TCID50 MOI PFU意义及其换算
[VIP专享]TCID50和PFU的换算公式
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1、PFU:plaque forming unit，空斑形成单位：感染性滴度的单位一般表示为PFU/ml。
由于测定pfu往往重复性较差，因此近些年许多研究又开始采用TCID50方法来计算病毒的感染单位。
因此建议也可使用TCID50法。
2、MOI :multiplicity of infection，感染复数：传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究。
其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值，也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量。
噬菌体的数量单位为pfu。
一般认为MOI是一个比值，没有单位，其实其隐含的单位是pfu number/cell。
后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中，含义是感染时病毒与细胞数量的比值。
然而，由于病毒的数量单位有不同的表示方式，从而使MOI产生了不同的含义。
能产生细胞裂解效应的病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用pfu表示病毒数量，因此其MOI的含义与传统的概念相同。
传统意义上的MOI的测定，其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件，遵循Poisson分布规律，可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）。
其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP（0）。
其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如，如果要感染培养皿中99%的培养细胞，则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell。
(一)原理 病毒感染细胞后，由于固体介质的限制，释放的病毒只能由最初感染的细胞向周边扩展。
经过几个增殖周期，便形成一个局限性病变细胞区，此即病毒蚀斑。
从理论上讲，一个蚀斑是由最初感染细胞的一个病毒颗粒形成的，因而该项技术常用于病毒颗粒计数和分离病毒克隆。
但在实际操作中，常出现几个病毒颗粒同时感染一个细胞的情况，影响滴定的准确性和克隆的纯一性，为此，接种的病毒液要充分分散和稀释。
对于细胞结合性病毒，如MDV，需用单层细胞；对细胞释放性病毒，即可用固相介质悬浮的细胞，也可用单层细胞，但后者需用琼脂等固体介质盖在细胞上，以防释放的病毒在液体介质中流动。
TCID50与moi值的计算
实验四病毒感染力的滴定（TCID的测定）50一、实验目的了解病毒感染力测定的几种常用方法，掌握半数细胞培养物感染量TCID50的操作步骤、计算方法及含义。
二、测定病毒感染力的方法( 50% lethal dose)：用动物或鸡胚来检测半数致死量LD50(egg 50% infective dose)：用鸡胚来检测半数鸡胚感染量EID50（50% tissue culture infective dose)：用细胞半数细胞培养物感染量TCID50来检测蚀斑形成单位（plaque forming unit，PFU）：用细胞来检测三、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV）的操作步骤四、TCID501、在青霉素瓶或离心管中将病毒液作连续10倍的稀释，从10-1-10-10。
2、将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中，每一稀释度接种一纵排共8 孔，每孔接种100µl。
3、在每孔加入细胞悬液100µl，使细胞量达到2~3×105个/ml。
4、设正常细胞对照，正常细胞对照作两纵排。
（100µl生长液+100µl细胞悬液）5、逐日观察并记录结果，一般需要观察5-7天。
6、结果的计算，按Reed-Muench两氏法或Karber法的计算方法五、TCID501、Reed-Muench两氏法CPE：Cytopathic effect距离比例＝（高于50%病变率的百分数-50%）/（高于50%病变率的百分数-低于50%病变率的百分数）＝（）/（）＝lgTCID=距离比例×稀释度对数之间的差+高于50%病变率的稀释度的对数50=×(-1)+(-3)==TCID50含义：将该病毒稀释接种100µl可使50%的细胞发生病变。
2、Karber法=L-dlgTCID50L：最高稀释度的对数D：稀释度对数之间的差S：阳性孔比率总和=-1-1× =lgTCID50=TCID50含义：将该病毒稀释接种100µl可使50%的细胞发生病变。
TCID50-MOI-PFU意义及其换算
Multiplicity of infection (MOI)The multiplicity of infection (abbreviated MOI) is the average number of phage per bacterium. The MOI is determined by simply dividing the number of phage added (ml added x PFU/ml) by the number of bacteria added (ml added x cells/ml). The average number of phage per bacterium in the population could be 0.1, 1, 2, 10, etc, depending upon how you setup the experiment.Although the MOI tells you the average number of phage per bacterium, the actual number of phage that infect any given bacterial cell is a statistical function. For example, if the MOI is 1, some cells will get infected with one phage but some cells may be infected with 0 phage and other cells infected with two phage. The proportion of cells in a population infected by a specific number of phage (n) can be calculatedfrom the Poisson distribution.PFU:plaque forming unit，空斑形成单位。
