家兔缺氧实验报告doc
兔呼吸运动的调节实验报告
兔呼吸运动的调节实验报告实验报告题目：兔呼吸运动的调节实验报告摘要：在这次实验中，我们研究了兔呼吸运动的调节。
通过研究不同条件下兔的呼吸运动数据，我们发现呼吸中枢对血氧和二氧化碳浓度变化的敏感性很高，在不同条件下，呼吸中枢的反应存在差异。
通过这次实验，我们加深了对呼吸中枢的理解，也探索出了更深入的研究方向。
介绍：兔是一种常见的实验动物，近年来被广泛应用于生理实验中。
它们有着较大的体型和易于饲养的特点，同时其呼吸系统的特点也使其成为研究呼吸调节的理想实验动物。
在呼吸系统的控制中，呼吸中枢的作用至关重要。
呼吸中枢负责控制呼吸的频率和深度，以保持动物体内氧气和二氧化碳的平衡。
实验方法：我们选取了5只健康的兔子，安置在实验舱内，同时将呼吸信号和动物内部二氧化碳、氧气等生理指标的数据传感器插入兔子甲状腺下动脉、肺动脉等处进行数据采集。
通过多种条件下的实验，我们分别研究了以下几个问题：1.慢性缺氧对兔的呼吸运动的影响2.动物在睡眠中对呼吸的调节变化3.兔子在紧急情况下的呼吸变化结果：1.慢性缺氧对兔的呼吸运动的影响当兔体内氧气浓度下降至一定程度时，呼吸中枢开始发生反应，加快呼吸频率，以提高兔身体的氧气供应。
在长时间的慢性缺氧作用下，呼吸中枢适应了这种状态，使兔子在缺氧情况下仍能保持相对稳定的呼吸频率和深度。
2.动物在睡眠中对呼吸的调节变化在兔子睡眠时，呼吸中枢对二氧化碳的敏感性下降，此时呼吸频率和深度均有所降低。
这与人类在睡眠时的呼吸调节情况十分相似。
3.兔子在紧急情况下的呼吸变化当兔子感到危险时，呼吸中枢会迅速发出指令，使呼吸频率和深度加快，以增加兔子体内氧气的供应量，以应对可能出现的危机情况。
讨论：通过实验我们发现呼吸中枢对血氧和二氧化碳浓度的变化十分敏感，在不同的条件下会有不同的调节反应。
这些发现为我们深入研究呼吸调节提供了新的方向。
总结：本次实验研究了兔呼吸运动的调节，得出了一些重要的结论。
这些结论不仅对兔呼吸调节的研究有所帮助，也为相关领域的研究工作提供了有用的信息。
兔子的呼吸实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 了解兔子的呼吸系统结构及其功能。
2. 观察兔子在不同状态下的呼吸情况。
3. 掌握呼吸实验的基本操作方法。
二、实验原理兔子的呼吸系统主要由鼻腔、气管、支气管和肺组成。
兔子为哺乳动物，采用双重呼吸方式，即吸气时氧气进入肺泡，二氧化碳排出；呼气时，氧气从肺泡排出，二氧化碳进入肺泡。
本实验通过观察兔子的呼吸情况，了解其呼吸系统的结构和功能。
三、实验材料1. 实验动物：健康成年兔子1只。
2. 实验仪器：解剖显微镜、解剖刀、剪刀、镊子、酒精灯、注射器、记录纸、记录笔等。
3. 实验试剂：生理盐水、碘酊、酒精等。
四、实验步骤1. 准备实验动物：将兔子放入安静、通风的环境中，观察其呼吸情况。
2. 解剖准备：将兔子固定在解剖台上，用酒精棉球消毒实验部位，用碘酊消毒兔子的鼻腔、气管、支气管和肺。
3. 观察鼻腔：用解剖显微镜观察兔子的鼻腔结构，注意鼻腔黏膜、鼻道和鼻甲骨等。
4. 观察气管：用解剖刀切开气管，观察气管壁的厚度、黏膜和软骨环等。
5. 观察支气管：用解剖刀切开支气管，观察支气管壁的厚度、黏膜和软骨环等。
6. 观察肺：用解剖刀切开肺，观察肺泡、肺小叶和肺血管等。
7. 观察呼吸情况：在实验过程中，观察兔子的呼吸频率、深度和节律等。
8. 记录实验数据：将观察到的呼吸情况、肺泡、肺小叶和肺血管等结构特点记录在记录纸上。
五、实验结果与分析1. 兔子的呼吸频率：实验过程中，兔子的呼吸频率约为每分钟30-40次。
2. 兔子的呼吸深度：兔子的呼吸深度适中，表现为胸廓的起伏。
3. 兔子的呼吸节律：兔子的呼吸节律较为规律，无明显异常。
4. 兔子呼吸系统结构特点：（1）鼻腔：兔子的鼻腔较宽，黏膜湿润，有利于气体交换。
（2）气管：气管壁较厚，软骨环明显，起到支撑和保护作用。
（3）支气管：支气管壁较薄，黏膜较光滑，有利于气体通过。
（4）肺：肺泡结构清晰，肺小叶明显，肺血管分布均匀。
六、实验结论1. 兔子的呼吸系统结构完整，功能正常。
兔呼吸调节_实验报告
一、实验目的1. 观察并记录家兔的呼吸运动，包括呼吸频率、幅度和节律。
2. 研究不同生理因素（如CO2浓度、缺氧、肺牵张反射等）对家兔呼吸运动的影响。
3. 掌握呼吸调节的基本原理和实验方法。
二、实验原理呼吸运动是机体与外界环境进行气体交换的重要生理过程。
呼吸调节主要通过呼吸中枢（位于脑干）和化学感受器（如中枢化学感受器和外周化学感受器）的反射性调节实现。
实验中，通过改变实验条件，观察家兔呼吸运动的变化，可以了解呼吸调节的机制。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔（体重约2kg）2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、气管插管、注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布等。
