细胞等情况。
应用流式细胞仪检测吞噬功能的方案很多,依据被用来内吞的微粒不同而言。
流式技术在血液科的应用
流式技术在血液科的应用
流式细胞术(Flow Cytometry,FCM)在血液科的应用主要体现在对血液
疾病的诊断、治疗和预后评估上。
1. 诊断:流式细胞术可以对外周血细胞或骨髓细胞进行抗原表达的检测分析,有助于对各种血液病进行诊断、分型和分类。
例如,对于白血病,可以通过流式细胞术进行免疫分型,有助于确定治疗方案和预后评估。
对于淋巴瘤,流式细胞术也可以用于诊断和分类。
2. 微小残留病监测:对于一些血液肿瘤,尽管在治疗后临床症状可能消失,但可能仍存在微小残留病灶,流式细胞术可以用于监测这些微小残留病灶,以评估治疗效果和预测复发风险。
3. 预后评估:流式细胞术检测的抗原表达等指标可以用于评估疾病预后。
例如,一些研究表明,急性白血病患者中CD34+细胞的比例与疾病预后相关。
4. 免疫治疗靶点寻找:流式细胞术可以用于寻找免疫治疗的靶点,例如寻找肿瘤特异性抗原等。
以上信息仅供参考,如有疑问或想了解更多相关信息,建议咨询专业医师或查阅医学专业书籍。
流式细胞术实验报告
一、实验目的本实验旨在通过流式细胞术技术,对细胞群体进行快速、精确的分析和定量测定,研究细胞的物理与化学性质,并对细胞进行分类和分选。
通过本次实验,掌握流式细胞仪的工作原理,了解其在细胞生物学研究中的应用。
二、实验原理流式细胞术(Flow Cytometry,FCM)是一种对液流中排成单列的细胞或其它生物微粒逐个进行快速定量分析和分选的技术。
其基本原理是将经过荧光标记的细胞或微粒,在流动系统中以高速通过,同时利用激光束照射细胞,通过光散射和荧光信号来获取细胞的大小、形态、表面标记物等信息。
最后,通过数据分析和可视化展示,对细胞进行计数、分类和分析。
三、实验材料与仪器1. 实验材料:- 细胞样本:小鼠脾细胞、Jurkat细胞- 荧光标记抗体:CD45-FITC、CD3-PE、CD4-APC- 溶液:磷酸盐缓冲盐溶液(PBS)、荧光染料(如PI)2. 实验仪器:- 流式细胞仪(如BD FACS Calibur)- 离心机- 恒温培养箱- 移液器四、实验步骤1. 细胞制备:- 收集小鼠脾细胞或Jurkat细胞,用PBS洗涤后,调整细胞浓度为1×10^6个/mL。
- 加入荧光标记抗体,室温下孵育30分钟。
- 用PBS洗涤细胞两次,去除未结合的抗体。
2. 流式细胞术分析:- 将处理好的细胞加入流式细胞仪,设置合适的参数进行检测。
- 收集数据,进行细胞分类和分析。
3. 数据分析:- 利用流式细胞术分析软件(如CellQuest、FlowJo)对数据进行分析,包括细胞计数、分类、DNA含量分析等。
五、实验结果与分析1. 细胞分类:- 通过流式细胞术,成功将小鼠脾细胞和Jurkat细胞分为不同的亚群,如T细胞、B细胞等。
2. DNA含量分析:- 通过PI染色,检测细胞的DNA含量,发现小鼠脾细胞和Jurkat细胞均处于G0/G1期。
3. 表面标记物分析:- 通过CD45-FITC、CD3-PE、CD4-APC抗体检测,发现Jurkat细胞为T细胞,小鼠脾细胞中含有B细胞和T细胞。
用于流式细胞分析的细胞内抗原染色方法总结
用于流式细胞分析的细胞内抗原染色改进的基本免疫荧光染色和流式细胞分析操作步骤可用于在单细胞水平上同时流式细胞分析表面分子和细胞内抗原。
通常,细胞用甲醛固定以稳定细胞膜,然后用破膜剂或酒精透化,使得抗细胞内抗原的抗体可以在细胞内进行染色。
染色细胞内的蛋白质时,重要的是要考虑它们的位置,因为这可能决定了最优的操作步骤和缓冲系统。
例如,核蛋白和许多分泌蛋白与Foxp3 /转录因子染色液组合配合良好,而分泌蛋白如细胞因子和趋化因子搭配细胞内固定和破膜缓冲液组合很好。
最后,有几种磷酸化的信号蛋白可能在前面提到的两种缓冲系统中不起作用,但可与固定/甲醇方案一起使用。
应根据经验确定不同缓冲系统和方案中的抗体性能。
细胞表面蛋白质染色操作步骤:1,取100-200w细胞(流式收20w),1200rpm离心8min,留100μL,将细胞重悬。
2,加入1mL 5% BSA(PBS配),1200rpm离心5min,留100μL,将细胞重悬。