TCID50与moi值的计算.doc
实验四病毒感染力的滴定（TCID的测定）50一、实验目的了解病毒感染力测定的几种常用方法，掌握半数细胞培养物感染量TCID50的操作步骤、计算方法及含义。
二、测定病毒感染力的方法( 50% lethal dose)：用动物或鸡胚来检测半数致死量LD50(egg 50% infective dose)：用鸡胚来检测半数鸡胚感染量EID50（50% tissue culture infective dose)：用细胞半数细胞培养物感染量TCID50来检测蚀斑形成单位（plaque forming unit，PFU）：用细胞来检测三、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV）的操作步骤四、TCID501、在青霉素瓶或离心管中将病毒液作连续10倍的稀释，从10-1-10-10。
2、将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中，每一稀释度接种一纵排共8 孔，每孔接种100µl。
3、在每孔加入细胞悬液100µl，使细胞量达到2~3×105个/ml。
4、设正常细胞对照，正常细胞对照作两纵排。
（100µl生长液+100µl细胞悬液）5、逐日观察并记录结果，一般需要观察5-7天。
6、结果的计算，按Reed-Muench两氏法或Karber法的计算方法五、TCID501、Reed-Muench两氏法CPE：Cytopathic effect距离比例＝（高于50%病变率的百分数-50%）/（高于50%病变率的百分数-低于50%病变率的百分数）＝（91.6-50）/（91.6-40）＝ 0.8lgTCID=距离比例×稀释度对数之间的差+高于50%病变率的稀释度的对数50=0.8×(-1)+(-3)=-3.8=10-3.8/0.1mlTCID50含义：将该病毒稀释103.8接种100µl可使50%的细胞发生病变。
几个病毒学的基本概念MOI、TCID50、PFU
几个病毒学的基本概念: MOI、TCID50、PFUMult iplicity of infection (MOI)The multiplicity of infection (abbreviated MOI) is the average number of phage per bacterium. The MOI is determined by simply dividing the number of phage added (ml added x PFU/ml) by the number of bacteria added (ml added x cells/ml). The average number of phage per bacterium in the population could be 0.1, 1, 2, 10, etc, depending upon how you set up the experiment.Although the MOI tells you the average number of phage per bacterium, the actual number of phage that infect any given bacterial cell is a statistical function. For example, if the MOI is 1, some cells will get infected with one phage but some cells may be infected with 0 phage and other cells infected with two phage.The proportion of cells in a population infected by a specific number of phage (n) can be calculated from the Poisson distribution.PFU:plaque forming unit，空斑形成单位。
TCID50-MOI-PFU意义及其换算
TCID50-MOI-PFU意义及其换算Multiplicity of infection (MOI)The multiplicity of infection (abbreviated MOI) is the average number of phage per bacterium. The MOI is determined by simply dividing the number of phage added (ml added x PFU/ml) by the number of bacteria added (ml added x cells/ml). The average number of phage per bacterium in the population could be 0.1, 1, 2, 10, etc, depending upon how you setup the experiment.Although the MOI tells you the average number of phage per bacterium, the actual number of phage that infect any given bacterial cell is a statistical function. For example, if the MOI is 1, some cells will get infected with one phage but some cells may be infected with 0 phage and other cells infected with two phage. The proportion of cells in a population infected by a specific number of phage (n) can be calculatedfrom the Poisson distribution.PFU:plaque forming unit，空斑形成单位。
TCID50与moi值的计算.doc
实验四病毒感染力的滴定（TCID的测定）50一、实验目的了解病毒感染力测定的几种常用方法，掌握半数细胞培养物感染量TCID50的操作步骤、计算方法及含义。
二、测定病毒感染力的方法( 50% lethal dose)：用动物或鸡胚来检测半数致死量LD50(egg 50% infective dose)：用鸡胚来检测半数鸡胚感染量EID50（50% tissue culture infective dose)：用细胞半数细胞培养物感染量TCID50来检测蚀斑形成单位（plaque forming unit，PFU）：用细胞来检测三、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV）的操作步骤四、TCID501、在青霉素瓶或离心管中将病毒液作连续10倍的稀释，从10-1-10-10。