四、实验方法与步骤1. 实验动物准备：将家兔称重后，用20%氨基甲酸乙酯进行麻醉。
2. 呼吸运动记录：将家兔固定在手术台上，分离气管并插入气管插管，连接呼吸传感器，记录家兔的呼吸频率、幅度和节律。
3. 生理因素影响观察：a. CO2浓度增加：将CO2气囊连接到气管插管，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
b. 缺氧：将家兔置于低氧环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
c. 肺牵张反射：剪断家兔一侧膈神经，观察呼吸频率、幅度和节律的变化。
4. 数据记录与分析：记录实验过程中呼吸频率、幅度和节律的变化，并进行分析。
五、实验结果与讨论1. CO2浓度增加：当CO2浓度增加时，家兔的呼吸频率和幅度明显增加，说明CO2浓度升高可以刺激呼吸中枢，促进呼吸运动。
2. 缺氧：在低氧环境中，家兔的呼吸频率和幅度也明显增加，说明缺氧可以刺激外周化学感受器，促进呼吸运动。
3. 肺牵张反射：剪断膈神经后，家兔的呼吸频率和幅度无明显变化，说明肺牵张反射在呼吸调节中不起主要作用。
六、实验结论1. CO2浓度和缺氧可以刺激呼吸中枢和外周化学感受器，促进呼吸运动。
2. 肺牵张反射在呼吸调节中不起主要作用。
兔子呼吸调节实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察兔子呼吸运动的基本规律，包括呼吸频率、节律和幅度。
2. 探讨影响兔子呼吸运动的各种因素，如无效腔、二氧化碳浓度、缺氧等。
3. 分析迷走神经在兔子呼吸运动调节中的作用。
4. 掌握气管插管术和神经血管分离术等基本操作。
二、实验原理呼吸运动是呼吸中枢节律性活动的反映。
在不同生理状态下，呼吸运动所发生的适应性变化有赖于神经系统的反射性调节，其中较为重要的有呼吸中枢、肺牵张反射以及外周化学感受器的反射性调节。
因此，体内外各种刺激，可以直接作用于中枢部位或通过不同的感受器反射性地影响呼吸运动。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔2. 实验器材：生物信号采集处理系统、呼吸流量换能器、CO2气囊、哺乳类动物手术器具一套、兔手术台、气管插管、注射器（10ml、20ml各一只）、橡胶管、纱布、玻钩、手术丝线、麻醉剂、生理盐水等。
四、实验步骤1. 实验动物准备：选择健康成年家兔，称重后进行麻醉。
2. 麻醉与固定：按照2ml/kg取麻醉剂戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。
3. 颈部手术：颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管。
在3-4气管环之间切开气管，做一倒T形切口，气管插管后用手术丝线固定，两侧迷走神经穿线备用。
4. 连接仪器：将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并连接生物信号采集处理系统。
5. 记录正常呼吸曲线：打开计算机，启动生物信号采集处理系统，点击菜单，进入实验/实验项目”，按计算机提示逐步进入呼吸运动”实验项目，记录家兔正常呼吸曲线。
6. 增加无效腔：通过改变气管插管长度，增加无效腔，观察呼吸曲线的变化。
7. 增加二氧化碳浓度：使用CO2气囊，向气管插管中注入一定浓度的二氧化碳，观察呼吸曲线的变化。
8. 轻度缺氧实验：使用低氧气体，向气管插管中注入一定浓度的氧气，观察呼吸曲线的变化。
9. 剪短迷走神经：剪断一侧迷走神经，观察呼吸曲线的变化。
家兔呼吸衰竭实验报告
家兔呼吸衰竭实验报告家兔呼吸衰竭实验报告引言：呼吸衰竭是一种严重的疾病，可导致氧气供应不足，进而影响机体各个系统的正常功能。
为了更好地了解呼吸衰竭的发展过程和治疗方法，我们进行了一项家兔呼吸衰竭实验。
本报告旨在详细描述实验过程、结果和讨论，以期对呼吸衰竭的研究和治疗提供参考。
实验设计：我们选取了10只健康的家兔作为实验对象，将它们分为两组，每组5只。
实验组接受了呼吸衰竭的诱导，而对照组则维持正常呼吸状态。
实验组的家兔被暴露在低氧环境中，通过减少氧气供应来模拟呼吸衰竭的情况。
实验过程中，我们监测了家兔的呼吸频率、心率和血氧饱和度等生理指标。
实验结果：在实验组的家兔中，呼吸频率逐渐加快，心率也有所增加。
血氧饱和度则呈现下降的趋势。
与此同时，对照组的家兔呼吸频率、心率和血氧饱和度保持在正常范围内。
这些结果表明，在低氧环境中，家兔的呼吸和心血管系统受到了明显的影响，出现了呼吸衰竭的特征。
讨论：呼吸衰竭是一种复杂的疾病，多种因素可以导致其发展。
在本实验中，我们通过减少氧气供应来诱导呼吸衰竭，模拟了一种可能的发病机制。
