蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究

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蒜氨酸原料药的质量控制标准研究

蒜氨酸原料药的质量控制标准研究
2.2含量测定 2.2.1色谱条件采用HPLC法,色谱柱:Agilent ZORBAX S昏C18色谱柱(4.6 mm×250 mm,5 扯m);流动相:100%水,用前经过滤脱气;流速:0.8 mL·min~;检测波长:220 nm;柱温:25℃;进样量: 20“L;以利巴韦林为内标,采用内标法定量。 2.2.2利巴韦林内标液的制备称取利巴韦林约 200 mg,精密称定,置烧杯中,纯化水溶解并转移至 500 mL量瓶中,定容至刻度,即得。 2.2.3蒜氨酸对照品储备液的制备称取蒜氨酸 对照品约20 mg,精密称定,置小烧杯中,纯化水溶 解并转移至50 mL量瓶中,定容至刻度,即得。 2.2.4含量测定方法分别精密量取蒜氨酸对照 品储备液0.5,2.5,5.0,6.0,7.5,10.0 mL至25 mI。 量瓶,各加入2.0 mI。利巴韦林内标液,加水稀释至 刻度,摇匀,得系列浓度的蒜氨酸对照品溶液。分别 取适量10 000 r·min叫离心6 rain,取20 pL进样, 。记录对照品峰面积与内标峰面积。计算校正因子厂 =3.5821(RSD为1.0%,竹=6),按下式计算样品含 量:
ABSIRACr:OKIfECTIVE To establish the quality control standard of alliin.METHODS Alliin were identified by 11£;The
ZORBAx晤c18 content of Alliin was determined by HPLC with internaI standard substance Agilent
ty;The calibration curve was linear in the range of 8~1 60肛g·mL_1 for AIlih The mean recovery of alliin was 99.86%with

薄层扫描法测定大蒜中蒜氨酸的含量

薄层扫描法测定大蒜中蒜氨酸的含量

薄层扫描法测定大蒜中蒜氨酸的含量葱属植物大蒜(Allium sativum Linn.)被誉为天然广谱抗菌药物,在心脑血管疾病预防、抗肿瘤、提高免疫力和抗衰老等方面有一定功能,并能降血糖、提高机体对葡萄糖的耐受量功能,对肝脏具有保护作用。

蒜氨酸(alliin)是大蒜的功效成分,以稳定、无臭的形式存在于大蒜鳞芽中,在水的参与下与存在于细胞壁中的蒜酶(alliinase)发生化学反应,产生大蒜素(allicin),进一步分解产生大蒜新素等。

由于大蒜成分的多样性和不稳定性,至今尚未有统一的标准方法对大蒜中的蒜氨酸进行含量测定。

本实验以蒜氨酸为对照品,用薄层扫描法测定了大蒜中的蒜氨酸含量。

为大蒜中功效成分的含量测定提供了质控依据。

1 仪器与试剂仪器CS-930型双波长薄层扫描仪(日本岛津);CR-2型数据处理器(日本岛津);微量注射器(美国);硅胶G薄层色谱板20 cm×20 cm(中国青岛海洋化工有限公司);蒜氨酸对照品(本课题组,纯度为99.8%)。

大蒜(新疆医药保健品公司);正丁醇等试剂均为分析纯。

2 方法与结果2.1 薄层色谱条件吸附剂:硅胶G薄层板;展开剂:正丁醇-冰醋酸-水(4∶1∶1)系统,上行展开。

自然干燥后喷含茚三酮的显色剂,蒜氨酸斑点显橙红色。

薄层分离结果表明,样品中蒜氨酸斑点与其他成分的斑点得到很好的分离,Rf值与对照品基本一致。

2.2 扫描条件选择λs=530 nm,λR=445 nm,扫描方式:反射法双波长锯齿形扫描;线性参数S X=5;狭缝;1.2 nm×1.2nm;灵敏度×2;背景校正OFF;扫描速度20 mm·min-1。

2.3 对照品溶液的配制精密称取蒜氨酸适量,加50%的乙醇溶解并配制成0.86 mg·mL-1的溶液,作为对照品溶液,摇匀,备用。

2.4 供试品溶液的制备新鲜大蒜鳞芽脱膜后经液氮于-196℃冷冻,磨成冰粉,低温真空干燥得到冻干蒜粉。

蒜氨酸及其相关活性组分的研究进展

蒜氨酸及其相关活性组分的研究进展

摘要:大蒜中的多种活性物质具有很多重要生理功能, 本文对大蒜中稳定的活性前体物质蒜氨酸 在生物体内的转化途径、 与真正发挥药效活性的物质硫代亚磺酸酯( 如蒜辣素) 的关系、 活性物质 因不稳定而产生物质的系列变化以及相关的物质代谢产物进行了总结。 关键词:大蒜;蒜氨酸;活性组分 中图分类号:R 9 3 1 . 6 文献标识码:A 文章编号: 1 6 7 4 0 4 4 0 ( 2 0 0 8 ) 0 6 0 4 4 1 0 6
烯丙基硫醇可以被转化为半胱氨酸加合物、 甲基半 胱氨酸和烯丙基半胱氨酸。尚无报道是否在植株原 位中也发生这些反应。在大蒜和洋葱合成风味前体 的早期阶段, 谷胱甘肽被认为占据了关键作用。已证 实在大蒜分化组织培养中均发生了由 S 烷( 烯) 基 L 半胱氨酸( 如S 烯丙基半胱氨酸) 被氧化为系列烷
[ 7 ]
不稳定, 易于自身反应, 根据贮藏条件不同以及所处 的化学环境, 在几小时到几天的时间内, 很多都转化
1 0 ] 。环蒜氨酸是蒜氨酸的另一种稳 为其他硫化物 [
定形式, 蒜氨酸酶对环蒜氨酸不起作用, 因此环蒜氨 酸不会转化为硫代亚磺酸酯类物质。 由于硫代亚磺酸酯类物质包括蒜辣素是真正的 具有生物活性的物质, 所以说蒜氨酸、 异蒜氨酸和甲
。葱属植物具有高含量的有机硫化物( o r g a n o
s u l f u r c o m p o u n d s , O S C ) , 特别存在于涨大的叶基和 叶瓣中。硫的主要形式是烷( 烯) 基半胱氨酸亚砜 和γ 谷氨酰缩二氨酸, 二者占大蒜总硫化物的 7 0 % 以上
[ 2 ]
。S 烷( 烯) 基 L 半胱氨酸亚砜是葱属植物
1 蒜氨酸在生物体内的转化途径 大蒜合成蒜氨酸的主要位点是在叶片中, 但是 在蒜瓣中也能有一些合成反应。据报道蒜氨酸合成

蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究

蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究
维普资讯
LS IH NM DCN N A E I E IAR S A C 08V L 1 N . I Z E E IIEA DM T RAM DC EE R H20 O .9 O 4 H 心血管疾病就显现 出其独特 的优越性 和应用价值 。
摘要 : 目的 建立蒜氨酸原料药理化性质和稳定性的评价方法。方法 通过对蒜氨酸原料药理化性质的测定, 确定了该
化 合 物 的理 化 鉴 别 方 法 , 时建 立 R 同 P—H L P C法 对 蒜 氨 酸 原 料 药 的 稳 定 性 进 行 研 究 。 结 果 该 法 操 作 简 便 、 敏 度 高 、 灵 准 确 性 和 重复 性 好 。结 论 稳 定 性 实验 表 明蒜 氨 酸 原料 药 对 高 热 、 照稳 定 ; 高 湿不 稳 定 。 光 对
时珍 国医 国药 20 0 8年第 1 9卷第 4期
参 考文 献 :
[ 1] 栾 强 , 李联 忠, 栾美英 , . 龄、 等 年 绝经年 限、 雌激 素水平 与妇 女血 G. . l r N. Mi r Pls ih—d n i io rti o c nrt n J Mie . E. l . amahg l e e st l p oenc n e t i y p ao 脂关系的探讨 [ ] 中 国实用妇科与产科杂志 ,9 9,5 1 :3 J. 19 1 ( )3 . n eeo m n f i ami at—dsae Lne, 9 5, add vl e eto she c er p c h i s.I I a ct 17 e J [ 张 涛, 2] 叶少剑 , 张文娟 , 药 食两用 中药 复方对 去卵 巢大 鼠血 等. () 1. 1 :6 脂 的调节作用 [ ] 时珍国医 国药 ,0 5,6 9)8 6 J. 20 1 ( :2 . 一 一 On t a A., a iI Ya i iM., ta . l s rgy e d s,a n e e d n S r ., zc e P a ma til c f e n i d p n e t 1 i [ ] 王鑫国 , 3 葛喜珍 , 霞 , . 豆豉对 去卵 巢 大 鼠脂 代谢 的影 响 ul 白 等 淡 p e i tr o a d o a c l r d s a n me r d c o fc r iv s ua ie s i n:A r s e t e su y b s d e po p ci td ae v f 1 中药 材 ,0 3 2 ( ):5 . J. 2 0 ,6 9 6 2 o ouai i rv etm t oi snrme[ ] A D O , na pp ltn w t pea n ea l y do o h l b c J .C R I L [ 4] 衣 欣 , 初彦辉 , 关利新 , 人参皂苷对血脂及卵磷脂 胆 固醇酰 基 等. 2 0 ,0 1 :9 0 6 18( ) 8 . 转移酶 的影响 [ ] 中国林副特产 ,9 6 3 ( ):_ J. 19 ,9 4 6 一 一 张馨木 , 曲绍 春 , 睢大员 , 人参 R 等. b组皂 苷对高脂 血症 大鼠 m脂 【 [ 5] 孙红祥. 参须 皂 甙成 分 的分析 [ ] 中兽 医 医药 杂志 ,0 1 2 人 J. 20 ,0 代谢 的 影 响 及 其 抗 氧 化 作 用 [ ] J .中 国 中 药 杂 志 , 04, 9 2 0 2 ( ): 2 6.