2、将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中，每一稀释度接种一纵排共8 孔，每孔接种100µl。
3、在每孔加入细胞悬液100µl，使细胞量达到2~3×105个/ml。
4、设正常细胞对照，正常细胞对照作两纵排。
（100µl生长液+100µl细胞悬液）5、逐日观察并记录结果，一般需要观察5-7天。
6、结果的计算，按Reed-Muench两氏法或Karber法的计算方法五、TCID501、Reed-Muench两氏法CPE：Cytopathic effect距离比例＝（高于50%病变率的百分数-50%）/（高于50%病变率的百分数-低于50%病变率的百分数）＝（91.6-50）/（91.6-40）＝ 0.8lgTCID=距离比例×稀释度对数之间的差+高于50%病变率的稀释度的对数50=0.8×(-1)+(-3)=-3.8=10-3.8/0.1mlTCID50含义：将该病毒稀释103.8接种100µl可使50%的细胞发生病变。
TCID50与moi值的计算.doc
实验四病毒感染力的滴定（TCID的测定）50一、实验目的了解病毒感染力测定的几种常用方法，掌握半数细胞培养物感染量TCID50的操作步骤、计算方法及含义。
二、测定病毒感染力的方法( 50% lethal dose)：用动物或鸡胚来检测半数致死量LD50(egg 50% infective dose)：用鸡胚来检测半数鸡胚感染量EID50（50% tissue culture infective dose)：用细胞半数细胞培养物感染量TCID50来检测蚀斑形成单位（plaque forming unit，PFU）：用细胞来检测三、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV）的操作步骤四、TCID501、在青霉素瓶或离心管中将病毒液作连续10倍的稀释，从10-1-10-10。
2、将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中，每一稀释度接种一纵排共8 孔，每孔接种100µl。
3、在每孔加入细胞悬液100µl，使细胞量达到2~3×105个/ml。
4、设正常细胞对照，正常细胞对照作两纵排。
（100µl生长液+100µl细胞悬液）5、逐日观察并记录结果，一般需要观察5-7天。
6、结果的计算，按Reed-Muench两氏法或Karber法的计算方法五、TCID501、Reed-Muench两氏法CPE：Cytopathic effect距离比例＝（高于50%病变率的百分数-50%）/（高于50%病变率的百分数-低于50%病变率的百分数）＝（91.6-50）/（91.6-40）＝ 0.8lgTCID=距离比例×稀释度对数之间的差+高于50%病变率的稀释度的对数50=0.8×(-1)+(-3)=-3.8=10-3.8/0.1mlTCID50含义：将该病毒稀释103.8接种100µl可使50%的细胞发生病变。
【2017年整理】TCID50和PFU的换算公式
【2017年整理】TCID50和PFU的换算公式在病毒学研究中，TCID50（半数组织培养感染剂量）和PFU（空斑形成单位）是两种常用的衡量病毒感染能力的指标。
这两种指标在病毒学研究中有着重要的应用，例如在病毒感染动力学、病毒传播、病毒免疫等方面。
然而，由于实验条件和操作方法的差异，不同实验室或不同实验条件下得到的TCID50和PFU数值可能存在差异。
因此，如何在不同实验条件下进行TCID50和PFU之间的换算，成为一个亟待解决的问题。
一、TCID50的定义和计算方法TCID50是指在一定条件下，能够使50%的细胞培养物出现细胞病变的病毒量。
TCID50的计算方法通常采用ReedMuench法，该方法通过测定病毒在不同稀释度下的感染能力，计算出50%细胞感染所需的病毒量。
具体计算公式如下：TCID50 = 10^(1/d) × [1 + (0.5 0.5^d)] / (1 0.5^d)其中，d为病毒稀释度的对数，通常取值为1、2、3等。
二、PFU的定义和计算方法PFU是指在一定条件下，能够使50%的细胞培养物形成空斑的病毒量。
PFU的计算方法通常采用Karber法，该方法通过测定病毒在不同稀释度下的空斑形成能力，计算出50%细胞形成空斑所需的病毒量。
具体计算公式如下：PFU = 10^(1/d) × [1 + (0.5 0.5^d)] / (1 0.5^d)其中，d为病毒稀释度的对数，通常取值为1、2、3等。
三、TCID50和PFU之间的换算由于TCID50和PFU的计算方法相同，且都采用ReedMuench法或Karber法，因此在不同实验条件下进行TCID50和PFU之间的换算，实际上就是将一种指标的计算公式转换为另一种指标的计算公式。
具体换算方法如下：1. 将TCID50的计算公式转换为PFU的计算公式：PFU = TCID50 × (1 0.5^d) / (1 + 0.5 0.5^d)2. 将PFU的计算公式转换为TCID50的计算公式：TCID50 = PFU × (1 0.5^d) / (1 + 0.5 0.5^d)其中，d为病毒稀释度的对数，通常取值为1、2、3等。
TCID50与moi值的计算
实验四病毒感染力的滴定（TCID的测定）50一、实验目的了解病毒感染力测定的几种常用方法，掌握半数细胞培养物感染量TCID50的操作步骤、计算方法及含义。
二、测定病毒感染力的方法( 50% lethal dose)：用动物或鸡胚来检测半数致死量LD50(egg 50% infective dose)：用鸡胚来检测半数鸡胚感染量EID50（50% tissue culture infective dose)：用细胞半数细胞培养物感染量TCID50来检测蚀斑形成单位（plaque forming unit，PFU）：用细胞来检测三、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV）的操作步骤四、TCID501、在青霉素瓶或离心管中将病毒液作连续10倍的稀释，从10-1-10-10。
2、将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中，每一稀释度接种一纵排共8 孔，每孔接种100µl。
3、在每孔加入细胞悬液100µl，使细胞量达到2~3×105个/ml。
4、设正常细胞对照，正常细胞对照作两纵排。
（100µl生长液+100µl细胞悬液）5、逐日观察并记录结果，一般需要观察5-7天。