实验结果显示，家兔在低氧环境中出现了呼吸频率加快、心率增加和血氧饱和度下降的情况，这与临床观察到的呼吸衰竭症状相符。
在治疗呼吸衰竭时，提高氧气供应是至关重要的。
通过给予家兔氧气补充，我们可以观察到呼吸频率的恢复、心率的下降和血氧饱和度的提高。
这进一步验证了氧气疗法在呼吸衰竭治疗中的重要性。
此外，我们还观察到呼吸衰竭对家兔的其他系统产生了一系列的影响。
家兔在低氧环境中出现了活动能力下降、食欲减退等情况。
这提示呼吸衰竭不仅仅是呼吸系统的问题，还可能涉及到其他器官和系统。
结论：通过本次实验，我们深入了解了家兔呼吸衰竭的发展过程和影响因素。
实验结果表明，低氧环境可以导致呼吸频率加快、心率增加和血氧饱和度下降。
在治疗呼吸衰竭时，提高氧气供应是重要的治疗手段。
此外，呼吸衰竭还可能对家兔的其他系统产生影响。
呼吸缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解缺氧的类型及其对机体的影响。
2. 探讨不同缺氧条件下，机体代偿性反应的机制。
3. 分析影响缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指机体组织细胞在氧气供应不足的情况下，无法维持正常代谢活动的一种病理状态。
根据缺氧发生的原因，可分为以下几种类型：1. 乏氧性缺氧：指因吸入气体中氧分压降低导致的缺氧。
2. 血液性缺氧：指因血红蛋白携氧能力降低导致的缺氧。
3. 组织中毒性缺氧：指因组织细胞利用氧的能力降低导致的缺氧。
本实验主要研究乏氧性缺氧和血液性缺氧对机体的影响，并探讨影响缺氧耐受性的因素。
三、实验材料1. 实验动物：小白鼠、家兔2. 实验仪器：缺氧瓶、恒温水浴箱、呼吸计、血氧饱和度计、钠石灰、氯丙嗪、生理盐水、亚硝酸钠溶液、美兰等。
3. 实验试剂：氧气、二氧化碳、一氧化碳等。
四、实验方法1. 乏氧性缺氧实验：（1）将小白鼠放入缺氧瓶中，瓶内放入一定量的钠石灰，以吸收二氧化碳。
（2）观察并记录小白鼠的呼吸频率、心率、活动状态等指标。
（3）每隔一定时间，取出小白鼠，测量其血氧饱和度。
2. 血液性缺氧实验：（1）将小白鼠分为两组，一组注射亚硝酸钠溶液，另一组注射生理盐水作为对照组。
（2）观察并记录两组小白鼠的呼吸频率、心率、活动状态等指标。
（3）每隔一定时间，取出小白鼠，测量其血氧饱和度。
3. 缺氧耐受性实验：（1）将小白鼠分为几组，分别给予不同浓度的二氧化碳吸入。
（2）观察并记录小白鼠的呼吸频率、心率、活动状态等指标。
（3）每隔一定时间，取出小白鼠，测量其血氧饱和度。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧实验：（1）小白鼠在缺氧瓶中存活时间随着氧分压的降低而逐渐缩短。
（2）呼吸频率、心率逐渐加快，活动状态逐渐减弱。
（3）血氧饱和度逐渐降低。
2. 血液性缺氧实验：（1）注射亚硝酸钠溶液的小白鼠，其呼吸频率、心率、活动状态与对照组相比明显降低。
（2）血氧饱和度明显降低。
3. 缺氧耐受性实验：（1）随着二氧化碳浓度的增加，小白鼠的呼吸频率、心率逐渐加快。
兔子呼吸实验报告窒息
一、实验目的1. 观察家兔在短暂窒息状态下的呼吸变化。
2. 分析短暂窒息对家兔呼吸运动的影响。
3. 探讨呼吸运动调节的生理机制。
二、实验原理呼吸运动是机体进行气体交换的重要生理过程，受中枢神经系统和外周化学感受器的调控。
短暂窒息会导致家兔体内二氧化碳（CO2）浓度升高，从而刺激呼吸中枢，使呼吸运动加强。
三、实验材料与器材1. 实验动物：家兔一只。
2. 实验器材：生理信号采集处理系统、呼吸流量换能器、窒息装置、气管插管、注射器（10ml、20ml各一只）、橡胶管、纱布、玻钩、手术丝线等。
四、实验步骤1. 家兔称重后，按照2ml/kg取戊巴比妥钠，从兔耳缘静脉缓慢注入麻醉，然后将家兔固定在手术台上。
2. 颈部剪毛，于颈部正中切开皮肤，钝性分离肌肉组织，暴露并分离气管。
3. 在3-4气管环之间切开气管，做一倒“T”形切口，气管插管后用手术丝线固定。
4. 将呼吸流量换能器连接在气管插管上，并连接生理信号采集处理系统。
5. 将家兔置于窒息装置中，观察记录正常呼吸状态下的呼吸频率、幅度和潮气量。
6. 启动窒息装置，使家兔短暂窒息（约15秒）。
7. 窒息结束后，立即松开窒息装置，观察记录家兔呼吸频率、幅度和潮气量的变化。
8. 分析短暂窒息对家兔呼吸运动的影响，并探讨其生理机制。
五、实验结果与讨论1. 实验结果显示，在正常呼吸状态下，家兔的呼吸频率约为60次/min，幅度约为50ml，潮气量约为20ml。
2. 短暂窒息后，家兔的呼吸频率明显增加，幅度加深，潮气量增大。
呼吸频率由60次/min增加到100次/min，幅度由50ml增加到100ml，潮气量由20ml增加到40ml。
3. 短暂窒息导致家兔体内CO2浓度升高，刺激呼吸中枢，使呼吸运动加强。
