单克隆抗体制备方法(全)

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单克隆抗体的制备流程

单克隆抗体的制备流程

单克隆抗体的制备流程

单克隆抗体是通过从一个单一的B细胞克隆中获得的抗体,具有高度特异性和亲和力。单克隆抗体制备流程主要包括以下几个步骤:免疫原选择、免疫动物注射、细胞融合、筛选和鉴定、扩大培养和纯化。

1. 免疫原选择

选择一个适当的免疫原对于获得高质量的单克隆抗体非常重要。免疫原可以是蛋白质、多肽、糖类或其他小分子。在选择免疫原时,需要考虑其特异性、稳定性以及是否能够激发机体产生免疫应答。

2. 免疫动物注射

选择适当的实验动物(如小鼠)作为宿主,将免疫原与佐剂混合后注射到动物体内,激发机体产生特异性抗体。通常情况下,需要进行多次注射以增强机体对免疫原的应答。

3. 细胞融合

在动物免疫后,需要从其体内获得抗体产生的B细胞。一种常用的方法是选择脾细胞作为B细胞的来源。将脾脏取出并制备成单细胞悬液,然后与骨髓瘤细胞(如

SP2/0或NS0)进行细胞融合。这一步骤通过加入聚乙二醇(PEG)等化合物来促进细胞融合。

4. 筛选和鉴定

在细胞融合后,需要对混合细胞进行筛选和鉴定,以筛选出产生特异性抗体的杂交瘤细胞。常用的筛选方法包括限稀稀释法、ELISA法和免疫组化等。将混合细胞进

行适当稀释,使每个孔中只包含一个杂交瘤细胞,并培养在含有高浓度免疫原的培养基中。然后使用特异性检测方法检测孔中是否存在特异性抗体。

5. 扩大培养

一旦筛选出产生特异性抗体的杂交瘤细胞,需要将其扩大培养。培养条件需要提供适当的营养物质和生长因子,以确保细胞的生长和抗体的产生。扩大培养一般采用无血清培养基,如Hybridoma-SFM,并在合适的温度和CO2浓度下进行。

单克隆抗体的制作流程

单克隆抗体的制作流程

单克隆抗体的制作流程

一、前期准备工作

1. 确定目标抗体:根据研究需求确定需要制备的单克隆抗体。

2. 筛选免疫原:选择适合的免疫原,如蛋白质、多肽、细胞等。

3. 动物选择:选择适合的动物,如小鼠、大鼠、兔子等。

4. 免疫计划设计:设计出合理的免疫计划,包括免疫剂量、次数、间隔时间等。

二、免疫过程

1. 免疫原制备:将所选的免疫原纯化或合成后进行检测和确认。

2. 免疫动物注射:将免疫原与佐剂混合后注射到动物体内,按预定计划进行多次注射。

3. 血清采集:在最后一次注射后采集动物血清,检测抗体滴度是否达到预期水平。

三、杂交细胞制备

1. 细胞系选择:选择适合的细胞系如SP2/0或NS0等。

2. 细胞培养:将细胞系培养至稳定生长状态,并进行筛选和确认。

3. 细胞融合:将免疫小鼠脾细胞与SP2/0或NS0细胞进行融合,得到杂交瘤细胞。

4. 杂交瘤筛选:利用HAT培养基对杂交瘤进行筛选,筛选出产生单克

隆抗体的杂交瘤。

四、单克隆抗体制备

1. 单克隆细胞培养:将单个杂交瘤细胞进行单克隆分离和培养。

2. 单抗酶标法检测:利用ELISA等技术检测单克隆抗体的特异性和亲

和力。

3. 大规模培养:将筛选出的单克隆细胞进行大规模培养,得到足够多

的单克隆抗体。

4. 纯化和鉴定:通过亲和层析、离子交换层析等技术对单克隆抗体进

行纯化,并进行质量鉴定。

五、应用

1. 体外实验应用:如ELISA、Western blotting等技术中作为检测试

剂使用。

2. 体内实验应用:如流式细胞术、组织切片染色等技术中作为荧光标

记或特异性结合试剂使用。

单克隆抗体的制备

单克隆抗体的制备

单克隆抗体制备

动物脾脏有上百万种不同的B淋巴细胞系,具有不同基因的B淋巴细胞合成不同的抗体。当机体受抗原刺激时,抗原分子上的许多决定簇分别激活各个具有不同基因的B细胞。被激活的B细胞分裂增殖形成效应B细胞(浆细胞)和记忆B细胞,大量的浆细胞克隆合成和分泌大量的抗体分子分布到血液、体液中。如果能选出一个制造一种专一抗体的浆细胞进行培养,就可得到由单细胞经分裂增殖而形成细胞群,即单克隆。单克隆细胞将合成针对一种抗原决定簇的抗体,称为单克隆抗体。

单克隆抗体的制备过程:

1、免疫动物免疫动物是用目的抗原免疫小鼠,使小鼠产生致敏B淋巴细胞的过程。一般选用6-8周龄雌性Balb/c小鼠,按照预先制定的免疫方案进行免疫注射。抗原通过血液循环或淋巴循环进入外周免疫器官,刺激相应B淋巴细胞克隆,使其活化、增殖,并分化成为致敏B淋巴细胞。

2、细胞融合采用二氧化碳气体处死小鼠,无菌操作取出脾脏,在平皿内挤压研磨,制备脾细胞悬液。将准备好的同系骨髓瘤细胞与小鼠脾细胞按一定比例混合,并加入促融合剂聚乙二醇。在聚乙二醇作用下,各种淋巴细胞可与骨髓瘤细胞发生融合,形成杂交瘤细胞。

3、选择性培养选择性培养的目的是筛选融合的杂交瘤细胞,一般采用HAT 选择性培养基。在HAT培养基中,未融合的骨髓瘤细胞因缺乏次黄嘌呤-鸟嘌呤-磷酸核糖转移酶,不能利用补救途径合成DNA而死亡。未融合的淋巴细胞虽具有次黄嘌呤-鸟嘌呤-磷酸核糖转移酶,但其本身不能在体外长期存活也逐渐死亡。只有融合的杂交瘤细胞由于从脾细胞获得了次黄嘌呤鸟嘌呤磷酸核糖转移酶,并具有骨髓瘤细胞能无限增殖的特性,因此能在HAT培养基中存活和增殖。

单克隆抗体制备全攻略

单克隆抗体制备全攻略

单克隆抗体制备全攻略

第二部分:后续制备抗体

一、克隆抗体转染/细胞表达

1、转染/细胞表达

在细胞转染/表达实验中,选择恰当的细胞系,以实现 Ideal Clone

抗体的有效表达。一般来说,传统抗体的转染/表达系统可以从常见的细

胞类型中选择,如:CHO、COS、HEK293、HEK293T、BAK、T-Rex等。在细

胞表达系统中,要获得较高质量和较高抗体表达水平的细胞,需要仔细筛

选要转染的细胞,以确保细胞表达的质量。

此外,在细胞表达实验中,对 mammalian expression vectors(比

如pCDNA3.1)进行转染/表达,通常会使用常用的转染剂,如:FUGENE-6、Lipofectamine 2000,以及使用高效器具,比如:Gene Pulser以及Nucleofector等。此外,在实验中,也会使用不同类型的细胞表达系统,以同时表达多个受体,以实现有效地克隆抗体制备。

2、显示克隆抗体

显示技术是克隆抗体制备的一种优秀技术,它可以实现高质量的表达,同时保持抗体的结构和性质。

单克隆抗体的制备流程

单克隆抗体的制备流程

单克隆抗体的制备流程

一、抗体cDNA克隆

2、结合分离:抗体和抗原之间采用免疫学方法,进行亲和结合分离,在病理学中,可以采用细胞亲和免疫电泳或者细胞色素紧缩技术来进行识

别性结合分离抗体。

3、mRNA提取:使用RNAsy Plus Kit根据操作说明提取亲和结合分

离后的抗体的mRNA,用于cDNA合成。

4、cDNA合成:使用双链cDNA合成试剂盒,根据说明书操作,将mRNA合成双链cDNA。

5、克隆:将双链cDNA进行克隆,经过构建的一系列步骤,最终将cDNA克隆到载体上,构建出抗体cDNA克隆库。

二、抗体cDNA克隆抗体制备

1、选择克隆体:选择抗体cDNA克隆库中的抗体表达克隆,采用PCR

技术进行选择,并检测克隆体具有良好的免疫特性,可以快速确定最佳克

隆体。

2、表达载体构建:将最佳克隆体插入到表达载体中,构建出属于克

隆体的表达载体,以此保证克隆体的正确表达。

3、表达系统筛选:利用多种表达系统,筛选出最佳的表达系统,以

此来达到最佳的表达效果。

4、表达调控:对于最佳的表达系统,根据cDNA克隆体的特性,进行

最佳的表达调控,以此达到最佳的抗体表达效果。

单克隆抗体的主要制备步骤

单克隆抗体的主要制备步骤

单克隆抗体的主要制备步骤

(1) 抗原选择

选择可以诱导单克隆抗体产生的抗原,这取决于抗体用途,一般有以下方式:从一组表位图谱型不同但都具有类似化学行为的多肽残基中选择抗原,根据具体抗体功能要求考虑氨基酸的类型、结构特征和数量,或从一种蛋白质或复合物中选择抗原。

(2) 抗原纯化

一般采用分离技术如凝胶纯化,毛细过滤,液体比表面张力分选等对抗原进行纯化,从有机溶剂或皂-甘油系统中抽提出目标抗原。

(3) 抗原药物化

抗原药物化是指给抗原结构中添加有活性的氨基酸残基l以便于有助于抗体分泌和诱导单克隆抗体的分泌。

(4) 动物免疫

使用符合动物禁忌的抗原对动物接种,一般使用的动物有小鼠、大鼠、兔等,一般先对动物预先接种弱毒的另一抗原,然后在鼠脑灰质接种有效抗原,以进行免疫,天然抗体的分泌可以被记录下来,以观测动物不同时期分泌抗体的曲线,以选择最佳免疫时期,并在该时期给动物加强免疫。