6、结果的计算，按Reed-Muench两氏法或Karber法的计算方法五、TCID501、Reed-Muench两氏法CPE：Cytopathic effect距离比例＝（高于50%病变率的百分数-50%）/（高于50%病变率的百分数-低于50%病变率的百分数）＝（91.6-50）/（91.6-40）＝ 0.8lgTCID=距离比例×稀释度对数之间的差+高于50%病变率的稀释度的对数50=0.8×(-1)+(-3)=-3.8=10-3.8/0.1mlTCID50含义：将该病毒稀释103.8接种100µl可使50%的细胞发生病变。
TCID50和PFU的换算公式
1、PFU:plaqueforming unit，空斑形成单位：感染性滴度的单位一般表示为P FU/ml。
由于测定pfu往往重复性较差，因此近些年许多研究又开始采用TCID50方法来计算病毒的感染单位。
因此建议也可使用TCID50法。
2、MOI :multipl icityof infecti on，感染复数：传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究。
其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值，也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量。
噬菌体的数量单位为pfu。
一般认为MOI是一个比值，没有单位，其实其隐含的单位是pfu number/cell。
后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中，含义是感染时病毒与细胞数量的比值。
然而，由于病毒的数量单位有不同的表示方式，从而使MOI产生了不同的含义。
能产生细胞裂解效应的病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用pfu表示病毒数量，因此其MOI的含义与传统的概念相同。
传统意义上的M O I的测定，其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件，遵循Poisson分布规律，可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）。
其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP（0）。
其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如，如果要感染培养皿中99%的培养细胞，则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell。
(一)原理病毒感染细胞后，由于固体介质的限制，释放的病毒只能由最初感染的细胞向周边扩展。
经过几个增殖周期，便形成一个局限性病变细胞区，此即病毒蚀斑。
从理论上讲，一个蚀斑是由最初感染细胞的一个病毒颗粒形成的，因而该项技术常用于病毒颗粒计数和分离病毒克隆。
TCID50与moi值的计算.doc
实验四病毒感染力的滴定（TCID的测定）50一、实验目的了解病毒感染力测定的几种常用方法，掌握半数细胞培养物感染量TCID50的操作步骤、计算方法及含义。
二、测定病毒感染力的方法( 50% lethal dose)：用动物或鸡胚来检测半数致死量LD50(egg 50% infective dose)：用鸡胚来检测半数鸡胚感染量EID50（50% tissue culture infective dose)：用细胞半数细胞培养物感染量TCID50来检测蚀斑形成单位（plaque forming unit，PFU）：用细胞来检测三、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV）的操作步骤四、TCID501、在青霉素瓶或离心管中将病毒液作连续10倍的稀释，从10-1-10-10。
2、将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中，每一稀释度接种一纵排共8 孔，每孔接种100µl。
3、在每孔加入细胞悬液100µl，使细胞量达到2~3×105个/ml。
4、设正常细胞对照，正常细胞对照作两纵排。
（100µl生长液+100µl细胞悬液）5、逐日观察并记录结果，一般需要观察5-7天。
6、结果的计算，按Reed-Muench两氏法或Karber法的计算方法五、TCID501、Reed-Muench两氏法CPE：Cytopathic effect距离比例＝（高于50%病变率的百分数-50%）/（高于50%病变率的百分数-低于50%病变率的百分数）＝（91.6-50）/（91.6-40）＝ 0.8lgTCID=距离比例×稀释度对数之间的差+高于50%病变率的稀释度的对数50=0.8×(-1)+(-3)=-3.8=10-3.8/0.1mlTCID50含义：将该病毒稀释103.8接种100µl可使50%的细胞发生病变。
病毒学的几个概念：PFU MOI TCID50
病毒学的几个概念：PFU MOI TCID50之马矢奏春创作PFU:plaque forming unit, 空斑形成单元.感染性滴度的单元一般暗示为PFU/ml.由于测定pfu往往重复性较差, 因此近些年许多研究又开始采纳TCID50方法来计算病毒的感染单元.因此建议也可使用TCID50法.MOI :multiplicity of infection, 感染复数.传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究.其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值, 也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量.噬菌体的数量单元为pfu.一般认为MOI是一个比值, 没有单元, 其实其隐含的单元是pfu number/cell.后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中, 含义是感染时病毒与细胞数量的比值.然而, 由于病毒的数量单元有分歧的暗示方式, 从而使MOI发生了分歧的含义.能发生细胞裂解效应的病毒例如纯真疱疹病毒等习惯上仍用pfu暗示病毒数量, 因此其MOI的含义与传统的概念相同.传统意义上的MOI的测定, 其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件, 遵循Poisson分布规律, 可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）.其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP（0）.其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如, 如果要感染培养皿中99%的培养细胞, 则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell.TCID50 Protocol：1：制备96孔板单层细胞2：将病毒做系列稀释, 横向接种单层细胞板, 每稀释度重复3孔3：每日观察细胞病变, 记录高于50和低于50％病变孔的病毒稀释度, 4：计算比距, 获得TCID50计算比距：（高于50％的病变率－50％）/（高于50％病变率－小于50％病变率）＝比距；比距与接近50%病变率的病毒的稀释度的指数相加, 就获得了指数.比如：比色计算或者显微镜观察病毒的TCID50在10的负7和8次方之间, 那么, 指数－8与比距相加, 获得的新的指数, 就是TCID50的指数, TCID50=10的-7.几次方TCID50与 PFU换算: PFUs＝0.7×TCID50的滴度。