呼吸中枢主要位于脑桥和延髓，受体内CO2浓度和外周化学感受器的调控。
4. 外周化学感受器主要位于颈动脉体和主动脉体，对CO2浓度变化敏感。
当CO2浓度升高时，外周化学感受器兴奋，传入神经冲动增加，反射性地引起呼吸运动加强。
家兔呼吸生理实验报告
家兔呼吸生理实验报告
实验目的：
探究家兔的呼吸生理过程，了解呼吸相关参数对于家兔生存和健康的影响。
实验材料：
家兔、呼吸频率测试仪、心率测试仪、氧气浓度检测仪、呼吸氧气浓度控制器、多功能数据采集系统、实验筒。
实验方法：
1.将家兔放置在实验筒中，使其舒适。
2.连接呼吸频率测试仪、心率测试仪、氧气浓度检测仪、呼吸氧气浓度控制器和多功能数据采集系统。
3.调节呼吸氧气浓度控制器，使家兔的呼吸氧气浓度符合常规标准。
4.记录家兔的呼吸频率、心率、氧气浓度等数据。
5.根据记录的数据，对家兔的呼吸生理过程进行分析和总结。
实验结果：
1.家兔的呼吸频率和心率比人类高很多，分别为60-150次/分钟和150-500次/分钟。
2.氧气浓度对于家兔的生存和健康影响很大，过低的氧气浓度
会使家兔窒息而死。
3.家兔的呼吸过程中会排出大量二氧化碳，如果二氧化碳排出
不及时将会对家兔造成危害。
结论：
家兔的呼吸生理过程与人类有很大不同，家兔需要更高的氧气
浓度来维持正常的生理活动。
此外，家兔的呼吸频率和心率很高，但过高的呼吸频率和心率也会影响家兔的健康。
因此，在家养兔
时应保持室内空气新鲜、氧气浓度正常，并定期监测家兔的呼吸
参数，确保家兔的健康和幸福。
家兔的呼吸运动调节实验报告
家兔的呼吸运动调节实验报告一、实验目的通过观察各种因素对家兔呼吸运动的影响，深入理解呼吸运动的调节机制，掌握相关实验技术和方法。
二、实验原理呼吸运动是一种节律性运动，其节律产生于呼吸中枢。
呼吸中枢接受来自体内外各种刺激的传入冲动，通过调整呼吸运动的频率和深度，使血液中的氧气、二氧化碳和酸碱度等保持相对稳定。
呼吸运动的调节主要包括神经调节和化学调节。
神经调节主要通过迷走神经和交感神经实现，化学调节则主要依赖于血液中氧气、二氧化碳和氢离子浓度的变化。
三、实验材料与方法（一）实验动物健康家兔一只，体重约 25 30 千克。
（二）实验器材BL-420 生物机能实验系统、呼吸换能器、压力换能器、哺乳动物手术器械一套、气管插管、动脉插管、注射器、5%碳酸氢钠溶液、20%乌拉坦溶液、氮气瓶、二氧化碳瓶等。
（三）实验步骤1、家兔称重后，于耳缘静脉缓慢注射 20%乌拉坦溶液（5ml/kg）进行麻醉。
待家兔麻醉后，仰卧固定于手术台上。
2、剪去颈部手术部位的毛，沿颈部正中切开皮肤，分离皮下组织和肌肉，暴露气管。
在气管下方穿一根丝线，于甲状软骨下方 2 3 个软骨环处做一倒“T”形切口，插入气管插管，并用丝线固定。
3、分离一侧颈总动脉，插入动脉插管，通过压力换能器连接到BL-420 生物机能实验系统，用于监测动脉血压。
4、在剑突下切开皮肤，分离出剑突软骨，将连有张力换能器的丝线钩在剑突软骨上，用于记录呼吸运动。
5、各项准备工作完成后，启动 BL-420 生物机能实验系统，记录正常呼吸运动曲线。
四、实验项目及结果（一）增加吸入气中二氧化碳浓度打开二氧化碳瓶，使家兔吸入含较高浓度二氧化碳的气体。
观察到呼吸运动明显加深加快，呼吸频率显著增加。
这是因为血液中二氧化碳浓度升高，刺激外周化学感受器和中枢化学感受器，反射性地引起呼吸加深加快，以排出过多的二氧化碳。
（二）缺氧将氮气瓶与气管插管相连，使家兔吸入氮气造成缺氧。
呼吸运动加深加快，频率增加。
家兔缺氧实验报告
家兔缺氧实验报告家兔缺氧实验报告引言：缺氧是指组织和器官得不到足够的氧气供应，从而导致细胞功能受损甚至死亡。
为了深入研究缺氧对生物体的影响，我们进行了一系列家兔缺氧实验。
本报告旨在总结实验结果，并探讨缺氧对家兔的影响。
实验方法：我们选择了20只健康的家兔作为实验对象，将它们分为两组。
实验组的家兔被置于一个封闭的容器中，通过控制氧气浓度来模拟缺氧环境。
对照组的家兔则在正常的氧气浓度下生活。
实验持续时间为72小时。
实验结果：经过72小时的缺氧处理，我们观察到以下几个方面的变化。
1. 血氧饱和度下降：实验组家兔的血氧饱和度明显下降。
正常家兔的血氧饱和度一般在95%以上，而实验组的家兔在缺氧环境下，血氧饱和度下降至80%左右。
这说明缺氧对呼吸系统有明显的影响。
2. 呼吸频率增加：实验组家兔的呼吸频率明显增加。
正常家兔的呼吸频率一般为每分钟30-60次，而实验组的家兔呼吸频率达到了每分钟80次以上。
这表明家兔在缺氧环境下通过增加呼吸频率来提高氧气吸入量。
3. 活动能力下降：实验组家兔的活动能力明显下降。
正常家兔具有较高的活动性，能够跳跃和奔跑。
然而，在缺氧环境下，实验组的家兔表现出明显的乏力和无力感，活动范围受限。
4. 血液指标变化：实验组家兔的血液指标也发生了一些变化。
血红蛋白浓度下降，红细胞数量减少，血小板数量增加。
这些变化可能与缺氧引起的贫血和血液凝固功能异常有关。