(5) 筛选抗体储备

从免疫动物(通常以小鼠为主)未血液提取后利用ELISA法或免疫沉淀法筛选抗体,可以获得更加特异性的抗体。下一步,提取血清中的抗体,以制备抗体芯片。

(6) 单克隆抗体制备

为了确定抗体的应用能力和产量,克隆抗体是需要利用特殊的抗原进行克隆的。抗体芯片的每个克隆可以从细胞培养液、血清中分离出来,再进行分离纯化处理,最终得到每个克隆的单克隆抗体。

(7) 纯化单克隆抗体

用不同配体结合离子交换树脂、蛋白质A树脂、蛋白G树脂等专用色谱柱和作用,也可以在水溶性溶剂中进行纯化部分的单克隆抗体,以使抗体分子的结构稳定。

(8) 单克隆抗体表征

单克隆抗体制备步骤及注意事项

单克隆抗体制备步骤及注意事项

单克隆抗体制备步骤及注意事项

一、脾细胞的准备:

1.将Balb/c小鼠拉颈脱臼处死,浸泡于75%酒精3~5min。无菌操作取出脾脏,置于盛有

5mL不完全培养液的平皿中,洗涤3次去除脾脏表面的脂肪和结缔组织。

2.将洗好的脾脏用剪刀剪成3~5个小块,然后将脾脏研碎,过细胞筛,收集细胞。

3.将脾脏细胞悬液在1000r/min条件下,离心5min,弃上清。再以同样的方法洗涤离心一

次。

4.将沉淀细胞重新悬浮于10mL不完全培养液中,计活细胞数,取108个脾淋巴细胞悬液

备用。

注意事项:

➢免疫脾细胞一般取最后一次加强免疫3天以后的脾脏,制备成细胞悬液,因为此时B淋巴母细胞比例较大,融合的成功率较高。

二、骨髓瘤细胞的准备:

1.选好骨髓瘤细胞株,取体外培养对数生长期细胞或体内生长的肿瘤分离骨髓瘤细胞。

2.取对数生长骨髓瘤细胞离心,用无血清培养液洗2次。

3.制备细胞悬液,计活细胞数。

4.调整细胞浓度,取107细胞悬液备用。

注意事项:

➢常用的骨髓瘤细胞系有:NS1、SP2/0、X63、Ag8.653等。

➢骨髓瘤细胞系应和免疫动物属于同一品系,这样杂交融合率高,也便于接种杂交瘤细胞在同一品系小鼠腹腔内生产大量McAb。

➢骨髓瘤细胞的培养适合于一般的培养液,如RPMI-1640基础培养液,DMEM培养基。小牛血清的浓度一般在10~20%。细胞的最大密度不得超过106个/mL。

➢一般扩大培养以1:10稀释传代,每3~5天传代一次。细胞的倍增时间为16~20小时。➢一般准备融合前的两周就应开始复苏骨髓瘤细胞,为确保该细胞对HA T的敏感性,每3~6个月应用8~AG(8氮杂鸟嘌呤)筛选一次,以防止细胞的突变。

单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体是一种由单一克隆B细胞产生的抗体,具有高度的特异性和亲和力。它在生物医药领域有着广泛的应用,包括疾病诊断、治疗和生物学研究等方面。本文将介绍单克隆抗体的制备原理及方法,希望能对相关领域的研究人员有所帮助。

一、制备原理。

单克隆抗体的制备原理主要包括以下几个步骤,抗原免疫、细胞融合、筛选和

鉴定、扩增和保存。首先,通过将目标抗原注射到实验动物体内,诱导其产生特异性抗体。然后,从免疫动物体内获得B细胞,与骨髓瘤细胞进行融合,形成杂交

瘤细胞。接着,通过细胞培养和筛选,筛选出产生特异性单克隆抗体的杂交瘤细胞。最后,对所得的单克隆抗体进行扩增和保存,以备进一步的实验和应用。

二、制备方法。

1. 抗原免疫。

选择合适的实验动物,根据抗原的特性和研究需要,选择合适的免疫方案,包

括抗原的种类、免疫的途径和次数等。

2. 细胞融合。

将获得的B细胞与骨髓瘤细胞进行融合,形成杂交瘤细胞。融合细胞的筛选条件包括杂交瘤细胞的生长条件、培养基的成分和杂交瘤细胞的筛选方法等。

3. 筛选和鉴定。

通过特异性抗原的筛选和鉴定,筛选出产生特异性单克隆抗体的杂交瘤细胞。

鉴定的方法包括ELISA、免疫印迹、免疫荧光等。

4. 扩增和保存。

对所得的单克隆抗体进行扩增和保存,以备进一步的实验和应用。扩增的方法包括体外培养、动物体内生长等。

三、实验注意事项。

在进行单克隆抗体的制备过程中,需要注意以下几个方面的实验注意事项,实验动物的选择和管理、抗原的制备和纯化、细胞融合和杂交瘤细胞的培养条件、单克隆抗体的鉴定和保存等。