TCID50与moi值的计算
实验四病毒感染力的滴定（TCID的测定）50一、实验目的了解病毒感染力测定的几种常用方法，掌握半数细胞培养物感染量TCID50的操作步骤、计算方法及含义。
二、测定病毒感染力的方法( 50% lethal dose)：用动物或鸡胚来检测半数致死量LD50(egg 50% infective dose)：用鸡胚来检测半数鸡胚感染量EID50（50% tissue culture infective dose)：用细半数细胞培养物感染量TCID50胞来检测蚀斑形成单位（plaque forming unit，PFU）：用细胞来检测三、材料1、长满单层的细胞1瓶2、胰酶、吸球、吸管、生长液3、96孔细胞培养板4、加样器、枪头5、病毒液（PRV）的操作步骤四、TCID501、在青霉素瓶或离心管中将病毒液作连续10倍的稀释，从10-1-10-10。
2、将稀释好的病毒接种到96孔微量培养板中，每一稀释度接种一纵排共8 孔，每孔接种100µl。
3、在每孔加入细胞悬液100µl，使细胞量达到2~3×105个/ml。
4、设正常细胞对照，正常细胞对照作两纵排。
（100µl生长液+100µl细胞悬液）5、逐日观察并记录结果，一般需要观察5-7天。
6、结果的计算，按Reed-Muench 两氏法或Karber 法 五、TCID 50的计算方法 1、Reed-Muench 两氏法CPE ：Cytopathic effect距离比例＝（高于50%病变率的百分数-50%）/（高于50%病变率的百分数-低于50%病变率的百分数）＝（91.6-50）/（91.6-40） ＝ 0.8lgTCID 50=距离比例×稀释度对数之间的差+高于50%病变率的稀释度的对数 =0.8×(-1)+(-3) =-3.8 TCID 50=10-3.8/0.1ml含义：将该病毒稀释103.8接种100µl 可使50%的细胞发生病变。
病毒学的几个概念：PFU MOI TCID50
病毒学的几个概念：PFU MOI TCID50之欧侯瑞魂创作PFU:plaque forming unit, 空斑形成单元.感染性滴度的单元一般暗示为PFU/ml.由于测定pfu往往重复性较差, 因此近些年许多研究又开始采纳TCID50方法来计算病毒的感染单元.因此建议也可使用TCID50法.MOI :multiplicity of infection, 感染复数.传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究.其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值, 也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量.噬菌体的数量单元为pfu.一般认为MOI是一个比值, 没有单元, 其实其隐含的单元是pfu number/cell.后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中, 含义是感染时病毒与细胞数量的比值.然而, 由于病毒的数量单元有分歧的暗示方式, 从而使MOI发生了分歧的含义.能发生细胞裂解效应的病毒例如纯真疱疹病毒等习惯上仍用pfu暗示病毒数量, 因此其MOI的含义与传统的概念相同.传统意义上的MOI的测定, 其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件, 遵循Poisson分布规律, 可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）.其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP（0）.其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如, 如果要感染培养皿中99%的培养细胞, 则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell.TCID50 Protocol：1：制备96孔板单层细胞2：将病毒做系列稀释, 横向接种单层细胞板, 每稀释度重复3孔3：每日观察细胞病变, 记录高于50和低于50％病变孔的病毒稀释度, 4：计算比距, 获得TCID50计算比距：（高于50％的病变率－50％）/（高于50％病变率－小于50％病变率）＝比距；比距与接近50%病变率的病毒的稀释度的指数相加, 就获得了指数.比如：比色计算或者显微镜观察病毒的TCID50在10的负7和8次方之间, 那么, 指数－8与比距相加, 获得的新的指数, 就是TCID50的指数, TCID50=10的-7.几次方TCID50与 PFU换算: PFUs＝0.7×TCID50的滴度。
病毒学的几个概念：PFU MOI TCID50
病毒学的几个概念：PFU MOI TCID50之老阳三干创作PFU:plaque forming unit,空斑形成单元.感染性滴度的单元一般暗示为PFU/ml.由于测定pfu往往重复性较差,因此近些年许多研究又开始采纳TCID50方法来计算病毒的感染单元.因此建议也可使用TCID50法.MOI :multiplicity of infection,感染复数.传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究.其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值,也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量.噬菌体的数量单元为pfu.一般认为MOI是一个比值,没有单元,其实其隐含的单元是pfu number/cell.后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中,含义是感染时病毒与细胞数量的比值.然而,由于病毒的数量单元有分歧的暗示方式,从而使MOI发生了分歧的含义.能发生细胞裂解效应的病毒例如纯真疱疹病毒等习惯上仍用pfu 暗示病毒数量,因此其MOI的含义与传统的概念相同.传统意义上的MOI的测定,其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件,遵循Poisson分布规律,可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）.