讨论：以上实验结果表明，缺氧对家兔产生了明显的影响。
缺氧导致血氧饱和度下降，进而引起一系列生理和行为上的变化。
家兔通过增加呼吸频率来提高氧气吸入量，但仍无法完全弥补缺氧带来的影响。
此外，缺氧还对血液指标产生了一定的影响，可能与机体代谢和免疫功能的改变有关。
结论：通过本次实验，我们深入了解了缺氧对家兔的影响。
缺氧导致家兔的血氧饱和度下降，呼吸频率增加，活动能力下降，血液指标发生变化。
这些结果对于研究缺氧对人类健康的影响具有一定的指导意义。
然而，需要进一步的研究来探索缺氧对不同器官和系统的影响机制，以及寻找缺氧应对的有效策略。
家兔缺氧试验报告
家免缺氧实验报告篇一：家兔缺氧实验家兔低张性缺氧［实验目的］:缺氧指组织供氧不足或用氧障碍，从而引起细胞代谢，功能以致形态结构发生异常变化的病理过程。
缺氧分为低张性缺氧，血液性缺氧，循环性缺氧，组织性缺氧四种类型。
本次实验通过复制低张性缺氧动物模型，观察急性缺氧过程中机体的代偿适应性变化，分析其发生机制。
［实验动物］:家兔［实验药品及器材］:BL-410生物机能实验系统，动脉插管，气管插管,缺氧瓶，注射器，注射针头,动脉夹，常规手术器械,血气分析仪，针;1%普鲁卡因，钠石灰，肝素生理盐水。
［实验步骤］:1、称重，全麻（3%戊巴比妥钠，1 ml/kg）,固定，剪毛。
2、气管插管，颈总动脉插管，剑突连拉力换能器描记呼吸。
3、描记正常血压，呼吸（频率/节律），心率，口唇颜色。
4、将气管插管与缺氧瓶连接，记录缺氧开始后上述指标变化。
第1页共1页〔实验结果〕血压心率呼吸频率呼吸幅度动脉血液颜色粘膜颜色正常缺氧5min缺氧10 min缺氧20 min〔讨论〕：1、缺氧早期，呼吸加深加快，心率加快，粘膜及血液颜色变化不大。
机制如下：本实验中，家兔的呼吸仅与缺氧瓶相通，呼出的CO2被钠石灰吸收，吸入气体的氧分压不断下降，最终导致PaO2下降，当PaO2V60mmHg的时候，便可以引起如下变化：由于上述机体代偿性改变，PaO2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl,故不能出现发绀，血液及粘膜颜色无明显变化。
2.缺氧晚期：PaO2越来越低，过低的PaO2可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。
使机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压（，心率（此时PaO2（（,CaO2（（。
脱氧血红蛋白可超过58"1,出现发绀（Cyanosis）。
3.由于上分析推出，当吸入气氧分压降低时，PaO2亦降低。
当PaO2V60mmHg时才会引起组织缺氧，同时引起机体的一系列代偿反应，包括增强呼吸和血压等。
符合低张性缺氧的特点。
家兔呼吸调节实验报告
一、实验目的1. 观察家兔呼吸运动的调节机制，了解呼吸中枢、化学感受器和肺牵张反射在呼吸调节中的作用。
2. 掌握呼吸运动的观察方法，包括呼吸频率、幅度和节律等指标。
3. 研究不同因素对家兔呼吸运动的影响，如CO2、H+、缺氧等。
二、实验原理呼吸运动是一种节律性的运动，其深度和频率受体内外因素影响。
呼吸中枢位于大脑皮层、间脑、桥脑、延髓和脊髓等部位，各级部位相互配合，共同完成呼吸节律性运动。
化学感受器位于主动脉和颈动脉窦，可感受血液中CO2、H+等化学因素的变化，通过神经反射调节呼吸运动。
肺牵张反射是指肺扩张时引起吸气抑制的反射，其输入神经为迷走神经。
三、实验材料与器材1. 实验材料：家兔2. 实验器材：手术台、常用手术器械、生理信号采集处理系统、呼吸传感器、止血钳、气管插管、20ml及1ml注射器、橡皮管、刺激电极、20%氨基甲酸乙酯、CO2、乳酸、生理盐水、棉线、纱布。
四、实验步骤1. 家兔麻醉：取一只家兔，称重后，用剪刀剪去耳缘静脉上的毛。
用20ml注射器由耳缘静脉缓慢推注25%氨基甲酸乙酯（1g/kg体重）进行麻醉。
2. 建立呼吸记录系统：将气管插管插入家兔气管，连接呼吸传感器，记录呼吸频率和幅度。
3. 记录正常呼吸曲线：观察家兔的呼吸频率、幅度和节律，记录正常呼吸曲线。
4. CO2吸入实验：将家兔置于CO2环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化，记录实验结果。
5. H+吸入实验：将家兔置于H+环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化，记录实验结果。
6. 缺氧实验：将家兔置于缺氧环境中，观察呼吸频率、幅度和节律的变化，记录实验结果。
7. 肺牵张反射实验：剪断双侧迷走神经，观察呼吸频率、幅度和节律的变化，记录实验结果。
五、实验结果与分析1. 正常呼吸曲线：家兔的呼吸频率约为60-80次/分钟，幅度约为1-2cmH2O，节律较为规律。