单克隆抗体的制备方法

单克隆抗体的制备方法

单克隆抗体的制备方法

单克隆抗体(monoclonal antibody,mAb)是指由同一个B细胞克隆

株产生,针对同一个特定抗原结构的抗体分子。与多克隆抗体相比,单克

隆抗体具有高度的特异性和一致性,因此在医学、生物学和生物工程领域

有着广泛的应用。下面将介绍单克隆抗体的制备方法。

二、免疫与细胞融合

1.免疫:将特定抗原注射入小鼠体内,激活免疫系统产生抗体。通常

需要多次免疫来增强免疫应答。

2.细胞融合:将小鼠脾细胞(B细胞)与骨髓癌细胞进行细胞融合。

骨髓癌细胞具有不限制增殖的特性,可以保证融合后的细胞永生长。

三、细胞筛选与培养

1.筛选:将细胞混合溶液分装入多孔板,进行细胞浓度稀释,使每个

孔中只存在一个细胞。之后进行培养,使细胞形成单个克隆。

2.培养:将筛选出的细胞转移到含有胎牛血清的培养基中,维持细胞

生长。根据细胞克隆的特性,可以采用悬浮培养或贴壁培养的方式。

四、抗体分离与鉴定

1.抗体分离:将培养基收集,离心沉淀,得到抗体含量较高的上清液。

2. 抗体鉴定:进行免疫学方法的检测,例如酶联免疫吸附试验(enzyme-linked immunosorbent assay,ELISA)和免疫印迹(Western blot)。通过对不同抗原的反应特异性和亲和力进行检测,确定具有特殊

功能的单克隆抗体。

五、扩充与保存

1.规模扩大:将具有特异性、亲和力较高的单克隆抗体细胞进行大规

模培养,获得大量的抗体。

2.冻存保存:使用液氮冷冻细胞保存技术,将单克隆抗体细胞冷冻保存,以备后续的使用和生产。

六、应用领域

单克隆抗体具有广泛的应用领域,包括医学诊断、疾病治疗和生物学

单克隆抗体的制备过程及原理

单克隆抗体的制备过程及原理

单克隆抗体的制备过程及原理

单克隆抗体(monoclonal antibody,简称mAb)是指使用浓度较高的、单种类且结构恒定的抗体,它是具有特定抗原性和可重复使用的特殊免疫球蛋白分子。单克隆抗体由于

特异性、可重复使用、界限清晰等具有重要的理论意义和重要的经济意义,在生物分子的

研究、疾病的检测和治疗中已经发挥出重要作用。

单克隆抗体制备的方法有奥托尔·米勒法、佩泰法和融合细胞法等。其制备过程通常

包括以下7个步骤:生物反应物的提取、细胞培养,抗体浓度的上升、表达工艺的改进、

纯化工艺的筛选、反应物的表达和功能检测。

(1)生物反应物的提取。抗体制备过程的第一步是提取有用的生物反应物,例如鼠、猴、牛等动物的血液或淋巴液中的B细胞,或者细菌中的免疫球蛋白定量因子(immunoglobulin,Ig)分子等。

(2)细胞培养。细胞培养就是将这些细胞表现成抗体制备所需的反应物,而培养方

法又分为实验室筛选(laboratory selection)和大规模培养(large-scale production)。

(3)抗体浓度的上升。在细胞培养过程中,抗体浓度也会随着增加,完成这一步后

可以得到单克隆抗体。

(4)表达工艺的改进。表达工艺是抗体分离纯化的关键步骤。一般来说,可以采用

谷氨酸免疫池(Glu-immune pool)、数字筛选技术(digital selection)、高通量测序

技术(high-throughput sequencing)和聚合酶链反应(polymerase chain reaction,PCR)等方法来筛选合适的抗体表达体。