其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP （0）.其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如,如果要感染培养皿中99%的培养细胞,则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell.TCID50 Protocol：1：制备96孔板单层细胞2：将病毒做系列稀释,横向接种单层细胞板,每稀释度重复3孔3：每日观察细胞病变,记录高于50和低于50％病变孔的病毒稀释度,4：计算比距,获得TCID50计算比距：（高于50％的病变率－50％）/（高于50％病变率－小于50％病变率）＝比距；比距与接近50%病变率的病毒的稀释度的指数相加,就获得了指数.比如：比色计算或者显微镜观察病毒的TCID50在10的负7和8次方之间,那么,指数－8与比距相加,获得的新的指数,就是TCID50的指数,TCID50=10的-7.几次方TCID50与 PFU换算: PFUs＝0.7×TCID50的滴度。
病毒学的几个概念：PFUMOITCID50之欧阳治创编
病毒学的几个概念：PFUMOI TCID50PFU:plaque forming unit，空斑形成单位。
感染性滴度的单位一般表示为PFU/ml。
由于测定pfu往往重复性较差，因此近些年许多研究又开始采用TCID50方法来计算病毒的感染单位。
因此建议也可使用TCID50法。
MOI :multiplicity of infection，感染复数。
传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究。
其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值，也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量。
噬菌体的数量单位为pfu。
一般认为MOI是一个比值，没有单位，其实其隐含的单位是pfu number/cell。
后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中，含义是感染时病毒与细胞数量的比值。
然而，由于病毒的数量单位有不同的表示方式，从而使MOI产生了不同的含义。
能产生细胞裂解效应的病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用pfu表示病毒数量，因此其MOI 的含义与传统的概念相同。
传统意义上的MOI的测定，其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件，遵循Poisson分布规律，可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）。
其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP（0）。
其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如，如果要感染培养皿中99%的培养细胞，则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell。
TCID50 Protocol：1：制备96孔板单层细胞2：将病毒做系列稀释，横向接种单层细胞板，每稀释度重复3孔3：每日观察细胞病变，记录高于50和低于50％病变孔的病毒稀释度，4：计算比距，获得TCID50计算比距：（高于50％的病变率－50％）/（高于50％病变率－小于50％病变率）＝比距；比距与接近50%病变率的病毒的稀释度的指数相加，就获得了指数。
病毒学的几个概念：PFUMOITCID50之欧阳引擎创编
病毒学的几个概念：PFU MOITCID50欧阳引擎（2021.01.01）PFU:plaque forming unit，空斑形成单位。
感染性滴度的单位一般表示为PFU/ml。
由于测定pfu往往重复性较差，因此近些年许多研究又开始采用TCID50方法来计算病毒的感染单位。
因此建议也可使用TCID50法。
MOI :multiplicity of infection，感染复数。
传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究。
其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值，也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量。
噬菌体的数量单位为pfu。
一般认为MOI是一个比值，没有单位，其实其隐含的单位是pfu number/cell。
后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中，含义是感染时病毒与细胞数量的比值。
然而，由于病毒的数量单位有不同的表示方式，从而使MOI产生了不同的含义。
能产生细胞裂解效应的病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用pfu表示病毒数量，因此其MOI的含义与传统的概念相同。
传统意义上的MOI的测定，其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件，遵循Poisson 分布规律，可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）。
其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP （0）。
其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如，如果要感染培养皿中99%的培养细胞，则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell。
TCID50 Protocol：1：制备96孔板单层细胞2：将病毒做系列稀释，横向接种单层细胞板，每稀释度重复3孔3：每日观察细胞病变，记录高于50和低于50％病变孔的病毒稀释度，4：计算比距，获得TCID50计算比距：（高于50％的病变率－50％）/（高于50％病变率－小于50％病变率）＝比距；比距与接近50%病变率的病毒的稀释度的指数相加，就获得了指数。
病毒学的几个概念：PFUMOITCID50之欧阳道创编
病毒学的几个概念：PFU MOITCID50PFU:plaque forming unit，空斑形成单位。
感染性滴度的单位一般表示为PFU/ml。
由于测定pfu往往重复性较差，因此近些年许多研究又开始采用TCID50方法来计算病毒的感染单位。
因此建议也可使用TCID50法。
MOI :multiplicity of infection，感染复数。