重复两次。
这步是封闭,封闭非特异性的表面蛋白分子,防止与抗体非特异性结合。
3,每种抗体加0.3-0.5μL,4℃避光30min。
4,加1mL PBS 终止,1200rpm离心5min,留100μL,将细胞重悬。
5,如果不能马上过流式,加100μL4%多聚甲醛(PBS配),4℃固定。
细胞内抗原染色方法:一、两步法:细胞内(细胞质)蛋白质。
二、一步法:细胞内(核)蛋白质。
三、固定/甲醇的两步法。
一、两步法:细胞内(细胞质)蛋白质在该操作步骤中,固定步骤之后是破膜,在细胞膜上穿孔,这需要在所有后续步骤中持续存在破膜液。
这使得抗体可以进入细胞的细胞质。
因此,所有细胞内染色必须在存在破膜液的条件下进行。
该操作步骤推荐用于体外或体内活化后个体细胞中的胞浆蛋白、细胞因子或其他分泌蛋白的。
简介流式细胞仪
一、简介流式细胞仪(一)流式细胞仪概念流式细胞术(Flow Cytometry ,FCM)是一种对处在液流中的细胞或其它生物微粒(如细菌)逐个进行多参数的快速定量分析和分选的技术。
简言之,流式细胞仪是测量染色细胞标记物荧光强度的细胞分析仪,是在单个细胞分析和分选基础上发展起来的对细胞的物理或化学性质,如大小、内部结构、DNA、RNA、蛋白质、抗原等进行快速测量并可分类收集的高技术,FCM以其快速、灵活、大量、灵敏和定量的特色,广泛应用于基础研究和临床实践各个方面,包括细胞生物学、肿瘤学、血液学、免疫学、药理学、遗传学及临床检验学等,在各学科领域发挥着重要的作用。
(二)原理待测样本的细胞悬液,在鞘液的包围和约束下,细胞排成单列高速由流动室喷嘴喷出,形成细胞液柱。
当液柱通过检测区,在入射的激光束照射下产生前向散射光(FSC)和侧向散射光(SSC),它们分别反映细胞大小和颗粒度,根据这些特性可以将细胞分类。
经一种或几种特殊荧光标记的样本,在激光束的激发下所产生的特定荧光,可被光学系统检测并输送到计算机进行分析,得到细胞相应的各种特性。
(三)流式细胞仪检测的细胞特性细胞结构组成 细胞功能大小 细胞表面、胞浆、核特异性抗原粒度 细胞活性DNA、RNA含量 胞内细胞因子蛋白质含量 激素结合位点钙离子、pH值、膜电位 酶活性二、流式细胞仪的临床检验项目目前在国内最常见的临床应用有两大类:一为肿瘤细胞的DNA含量析; 另一为细胞表面的表型测定,包括淋巴细胞亚型分析、免疫功能监测、白血病和淋巴瘤免疫分型、残余白血病检测、以及HLA-B27组织抗原检测等等。
1、淋巴细胞亚群分析淋巴细胞亚群分析可以通过相对计数、绝对计数与率的变化监控疾病状态下的免疫状况(如肿瘤、感染性疾病、免疫性疾病等),以此辅助诊断、追踪病情发展及决定用药时机。
检测原理:利用各种单克隆抗体与淋巴细胞表面的抗原结合,再配合多色荧光染料,即可以把各种不同功能的淋巴亚群区分开来,进而得到各亚群的相对比例。
流式细胞术原理及临床应用-PPT文档
FCM检测白血病微小残留病变(MRD):
MRD 是 白 血 病 复 发 的 主 要 根 源 , FCM 的 高 特 异性和敏感性可以在患者缓解期检测是否有残 留病变细胞,早期探测MRD,以免复发
FCM在临床肿瘤学中的应用
1.血液标本的检查 ● 肿瘤患者的免疫功能检查 ● 肿瘤患者的粘附分子检查:在肿瘤的浸润与转
细胞凋亡的生物学意义
胚胎形成、肌体正常发 育、衰老和损伤细胞的清 除以及肿瘤的发生、发展 和转归等都与细胞凋亡有 关。
生物医学的研究热点
FCM在血栓性疾与止血中应用
由于活化血小板是血栓的主要
成分之一,血小板活化程度的增 高与疾病的发生发展有关。 利用 流式细胞仪可检测血小板活化指 标,了解血小板状态和活化进程 。 巨血小板 血小板无力症 网织血 小板
肿瘤细胞耐药性
MDR是由多药耐药基因编码的P糖蛋白(P-gp) 亲脂化合物,包括多种抗癌药物和荧光染料的跨膜性 排出泵。当淋巴细胞出现MDR阳性细胞时,患者对 化疗药物开始出现耐
细胞凋亡是由基因控制的细胞自主的有序 的死亡。它涉及一系列基因的激活、表达以及调 控等的作用;是为更好地适应生存环境而主动争 取的一种死亡过程。 坏死(necrosis):坏死是细胞受到强烈理化或 生物因素作用引起细胞无序变化的死亡过程。表 现为细胞胀大,胞膜破裂,细胞内容物外溢,核 变化较慢,DNA 降解不充分,引起局部严重的 炎症反应