单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体是一种来源于同一种细胞的同一种抗体,具有高度

的特异性和亲和力。其制备原理及方法主要包括抗原免疫、细胞融合、筛选和鉴定等步骤。

首先,抗原免疫是单克隆抗体制备的第一步。研究人员需要选

择目标抗原,然后将其注射到小鼠等实验动物体内,激发其产生特

异性抗体。在免疫过程中,抗原会刺激机体产生大量的抗体,其中

包括特异性抗体和非特异性抗体。接着,研究人员需要采集实验动

物的淋巴细胞,以便后续的细胞融合。

其次,细胞融合是单克隆抗体制备的关键步骤。通过将抗原免

疫后的小鼠淋巴细胞与骨髓瘤细胞进行融合,形成杂交瘤细胞。这

些杂交瘤细胞具有抗原特异性,并且具有骨髓瘤细胞的不受限制的

增殖能力,从而成为单克隆抗体的生产细胞。

接下来,筛选和鉴定是单克隆抗体制备的关键步骤。研究人员

需要对杂交瘤细胞进行筛选,筛选出产生特异性抗体的杂交瘤细胞。然后,通过ELISA、免疫印迹等技术手段,对筛选出的杂交瘤细胞

进行鉴定,确保其产生的抗体具有高特异性和亲和力。

最后,单克隆抗体的制备还需要进行大量的培养和纯化工作。

通过大规模的细胞培养,可以获得大量的单克隆抗体。随后,通过

亲和层析、凝胶过滤等手段,对单克隆抗体进行纯化,确保其纯度

和活性。

总之,单克隆抗体的制备原理及方法包括抗原免疫、细胞融合、筛选和鉴定、大量培养和纯化等步骤。这些步骤相互联系、相互依存,共同构成了单克隆抗体的制备流程。通过不断的技术创新和方

法改进,单克隆抗体的制备技术将会更加高效、快速、稳定,为医

学研究和临床诊疗提供更多的可能性。

单克隆抗体的主要步骤

单克隆抗体的主要步骤

单克隆抗体的主要步骤

单克隆抗体是一种由单一源头的B淋巴细胞分泌的抗体,具有高度特异性和亲和力。单克隆抗体的制备过程可以分为六个主要步骤,包括免疫原选择、免疫动物免疫、细胞融合、筛选和克隆、生物制剂和表征以及大规模生产。

第一步是免疫原选择。在制备单克隆抗体之前,需要选择适合的免疫原。免疫原可以是蛋白质、多肽、糖类或其他生物分子。选择合适的免疫原对于获得高亲和力和特异性的单克隆抗体至关重要。

第二步是免疫动物的免疫。通常使用小鼠作为免疫动物,将免疫原注射到小鼠体内,刺激其免疫系统产生抗体。免疫过程可以持续数周或数月,以确保免疫系统充分产生抗体。

第三步是细胞融合。细胞融合是将免疫小鼠的B淋巴细胞与骨髓瘤细胞融合,形成杂交瘤细胞。骨髓瘤细胞具有不受限制的生长能力,而免疫小鼠的B淋巴细胞则具有产生抗体的能力。细胞融合可以通过化学方法或电融合方法完成。

第四步是筛选和克隆。在细胞融合后,需要筛选出产生单一抗体的杂交瘤细胞。常用的筛选方法包括酶联免疫吸附试验(ELISA)和细胞流式细胞术。通过这些筛选方法,可以鉴定出产生特定抗原抗体的杂交瘤细胞,并进行单克隆化处理。

第五步是生物制剂和表征。单克隆抗体的生物制剂包括抗体纯化和浓缩。纯化可以通过亲和层析、离子交换层析、凝胶过滤等方法进行。表征是对单克隆抗体进行验证,包括亲和力测定、特异性检测、结构分析等。

最后一步是大规模生产。一旦获得了单克隆抗体的正式生物制剂和表征结果,就可以进行大规模的生产。大规模生产通常采用细胞培养技术,通过培养细胞株来产生大量的单克隆抗体。生产的单克隆抗体可以用于临床治疗、诊断试剂的生产以及科研领域的应用。

单克隆抗体制备过程

单克隆抗体制备过程

单克隆抗体制备过程

单克隆抗体是指在免疫反应中仅由一种克隆的B细胞分泌的抗体,其特异性是由单个B细胞的表面受体所决定的。单克隆抗体具有高度的特异性和亲和力,因此在生命科学和医学领域中得到了广泛的应用。本文将介绍单克隆抗体制备的过程。

1. 免疫原制备

制备免疫原是单克隆抗体制备的第一步。免疫原应该是具有高度特异性的抗原,能够刺激机体产生高亲和力的抗体。常用的免疫原有蛋白质、多肽、糖类、核酸等。在制备免疫原的过程中,需要注意免疫原的纯度和活性。

2. 免疫动物免疫

在制备单克隆抗体的过程中,需要使用免疫动物进行免疫。常用的免疫动物包括小鼠、兔子、大鼠等。在免疫过程中,需要注意免疫动物的健康状况和免疫方案的制定。免疫方案应该包括适当的免疫原剂量、免疫时间和免疫途径等。

3. 脾细胞提取

在免疫过程中,免疫动物的脾脏是提取免疫细胞的主要来源。提取脾细胞的方法包括机械破碎、胶原酶消化等。在脾细胞提取的过程

中,需要注意细胞的纯度和活性。

4. 杂交瘤细胞制备

单克隆抗体的制备需要使用杂交瘤技术。杂交瘤细胞是由脾细胞和肿瘤细胞融合而成的细胞系,具有不限增殖能力和稳定性。在杂交瘤细胞制备的过程中,需要注意肿瘤细胞的选择和融合条件的优化。