高效液相衍生化法测定大蒜氨基酸指纹图谱

高效液相衍生化法测定大蒜氨基酸指纹图谱

高效液相衍生化法测定大蒜氨基酸指纹图谱*杨 瑾1**,陈 坚***,李新霞1,高晓黎1(新疆医科大学药学院,新疆 乌鲁木齐 830011)摘要:目的 参照 中药材指纹图谱研究的技术要求(暂行) ,建立大蒜中氨基酸指纹图谱及技术参数。

方法 高效液相色谱法,以邻苯二甲醛为衍生化试剂,以0.045mol/ml磷酸盐缓冲液 乙腈 1,4-二氧六环 四氢呋喃(69.9 25.0 2.9 2.2)为流动相,337nm检测。

10个不同产地大蒜所得的色谱图用 中药色谱指纹相似度评价系统(2004年A版) 分析评价。

结果 精密度、重现性、稳定性实验RSD不大于3%。

指纹图谱共有峰6个,相似度在0.90以上。

结论 本方法稳定、准确,为进一步控制大蒜的质量提供依据。

关键词:大蒜;高效液相色谱;衍生化;指纹图谱中图分类号:R9 文献标识码:A 文章编号:1009-5551(2010)05-0509-03Determination of fingerprint of amino acids in garlic by derivation HPLCYANG Jin,CHEN Jian,LI Xin-xia,et al(Farmacy I nstitute,X inj iang M edical Univer sity,Ur umqi830011,China)Abstract:Objective Determ ination o f fing erprint and technical parameter of amino acids in garlic according to Specification about fingerpr int of Chinese herbal medicines(Tentativ e standard) .Methods A H PLC method w as used w ith o-phthaldialdehy de der iv atization,w ith the detectio n w av elength of337nm,the mobile phase was0.045M Phosphate buffer,acetonitrile,1,4-diox ane,tetrahydr ofuran(69.9 25.0 2.9 2.2).T en samples from differ ent habitats w ere analyzed and evaluated using the similarity evaluation system fo r chr omatogr aphic fing er print of traditional Chinese m edicine(Versio n2004A).Results The relative standard dev iation(RSD)of pr ecision and repro ducibility was no t more than3%.In the fing er-print of g arlic,chr omatogr aphic peak o wned by all of garlic sam ples w as six.The similarity of samples w as all above0.90.Conclusion T he method is accurate,conv enient,stable and the chrom atog raphic fing er prints can be served as a pow erful tool for the further quality control of garlic.Key words:g ar lic;H PLC;der iv ation;fingerpr int百合科葱属植物大蒜(Allium sativum L)的氨基酸可分成两类:一类是组成蛋白质的氨基酸,另一类是非蛋白质氨基酸。

新鲜大蒜中蒜氨酸酶的分离纯化及性质

新鲜大蒜中蒜氨酸酶的分离纯化及性质

植物学通报 2005, 22 (5): 579 ̄583Chinese Bulletin of Botany①通讯作者。

Author for correspondence. E-mail: ly433@收稿日期: 2004-01-07 接受日期: 2004-04-19 责任编辑: 崔郁英,于昕新鲜大蒜中蒜氨酸酶的分离纯化及性质李 燕 王 荣 李 冠 苟 萍①(新疆大学生命科学与技术学院 乌鲁木齐 830046)摘要 用葡聚糖凝胶G-200层析柱分离纯化了新鲜大蒜(Allium sativum )中的蒜氨酸酶, SDS-PAGE 结果为单一条带, 分子量为53 kD 在35 ℃下以蒜氨酸为底物, K m 为 0.693 mmol .L -1, V max 为0.353 mmol .min -1, 最适反应温度为30 ℃, 热稳定的温度在50 ℃以下。

Zn 2+对酶有抑制作用, Mn 2+使酶活力增加。

关键词 大蒜, 蒜氨酸酶, 分离纯化, 性质Purification and Properties of Alliinase from Fresh Garlic(Allium sativum )LI Yan WANG Rong LI Guan GOU Ping(College of Life Science and Technology , Xinjiang University , Urumqi 830046)Abstract Alliinase (EC.4.4.1.4) of fresh garlic (Allium sativum ) was purified 14-fold by gel filtration on a SephadexG-200 system. SDS-PAGE revealed a molecular weight of 53 kD, with Km and Vmax values of 0.693 mmol .L -1 and 0.353 mol .L -1, respectively. The optimal temperature for activity was 30 ℃, with stable activity below 50 ℃. The activity was inhibited by Zn 2+ stimulated by0.1 mol Mn 2+.Key words Garlic, Alliinase, Purification, Property大蒜为百合科葱属植物, 有丰富的营养成分和药用价值。

鲜蒜、蒜氨酸、蒜酶定量分析方法与蒜氨酸质量标准研究的开题报告

鲜蒜、蒜氨酸、蒜酶定量分析方法与蒜氨酸质量标准研究的开题报告

鲜蒜、蒜氨酸、蒜酶定量分析方法与蒜氨酸质量标准研究的开题报告一、研究背景鲜蒜是一种常见的食品和中药材,具有广泛的药用价值和营养价值。

蒜中主要活性成分包括蒜素、蒜酸等,其中蒜酶和蒜氨酸是蒜中的重要成分之一。

蒜氨酸作为蒜中主要的氨基酸,具有很高的保健价值,已被广泛用于食品、保健品和药品等领域。

因此,建立一种简便、快速而准确的鲜蒜、蒜氨酸、蒜酶定量分析方法及蒜氨酸的质量标准非常必要。

二、研究目的1. 建立一种较为准确和快速的鲜蒜中蒜氨酸定量分析方法;2. 建立一种较为准确和快速的蒜氨酸质量评价方法;3. 建立一种较为准确和快速的蒜酶定量分析方法;4. 对不同来源的鲜蒜的蒜氨酸含量进行比较,并探究影响蒜氨酸含量的因素。

三、研究内容1. 鲜蒜样品的采集和制备;2. 确定蒜氨酸和蒜酶的最佳检测波长、灵敏度和特异性;3. 确定蒜氨酸和蒜酶的标准曲线和定量方法;4. 对不同来源的鲜蒜样品进行蒜氨酸含量分析,并探索影响蒜氨酸含量的因素;5. 确定蒜氨酸评价方法及评价指标,并对蒜氨酸进行质量评价。

四、研究意义本研究将建立一种快速、可靠、准确的鲜蒜、蒜氨酸、蒜酶定量分析方法,并能够对鲜蒜的营养、品质和功效进行评价与标准化,为鲜蒜的质量控制和加工利用提供科学依据和方法。

五、研究方法与技术路线1. 采集不同来源的鲜蒜样品,并进行样品制备和处理;2. 利用高效液相色谱法(HPLC)和分光光度法对鲜蒜中蒜氨酸和蒜酶进行定量分析;3. 利用SPSS对不同来源的鲜蒜样品的蒜氨酸含量进行统计分析;4. 确定蒜氨酸评价方法及评价指标,并对蒜氨酸进行质量评价。

技术路线:鲜蒜样品→制备→ HPLC或分光光度法分别测定蒜氨酸和蒜酶含量→数据统计分析和质量评价。

六、预期成果1. 建立一种简便、快速而准确的鲜蒜、蒜氨酸、蒜酶定量分析方法;2. 建立一种准确和快速的蒜氨酸质量评价方法;3. 发表相关学术论文2~3篇。

蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究

蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究

蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究【摘要】目的建立蒜氨酸原料药理化性质和稳定性的评价方法。

方法通过对蒜氨酸原料药理化性质的测定,确定了该化合物的理化鉴别方法,同时建立RP-HPLC法对蒜氨酸原料药的稳定性进行研究。

结果该法操作简便、灵敏度高、准确性和重复性好。

结论稳定性实验表明蒜氨酸原料药对高热、光照稳定;对高湿不稳定。

【关键词】蒜氨酸原料药反相高效液相色谱法稳定性Study on the Physiochemical Characteristiis and the Stability of Alliin SubstanceHUANG Hong yong, CUI Li na, TANG Hui, ZHI Xiao yan1.Key Laboratory of Xinjiang Phytomedicinal Resources,Shihezi 832002,China;2.The SecondAffiliated Hospital of Xinxiang Medical University,Xinxiang 453002,ChinaAbstract:ObjectiveT o set up a method for evaluation of physiochemical characteristics and the stability of Alliin substance. MethodsThis experiment studied the physiochemical characteristics and the stability of Aallin substance by determinating physiochemical characteristics or by RP-HPLC method. ResultsThe method was easy, accurate and stable. ConclusionAlliin substance is stable under the conditions of high temperature and strong light, but unstable under the conditions of high humidity.Key words:Alliin substance;RP-HPLC;Stability蒜氨酸(Alliin,分子式C6H11NO3S,分子量177.22,结构式见图1) 化学名为:S-烯丙基-L-半胱氨酸亚砜(S-allyl-L-cysteine sulfoxide,SACS),是百合科葱属植物大蒜Allium sativum中独特的含硫氨基酸[1],纯品为无嗅无味,性质稳定的白色结晶,鲜蒜中其含量为0.5%~2.0%。