可用流式细胞仪分析的标本
外周血、骨髓、癌组织、癌旁组织、各种体液 (尿、脑脊液、胸腹水、肺泡灌洗液等)
单细胞生物、特殊处理的植物细胞、某些非细胞 粒子、可溶性分子
流式细胞仪的基本功能
•细胞表型分析:包括细胞膜、胞浆内蛋白表达及核膜成份分析 •DNA含量及细胞周期分析、细胞凋亡检测 •目标细胞分选 •自身免疫性疾病相关HLA抗原分析、自身抗体的检测 •流式蛋白定量技术:血浆中各种细胞因子的含量
流式细胞术在成熟淋巴细胞肿瘤诊断中的应用
01 引言
03 参考内容
目录
02 实验方法
引言
流式细胞术(Flow Cytometry,FCM)是一种在医学领域中广泛应用的技术, 具有高效、快速、敏感等优点。它通过将细胞悬浮在流水中,并利用特定的抗体 对细胞进行标记,从而对细胞进行种类、功能等方面的分析和检测。在淋巴细胞 肿瘤诊断中,流式细胞术能够通过对成熟淋巴细胞的表面标志物进行检测,为临 床提供更准确、更快速的诊断结果。
参考内容三
流式细胞术(Flow Cytometry,FCM)是一种在液流中快速检测细胞特性的 技术。它已经成为免疫学研究中的重要工具,并被广泛应用于免疫细胞的分型、 功能和活性测量。
1、细胞分型:流式细胞术可以用来对免疫细胞进行精细的分型。通过使用 不同的抗体标记,可以识别和区分各种类型的淋巴细胞,如T细胞、B细胞、NK细 胞等。同时,对于细胞亚群的识别和计数,流式细胞术也具有高灵敏度和高精度 性。
4、疾病诊断:流式细胞术在免疫学中的应用也扩展到了临床诊断。例如, 流式细胞术可以用来检测自身免疫疾病、癌症和感染等疾病中的异常免疫反应。
5、疫苗开发:流式细胞术可以帮助科学家们研究免疫反应的机制,从而为 疫苗开发提供重要的信息。例如,通过流式细胞术,科学家们可以跟踪疫苗接种 后免疫细胞的反应,以便优化疫苗设计和接种方案。
1、免疫分型:流式细胞术能够通过对细胞表面抗原的检测,对淋巴细胞、 白血病、骨髓瘤等免疫相关疾病进行分型和诊断。例如,通过检测T细胞亚群的 分布和功能,可以对自身免疫性疾病、感染性疾病等进行诊断和鉴别诊断。
2、感染诊断:流式细胞术能够快速准确地检测病毒、细菌和其他微生物等 感染引起的特异性免疫反应。例如,通过检测抗原特异性抗体水平,可以快速诊 断流感、肺炎等感染性疾病。
流式细胞仪的原理及应用
HLA-B27分析
HLA-B27
• HLA-B27是MHC I类抗原,在有核细胞上广泛表达
• HLA-B27的表达与强直性脊柱炎高度相关,在其它血 清阴性骨关节病、银屑病性关节炎、葡萄膜炎等也有 明显表达
• 使用流式细胞仪,可以快速、灵敏、准确地分析HLAB27
• BD HLA-B27 Kit检测HLA-B27,报告检测的平均荧光 强度,根据界值判定,得到阴性/阳性结果。实验的 灵敏度为100%,特异性为97.5%
细胞功能
细胞表面/胞浆/核的特异 性抗原
细胞活性 细胞内细胞因子 酶活性 激素结合位点 细胞受体
当前流式细胞分析发展趋势
从相对细胞计数到绝对细胞计数 从相对定量到绝对定量分析 从单色到多色荧光分析 从细胞膜成分到细胞内成分分析 从细胞分析到可溶性成分的流式细胞分析
HLA-B27
HLA-B27阴性 样本
HLA-B27阳性样本
流式细胞术在临床血液 学中的应用
流式细胞仪的临床血液学应用
• 白血病和淋巴瘤免疫分型 • 残留白血病 • 造血干细胞计数 • 网织红细胞的分析 • 阵发性睡眠性血红蛋白尿(PNH)诊断 • 血小板分析
血小板膜糖蛋白分子的表达 血小板活化 网织血小板分析 血小板自身抗体检测 网织血小板计数
光电二极管
荧光补偿原理
• 颜色补偿:采用合适的方法校正荧光染料之间叠加 所造成的误差。在完成双色以上荧光标记的样本时 ,都需要作颜色补偿。
• 带通滤片接受的是一定带宽波长的荧光,故会有干 扰光同时被接收,然后一同进入PMT进行光电转换 并放大。
• 通常干扰光占该染料所发出荧光总量的X%
补偿模型图
流式细胞仪原理 及其应用
流式细胞术实验方法及应用
淋巴细胞