5. 筛选单克隆抗体

在杂交瘤细胞制备完成后,需要对杂交瘤细胞进行筛选,以筛选出具有特异性的单克隆抗体。常用的筛选方法包括ELISA、免疫印迹、流式细胞术等。在筛选过程中,需要注意抗体的特异性和亲和力。

6. 生产单克隆抗体

在筛选出具有特异性的单克隆抗体后,需要进行大规模的制备。制备单克隆抗体的方法包括体外培养和体内制备。在制备过程中,需要注意抗体的纯度、活性和稳定性。

简述单克隆抗体的制备过程

简述单克隆抗体的制备过程

简述单克隆抗体的制备过程

单克隆抗体是由单一的细胞克隆所产生的一种抗体,具有高度的特异性和亲和力。其制备过程主要包括以下几个步骤:

1. 免疫原制备:首先需要准备纯化的免疫原,可以是蛋白质、多肽、糖、脂类等生物大分子或小分子。

2. 动物免疫:将纯化的免疫原注射到动物体内,激发其免疫系统产生抗体。一般常用小鼠、大鼠、兔子等动物作为免疫体。

3. 细胞融合:将免疫体中的B细胞与肿瘤细胞进行融合,形成杂交瘤细胞。此类细胞具有B细胞的抗体产生能力和肿瘤细胞的无限增殖能力。

4. 筛选和克隆:通过细胞培养和筛选,筛选出产生特定抗体的杂交瘤细胞,并进行单克隆化处理,即从单一细胞中分离出单一抗体。

5. 抗体纯化:将单克隆抗体进行纯化,去除杂质,得到高纯度的单克隆抗体。这些单克隆抗体可以广泛用于生物医学研究、诊断和治疗等领域。

总之,单克隆抗体制备过程需要精确的技术和细致的操作,同时需要对免疫原、动物和培养条件进行深入了解和优化,才能获得高质量的单克隆抗体。

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单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体的制备原理及方法

单克隆抗体是指来源于单一B细胞克隆的抗体,具有单一的抗原特异性。它是一种高度纯化、高度特异性的抗体,广泛应用于生物医学研究、临床诊断和治疗等领域。本文将介绍单克隆抗体的制备原理及方法。

首先,单克隆抗体的制备原理是基于B细胞的克隆扩增。当机体受到抗原刺激后,B细胞会产生多种抗体,其中具有特异性的B 细胞将被筛选出来,然后与癌细胞融合形成杂交瘤细胞。这些杂交瘤细胞具有B细胞的分泌抗体能力和癌细胞的无限增殖能力,能够长期稳定地分泌单一种类的抗体。

其次,单克隆抗体的制备方法包括免疫动物、细胞融合、筛选鉴定和大规模培养等步骤。首先,需要选择合适的免疫动物,如小鼠、大鼠、兔子等,然后将抗原注射到动物体内,刺激B细胞产生抗体。接着,收集免疫动物的脾细胞和癌细胞,进行细胞融合,得到杂交瘤细胞。随后,通过细胞培养和限稀稀释法,筛选出分泌特异性抗体的杂交瘤细胞。最后,对筛选出的单克隆抗体进行鉴定和鉴定,确保其具有高亲和力和特异性。