《大蒜中蒜氨酸的提取分离工艺及重结晶研究》

《大蒜中蒜氨酸的提取分离工艺及重结晶研究》

《大蒜中蒜氨酸的提取分离工艺及重结晶研究》一、引言大蒜作为一种常见的调味品和药用植物,其含有丰富的生物活性成分,其中蒜氨酸是一种重要的化合物。

蒜氨酸具有抗菌、抗病毒、抗肿瘤等多种生物活性,因此其提取分离工艺及重结晶研究具有重要的理论和实践意义。

本文旨在研究大蒜中蒜氨酸的提取分离工艺及重结晶过程,以期为蒜氨酸的进一步应用提供理论依据和技术支持。

二、材料与方法1. 材料大蒜:选取新鲜、无病虫害的大蒜作为原料。

试剂:乙醇、乙酸乙酯、丙酮等有机溶剂,以及硫酸、氢氧化钠等化学试剂。

2. 方法(1)提取分离工艺①原料准备:将大蒜清洗干净,去除表皮和须根,切碎后进行干燥。

②提取:将干燥后的大蒜用乙醇浸泡,进行索氏提取或超声波辅助提取,得到蒜氨酸的提取液。

③分离:采用柱层析、薄层扫描等技术对提取液进行分离,得到纯度较高的蒜氨酸。

(2)重结晶工艺①将分离得到的蒜氨酸溶液进行浓缩,使其达到重结晶的要求。

②在一定温度下,向浓缩液中加入适量的溶剂(如丙酮、乙醇等),进行重结晶。

③过滤、干燥,得到纯度更高的蒜氨酸晶体。

三、结果与分析1. 提取分离工艺结果通过索氏提取和柱层析等技术,成功地从大蒜中提取并分离出蒜氨酸。

在实验过程中,我们发现不同的提取方法和条件对蒜氨酸的提取效率和纯度有不同的影响。

其中,超声波辅助提取法具有较高的提取效率,而柱层析法能够有效地提高蒜氨酸的纯度。

通过优化提取和分离条件,我们得到了纯度较高的蒜氨酸。

2. 重结晶工艺结果在重结晶过程中,我们发现不同的溶剂对蒜氨酸的结晶效果和纯度有不同的影响。

通过对比实验,我们发现丙酮和乙醇是较为适宜的溶剂。

在一定的温度和浓度条件下,加入适量的溶剂进行重结晶,可以得到纯度更高的蒜氨酸晶体。

此外,我们还发现重结晶过程中需要控制好温度和溶剂的比例,以避免蒜氨酸的损失和晶体质量的不稳定。

四、讨论与展望大蒜中蒜氨酸的提取分离及重结晶研究具有重要的应用价值。

通过优化提取和分离条件,我们可以提高蒜氨酸的纯度和产量,为其进一步的应用提供更好的原料。

硕士论文--大蒜辣素生物合成、稳定性研究及相关物质分析

硕士论文--大蒜辣素生物合成、稳定性研究及相关物质分析

新疆医科大学 硕士学位论文 大蒜辣素生物合成、稳定性研究及相关物质分析 姓名:林守峰 申请学位级别:硕士 专业:药物化学 指导教师:李新霞;陈坚 2010-04摘 要 大蒜辣素生物合成、稳定性研究及相关物质分析研究生:林守峰 导师:李新霞 陈坚 教授摘要目的 : 本研究以大蒜中提取的蒜氨酸和蒜酶为原料,生物合成制备大蒜辣素。

在前期建立的蒜酶活力测定方法和蒜氨酸、大蒜辣素测定方法基础上,研究蒜酶催 化裂解蒜氨酸的配比,从而为蒜氨酸/蒜酶二元制剂的研究建立基础;考察大蒜辣素 溶液的稳定性,研究和探讨影响稳定性因素。

由于生物合成大蒜辣素所使用的蒜氨 酸和蒜酶原料为中试生产得到,原料中的杂质可能会对制备得到的大蒜辣素溶液的 纯度造成影响,通过液质联用方法,对于大蒜辣素溶液中的杂质和相关物质及降解 产物进行结构解析,分析杂质来源,从而提出改进和优化生物合成大蒜辣素的工艺 条件。

方法:1.综合考虑所使用蒜氨酸原料的含量和经济性,通过 HPLC 对反应产物 进行测定,确定蒜酶催化蒜氨酸生物合成大蒜辣素工艺中的原料配比、反应温度、 投料方式等。

2.参考欧洲药典中潜在大蒜辣素含量测定方法,HPLC 测定考察三个温 度条件下的大蒜辣素溶液的稳定性,计算半衰期作为评价稳定性的标准。

3.通过液质 联用测定大蒜辣素溶液和蒜氨酸原料,建立 HPLC-MS 分析方法,进行相应物质的结 构解析和确证。

结果: 1.确定大蒜辣素生物合成工艺中的蒜氨酸和蒜酶配比为 1mg 蒜氨酸需要 1.3U 蒜酶,综合蒜酶活性和大蒜辣素稳定性确定 25℃为反应温度,由于 蒜酶为自杀式酶,生成的大蒜辣素抑制蒜酶活力,故经考察分次将蒜酶溶液滴加到 蒜氨酸中用最少的蒜酶量制备大蒜辣素,结合膜分离技术滤除蒜酶等大分子物质。

2.影响大蒜辣素稳定性的因素除了温度原因之外, 还有空气中的氧气对于亚砜基氧化 作用等,采用隔绝空气等方法提高稳定性。

3.HPLC-MS 确定了大蒜辣素溶液中的杂 质为甲基丙烯基硫代亚硫酸脂;并且不同含量的蒜氨酸原料合成的大蒜辣素溶液含 有不等量的蒜氨酸和大蒜辣素的同分异构体;确定了大蒜辣素的部分降解产物。

天然产物化学论文

天然产物化学论文

天然产物化学论文题目:蒜氨酸及蒜氨酸酶的研究姓名:学号:专业班级:时间:蒜氨酸及蒜氨酸酶的研究摘要:近年大蒜及大蒜制品风靡全球,被誉为天然“药用植物黄金”。

大量的研究表明,大蒜有消炎杀菌、抗病毒、降血压,抗氧化、抗血栓、抗肿瘤、调节机体免疫力等多种功效。

大蒜中具有药理作用的成分主要是一类含硫的有机化合物——蒜素(allicin主要成分是二烷基硫代亚磺酸脂和烷基-2-丙烯基硫代亚磺酸脂),被认为有重要的抗微生物活性。

蒜氮酸酶催化反应生成的风味化合物,其医药和保健作用的独特魅力已被广泛认可。

这一领域内产品的研究与开发,也越来越受到重视。

但由于这类物质有令人不快的味道,在程度上限制了新鲜大蒜产品的开发和应用。

洋葱精油是风味前体物质与蒜氨酸酶发生酶促水解反应后,由其一级产物进行非酶促重组生成二硫、三硫和多硫化合物的混合体。

通过酶和前体的最适配比及适宜的反应条件,可得到最佳的风味物质提取率。

对于洋葱中蒜氨酸酶的研究,国内还处于起步阶段,通过对该酶的研究与分析,掌握其与风味前体之间的关系及各影响因子与酶促反应之间的关系,对于提高精油产率有极大的帮助。

如果将蒜氨酸酶制备成商品酶,且在进行催化反应之前将洋葱中原有的蒜氮酸酶灭活,对于风味前体的不完全水解即可抑制,通过对反应条件和酶浓度的调节后,加入商品酶就可对风味前体进行规模性的生物催化,可大大提高精油产率,而且商品酶可以多次重复利用,降低了生产成本。

关键词:蒜氨酸,蒜氨酸酶,洋葱,酶膜生物反应器,药学机理1、蒜氨酸酶的应用背景心脑血管病具有“发病率高、致残率高、死亡率高、复发率高,并发症多”即“四高一多”的特点,目前,我国心脑血管疾病患者已经超过2.7亿人!我国每年死于心脑血管疾病近300万人,占我国每年总死亡病因的51%。

如今,各种心脑血管疾病危害着人们的身体健康,血管的老化、硬化使这些疾病的主要原因,要预防这些疾病就要保持血管年轻,以维持人体血液运输线畅通无阻,避免心脑血管病的发生。