2. CO2吸入实验：CO2吸入后，家兔的呼吸频率和幅度明显增加，呼吸加深加快，表明CO2对呼吸运动有促进作用。
家兔急性缺氧实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察家兔急性缺氧的症状和生理反应。
2. 探讨急性缺氧对家兔呼吸、循环系统的影响。
3. 了解急性缺氧的救治措施。
二、实验原理急性缺氧是指短时间内因外界环境或机体内部原因导致氧供应不足，引起机体生理功能障碍的一种病理状态。
家兔急性缺氧实验通过人为控制实验条件，模拟急性缺氧环境，观察家兔的生理反应，为临床救治提供理论依据。
三、实验材料1. 实验动物：家兔（体重2-3kg）2只。
2. 实验仪器：呼吸监测仪、血压计、心电图仪、注射器、剪刀、手术刀、酒精棉球、生理盐水等。
3. 实验药品：亚硝酸钠（NaNO2）、氨水、生理盐水等。
四、实验方法1. 将家兔分为实验组和对照组，每组1只。
2. 实验组：向家兔的耳缘静脉注射亚硝酸钠（5mg/kg体重），造成急性缺氧。
3. 对照组：给予生理盐水注射，作为对照。
4. 注射后，分别监测两组家兔的呼吸频率、心率、血压、心电图等生理指标。
5. 观察并记录家兔的症状，如呼吸加快、心率加快、血压下降等。
6. 实验结束后，解剖家兔，观察肺、心脏等器官的病理变化。
五、实验结果1. 实验组家兔注射亚硝酸钠后，呼吸频率明显加快，心率加快，血压下降，心电图显示ST段抬高，T波倒置。
2. 对照组家兔生理指标无明显变化。
3. 解剖观察：实验组家兔肺脏充血、水肿，心脏扩大，心肌纤维变性。
六、实验讨论1. 亚硝酸钠是一种氧化剂，可导致血管扩张，引起急性缺氧。
2. 实验结果显示，急性缺氧对家兔的呼吸、循环系统产生严重影响，表现为呼吸加快、心率加快、血压下降等症状。
3. 实验组家兔的病理变化表明，急性缺氧可导致肺脏充血、水肿，心脏扩大，心肌纤维变性等病理改变。
七、结论1. 家兔急性缺氧实验表明，急性缺氧对家兔的呼吸、循环系统产生严重影响。
2. 及时救治急性缺氧患者，对降低死亡率具有重要意义。
八、实验建议1. 在进行急性缺氧实验时，应严格控制实验条件，确保实验结果的准确性。
2. 实验过程中，应密切观察家兔的症状，及时发现并处理异常情况。
家兔缺氧性实验报告
家兔缺氧性实验报告本实验旨在通过对家兔进行缺氧性实验，探究缺氧对家兔的生物学影响及其机制。
实验原理：缺氧是指在环境氧气供应不足的情况下，生物体无法满足氧气需求的状态。
在一定范围内，缺氧对生物体造成一系列生物学效应。
在本实验中，将使用家兔作为实验对象，通过暂时封闭的方法限制氧气供应，观察和分析家兔在缺氧状态下的行为表现、生理变化以及相关机制。
实验步骤：1. 准备工作：确保实验环境卫生、温湿度稳定。
2. 安置家兔：将家兔放置在缺氧实验箱中，确保其舒适度和安全性。
3. 缺氧处理：关闭实验箱中的通风设备，使氧气供应不足，保证家兔长时间处于缺氧状态。
4. 观察记录：观察家兔在缺氧状态下的行为表现，如呼吸急促、精神不振等。
定期记录家兔的生理变化，如体温变化、心率变化等。
5. 采样分析：在缺氧实验结束后，采集家兔的血液、组织等样本，进行生化指标分析和组织学观察，进一步了解缺氧对家兔生物学的影响机制。
实验结果与讨论：1. 行为表现：在缺氧实验过程中，家兔呈现出明显的焦虑和不适感，表现为异常的活动性、呼吸急促、呼吸困难等。
这些行为表现是家兔为了适应缺氧环境所做出的反应，体现了有限氧气供应下生物体的应激反应。
2. 生理变化：在缺氧状态下，家兔的生理功能将受到一定程度的影响。
实验结果显示，缺氧会导致家兔体温升高，心率加快，血液中的乳酸浓度升高。
这些变化可能是为了增加氧气运输和供应，以应对缺氧环境下的生理需求。
3. 影响机制：缺氧引起的生物学变化可能涉及多个机制。
首先，缺氧会导致细胞呼吸和氧化磷酸化受阻，影响能量供应。
其次，缺氧会激活一系列适应性反应通路，如神经内分泌系统、血管系统等，以促进氧气供应和分配。
此外，缺氧还可能引起氧自由基的产生，增加氧化应激反应，对细胞和组织造成损伤。
4. 实验局限：本实验仅在动物实验条件下进行，结果可能与人体在缺氧情况下的生理反应存在差异。
此外，本实验未考虑缺氧时间和缺氧程度对实验结果的影响，需进一步研究。
缺氧实验报告动物医学
一、实验目的1. 了解缺氧的概念、分类及成因。
2. 掌握复制缺氧动物模型的方法。
3. 观察缺氧对动物生理、生化及形态学的影响。
4. 分析缺氧的防治措施。
二、实验原理缺氧是指组织细胞在氧气供应不足的情况下，无法正常进行氧化代谢，导致细胞功能障碍的一种病理状态。
根据缺氧的原因和机理，可将缺氧分为以下几种类型：1. 乏氧性缺氧：由于外界环境或器官功能障碍导致氧气供应不足。
2. 血液性缺氧：由于血液中氧含量降低导致组织细胞缺氧。
3. 组织中毒性缺氧：由于组织细胞内缺氧导致代谢产物积累，引起细胞功能障碍。
本实验通过复制缺氧动物模型，观察动物在缺氧条件下的生理、生化及形态学变化，分析缺氧的防治措施。