在实际操作中,制备单克隆抗体需要严格控制各个步骤的条件,包括抗原的选择和纯化、免疫动物的免疫程序、杂交瘤细胞的筛选

和鉴定等。此外,还需要考虑单克隆抗体的应用领域和特定要求,

如在临床诊断中需要高灵敏度和高特异性的抗体,而在治疗中则需

要稳定性和低免疫原性的抗体。

总之,单克隆抗体的制备原理及方法是基于B细胞的克隆扩增,通过免疫动物、细胞融合、筛选鉴定和大规模培养等步骤,最终得

到具有单一抗原特异性的抗体。制备单克隆抗体需要严格控制各个

步骤的条件,并考虑其应用领域和特定要求。希望本文能够为单克

单克隆抗体制备方法

单克隆抗体制备方法

单克隆抗体制备方法

一、免疫原制备

免疫原是用于免疫动物产生特异性抗体的物质。可以是蛋白质、多肽、核酸或糖类等。首先要选择合适的免疫原,并通过相关方法纯化和检测其

质量。

二、小鼠免疫

将制备好的免疫原注射到小鼠体内,激活免疫系统产生特异性抗体。

一般来说,每只小鼠需要多次免疫以达到免疫效果。在注射免疫原之前,

需要预先给小鼠注射适量的完全佐剂(如弗氏佐剂),以增强免疫反应。

随后,根据实验需要,在一定时间间隔内给小鼠免疫原重复注射。

三、细胞融合

在小鼠免疫充分后,需要将小鼠的脾脏细胞(主要包括淋巴细胞)和

肿瘤细胞进行融合,形成杂交瘤细胞。常用的肿瘤细胞系包括骨髓瘤细胞

系(如SP2/0)和癌细胞系(如NS0)。此过程中可以使用聚乙二醇或电

脉冲等方法来提高细胞融合效率。

四、筛选

杂交瘤细胞形成后,需要筛选出产生所需单克隆抗体的杂交瘤细胞。

其中一种常用的筛选方法是HAT选择法,该法基于杂交瘤细胞能在含有嘌

呤类似物和嘧啶类似物的培养基上生长的特性,将未与小鼠脾细胞融合的

肿瘤细胞杂交瘤细胞去除,只保留了真正融合了小鼠脾细胞的杂交瘤细胞。

五、克隆

通过稀释法将杂交细胞逐个分装到微孔板上,使每个孔里只有一个细胞,然后将其培养扩增。经过培养一段时间,单个细胞会形成克隆的细胞群。随后,从每个孔中取出一个细胞,继续进行培养,直至得到所需的单

克隆抗体。

六、克隆鉴定

对所获得的克隆细胞进行鉴定,包括酶联免疫吸附测定法(ELISA)、细胞膜免疫荧光法(FACS)以及免疫组织化学法等,以确定细胞制备的单

克隆抗体的种类、亚型和亲和力。

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单克隆抗体制备方法

1975年Kohler和Milstein发现将小鼠骨髓瘤细胞与和绵羊红细胞免疫的小鼠脾细胞进行融合,形成的杂交瘤细胞既可产生抗体,又可无性繁殖,从而创立了单克隆抗体杂交瘤技术。这一技术上的突破使血清学的研究进入了一个高度精确的新纪元。

采用杂交瘤技术制备单克隆抗体包括动物免疫、细胞融合、选择杂交瘤、检测抗体、杂交瘤细胞的克隆化、冻存以及单克隆抗体的大量生产,要经过几个月的一系列实验步骤。

主要仪器设备:

超净工作台、CO2恒温培养箱、超低温冰箱(-70℃)、倒置显微镜、精密天平或电子天平、液氮罐、离心机(水平转子,4000r/min)、37℃水浴箱、纯水装置、滤器、真空泵等。其需要的主要器械包括:100ml、50ml、25ml细胞培养瓶,10ml、1ml刻度吸管,试管,滴管(弯头、直头),平皿,烧杯,500ml、250ml、100ml盐水瓶,青霉素小瓶,10ml、5ml、1ml注射器等,96孔、24孔细胞培养板,融合管(50ml圆底带盖玻璃或塑料离心管),眼科剪刀,眼科镊,血细胞计数板,可调微量加样器(~50ul,~200ul,~1000ul),弯头针头,200目筛网,小鼠固定装置等。此外,一般的单克隆抗体制备方法大同小异。

方法

动物的选择与免疫

1. 动物的选择

BALB/C小鼠,较温顺,离窝的活动范围小,体弱,食量及排污较小,一般环境洁净的实验室均能饲养成活。目前开展杂交瘤技术的实验室多选用纯种BALA/C小鼠。

2. 免疫方案

选择合适的免疫方案对于细胞融合杂交的成功,获得高质量的McAb至关重要。一般在融合前两个月左右根据确立免疫方案开始初次免疫,免疫方案应根据抗原的特性不同而定。

(1)可溶性抗原免疫原性较弱,一般要加佐剂,半抗原应先制备免疫原,再加佐剂。常用佐剂:福氏完全佐剂、福氏不完全佐剂。

初次免疫抗原1~50μg加福氏完全佐剂皮下多点注射或脾内注射(一般0.8~1ml,0.2ml/点)

↓3周后

第二次免疫剂量同上,加福氏不完全佐剂皮下或ip(腹腔内注射)(ip剂量不宜超过0.5ml)

↓3周后

第三次免疫剂量同一,不加佐剂,ip(5~7天后采血测其效价)

↓2~3周

加强免疫,剂量50~500μg为宜,ip或iv(静脉内注射)

↓3天后取脾融合

目前,用于可溶性抗原(特别是一些弱抗原)的免疫方案也不断有所更新,如:①将可溶性抗原颗粒化或固相化,一方面增强了抗原的免疫原性,另一方面可降低抗原的使用量。②改变抗原注入的途径,基础免疫可直接采用脾内注射。③使用细胞因子作为佐剂,提高机体的免疫应答水平,增强免疫细胞对抗原的反应性。