大蒜提取物的抗氧化性能及稳定性分析

大蒜提取物的抗氧化性能及稳定性分析

大蒜提取物的抗氧化性能及稳定性分析概述抗氧化剂在过去几十年中引起了广泛的关注,因为它们具有延缓或防止许多与氧化相关的疾病的能力。

大蒜作为一种常见的食物和草药,被广泛认为具有出色的抗氧化性能。

本文将着重探讨大蒜提取物的抗氧化性能及稳定性。

大蒜的抗氧化性能大蒜被认为是一种潜在的抗氧化剂,因其富含硫化合物、抗氧化酶和维生素C等成分。

硫化合物如硫化丙烯和硫化丁烯是大蒜中最重要的抗氧化成分之一。

这些化合物具有捕捉自由基和抑制氧化反应的能力,从而减少细胞受到氧化应激的损害。

大蒜提取物的抗氧化性能不仅仅体现在体内,也体现在体外。

研究表明,大蒜提取物能够有效清除多种自由基,如超氧阴离子自由基和羟自由基,从而减少氧化应激对细胞的损害。

此外,大蒜提取物还能够提高体内抗氧化酶的活性,比如超氧化物歧化酶和谷胱甘肽过氧化物酶等,进一步增强细胞的抗氧化能力。

大蒜提取物的稳定性大蒜提取物的抗氧化性能与其稳定性密切相关。

研究表明,大蒜提取物的抗氧化性能受到多种因素的影响,包括温度、光照、酸碱度、氧气浓度、还原剂和金属离子等。

高温和长时间暴露于光线下可能导致大蒜提取物中的活性成分丧失活性,从而降低其抗氧化性能。

此外,酸碱度和氧气浓度对大蒜提取物的稳定性也有影响。

酸性环境和高氧气浓度可能导致大蒜提取物中抗氧化成分的降解和失活。

为了提高大蒜提取物的稳定性和抗氧化性能,研究人员采取了一些改进措施。

例如,通过微胶囊化技术将大蒜提取物包裹在壳类材料中,可以改善其稳定性,在遇到不利条件时保护活性成分。

此外,添加某些还原剂和螯合剂可以降低大蒜提取物中金属离子对抗氧化成分的影响,从而增强其抗氧化性能。

一些研究还发现,将大蒜提取物与其他食物或草药一起使用,可以相互增强抗氧化能力,提高整体稳定性。

结论大蒜提取物作为一种常见的食物和草药,在抗氧化性能和稳定性方面表现出色。

其富含的硫化合物和抗氧化酶提供了有效的抗氧化保护,有助于减少氧化应激对细胞的损害。

蒜氨酸原料药稳定性影响因素的研究

蒜氨酸原料药稳定性影响因素的研究

蒜氨酸原料药稳定性影响因素的研究
马亮英;李新霞;陈坚
【期刊名称】《新疆中医药》
【年(卷),期】2010(028)006
【摘要】目的:考察蒜氨酸原料药(含量≥50%)在不同环境下质量是否经一定时间后改变,找出影响稳定性的因素.方法:根据<中国药典>2005年版二部制剂通则中与稳定性相关的指标为考察项目,采用HPLC法对蒜氨酸含量进行检测,分别进行影响因素试验及加速试验.结果:在光照、高温稳定性实验中,样品的性状、熔点、含量没有明显变化:在湿度实验中,样品变色结块、熔距变大、含量明显下降.结论:蒜氟酸原料药(含量≥50%)对高热、光照稳定,对高湿不稳定.在其原料药和相关制剂的生产、运输和贮存过程中应注意防止原料药吸潮降解.
【总页数】3页(P5-7)
【作者】马亮英;李新霞;陈坚
【作者单位】新疆医科大学第二附属医院,新疆乌鲁木齐,830028;新疆医科大学药学院,新疆乌鲁木齐,830011;新疆医科大学药学院,新疆乌鲁木齐,830011
【正文语种】中文
【相关文献】
1.蒜氨酸酶纯化方法研究进展及影响因素 [J], 于树芳;毛月
2.茚三酮比色法测定蒜氨酸原料药中总氨基酸的含量 [J], 朱瑾;李新霞;陈坚
3.HPLC法测定蒜酶催化蒜氨酸生成大蒜辣素的配比及稳定性研究 [J], 王伟萍;常军民;陈坚
4.蒜氨酸对家兔红细胞稳定性的影响研究 [J], 李明强; 韩志俊; 裴天容; 宋姗姗
5.蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究 [J], 黄洪勇;崔利娜;唐辉;职晓燕
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蒜氨酸标准品,CAS-556-27-4鉴定方法

蒜氨酸标准品,CAS-556-27-4鉴定方法

蒜氨酸标准品,CAS:556-27-4鉴定方法中文名称:蒜氨酸英文名称:Alliin供应商:远慕生物CAS号:556274分子式:C6H11NO3S分子量:177.22概述:蒜氨酸是一种从大蒜中发现并提取的物质,具有广泛的生物活性:对金葡菌、结核杆菌、脑膜炎双球菌等常见致病菌有强大的杀灭作用,对真菌感染、原虫病等微生物感染性疾病同样有显著疗效;此外在降血脂、提高人体免疫力、抗衰老、抗癌防癌等方面也有很好效果。

生物活性:Alliin,一种从大蒜中提取的,有口服活性亚砜化合物,具有降血糖、抗氧化和抗炎活性。

化学性质无:色块状结晶体,可溶于甲醇、乙醇、DMSO等有机溶剂,来源于大蒜。

用途:蒜氨酸具有保肝,抗菌,降血脂的作用。

用途范围:本品用于大学实验室、科研院所、制药企业科研部门实验室含量测定、鉴别、药理实验、活性。

注意事项:检测/鉴别精确,稳定性强,为了防止产品含量降低,不宜暴露在空气中,应防潮、避光和抗氧化包装,保存应以提高物质稳定性为原则,尽可能在干燥、低温条件下储藏。

该产品实验时必须在专业人士的指导监督下进行操作,严格按照相关法律法规正当处理使用后的废弃物,不要或旧的试剂。

使用时要一次性用完,若不足或剩余要更加注意其保管和管理。

操作前请参照相关法规、文献、MSDS等信息理解并掌握好试剂的特性,戴好防护用具再进行安全操作;该产品主要用于教学、科学研究、分析测试中。

我们提供的试剂产品品质优良,都是通过严格的检测体系认证。

远慕生物提供以下服务:1.中药提取物的定制研发和生产,中药提取物代加工相关服务。

2.中药高含量提取物的工业化高效分离及分离纯化生产3.天然产物原料药和中间体的生产,定制(包括合成,半合成)常见的标准品保存方法常温保存:通常用于化学性质比较稳定的标准品,建议保存于干燥阴凉的地方。