T淋巴细胞(CD3+)
CD3+CD8(CD4+)
IFN-r
IL-4
数据显示采用的图:散点图、直方图、密度图 和二维等高图等。最常用的为单参数直方图 和双参数散点图。
FSC
SSC
参数的意义: FSC的强度与细胞的大小有关,也就是说,细胞越大,
散射光越强,细胞越小,散射光越弱; SSC对细胞膜、胞质、核膜的折射率更为敏感,可反
三、单克隆抗体标记荧光探针选择
1.了解激发光波长和发射波长 常用荧光素
异硫氰酸(FITC)
藻红蛋白(PE)
碘化丙啶(PI)
藻红蛋白偶联物(PECY5)
藻红蛋白偶联物(PECY7)
别藻青蛋白(APC)
别藻青蛋白偶联物 (APC-CY7)
激发光波长(nm )
488 488 488 488
488
633 633
细胞群周期与DNA倍
体时,将DNA含量直 方图分为三部分, 即G0/G1、S、G2/M
G0/G1 (2C)
S (2C→4C)
GG22//MM
(4(4CC) )
三个细胞峰。
方法:
细胞悬液(1*106) 70%冰乙醇 4ºC ,24h 离心去固定液 PBS洗2次 RNase
30min PBS洗1次
八、数据分析
流式细胞术的目的是对我们感兴趣的细胞进行 分析,其中设门技术是流式细胞数据分析中最为独 特的技术,是指在细胞分布图中指定一个范围或一 片区域(门),对其中的细胞进行单参数或多参数 分析。设门包括线性门、矩形门、圆形门、多边形 门、任意门和四象门等。
任意门、矩形门
线性门
四象门
多重逻辑门:当一种细胞有两种以上的参数需要被 分析时,常需要设多个门,各门之间由此出现逻 辑关系,此种设门技术称为多重逻辑门或联合门。
细胞免疫流式实验报告
细胞免疫流式实验报告1. 引言细胞免疫流式实验是一种常用的分析细胞表面标记物和内表达物的方法。
该实验通过结合细胞免疫学和流式细胞术的原理,能够快速准确地对细胞进行分类、定量和表型描述。
本实验旨在研究不同细胞表面标记物的表达情况,从而深入了解细胞免疫功能。
2. 实验材料和方法2.1 实验材料- 人外周血单个核细胞(PBMCs)- 流式细胞仪- 一系列细胞表面标记物的单克隆抗体- 细胞培养基- 离心管- 生理盐水- PBS缓冲溶液- 表面标记物的荧光染料2.2 实验步骤1. 采集人外周血,分离PBMCs;2. 使用生理盐水洗涤PBMCs,并离心沉淀细胞;3. 用PBS缓冲溶液漂洗细胞,并离心沉淀;4. 重新悬浮细胞,根据实验设计将细胞分为不同的实验组和对照组;5. 按照实验需求,添加特定荧光染料标记细胞表面标记物;6. 在流式细胞仪上设置相应参数进行数据采集和分析;7. 对数据进行统计学处理和结果分析。
3. 实验结果在本次实验中,我们使用了一系列具有特定细胞表面标记物的单克隆抗体和相应的荧光染料。
我们成功地对PBMCs中的不同细胞类型进行了表型鉴定和数量统计。
通过流式细胞仪的数据采集和分析,我们得到了不同细胞表面标记物的表达情况。
例如,CD3标记物用于鉴定T细胞的表型和数量,CD19标记物用于鉴定B细胞,CD14标记物用于鉴定单核细胞,等等。
通过统计学处理,我们得到了不同细胞种类的百分比和细胞数量。
4. 结果分析根据实验结果,我们可以看到PBMCs中的T细胞、B细胞和单核细胞的百分比分别为65%、20%和15%。
其中,CD4阳性细胞占T细胞总数的70%,CD8阳性细胞占T细胞总数的30%。
此外,CD14阳性细胞占单核细胞总数的80%。
这些结果表明,在正常外周血中,T细胞是最主要的细胞类型,而B细胞和单核细胞的数量相对较少。
此外,我们还发现在某些疾病状态下,特定细胞表面标记物的表达情况会发生改变。
通过与对照组的比较,我们可以进一步了解细胞免疫功能的变化,从而为疾病的诊断和治疗提供参考。
流式细胞术检验白血病的基本原理与流程
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流式细胞术及其临床应用课件(1)
➢ 激发光源 ➢ 光学系统
信号收集与光电转 换系统
计算机与分析系统
细胞分选与浓缩系统
激发光源 滤光片
流动室、鞘 液和样本流
信号检测器
计算机分析
(二)激光光源与光学系统
(一)激发光源 :激光器