传统的MOI 概念起源于噬菌体感染细菌的研究。
其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值，也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量。
噬菌体的数量单位为pfu。
一般认为MOI是一个比值，没有单位，其实其隐含的单位是pfu number/cell。
后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中，含义是感染时病毒与细胞数量的比值。
然而，由于病毒的数量单位有不同的表示方式，从而使MOI产生了不同的含义。
能产生细胞裂解效应的病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用pfu表示病毒数量，因此其MOI的含义与传统的概念相同。
传统意义上的MOI的测定，其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件，遵循Poisson分布规律，可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）。
其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP（0）。
其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如，如果要感染培养皿中99%的培养细胞，则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell。
TCID50 Protocol：1：制备96孔板单层细胞2：将病毒做系列稀释，横向接种单层细胞板，每稀释度重复3孔3：每日观察细胞病变，记录高于50和低于50％病变孔的病毒稀释度，4：计算比距，获得TCID50计算比距：（高于50％的病变率－50％）/（高于50％病变率－小于50％病变率）＝比距；比距与接近50%病变率的病毒的稀释度的指数相加，就获得了指数。
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/viewthread.php?tid=7423&page=1Multiplicity of infection (MOI)The multiplicity of infection (abbreviated MOI) is the average number of phage per bacterium. The MOI is determined by simply dividing the number of phage added (ml added x PFU/ml) by the number of bacteria added (ml added x cells/ml). The average number of phage per bacterium in the population could be 0.1, 1, 2, 10, etc, depending upon how you setup the experiment.Although the MOI tells you the average number of phage per bacterium, the actual number of phage that infect any given bacterial cell is a statistical function. For example, if the MOI is 1, some cells will get infected with one phage but some cells may be infected with 0 phage and other cells infected with two phage. The proportion of cells in a population infected by a specific number of phage (n) can be calculatedfrom the Poisson distribution.PFU:plaque forming unit，空斑形成单位。
感染性滴度的单位一般表示为PFU/ml。
由于测定pfu往往重复性较差，因此近些年许多研究又开始采用TCID50方法来计算病毒的感染单位。
因此建议也可使用TCID50法。
MOI :multiplicity of infection，感染复数。
传统的MOI概念起源于噬菌体感染细菌的研究。
其含义是感染时噬菌体与细菌的数量比值，也就是平均每个细菌感染噬菌体的数量。
噬菌体的数量单位为pfu。
一般认为MOI是一个比值，没有单位，其实其隐含的单位是pfu number/cell。
后来MOI被普遍用于病毒感染细胞的研究中，含义是感染时病毒与细胞数量的比值。
然而，由于病毒的数量单位有不同的表示方式，从而使MOI产生了不同的含义。
能产生细胞裂解效应的病毒例如单纯疱疹病毒等习惯上仍用pfu表示病毒数量，因此其MOI的含义与传统的概念相同。
传统意义上的MOI的测定，其原理是基于病毒感染细胞是一种随机事件，遵循Poisson分布规律，可计算出感染一定比例的培养细胞所需的感染复数（MOI）。
其公式为：P = 1- P(0) ,P(0) = e-m 或m = -InP（0）。
其中：P 为被感染细胞的百分率P(0)为未被感染细胞的百分率m为MOI值例如，如果要感染培养皿中99%的培养细胞，则：P(0) = 1% = 0.01m = -In(0.01)= 4.6 pfu/cell。
TCID50 Protocol：1：制备96孔板单层细胞2：将病毒做系列稀释，横向接种单层细胞板，每稀释度重复3孔3：每日观察细胞病变，记录高于50和低于50％病变孔的病毒稀释度，4：计算比距，获得TCID50计算比距：（高于50％的病变率－50％）/（高于50％病变率－小于50％病变率）＝比距；比距与接近50%病变率的病毒的稀释度的指数相加，就获得了指数。