+4度冷藏:用于常温下不是很稳定的物质,保存于冰箱冷藏室。

20度冷冻:用于化学性质不稳定,常温下容易分解的物质。

用于蒜氨酸含量和有关物质测定的方法

用于蒜氨酸含量和有关物质测定的方法

用于蒜氨酸含量和有关物质测定的方法综述与专论?2008年第32卷第7期第314页貉学进履3142008,V o1.32,No.7ProgressinPharmaceuticalSciences用于蒜氨酸含量和有关物质测定的方法袁耀佐,杭太俊,陈坚,张正行(1.江苏省药品检验所,江苏南京210008;2.3.新疆医科大学药学院药物分析教研室,新疆中国药科大学药物分析教研室,江苏南京210009;乌鲁木齐,830054)[摘要】蒜氨酸是大蒜的功效成分大蒜辣素的前体.大蒜辣素极不稳定,无法直接制成制剂应用于临床,故从鲜蒜中分别提取化学性质相对稳定的蒜氨酸和蒜酶,制成蒜氨酸/蒜酶复合制剂的方法是目前大蒜高效制剂开发的主要思路.为配合蒜氨酸的质量研究,综述了近年来蒜氨酸含量和有关物质的测定方法,包括紫外法,薄层色谱扫描法,气相色谱法,高效毛细管电泳法,生物传感器法,液相色谱法,并讨论了各方法的优点和局限性.[关键词]蒜氨酸;含量测定;有关物质[中图分类号】R917[文献标识码】A[文章编号]1001—5094(2008)07—0314—05 AReviewonDeterminationMethodsofContentandRelatedSubstancesofAIliinYUANY ao.ZUO,HANGTaijun,CHENJian,ZHANGZheng—xing(1.JiangsuInstituteforDrugContro1.Nanfing210008China;2.DepartmentofPharmaceuti calAnalysis,ChinaPharmaceuticalUniversity,Nanfing210009,China;3.DepartmentofPhar macy,XinjiangMedicalUniversity,Urumqi830054,China)【Abstract】Alliinistheprecursorofallicinwhichisconsideredasoneofthemainbiologicallyactive componentsofgarliccloves.Owingtotheinstabilityofallicin,thepresentdevelopmentstrate gyisto extractalliinandalliinasewhicharerelativelystablefromfreshgadic,andthentomaketheco mplexpreparationofthem.Thedeterminationmethodsofcontentandrelatedsubstancesofalliinwe rereviewed,includingUV,TLC,GC,HPCE,biosensorsandHPLC.Theadvanmgesandlimitationsoftho semethodswerediscussedindetail.【Keywords]Alliin;Contentdetermination;Relatedsubstances大蒜的功效成分是蒜酶(alliinase,EC4.4.1.4)催化裂解蒜氨酸(alliin,化学名:一烯丙基一L半胱氨酸亚砜,S—allyl—L—cysteinesulfoxide)产生的大蒜辣素(allicin),阿霍烯(~oene)等一系列含硫有机化合物,这些功效成分的分离,提取或人工合成十分困难,且化学性质极不稳定,易分解,无法长期保存…,现有技术尚不能将其直接制成药物制剂应用[接受日期]2008-04-29于临床,因此目前国内外的研究思路是从鲜蒜中分别提取化学性质相对稳定的蒜氨酸及蒜酶,然后科学组方,制成蒜氨酸/蒜酶复合制剂,使其在体内释放大蒜辣素,阿霍烯等有效成分,充分发挥疗效,即蒜氨酸是高效大蒜制剂的前体药物.目前对蒜氨酸含量测定方法的报道很多,主要有:1985年张维勤采用的苯腙法(《中草药》),茚三酮通讯作者:杭太俊,教授;研究方向:药物分析;Td*************:E-mall:**************.cn2008,V o1.32,No.7315 ProgressinPharmaceuticalSciences药学进展法J,紫外法,薄层色谱扫描法,气相色谱法,高效毛细管电泳法,生物传感器法,高效液相色谱法等.除高效液相色谱法可用于蒜氨酸含量测定和有关物质检查外,其余方法均只限于含量测定,苯腙法,茚三酮反应法准确度较差,已很少使用,本文不予介绍,现对其它几种方法作一综述.1紫外法Miron等和黄雪松等利用蒜氨酸与蒜酶定量反应生成大蒜辣素及大蒜辣素能与4.巯基吡啶(4.MP)定量反应(见图1)的特点,问接测定鲜蒜中蒜氨酸的含量.由图1可见,1分子蒜氨酸可与1分子4一巯基吡啶定量反应,在324nm波长下测定4一巯基吡啶溶液分别与空白和含大蒜辣素溶液反应后紫外吸收的变化,利用摩尔吸收系数(文献[3]测得值:1.98x10;文献[4]测得值:2.064x10)法可计算蒜氨酸的含量.该方法的优点在于无需对照品即可进行含量测定,解决了蒜氨酸前期研究无对照品的困难,但专属性较差,且摩尔吸收系数受环境,吸收波长的波动等影响较大,影响测定结果的准确性.—.,2HOOCS一0H,N蒜氨酸L+丫H+,p大蒜辣素jz,\Iz.图1大蒜辣素与4-巯基吡啶反应式(Figure1.,I11process ofthereactionofallicinwith4-mercaptopyridine)2薄层色谱扫描法王岩等建立了测定大蒜中蒜氨酸含量的薄层色谱扫描法.薄层色谱条件:硅胶G薄层板;展开剂为正丁醇一醋酸一水(4:1:1)系统,上行展开,自然干燥后喷含茚三酮显色剂,蒜氨酸斑点显橙红色.扫描条件选择:As=530nm,AR=445nm;扫描方式为反射法双波长锯齿形扫描;线性参数SX=5,狭缝:1.2nmx1.2Din,扫描速度为20mm/min.综述与专论?2008年第32卷第7期第315页结果表明,蒜氨酸在860—3010ng范围内与其峰面积积分值有良好的线性关系,r=0.9950,板内及板问精密度RSD分别为2.73%和3.80%,2小时内测定结果稳定,RSD为0.14%(n=5),回收率为102.6%,RSD=2.3%(n=6).3气相色谱法Kubec等对蒜氨酸进行衍生化,以Js.丁基一胱氨酸亚砜(S.butylcystinesulfoxide)为内标,采用气相色谱法测定不同产地大蒜中蒜氨酸的含量,并用GC.MS法发现了新的物质乙基蒜氨酸[S—ethylcys—teinesulfoxide(ethiin)].其衍生化步骤为:称取大蒜提取物约30mg,用乙醇一水一吡啶(32:60:8)0.3mL溶解后,加衍生化试剂氯甲酸乙酯(ethylchloroformate)100mL,碘化钠(1g/mL)0.2mL,乙酰氯50及少许氯化亚锡,反应片刻.而后用二氯甲烷0.4mL萃取,留有机层溶液,供气相色谱检测.测定条件:采用HP.5或HP.INNOW AX熔融硅胶毛细管柱(30nlx0.25mm,0.25m),进样量为1mL,分流比为1:10,进样口和检测器温度分别为180oC和250oC,以氮气为载气,流速为2ml/L,升温程序为:从180oC以2~C/min线形升温至220oC, 并保持15min,FID/MS检测器.MS条件:氦气流速为0.6mL/min,E1离子源(70ev),离子源温度为250oC,离子扫描范围(m)为15—425.4高效毛细管电泳法马海乐等建立了测定鲜蒜中蒜氨酸含量的高效毛细管电泳法(CE).测定条件:未涂层石英毛细管(50cmx50m),30mmol/mL(pH6.0)的磷酸盐缓冲溶液,分离电压为21kV(一)一(+),电泳时问为7min,电泳温度为30℃,以压力进样方式进样(参数设置:毛细管截面压差为3.45kPa,进样时问为5s);柱上检测(检测波长:196nm).清洗程序:第一次进样前分别以甲醇,双蒸水,0.1mol/LHC1溶液,双蒸水,0.1mol/LNaOH溶液,双蒸水,缓冲溶液冲洗毛细管(参数设置:毛细管截面压差为137.8kPa;清洗时间为2min);两次进样间用0.1mol/LNaOH溶液,双蒸水,缓冲溶液冲洗(参数设置同第一次进样前).综述与专论?2008年第32卷第7期第316页药学琏履结果发现,样品可在6分钟内出峰,测得蒜氨酸质量浓度在lO~100~g/mL范围内与峰高的线性关系良好,r=0.998,平均回收率为98.56%,批内RSD为1.74%,批间RSD为2.83%.3162008,V oL32,No.7 ProgressinPharmaceuticalSciences2003年,Keusgen在上述仪器的基础上对检测系统进行了改进,将氨检测电极与酶固定电极组合在同一流通池中,使测定速度加快,检测的稳定性提高.5生物传感器法6高效液相色谱法1998年Keusgen将蒜酶固定在两通道的流动注射分析器(FIA)上,并连接一个氨检测器.通过定量检测由蒜酶催化形成的氨可推导出蒜氨酸的含量及酶活力等.该方法结果与传统的HPLC法有很好的相关性.1999年Milka等在Keusgen的基础上将氨检测电极与酶固定电极组合,制成生物传感器,样品中的氨气必须通过一个薄膜以消除pH对电极内部的影响.该方法敏感性强,响应时间短,在细胞中有很好的响应.同样可推导出蒜氨酸的含量及酶活力等. 2000年Milka等训又将蒜酶通过糖凝集素(sugar—leetin)间接固定在多孔二氧化铝电极上,该电极置于有两个闭合泵回路的系统中,在系统中循环的是含有9OU乳酸脱氢酶和2tool烟酰胺腺嘌呤二核苷酸(NADH)的10.0mL磷酸缓冲液(pH7.0,0.06mol/L),待系统平衡后,在其中加入20moL的L一(+)蒜氨酸,其与蒜酶反应产生大蒜辣素,大蒜辣素进一步与NADH反应,使得NADH含量减少,用紫外分光光度法在340nm处检测NADH 的减少量便可推导出酶活力.2002年,Krest等¨根据蒜氨酸与蒜酶反应定量产生氨气,将蒜酶固定在氨气电极周围的膜上或流动池中的一个模块中,含有蒜氨酸等底物溶液流过体系,发生酶促反应,产生氨气,检测电极记录信号,实现检测.该方法测定结果与HPLC法一致,但测定时间缩短,灵敏度高(测定蒜氨酸的检测限为3.7×10mol/L).HPLC法测定蒜氨酸的报道较多,Arnault等¨对2003年前测定蒜氨酸的HPLC法进行了总结,其时分离条件主要为反相色谱分离系统,检测器主要为紫外检测,也有采用荧光检测,电化学检测和质谱检测,供试品可直接测定,也有采用衍生化的方法. 本文对2003年及以后主要采用的测定方法进行介绍(见表1).近年来HPLC的固定相主要还是C.填料,也有氨基柱;流动相除常规的甲醇(或乙腈)一水卟,也有人采用添加缓冲液和离子对的方法以改善分离能力;检测手段包括紫外检测器(末端吸收)和质谱,美国药典第3O版(USP30)则采用衍生化的HPLC法.笔者曾对报道的几种方法进行了比较,发现用c18柱,以[20mmol/L磷酸二氢钠+10mmol/L庚烷磺酸钠(用85%的磷酸调节pH值至2.1)]一乙腈(85:15)为流动相的色谱条件,无论分离能力还是稳定性方面均好于其他几种方法.为配合大蒜高效制剂的研究,笔者采用HPLC—MS/MS一级质谱扫描总离子流谱测定有关物质的准分子离子,并利用它们的色谱保留时间,二级质谱及(或)对照品对照进行结构鉴定.结果表明,精制蒜氨酸中主要含7个有关物质成分,分别为脯氨酸,门冬酰胺,谷氨酰胺,甲基一L一半胱氨酸亚砜,异蒜氨酸,环蒜氨酸和精氨酸,为了提高检测灵敏度,笔者还建立了用6一氨基喹啉基一Ⅳ一羟基琥珀酰亚胺基氨基甲酸酯(AQC)衍生化法测定蒜氨酸粗品中的含量和有关物质,灵敏度明显提高.表1ItPLC法测定蒜氨酸含量和有关物质的色谱条件(Table1.ThedeterminationmethodsofcontentandrelatedsubstancesofalliinbyHPLC)2008,V oL32,No.7317ProgressinPharmaceuticalSciences药学建履?综述与专论?2008年第32卷g7期第317页'质谱条件:APCI离子源,气化室温度为350℃,加热毛细管温度为99℃,电晕放电电流为0.16A,辅助气(N2)流速为10.0L/min,扫描方式为选择性离子监测(SIM);用于定量的离子分别为m/z179一,r200和m/z195一,n217(内标).质谱检测参数:电喷雾正离子化(ESI),喷雾电压为5000V,雾化气压为241.15kPa,辅助气压力为34.45kPa,毛细管温度为350℃,全离子扫描(TIC)和二级质谱扫描检测,并测定其二级质谱(碰撞气为氩气,压力为23.79Pa,碰撞能量为10eV).7结语无论是从文献的数量还是应用范围来看,在测定鲜蒜,蒜粉或蒜制剂中蒜氨酸时,HPLC法因其专属性强而被广泛应用,尤其是HPLC.MS/MS法在有关物质检查和微量杂质结构鉴定等方面是其它方法所无法替代的,现已成为该类制剂蒜氨酸含量测定的主流方法,但由于对照品的制备和标化困难,在一定程度上限制了该方法的应用.GC.MS法有很好的专属性,但蒜氨酸为强极性化合物,无法直接气化,测定蒜氨酸的含量和有关物质需对样品进行衍生化;高效毛细管电泳法因蒜氨酸无高波长紫外吸收而使检测灵敏度较低;紫外法的专属性较差;薄层色谱扫描法也只是半定量方法,这些方法只在特定条件下使用;生物传感器法有很高灵敏度,但目前为止发展还不成熟,尤其是重复性差,使其应用受到限制.随着蒜氨酸开发应用的深人,相信现有的含量和有关物质测定方法会越来越完善,更方便,准确的新方法也会出现.[参考文献】[1]LawsonLD,BauerR.P.眦ofEurope:Chemi—stryandBiologicalActivity:AcsSymposiumSeries[c].WashingtonDC:AmericanChemicalSociety,1998:176-209.[2]何照范,张迪青.保健食品化学及其检测技术[M].综述与专论?2008年第32卷第7期第318页药学进展北京:中国轻工业出版社,1999:141.142.[3]MironT,ShinI,FeigenblatG,eta1.Aspectrophotometric assayforallicin,alliinandalliinase(alliinlyase)witha chromogcnicthio1.reactionof4-mercaptopyridinewiththio- sulfinates[J].Ana/Biochem,2002,307(1):76—83.[4]黄雪松,温丽儿,宴日安.利用4-MP测定大蒜中的蒜氨酸[J].食品科学,2004,27(1):171.174.[5]王岩,李新霞,陈坚.薄层扫描法测定大蒜中蒜氨酸的含量[J].中国药学杂志,2003,38(3):217-218.[6]KubecR,Svobodov6M,V eli~ekJ.GaschromatograpHc determinationofS.alk(en)y1.L.cysteinesulfoxides[J].J ChromatogrA,1999,862(1):85-94.[7]马海乐,杨恒星,代春华,等.高效毛细管电泳法测定大蒜中蒜氨酸含量[J].食品科学,2005,26(2):189.192.[8]KeusgenM.Ahish-throughputmethodforthequanti- tativedeterminationofalliin[J].Pla~a,1998,64(8):736-740.[9]MilkaP,KrestI,KeusgenM.Developmentofanalliln? biosensor[J].Phammde,1999,54:6-12.[10]MilkaP,K_restI,KeusgenM.Immobilizationofalliinase onporousaluminumoxide[J].BiotechnolBioeng,2000,69(3):344.348.[11]KrestI,KeusgenM.Biosensoricflow?throughmethodfor thedeterminationofcysteinesulfoxides[J].AndChimActa,2002,469(2-3):155?164.[12]KeusgenM,JtingerM,KrestI,eta1.Developmentofa biosensorspecificforcysteinesulfoxides[J].Biosens Bioelectron,2003,18(5-6):805.812.[13]KeusgenM,JtingerM,KrestI,eta1.Biosensoricdetection ofthecysteinesulphoxidealliin[J].SensActuatorsB Chem,2003,95:297-302.[14]ArnauhI,ChristidesJP,MandonN,eta1.Hish?perfor- Inallceion?pairchromatograp~methodforsimultaneous analysisofalliin,deoxyalliin,aUicinanddipeptideprecur-8orsing~licproductsusingmultiplemassspectrometry andUVdetection[J].JChromatogrA,2003,991:69-75. 3182008,V oL32,No.7 ProgressinPharmaceuticalSciences[15]常军民,陈坚,张丽静.蒜氨酸在小鼠的药代动力学研究[J].药物分析杂志,2003,23(4):308.310.[16]常军民,向阳,美丽万,等.蒜氨酸在大鼠的药代动力学研究[J].中成药,2004,26(3):184.186.[17]常军民,向阳,张丽静,等.HPLC.MS法测定小鼠血浆中蒜氨酸的浓度[J].新疆医科大学,2003,26(6):532-536.[18]常军民,张丽静,美丽万,等.HPLC测定不同产地大蒜中蒜氨酸的含量[J].中成药,2004,26(12):1025.1026.[19]张丽静,常军民,杨新华,等.反相高效液相色谱法测定大蒜中蒜氨酸的含量[J].色谱,2004,22(4):459-450.[20]黄雪松,温丽儿,宴日安.反相高压液相色谱法测定鲜蒜中的蒜氨酸[J].食品与发酵工业,2005,31(5):106.1o9.[21]王晓明,陈坚.HPLC法测定蒜氨酸含量[J].新疆医科大学,2003,26(6):602.[22]王伟萍,常军民,陈坚.HPLC法测定蒜酶催化蒜氨酸生成大蒜辣素的配比及稳定性研究[J].新疆医科大学,2003,26(6):534.[23]TheUnitedStatesPharmacopeialConventionInc.The UnitedStatesPhanmwopeia30[M].RochvilleMD:The UnitedStatesPharmacopeialConventionInc,2007:930. [24]顾洁,袁耀佐,杭太俊,等.高效液相离子对法测定蒜氨酸的含量和有关物质[J].药物分析杂志,2007,27 (12):1917.1919,[25]袁耀佐,顾洁,杭太俊,等.HPLC?MS/MS法研究精制蒜氨酸中有关物质[J].药学,2007,42(06): 639—642.[26]IchikawaMakoto,IdeNagatoshi,Y oshidaJiro,eta1. Determinationofsevenorganosulfurcompoundsingarlic byhigh.performanceliquidchromatography[J].J odChem,2006,54(5):1535.1540.[27]袁耀佐,顾洁,杭太俊,等.AQC柱前衍生化法测定蒜氨酸的含量和有关物质[J].色谱,2008,26(2):242.245.。