三、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠10只，体重20-25g。
2. 实验仪器：缺氧瓶、氧气瓶、电子秤、恒温水浴箱、显微镜、生化分析仪等。
3. 实验试剂：生理盐水、亚硝酸钠、氰化钾、美兰等。
四、实验方法1. 缺氧动物模型的复制（1）乏氧性缺氧：将小白鼠放入缺氧瓶中，瓶内氧气含量控制在10%以下，观察动物在缺氧条件下的生理、生化及形态学变化。
（2）血液性缺氧：给小白鼠腹腔注射生理盐水，使其血液稀释，观察动物在血液性缺氧条件下的生理、生化及形态学变化。
（3）组织中毒性缺氧：给小白鼠腹腔注射亚硝酸钠，使其血红蛋白氧化成高铁血红蛋白，观察动物在组织中毒性缺氧条件下的生理、生化及形态学变化。
2. 观察指标（1）生理指标：观察动物的活动状态、呼吸频率、心率等。
（2）生化指标：测定动物血液中的乳酸、丙酮酸、肌酸激酶等指标。
（3）形态学指标：观察动物的组织切片，观察细胞结构、细胞核、线粒体等形态学变化。
3. 缺氧的防治措施（1）提高氧气浓度：增加动物所在环境的氧气浓度，如使用氧气瓶。
（2）输血：在血液性缺氧的情况下，给予动物输血，提高血液中氧含量。
（3）药物治疗：使用美兰等药物，缓解组织中毒性缺氧。
五、实验结果1. 乏氧性缺氧：动物在缺氧条件下，活动状态逐渐减弱，呼吸频率加快，心率加快，血液乳酸、丙酮酸、肌酸激酶等指标升高，组织切片观察到细胞结构异常。
家兔缺氧及抢救
家兔缺氧及抢救目的1..学习低张性缺氧动物模型复制方法2.探索缺氧过程中集体的变化。
实验步骤1， 称重，麻醉，固定2， 颈部手术，分离气管和双侧颈总动脉，气管插管和左侧颈总动脉插管3， 耳缘静脉注射肝素（1ml/kg ）4， 连接BL_420生物机能实验系统5， 描记正常血压，呼吸频率计扣除粘膜颜色6， 动脉夹夹闭右侧净宗动脉10到15S ，观察血压变化7， 接缺氧平与气管插管一侧，观察学研变化8， 当血压降至正常的1/2时进行第二次夹闭，观察血压变化9， 当血压降至真正常1/3时停止缺氧，进行抢救实验结果缺氧早期，呼吸加快加深，心率加快血压升高，粘膜颜色变化不大。
缺氧晚期，PaO2越来越低抑制呼吸，心血管，神经等系统的功能。
是机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压下降。
并出现发绀。
讨论1. 缺氧早期：家兔的呼吸近于缺氧平相通，呼出的CO2被吸收，吸入的气体氧分压不断下降，最终导致PaO2下降，当PaO2<60mmHg 时可引起：PaO2下降——颈动脉体化学感受器---呼吸中枢兴奋——呼吸加快加深---胸内负压升高——回心血量升高——血压升高。
由于上述机体代偿性改变，P a O 2有所恢复，脱氧血红蛋白仍小于5g/dl ，故不出现发绀(cyanosis)，血液及粘膜颜色无明显变化。
2． 缺氧晚期：PaO2越来越低，过低的PaO2 可抑制呼吸、心血管、神经等系统的功能。
使机体处于失代偿状态，出现呼吸减慢或不规则，血压↓、心率↓，此时PaO2↓↓，CaO2↓↓。
脱氧血红蛋白可超过5g/dl ，出现发绀。
3.第一次夹闭血压上升：家兔颈动脉窦压力感受性反射的感受装置是位于颈动脉窦外膜下的感觉神经末梢, 称为颈动脉窦压力感受器。
动脉压力感受器并不是直接感受血压的变化, 而是感受动脉血压对血管壁的机械牵张程度。
经传入神经传入到中枢, 引发一系列的反射活动。
, 夹闭右侧颈总动脉, 由于此时颈动脉窦所感受到的机械牵张减少, 而反射性地引起动脉血压升高, 加上外周阻力增加, 及脑缺血反射等原因使得动脉血压明显升高;二次夹闭时，长期缺氧，集体已经处于失代偿状态，颈动脉窦压力感受器敏感性降低，此时夹闭，血压仪无明显变化。
家兔缺氧恢复实验报告(3篇)
第1篇一、实验目的1. 观察家兔在缺氧环境中的生理反应。
2. 探究不同恢复措施对家兔缺氧恢复的影响。
3. 分析缺氧恢复过程中家兔生理指标的变化。
二、实验原理缺氧是指生物体组织细胞因氧气供应不足而发生的生理、生化变化。
本实验通过人为制造缺氧环境，观察家兔在缺氧状态下的生理反应，以及恢复措施对家兔缺氧恢复的影响。
三、实验材料与仪器1. 实验动物：健康成年家兔3只，体重约2kg。
2. 实验器材：气密容器、氧气分析仪、呼吸传感器、麻醉机、注射器、生理盐水、记录仪、分析软件等。
四、实验方法1. 麻醉与监测：将家兔放入麻醉机内，进行全身麻醉。
麻醉成功后，连接氧气分析仪和呼吸传感器，实时监测家兔的氧气浓度和呼吸频率。
2. 制造缺氧环境：将家兔放入气密容器中，逐渐降低容器内的氧气浓度，直至达到缺氧状态（氧气浓度约为5%）。
3. 缺氧恢复实验：a. 实验组：将家兔放入气密容器中，制造缺氧环境，持续30分钟。
然后打开容器，让家兔接触新鲜空气，观察恢复情况。
b. 对照组：将家兔放入气密容器中，制造缺氧环境，持续30分钟。
然后打开容器，让家兔接触新鲜空气，并给予生理盐水注射，观察恢复情况。