气体激光器:氩离子(488nm、355nm)、氦氖(633nm)、氪离子 (647nm)、氪氩(568nm);
(四)计算机和分析系统
十字门
线性门
流式细胞仪特点
流式细胞术的最大特点是能在保持细胞及细胞器或微 粒的结构及功能不被破坏的状态下,通过荧光探针的 协助,从分子水平上获得多种信号对细胞进行定量分 析或纯化分选
细胞不被破坏,测量快速、大量、准确、灵敏、定量
目前国内主要流式细胞仪厂家 Beckton Dickinson(BD) BACKMAN COULTER
淋巴细胞亚群分析
试剂:BD Multitest IMK Kit 标本:外周血(常用) 配色:CD3-FITC/CD8-PE/CD45-PerCP/CD4-APC
(三)荧光信号
目前常用FCM配置(BD Calibar) 488nm激光管常用染料有 第一通道(FL1):FITC (Fluorescein Isothiocyanate) 第二通道(FL2):PE (Phycorey- thrin) 第三通道(FL3):PerCP (Peridinin Chlorophyll Protein) PE-Cy7、PE-Cy5、 PerCP-Cy5.5 633nm激光管常用染料有
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Counts
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流式细胞术在临床检验中的应用及前景
Advances in Clinical Medicine 临床医学进展, 2023, 13(5), 8355-8360 Published Online May 2023 in Hans. https:///journal/acm https:///10.12677/acm.2023.1351168流式细胞术在临床检验中的应用及前景卢春丽,薛 雯,莫秋菊,荆环云*中国人民解放军联勤保障部队第九二四医院检验科,广西 桂林收稿日期:2023年4月22日;录用日期:2023年5月15日;发布日期:2023年5月24日摘 要流式细胞术(flow cytometry, FCM)是七十年代发展起来的一项高学科技术,它不仅可以测量细胞大小、内部颗粒性状,还可对细胞表面、胞浆抗原、细胞内的核酸、细胞因子等进行定量、快速、客观、多参数相关检测。
它是集光学、电子学、流体力学、细胞化学、物理学、生物学、免疫学、以及激光和计算机等多门学科和技术于一体的综合运用产物。
流式细胞仪具有检测速度快、测量指标多、采集数据量大、分析全面、方法灵活等特点,随着其性能的不断改进和测定方法与技术的快速发展,FCM 已成为某些疾病不可或缺的辅助诊断技术。
本文就流式细胞术的原理及在各领域的应用、发展趋势进行综述。
关键词流式细胞术,临床检验,应用及前景Application and Prospect of Flow Cytometry in Clinical ExaminationChunli Lu, Wen Xue, Qiuju Mo, Huanyun Jing *Department of Clinical Laboratory of Guilin No. 924 Hospital, Guilin Guangxi Received: Apr. 22nd , 2023; accepted: May 15th , 2023; published: May 24th , 2023AbstractFlow cytometry (FCM) is a high-tech technology developed in 1970s, which can not only measure cell size and internal particle properties, but also quantitatively, rapidly, objectively and mul-ti-parameter correlated detection of cell surface, cytoplasmic antigen, intracellular nucleic acid, cytokine, etc. It is a collection of optics, electronics, fluid mechanics, cytochemistry, physics, biol-ogy, immunology, as well as laser and computer and other disciplines and technologies in one *通讯作者。