蒜氨酸酶纯化方法研究进展及影响因素

蒜氨酸酶纯化方法研究进展及影响因素

等 系列含硫 化合 物 , 形 成 大蒜 辣 素起 重 要作 用 对 研 究 , 开发利 用 大蒜类 药 品、 健 品有 十分 重 要 的 对 保
意 义。
分 离后新 鲜 大 蒜 的蒜 酶 和 M / D大蒜 的蒜 酶 的纯 VV
的蒜 氨酸酶 的分 离纯化 方法 、 性质 、 结构 及功 能进 行 度 , 结果 表 明, S p arl一0 经 e h c S2 0凝 胶 柱 一 步分 离 的 y
由于研 究者们 选 用 原料 的 品种和 来 源 不 同, 提 液 用 盐析 、 滤、 冻 干 燥 等 方 法提 取 纯 化 蒜 酶 , D - 浸 超 冷 S S
采 用 0 ~7 % 硫 酸 铵 沉 淀 、 A、 离 子 交换 色谱 6 % , 酶催 化 裂 解 蒜 氨酸 的 最适 温度 为 3℃ , % 0 H 阴 0 蒜 5 最 法 、 电点聚焦 的纯化 方法得 到 了最 高纯 化倍 数7 5 适 p 为 7 0 ; 着 温度 的 升 高 , 等 . H .0 随 蒜酶 的 稳 定 性 下 倍, 电泳后 的蒜酶 产 率为 0 3 , 终 的 均质 蒜 酶经 .% 最 单纯 聚丙烯 酰胺凝 胶 电泳及 S S 聚丙烯 酰胺凝 胶 电 D. 泳测定 , 电点聚焦分析和 电泳滴定 曲线分 析, 有结 等 所 果 显示通过银染法后得到 1 条蛋 白带。K enr等 ut e t
( H ) S 分 级 沉 淀 、 eh c l.0 H 柱 层 析、 N O S p ar S2 0 R y
1 蒜 氨酸 酶 ( 酶 ) 蒜 的纯 化方 法探究
目前 蒜酶纯 化 主要采用 一 系列 的蛋 白质分 离纯
化技 术 , 如盐析 , 亲和色 谱及凝 胶 过滤 等技 术 。基本 步骤 为 : 鲜蒜 去皮 , 提 , 浆 , 心 ; 上 清 液 , 浸 匀 离 取 盐

_蒜氨酸_备具投资价值的黄金项目

_蒜氨酸_备具投资价值的黄金项目

中国现代企业报/2008年/9月/19日/第B04版今日财经“蒜氨酸”——备具投资价值的黄金项目加拿大科力斯国际集团邵会吉博士海归报国、服务于民的健康巨献兴农现代研究证实,以蒜氨酸为主要代表的大蒜有效成分具有独特的药理活性,具有天然广谱素之称。

在杀菌抑菌、防癌抗癌、降血脂、提高身体免疫力、抗衰老、抗肿瘤等方面功效显著,具有很高的药用价值,被世界医学家、科学家誉为“植物黄金”。

纯品蒜氨酸的提取技术条件非常苛刻,难度很大,并且其化学性质极不稳定,在捣碎破损的情况下极易和大蒜中的蒜氨酸酶结合转化成蒜素即二烯丙基硫代亚磺酸酯,或被挥发、氧化而成为其它物质如阿霍烯(ajoene)、乙烯基二噻英(vinyldithiins)等。

国外专家曾在-68℃以下用超低温冷冻离心的手段制取少量纯品蒜氨酸,而且需要在-18℃的情况下保存,很难工业化生产。

目前世界上只有美国、瑞士、加拿大等少数国家拥有纯品蒜氨酸,但数量少,美国西格玛公司实验室蒜氨酸售价每克高达约1万美金左右,十分昂贵。

蒜氨酸项目在国内首次采用“隧道式微波技术”灭活蒜氨酸酶,使蒜氨酸酶钝化,破碎打浆,固液分离,同时加入高活性的“多酶反应体”,结合“多酶反应体”降解大蒜当中的蛋白质、果胶、纤维素等粘稠物质,不仅增加了过滤效率和蒜氨酸的产率,而且保持了蒜氨酸因子固有的生理活性和功效,同时集成了离子交换等生化分离技术对大蒜中的蒜氨酸进行提取纯化,使蒜氨酸的纯度达96%以上,提取蒜氨酸后的废弃物无任何污染,而且还可以用来开发为饲料添加剂。

由于上述三项技术的集成使用与蒜氨酸项目试制的集成设备相结合,解决了长期困扰蒜氨酸的分离提取不能在常温常压下进行操作的技术难题,也解决了蒜氨酸大规模工业化生产问题,对比国外普遍采用的超低温真空破碎分离提取、冷冻干燥等工艺,蒜氨酸项目设备投资小,工艺过程简单,便于人员操作,对生产人员知识和技术要求不高等特点,该技术如能有效推广,可解决我国大蒜深加工的技术难题以及提高大蒜制品的高附加值问题,在解决三农问题以及构建和谐社会和出口创汇等方面都具有重要而深远的意义。