(2)颗粒抗原免疫性强,不加佐剂就可获得很好的免疫效果。以细胞性抗原为例,免疫时要求抗原量为1~2×107个细胞。

初次免疫1×107/0.5ml ip4 G+ X7

↓2~3周后

第二次免疫1×107/0.5ml

↓3周后

加强免疫(融合前三天)1×107/0.5ml ip或iv

↓9

取脾融合

T细胞融合

细胞融合前准备

. 骨髓瘤细胞系的选择:骨髓瘤细胞应和免疫动物属于同一品系,这样杂交融合率高,也便于接种杂交瘤在同一品系小鼠腹腔内产生大量McAb。常用的骨髓瘤细胞系见下表。

用于融合试验的主要骨髓瘤细胞系

骨髓瘤细胞的培养可用一般的培养液,如RPMI1640,DMEM培养基。小牛血清的浓度一般在10%~20%,细胞浓度以104~5×105/ml为宜,最大浓度不得超过106/ml。当细胞处于对数生长的中期时,可按1:3~1:10的比例传代。每3~5天传代一次。细胞在传代过程中,部分细胞可能有返祖现象,应定期用8-氮鸟嘌呤进行处理,使生存的细胞对HAT呈均一的敏感性。

. 饲养细胞:在组织培养中,单个或少数分散的细胞不易生长繁殖,若加入其它活细胞,则可促进这些细胞生长繁殖,所加入的这种细胞数被称为饲养细胞。在制备McAb的过程中,许多环节需要加饲养细胞,如在杂交瘤细胞筛选、克隆化和扩大培养过程中,加入饲养细胞是十分必要的。常用的饲养细胞有:小鼠腹腔巨噬细胞(较为常用)、小鼠脾脏细胞或胸腺细胞。也有人用小鼠成纤维细胞系3T3经放射线照射后作为饲养细胞。饲养细胞的量为一般为2×104或105细胞/孔。

细胞融合的步骤

.制备饲养细胞层:一般选用小鼠腹腔巨噬细胞。

与免疫小鼠相同品系的小鼠,常用BALB/C小鼠,6~10周

拉颈处死,浸泡在75%酒精内,3~5min)

用无菌剪刀剪开皮肤,暴露腹膜

用无菌注射器注入5~6ml预冷的培养液(严禁刺破肠管)

反复冲洗,吸出冲洗液

冲洗液放入10ml离心管,1200rpm/分离5~6min

用20%小牛血清(NCS)或胎牛血清(FCS)的培养液混悬,调整细胞数至1×105/ml ↓

加入96孔板,100μl/孔

放入37。c CO2孵箱培养5 e2 q9 H& n9 h

2.制备免疫脾细胞

最后一次加强免疫3天后小鼠拉颈处死{

无菌取脾脏,培养液洗一次

脾脏研碎,过不锈钢筛网

离心,细胞用培养液洗2次

计数;

取108脾淋巴细胞悬液备用

制备骨髓瘤细胞

取对数生长骨髓瘤细胞离心

用无血清培养液洗2次

计数,取得×107细胞备用

4.融合

(1)将骨髓瘤细胞与脾细胞按1:10或1:5的比例混合在一起,在50ml离心管中用无血清不完全培养液洗1次,离心,1200rpm,8min;弃上清,用吸管吸净残留液体,以免影响聚乙二醇(PEG)浓度。轻轻弹击离心管底,使细胞沉淀略松动。

2)90s内加入37℃预温的1ml 45%PEG(分子量4000)溶液,边加边轻微摇动。37℃水浴作用90s。

3)加37。C预温的不完全培养液以终止PEG作用,每隔2min分别加入1ml、2ml、3ml、4ml、5ml和6ml

4)离心,800rpm, 6min。

5)充上清,用含20%小牛血清HAT选择培养液重悬。

(6)将上述细胞,加到已有饲养细胞层的96孔板内,每孔加100μl。一般一个免疫脾脏可接种4块96孔板

(7)将培养板置37℃、5%CO2培养箱中培养

选择杂交瘤细胞及抗体检测

1. HAT选择杂交瘤细胞

脾细胞和骨髓瘤细胞经PEG处理后,形成多种细胞的混合体,只有脾细胞与骨髓细胞形成的杂交瘤细胞才有意义。在HAT选择培养液中培养时,由于骨髓瘤细胞缺乏胸苷激酶或次黄嘌呤鸟嘌呤核糖转移酶,故不能生长繁殖,而杂交瘤细胞具有上述两种酶,在HAT选择培养液可以生长繁殖。

在用HAT选择培养1~2天内,将有大量瘤细胞死亡,3~4天后瘤细胞消失,杂交细胞形成小集落,HAT选择培养液维持7~10天后应换用HT培养液,再维持2周,改用一般培养液。在上述选择培养期间,杂交瘤细胞布满孔底1/10面积时,即可开始检测特异性抗体,筛选出所需要的杂交瘤细胞系。在选择培养期间,一般每2~3天换一半培养液。

2. 抗体的检测

检测抗体的方法应根据抗原的性质、抗体的类型不同,选择不同的筛选方法,一般以快速、简便、特异、敏感的方法为原则。`

常用的方法有:

(1)放射免疫测定(RIA)可用于可溶性抗原、细胞McAb的检测.

(2)。酶联免疫吸附试验(ELISA)可用于可溶性抗原、细胞和病毒等McAb的检测。

(3)免疫荧光试验适合于细胞表面抗原的McAb的检测。

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