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复旦大学硕士生论文流式细胞仪检测胞浆内抗原MPO的实验和临床研究摘要目的:评价流式细胞仪(FCM)检测胞浆内抗原MPO的方法,探讨实验中各因素对检测结果的影响;初步评价CD34+/MPO+/CD45一水“表现型在监测急性粒单系白血病微小残留病(MRD)O的意义和价值。
方法:三染色一流式细胞仪(FCM)分析结果:1.以髓系细胞株HL一60为检测标本,用FCM检测胞浆内抗原MPO。
在FCM上以FSC/SSC设门,以FSC.SSC.平均荧光指数(MFI)相对荧光指数(RFI)为评测指标;经比较,FACS、.Fix&Perm、Fixation&Permeabilization三种破膜剂中,FACS破膜剂对细胞的FSC/SSC.影响最小,RFI明显高于其他两种。
同时通过比较其他实验条件(破膜时间,标本放置时间,不同荧光标记)对结果的影响,提出FCM检测胞浆内抗原MPO的建议方案。
2.检测41例急性白血病患者,评价MPO,其他髓系标志CDl3CDl4CDl5CD33CDll7lysozyme以及CD34+/MPO+/CD45。
m”表现型在急性白血病中的表达情况。
结果表明胞浆内抗原MPO对急性粒单系白血病具有高敏感性和特异性,CD34在急性白血病中有高表达,且CD34+/MPO+/CD45叫“”表现型在急性粒单系白血病中高表达,而淋系白血病中未见表达。
检测20例正常入骨髓标本,CD34+/MPO+/CD45叫““表现型在正常人骨髓中低表达,仅为10。
左右。
提出CD34+/MPO+/CD45刊沛大于10-4为急性粒单系白血病MRD的检出标准。
3.建立急性白血病微小残留病(MRD)的细胞模型,采用多参数流式细胞仪(MD—FCM)方法和APAAP方法分别检测,表明MD.FCM法比APAAP法敏感,前者检测精度可达10一。
并以CD34+/MPO+/CD45_坩沛为监测指标,监测7例急性粒单系白血病患者,显示与传统细胞形态学监测相比,该方法具有更高的敏感性,更可提早提示复发。
讨论:本实验通过对髓系细胞株HL一60来检测胞浆内抗原MPO,比较不同破膜复旦大学硕士生论文剂和其他不同实验条件对实验结果的影响,尝试系统评价FCM检测胞浆内抗原MPO的基本实验方法,并提出FCM检测的推荐方案。
与以往文献报告采用临床患者检测不同,本文采用HL一60细胞株作为研究对象,细胞株各细胞之间具有齐同性,克服了临床样本之间的差异以及自血病抗原表达的异质性如抗原表达缺失,抗原表达不同步等,使实验结果更为可信。
据我们的实验结果,提出FCM检测胞浆内抗原MPO的推荐方法如下:样本放置时间在室温下应小于24小时。
调整样本细胞数为10×109/L:取100ul置于Falcon管中,加入FACS破膜剂1×500ul,振荡混匀,避光反应15分钟;加入PBS2ml,300×g离心5分钟,弃上清;加入PE标记的MP020ul,振荡.混匀后避光反应30分钟左右:加入PBS2ml,300×g离心5分钟,弃上清;加入PBS2ml,200×g离心5分钟,弃上清;加入PBS0.5ml重悬浮。
分别以空白管(未加抗体)调整电压,相应阴性对照管划定阴性细胞区域,然后检测标本阳性细胞比例、平均荧光强度算术均值(MFI)和平均荧光强度几何均值(MFIgeo),计算相对荧光指数RFI和RFIgeo。
检测急性白血病微小残留病(MIm)的指标应在急性白血病中高表达,而在正常人骨髓中低表达或不表达。
临床41例急性白血病的免疫表型分析显示,MPO对急性粒单系白血病具有较高的系列特异性,24例急性粒单系白血病中23例表现为MPO阳性,达到95.8%。