神奇的大蒜,神奇的蒜氨酸

神奇的大蒜,神奇的蒜氨酸

神奇的大蒜,神奇的蒜氨酸
蒜氨酸(alliin)是从大蒜中提取的一种有效成份,具有抗菌、发炎、杀虫等作用,现代药理研究证明,蒜氨酸还有抗血小板聚集、增加纤溶活性、降血脂、抗动脉硬化、扩张血管、降血压和清除自由基、抗脂质过氧化损伤等作用,用于防治冠心病心绞痛有较好疗效。

功效
蒜氨酸具有多种功效:能够预防线粒体功能障碍、抗菌杀毒、清除自由基、提高免疫力、抗衰老、抗癌抗肿瘤、降血脂、降胆固醇和预防动脉粥样硬化等。

课题组利用双水相法提取大蒜粉中蒜氨酸得率可达到20.4mg/g,相较于传统水提法得率有大幅提高,经过阳离子交换树脂纯化后纯度达到80.9%。

双水相体系作为提取剂提取蒜氨酸不仅蒜氨酸得率得到提高,而且操作简单,温度影响低,易扩大。

蒜氨酸,被当代世界医学界誉为“植物黄金”,美国、加拿大等西方发达国家的科学家利用现代生物高科技手段,对蒜氨酸的研究更加深入,视蒜氨酸为许多当今人类无法克服的疑难病症的救星。

大量的研究和临床实验证实,蒜氨酸具有独特的药理活性,具有显著的降血脂,降血粘,稳定血压,调节血糖,软化血管及改善血液循环的巨大作用,从根本上预防和改善心脑血管疾病,其药用价值远远高于其它大蒜制品。

因其需要在超低温中(-68℃)提取,不易储存,目前国际上只有美国、瑞士、加拿大等少数国家能够提取。

新疆医科大学药学院院长、博士生导师、中国蒜氨酸之父陈坚教授带领研发团队不仅攻克了蒜氨酸提取技术,而且提取的蒜氨酸的纯度可以达99.9%,达到世界领先水平,并于2013年获得国家“蒜氨酸
标准样品证书”.开创了中国蒜氨酸研究一个新的里程碑,为蒜氨酸相关药物的开发铺平了道路。

开创了中国蒜氨酸研究一个新的里程碑,为蒜氨酸相关药物的开发铺平了道路。

蒜氨酸

蒜氨酸
蒜方法
目录
02 发现及功效
蒜氨酸是一种有机化合物,分子式为C6H11NO3S,是大蒜中主要生物活性物质之一,占大蒜干重的0.6%-2%。
作为大蒜中独特的非蛋白类含硫氨基酸,占大蒜干重的0.6%-2%。在水中极易溶解,不溶于纯无水乙醇、氯 仿、丙酮、乙醚和苯,以稀丙酮和乙醇结晶可得到白色针簇状结晶。现代医学表明:蒜氨酸具有抗肿瘤、协同降 血压、抗菌杀毒、清除自由基、保肝护肝及抗糖尿病等多种药理功效。是大蒜中独有的含硫化合物。
发现及功效
1944年美国化学家卡巴里特等人进行了频谱分析,使用当时的最新技术,在没有受到损伤的大蒜的组织中, 发现包含着一种无味无臭的硫化物。但是将大蒜切开或者损坏后,就会产生另一种化合物,这种被命名为蒜素的 化合物拥有独特的刺激性臭味和超强的杀菌能力,还容易发生化学性变化,化学家们成功地提取了该化合物。受 到该研究成果的影响,瑞士的诺贝尔奖得主化学家斯特鲁和泽伊贝克两人于1951年,发现了一种能产生蒜素的氨 基酸—蒜氨酸和能将蒜氨酸转换成蒜素的蒜氨酸酶。生蒜中原来存在的是无臭的蒜氨酸和分解蒜氨酸用的蒜氨酸 酶,这两种物质之间通过薄细胞膜隔开分别存在着。但是生蒜遭到损坏后,细胞膜破裂,这两种物质碰在一起发 生了化学反应,蒜氨酸被蒜氨酸酶分解后生成蒜素这种拥有特殊气味的化合物。人们最早对蒜氨酸的药效的发现 只是它的抗菌、杀菌作用,一直以来都是经验性的利用它来治疗各种疾病、感染症等。1930年,德国的科学家雷 万等人通过实验发现即使是五万分之一浓度的大蒜的稀释液,也能对伤寒菌、大肠杆菌等有强大的杀菌作用。施 拜察博士的报告中也提到在一些非洲的医院,经常利用大蒜来治疗霍乱、伤寒病。但是,蒜素非常不稳定,在空 气中极容易被迅速分解,会变化成大蒜挥发油的主要成分硫化烯丙基类(二烯丙基二硫醚等)、硫醇类有机硫化 物,产生让人不舒服的气味。最后,全部分解后生成的多硫化物并没有什么药效,也没有任何气味。

大蒜蒜酶蒜氨酸催化动力学及临床应用研究

大蒜蒜酶蒜氨酸催化动力学及临床应用研究

大蒜蒜酶/蒜氨酸催化动力学及临床应用研究【摘要】目的从鲜蒜中分离纯化蒜酶,并研究其酶学性质、动力学特性以及临床常用溶剂对酶活力的影响,为今后进一步优化蒜酶的提取纯化工艺和临床应用提供必要理论参数。

方法采用盐析、超滤、冷冻干燥等方法提取纯化蒜酶,SDS-Page凝胶电泳法测定纯化蒜酶分子量,丙酮酸法和考马斯亮蓝G-250法测定蒜酶活力。

结果分离纯化所得蒜酶的分子量为97.88 KDa,纯度大于60%;蒜酶催化裂解天然蒜氨酸的最适温度为35℃,最适pH为7.00;随着温度的升高,蒜酶的稳定性下降;蒜酶在pH 6.5的缓冲体系中最稳定;以天然蒜氨酸为底物测得米氏常数Km=2.139 mmol・L-1,最大反应速度Vmax=41.67 U・mg-1(蛋白);临床常用溶剂0.9%氯化钠注射液、复方氯化钠注射液(含0.85%NaCl、0.03%KCl、0.033%CaCl2)对蒜酶具有显著的激活作用,而5%葡萄糖注射液、10%葡萄糖注射液、葡萄糖氯化钠注射液(含5%葡萄糖、0.9%氯化钠)则较强的抑制了蒜酶活力,75%和95%乙醇具有强烈的杀酶作用。

结论蒜酶具有热不稳定性和pH不稳定性;其酶解反应选择在35℃和pH 7.00的缓冲体系中最佳;而蒜酶溶解在pH6.5的缓冲体系中能较长时间保持稳定;临床常用溶剂中,含氯化钠的注射液(不含葡萄糖)对蒜酶活力有显著的激活作用,而含有葡萄糖的注射液强烈抑制蒜酶活力;75%和95%乙醇作为消毒液使用时也应避免其对蒜酶的杀伤作用。

实验结果对进一步优化蒜酶的提取纯化工艺研究以及蒜酶的临床应用具有指导意义。

【关键词】大蒜; 蒜酶; 酶学性质; 动力学特性; 临床常用溶剂Abstract:ObjectiveTo isolate alliinase (EC 4.4.1.4) from its natural source,garlic and to study the effect, enzymatic properties,kinetic charactristics as well as dissolvant commonly used in clinic on enzyme activity.MethodsThe purification of the enzyme consisted of salting-out step,ultrafiltration and freeze drying, etc. The relative molecular masses of this garlic enzyme was estimated by SDS-PAGE. Protein concentrations of allinase preparations were determined according to the method of Bradford with BSA as standard. Enzymeactivity was assayed from the amount of enzymatically formed pyruvate using natural L-(+)-alliin as substrate. ResultsSDS-PAGE gave evidence that alliinase obtained from garlic consisted of two identical subunits with molecular weights of 97.88 KDa and 60%of purity. The highest enzyme act ivity for the purified alliinase was found to be at 35℃. The enzyme pH optimal had at pH7.0,but it was the most stable at pH6.5. The Km value for alliinase from garlic was estimated to be 2.139mmol・L-1 for natural L-(+)-alliin. Vmax using natural L-(+)-alliin as substrate was at 41.67 U・mg-1 protein). When Sodium Chloride Injections containing0.9%NaCl or complex prescription(0.85%NaCl, 0.03%KCl, 0.033%CaCl2) was used as solvent, there was a stimulation of enzyme activity, but Glucos Injections respectively containing 5%glucos,10%glucos,5%glucose and 0.9%NaCl gave a strong inhibition. The lyase solved in 75% or 95% alcohol completely lost its activity rapidly.ConclusionIt has been demonstrated that alliinase is sensitive to pH or temperatures. Injections containing glucos used as solvent is not suitable for this enzyme. Using 75% or 95% alcohol as disinfectant should avoid lowering the enzyme activity. The present paper gave directions to optimizing purification procedure of enzyme and its clinical application.Key words:Garlic; Alliinase; Enzymology properties; Kinetic charactristics; Clinical dissolvant commonly used大蒜Allium sativum L.为百合科葱属多年生草本植物,作为药食两用,在世界上的许多国家均有悠久历史。

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蒜氨酸原料药的理化性质和稳定性研究【摘要】目的建立蒜氨酸原料药理化性质和稳定性的评价方法。