比如：比色计算或者显微镜观察病毒的TCID50在10的负7和8次方之间，那么，指数－8与比距相加，获得的新的指数，就是TCID50的指数，TCID50=10的-7.几次方TCID50与PFU换算:PFUs＝0.7×TCID50的滴度/biovirus/blog/item/86073b01e7b080037aec2cef.htmlMOI（感染复数）TCID50 PFU 病毒的滴度，感染单位2010-06-19 19:40Q: The author infected cells with an M.O.I of 50. The virus I titrated is 5X10(7)p.f.u/ml. So how much virus should I dilute to get an M.O.I of 5?A: An MOI of 50 means 50 active viral particles per cell. So, if you have 10(6) cells on a plate x MOI (50)= 5x10(7) p.f.u for that plate (which equals one ml of your virus stock).The number of p.f.u./ml was then calculated as TCID50 /ml x 0.69./cgi/content/abstract/90/10/2364Ian J. Groves,3 Matthew B. Reeves4 and John H. Sinclair. Lytic infection of permissive cells with human cytomegalovirus is regulated by an intrinsic …preimmediate-early‟ repression of viral gene expression mediated by histone post-translational modification. Journal of General Virology (2009), 90, 2364–2374Converting TCID[50] to MOIHow do I convert TCID[50] to MOI?The easiest way to convert TCID[50] to an MOI value is to do the following:Convert the titer by TCID[50] to plaque forming units (PFU). To do this, multiply the titer by 0.7.Since plaque forming units represents the estimated number of infectious units per volume of virus material, one can estimate the total number of infectous particles. Next, divide the number of infectious particles by the number of cells to be infected to obtain the MOI. Then, dilute the virus accordingly in order to obtain 0.1 to 0.01 MOI. For example,If the TCID[50] titer for a given virus is 10(7.25) TCID[50] per 0.2 ml, 10(7.25) is approximately 17,782,794 (the inverse log of 7.25), and when multiplied by 0.7 gives 12,447,956 PFU per 0.2 ml. If you were going to infect 10 million cells at an MOI of 0.1, you need 1,000,000 infectious particles. For the above example, you should dilute 0.2 ml of the virus stock at least 1:12.5 to obtain 1,000,000 infectious particles per 0.2 ml, then this volume (0.2 ml x 12.5 = 2.5 ml) should be diluted appropriately to infect the number of vessels. (Usually we infect a 75 cm2 flask with 2 mL of diluted virus or a 150 cm2 flask with 5 mL of diluted virus).为什么病毒载体的感染单位有不同的表示方法？不同的病毒载体，其表示感染单位的方式有所不同。
早期的逆转录病毒载体一般用CFU，是“clone forming unit”的简称，叫做“克隆形成单位”。
感染性滴度的单位一般表示为CFU/ml。
这是因为最早的逆转录病毒系统是Dr. Dusty Miller建立的LN系列（包括LN，LXSN，LNSX，LXCN，LNCX等），包装细胞株是PA317, psi2，G&P86等。
在这套载体中N代表了neo基因，X代表外源基因，S代表SV40启动子，C代表CMV启动子，L代表逆转录病毒的LTR，具有启动子功能。
因此，早期的LN系列载体是双表达载体，重组病毒中有neo基因的表达单位，滴度测定时用病毒感染NIH3T3细胞，用G418选择培养，根据形成neo基因抗性克隆的多少来计算病毒滴度，因此滴度的单位就用cfu/ml来表示了。
这种表示方法至今还很常用。
腺病毒载体的感染单位一般用PFU表示，是“plaque forming unit”的简称，叫做“空斑形成单位”。
感染性滴度的单位一般表示为PFU/ml。
由于测定pfu往往重复性较差，因此近些年许多研究又开始采用古老的TCID50方法来计算腺病毒的感染单位。
What do MOI and PFU mean?The term MOI stands for Multiplicity Of Infection. This value describes the ratio of the number of virions per target cell at the time the virus is added to the cuture.The term PFU stands for Plaque Forming Unit. One PFU/ml is defined as 1 lytic event (seen as a plaque on a lawn of 293 cells) per milliliter of media. This isa measure of viral titer.Additional information can be found in the following reference: Nature Medicine, vol. 3, number 7, July 1997. Sensitivity and Reproducibility in Adenoviral Infectious Titer Determination. Once the viral titer is determined, a given MOI can be specified and used for the target cells.什么是MOI？MOI 是multiplicity of infection的缩写，中文译为感染复数。