CD34作为干祖细胞标志,在白血病细胞表面常有较高表达,本实验显示41例急性白血病中,36例表达CD34,达到87.8%。
CD45/SSC比起传统的FSC/SSC设门可以更好的显示白血病幼稚细胞群。
因此我们推测由CD34、MPO和CD45组合而成的表现型应该在急性粒单系白血病中有较高的表达。
临床病例检测表明CD34+/MPO+/CD45叫m“表现型在急性粒单系白血病中有较高的系列特异性,阳性率达到80%左右。
在正常人骨髓细胞中,CD34+’/MPO+/CD45一m“只有极低表达,约10一5左右。
表明CD34+/MPO+/CD45一棚j“确可作为检测微小残留病MRD的理想指标。
在用CD34+/MPO+/CD45州“表达的HL-60细胞株建立的微小残留病细胞模型上,比较MD.FCM方法检测CD34+/MPO+/CD451““与免疫组化方法(APAAP法),虽然APAAP法可以将形态学和免疫特征相结合,有直观、形象的特点,但其敏感性较MD—FCM差2—3个数量级,MD.FCM可以达到10一,而APAAP法仅有10~一10一。
因此流式细胞仪在检测微小残留病时具有更高的灵敏度,作为检测MRD方法,比APAAP法更适合。
本实验遂利用复旦火学硕士生论文CD34+/MPO+/CD45一““来监测急性粒单系白血病患者的微小残留病(MRD),MRD的检出标准定为10~。
检测7例CD34+/MPO+/CD45“小”表现型的AML患者,显示随着化疗的进行,该表现型细胞逐渐减少。
发现二例患者在白血病复发前CD34+艄Po+/CD45刊”阳性细胞增多,提示MRD扩大;一例患者在完全缓解期间该表现型消失,但在一月后,再次出现该表现型,其MRD复发比临床形态学检测到自血病复发提早约90天左右。
由于目前国内外没有相应资料来借鉴,因此在临床应用中,需要进一步积累病例,总结经验。
关键词:流式细胞术FCMMPO微小残留病(MRD)复旦大学硕士生论文LaboratoryandClinicalResearchOfCytoplasmicAntigenMPODetectionbyFlowCytometry(FCM)AbstractObjective:ToevaluatethemethodofdetectingcytoplasmicantigenMPObyflowcytometry(FCM).andstudythemethodologicalfactorsaffectingflowcytometricanalysis.PreliminarilyassesstheclinicalvalueofCD34*/MPO+/CD45一mi”immunophentotypeforimmunologicaldetectionofminimalresidualdiseaseinacutemyeloidleukemia.Methods:ThreecolorimmunofluorescencestainingflowcytometricanalysisResuIts:1.TakemyeloidcelllineHL一60asthemodel,gatethecellonFSC—SSCacquisitiondotplotinFCM,useFSCSSCandasemi—quantitativeindex--relativefluorescenceindex(RFn—asresults.Threecommerciallyavailablepermeabilization/fixationsolutionswerecompared.:FACS、Fix&Perm、Fixation&Permeabilization.theresultsshowedFACSpermeabilizationhadminoreffect0nthelightscatterpatternsofthetestdcellsamples,andthepercentageofcytoplasmicantigenMPOpositivecellsandRFlweresignificanthigher.thantheothertwo.Bystudingtheothermethodologicalfactorsaffectingflowcytometficanalysis.,thismethodwassystamlyevaluated.leukemiacaSesweredeteetd.MPOcomparedwithother2.Forty-oneadultsacutemyeloidlinagemarkerssuchasCDll7CDl3CD33CDl4CDl5Lysozyme,resultsshowedMPOwasthemostsensitiveandspecificmarkerinthediagonosisofacutemyeloidleukemia.CD34+/MPO+/CD45-/dj”phenotypeWashighlyexpressedinacutemyeloidleukemia,itWasnotexpressedinacutelymphoblasticleukemia.Twentynormalbonemarrowwasdetected,flowcytometficanalysisshowedCD34+/MPO+/CD45-/dimphenotypewasverylowlyexpressedinnormalbonemarrows,justabout10~.3.Withacellmodelofminimalresidualdisease,thesensitivityofFCManalysiswas4复旦大学硕士生论文detected.Itcouldreachthelevelof1per105cells.TakeCD34+/MPO+/CD45一,d”asMRDdetectionindex,7acutemyeloidIeukemiapatientsweredetected。
ResultsshowedleukemiacellpopulationincreasingcouldbemonitoredbeforemorphologicalconfirmationofBMrelapse,Discussion:WetookmyeloidcelllineHL一60asthemodelinthisassay,tryedtore—evaluatetheflowcytometricdetectionofcytoplasmicantigenMPObycomparingdifferentperrneabilizationsandotherdifferentmethodologicalfactors.WithaMRDcellmodel,wecompareddifferentmethodsdetectingMPO,FCMmethodandAPAAPmethod.SOweknewFCMmethodwasmoresensitivethanAPAAPmethod,theformerCandetect1per105cells.Analysisingclinicalacuteleukemiaimrnunophenotypedatas,weknewCD34+/MPO+/CD45一m”wasaspecificlinagemarkerinacuteleukemia.wetriedtouseCD34+nvIPO+/CD45—7曲”phenotypedetecttheminimalresidualdisease(MRD)inAMLpatients.SoWecouldconcludethatflowcytometricdetectionofcytoplasmicantigenMPOwasveryimportantinleukemiaimmumophentypingandminimalresidualdiseasedetecting.Keywords:flowcytometry(FCM)MPOminimalresidualdisease(MRD)5复旦大学硕士生论文第一部分影响FCM检测胞浆内抗原MPO因素的再评估引言髓过氧化物酶(MyoloidPeroxidaseMPO)为中性粒细胞内嗜苯胺蓝颗粒的主要成分,常用的组织化学染色法是对其酶活性进行检测,用免疫标记法是对MPO蛋白的抗原性进行检测。