方法通过对蒜氨酸原料药理化性质的测定,确定了该化合物的理化鉴别方法,同时建立RP-HPLC法对蒜氨酸原料药的稳定性进行研究。

结果该法操作简便、灵敏度高、准确性和重复性好。

结论稳定性实验表明蒜氨酸原料药对高热、光照稳定;对高湿不稳定。

【关键词】蒜氨酸原料药反相高效液相色谱法稳定性Study on the Physiochemical Characteristiis and the Stability of Alliin SubstanceHUANG Hong yong, CUI Li na, TANG Hui, ZHI Xiao yan1.Key Laboratory of Xinjiang Phytomedicinal Resources,Shihezi 832002,China;2.The SecondAffiliated Hospital of Xinxiang Medical University,Xinxiang 453002,ChinaAbstract:ObjectiveT o set up a method for evaluation of physiochemical characteristics and the stability of Alliin substance. MethodsThis experiment studied the physiochemical characteristics and the stability of Aallin substance by determinating physiochemical characteristics or by RP-HPLC method. ResultsThe method was easy, accurate and stable. ConclusionAlliin substance is stable under the conditions of high temperature and strong light, but unstable under the conditions of high humidity.Key words:Alliin substance;RP-HPLC;Stability蒜氨酸(Alliin,分子式C6H11NO3S,分子量177.22,结构式见图1) 化学名为:S-烯丙基-L-半胱氨酸亚砜(S-allyl-L-cysteine sulfoxide,SACS),是百合科葱属植物大蒜Allium sativum中独特的含硫氨基酸[1],纯品为无嗅无味,性质稳定的白色结晶,鲜蒜中其含量为0.5%~2.0%。

现代研究表明,蒜氨酸具有抑制肿瘤、保护心血管、提高免疫力、清除自由基等多种重要的人体保健功能[2,3]。

本文主要对中试生产的蒜氨酸原料药的理化性质及稳定性进行了研究。

现报道如下。

1 器材美国Agilent1100系列高效液相色谱仪;德国SartoriusBP211D电子天平;PE-241型旋光度测定仪;Nicolet-380型智能傅立叶红外光谱仪;北京泰克X-5型显微熔点测定仪;上海科哲TD-Ⅱ全自动薄层铺板机;宁波东南RXZ-300C型智能人工气候箱;上海安亭TGL-16G 高速离心机。

蒜氨酸原料药(中试自制,批号061019,061226,07013003);蒜氨酸对照品(自制,含量99.5%,批号061222);利巴韦林原料药(广东肇庆星湖生物化学制药厂,含量99.0%,批号20050923);其他试剂均为分析纯;试液均按《中国药典》(2005版)Ⅱ部附录XV B配制。

2 方法与结果2.1 理化性质2.1.1 熔点与溶解度取60℃减压干燥至恒重的蒜氨酸样品适量,以X-5显微熔点测定仪(使用前已校正)测定,每份样品重复测定3次。

按照溶解度测定的方法,溶剂选择水、乙醚、丙酮、乙醇、冰醋酸、无机酸、无机碱,考察样品的溶解情况。

蒜氨酸原料药的熔点为158.0~162.0℃;蒜氨酸在水中易溶;在无机酸、碱中略溶;在乙醚、丙酮、乙醇、冰醋酸中不溶。

2.1.2 薄层色谱(TLC)将样品配制成适当浓度的溶液,在薄层板上用自动定量点样器点样,自然挥干后,以正丁醇∶冰醋酸∶水=4∶4∶1为展开剂饱和20 min后,于20℃条件下,上行展开3 h,自然晾干,喷0.2%茚三酮乙醇显色剂,在105℃烘箱烘10 min,自然光照下目视观察。

在上述色谱条件下,样品中蒜氨酸的斑点均与对照品一样,呈现粉红色,比移值Rf均为0.48。

2.1.3 旋光度或比旋度取60℃减压干燥至恒重的蒜氨酸样品适量,配制成5 mg·ml-1的水溶液,按《中国药典》(2005年版)Ⅱ部附录VI E的方法进行测定。

采用1 dm的微量管(1 ml),在钠光谱的D线(589.3 nm)检测。

样品比旋度测定的平均值为+62.8°(n=3),与文献报道[4]较为一致,表明该工艺提取的蒜氨酸为S构型。

2.1.4 红外吸收光谱按《中国药典》(2005年版)Ⅱ部附录Ⅳ C红外分光光度法,采用溴化钾压片法测定。

3 500~3 300 cm-1的弱宽吸收峰和1 695~1 540 cm-1的强吸收峰,与N-H和O-H的伸缩振动相符;3 076~3 012 cm-1的中等强度吸收峰,与=C-H伸缩振动相符;1 695~1 540 cm-1的强吸收峰,与C=C,C=O伸缩振动相符;1 024 cm-1的吸收峰,与-C-N,S=O伸缩振动相符,见图2。

红外吸收光谱特征与蒜氨酸结构相符。

2.2 稳定性实验2.2.1 色谱条件色谱柱为Agilent ZORBAX SB-C18色谱柱(4.6 mm×250 mm,5 μm);流动相为100%水,用前经过滤脱气;流速0.8 ml·min-1;检测波长220 nm;柱温25℃;进样量20 μl;以利巴韦林为内标,采用RP-HPLC定量。

2.2.2 利巴韦林内标液的制备称取利巴韦林原料药约200 mg,精密称定,置烧杯中,蒸馏水溶解并转移至500 ml容量瓶中,定容至刻度,即得。

2.2.3 蒜氨酸对照品储备液的制备称取蒜氨酸对照品约20 mg,精密称定,置小烧杯中,蒸馏水溶解并转移至50 ml容量瓶中,定容至刻度,即得。

2.2.4 含量测定方法分别精密量取蒜氨酸对照品储备液0.5,2.5,5.0,6.0,7.5,10.0 ml至25 ml容量瓶,各加入2.0 ml利巴韦林内标液,加水稀释至刻度,摇匀,分别取适量10000 r/min离心6 min,取20 μl进样,记录对照品峰面积与内标峰面积。

计算校正因子f=3.5821(RSD=1.0%,n=6),按下式计算样品含量:C样=f·A样·C内/A内蒜氨酸对照品的浓度在5~200 μg·ml-1内线性关系良好,最低检测浓度为5 μg·ml-1。

蒜氨酸的保留时间约为5 min,理论塔板数大于10 000,对称因子为1.05,与其他有关物质色谱峰的分离度大于1.5。

见图3。

2.2.5 精密度实验精密量取同一份蒜氨酸对照品液2.0 ml至25 ml容量瓶,按“2.2.4”项下处理,分别于0,1,2,3,4,5 h测定蒜氨酸含量,计算日内精密度;测定1次/d,一共6次,计算日间精密度。

结果日内RSD为0.17%;日间RSD为0.83%,表明蒜氨酸比较稳定,重复性较好。

2.2.6 回收率实验以07013003号样品处理原液为对象,分别精密量取1.0 ml至25 ml 容量瓶中,加内标液2.0 ml后,分别加入蒜氨酸对照品溶液1.0,2.0,3.0 ml,按“2.2.4”项下处理。

每个浓度平行处理3份,测定蒜氨酸总含量。

平均回收率为99.86%,RSD为1.3%。

表明RP-HPLC法测定蒜氨酸含量的方法回收率较高,能够满足定量分析的要求。

2.2.7 光照影响实验取蒜氨酸原料药适量,均匀平摊于表面皿内,厚度小于5 mm,置人工气候箱内,于照度4 500 Lx±500 Lx条件下放置10 d,分别在5,10 d取样。

RP-HPLC 测定原料药的含量变化、TLC检查斑点变化、观察性状、测定熔点。

经过10 d照射各考察项目基本正常,表明蒜氨酸对光照稳定。

结果见表1。

表1 蒜氨酸光照稳定性实验(略)2.2.8 温度影响实验取蒜氨酸原料药适量,均匀平摊于表面皿内,厚度小于5 mm,置人工气候箱内,于50℃恒温条件下放置10 d,分别在5,10 d取样。

按“2.2.7”项下同法测定。

经过10 d高温各考察项目基本正常,表明蒜氨酸对高温稳定。

结果见表2。

表2 蒜氨酸温度稳定性实验(略)2.2.9 湿度影响实验取蒜氨酸原料药适量,均匀平摊于表面皿内,厚度小于5 mm,置人工气候箱内,于相对湿度75%、温度25℃条件下放置10 d,分别在第5,10天取样。

按“2.2.7”项下同法测定。

经过10 d高湿实验,含量明显下降,性状发生改变,熔距变大表明蒜氨酸高湿不稳定。

结果见表3。

表3 蒜氨酸湿度稳定性试验(略)2.2.10 加速实验取蒜氨酸3批制剂适量,均置人工气候箱内,于相对湿度65%、温度30℃条件下放置6个月,分别在0,1,2,3,6月末取样。

按“2.2.7”项下同法测定。

经过6个月加速实验,各考察项目基本正常,表明蒜氨酸在该包装下稳定。

结果见表4。

表4 蒜氨酸加速实验(略)3 讨论3.1 理化鉴别在薄层鉴别方法中,曾参照有关文献[5],分别选用正丁醇:冰醋酸:水=4:1:1和正丁醇:冰醋酸:水=4:4:1两种展开剂展开。

发现两种展开剂展开的斑点都较圆整,但后者展开的Rf值稍大于前者。

因此,选用后者作为展开剂。

显色剂分别选用碘化铋钾、改良碘化铋钾试液、20%硫酸乙醇溶液、0.2%茚三酮乙醇溶液,发现0.2%茚三酮乙醇显色最为灵敏且颜色鲜亮。

因此,选择茚三酮乙醇溶液作为显色剂。

3.2 稳定性实验在光照、高温实验中,样品的性状、熔点、含量没有明显变化;在湿度实验中,样品变色结块、熔距变大、含量明显下降。

本实验的结果表明,蒜氨酸在强光照射、高温条件下较稳定,在室温条件下,对湿度较敏感,样品易发生潮解,故蒜氨酸原料药最好密闭包装,在阴凉干燥处贮存。

加速试验实验结果表明,蒜氨酸在现有的包装条件下质量稳定。

本文建立的理化鉴别方法简单易行,RP-HPLC法准确、稳定,灵敏度高,重复性好,适用于该化合物含量测定及杂质的检查,为药物的剂型开发与质量标准的研究奠定基础。

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