c. 干预组：将家兔放入气密容器中，制造缺氧环境，持续30分钟。
然后打开容器，让家兔接触新鲜空气，并给予吸氧治疗，观察恢复情况。
4. 数据采集与分析：记录各组家兔在缺氧恢复过程中的生理指标，如呼吸频率、心率、血压、血氧饱和度等，并使用分析软件进行数据处理。
五、实验结果与分析1. 缺氧状态下，家兔的呼吸频率和心率明显加快，血氧饱和度显著下降。
2. 对照组家兔在恢复过程中，呼吸频率和心率逐渐恢复正常，血氧饱和度有所上升，但恢复速度较慢。
3. 干预组家兔在恢复过程中，呼吸频率和心率恢复速度明显快于对照组，血氧饱和度上升速度更快。
4. 分析结果显示，吸氧治疗对家兔缺氧恢复有显著促进作用，能够有效提高血氧饱和度，改善呼吸和循环功能。
六、实验结论1. 家兔在缺氧环境下会出现呼吸频率和心率加快、血氧饱和度下降等生理反应。
家兔缺氧实验报告
家兔缺氧实验报告引言缺氧是指细胞组织缺乏氧气供应的状态，会对生物体的正常生理功能造成严重影响。
为了进一步探究缺氧对家兔生理的影响，本实验设计了一种家兔缺氧实验，通过观察家兔在缺氧环境中的行为和生理指标变化，来了解缺氧对家兔的影响和应对策略。
实验设计实验材料和设备•家兔（数量：10只）•缺氧实验箱•血氧测量仪器•心率测量仪器实验步骤1.准备工作：将家兔放入缺氧实验箱前，先对其进行体重测量，并记录下每只家兔的基本信息。
2.家兔放置：将家兔逐一放置于缺氧实验箱中，确保实验箱密封良好，防止外界氧气进入。
3.实验开始：在家兔放置至实验箱后，立即开始记录其心率和血氧变化。
使用心率测量仪器和血氧测量仪器进行测量，每隔10分钟记录一次数据，持续记录60分钟。
4.实验结束：实验持续60分钟后，将家兔从实验箱中取出，结束实验。
记录家兔在恢复期的行为和生理指标变化。
实验结果家兔心率变化在缺氧环境中，家兔的心率呈现出明显的变化。
在实验开始后的前10分钟内，家兔的心率逐渐上升，说明家兔对缺氧环境产生了应激反应。
随着实验的进行，家兔的心率逐渐趋于稳定，但仍保持较高水平。
家兔血氧变化家兔在缺氧环境中的血氧水平明显下降。
在实验开始后的前10分钟内，家兔的血氧水平急剧下降，说明家兔在缺氧环境中无法获得足够的氧气供应。
随着实验的进行，家兔的血氧水平保持在较低水平，无法完全恢复到正常水平。
结论与讨论家兔在缺氧环境中呈现出明显的生理变化，包括心率的升高和血氧水平的下降。
这表明家兔对缺氧环境产生了明显的应激反应，并且无法通过自身调节机制来恢复到正常状态。
缺氧对生物体的影响主要是由于氧气供应不足导致细胞无法正常进行代谢和功能活动。
家兔作为哺乳动物，在缺氧环境中表现出的生理变化与人类和其他哺乳动物的反应类似，因此对于研究人类缺氧环境下的生理变化具有重要的参考价值。
然而，本实验仅限于对家兔的观察和记录，并未进行更深入的分析和研究。
在后续的研究中，可以进一步探究家兔在缺氧环境中的生理机制和应对策略，以及寻找改善缺氧状态下的治疗方法和措施。
动物缺氧实验报告
一、实验目的1. 了解动物缺氧的原理及其分类。
2. 观察缺氧对动物生理和病理变化的影响。
3. 掌握动物缺氧模型的建立方法及实验操作技巧。
4. 分析影响动物缺氧耐受性的因素。
二、实验原理缺氧是指动物组织在氧气供应不足的情况下，细胞代谢、功能和形态发生异常变化的过程。
根据缺氧的原因和发生机制，缺氧可分为以下几种类型：1. 乏氧性缺氧：由于外界环境氧分压降低，导致动脉血氧分压下降，组织细胞缺氧。
2. 血液性缺氧：由于血液携氧能力下降，导致组织细胞缺氧。
3. 组织中毒性缺氧：由于组织细胞内代谢产物积累，导致细胞内缺氧。
本实验采用乏氧性缺氧模型，通过降低动物呼吸环境中的氧分压，模拟实际生活中的缺氧情况。
三、实验材料1. 实验动物：健康小白鼠5只，体重约20g。
2. 实验器材：缺氧箱、测氧仪、气体流量计、注射器、剪刀、镊子等。
3. 实验试剂：生理盐水、亚硝酸钠溶液、美兰溶液、氯丙嗪溶液等。
四、实验方法1. 实验分组：将5只小白鼠随机分为实验组和对照组，每组2只。
2. 缺氧模型建立：将实验组小白鼠放入缺氧箱中，通过调节气体流量计，使缺氧箱内的氧分压降至约10mmHg，模拟实际缺氧环境。
3. 对照组处理：对照组小白鼠在正常环境下饲养，作为对照。
4. 实验观察：观察实验组和对照组小白鼠的呼吸频率、心率、行为变化等生理指标，并记录数据。
5. 实验结束：实验持续2小时，观察小白鼠的存活情况。
五、实验结果1. 实验组小白鼠在缺氧环境下，呼吸频率明显加快，心率升高，行为异常，表现为活动减少、反应迟钝等。
2. 对照组小白鼠在正常环境下，呼吸频率、心率、行为等生理指标无明显变化。
3. 实验组小白鼠在缺氧环境下存活时间平均为90分钟，对照组小白鼠在正常环境下存活时间平均为120分钟。
六、实验分析1. 缺氧对动物生理和病理变化的影响：缺氧会导致动物呼吸、循环、神经系统等功能紊乱，出现呼吸频率加快、心率升高、行为异常等症状。
2. 影响动物缺氧耐受性的因素：缺氧环境中的氧分压、缺氧时间、动物种类、个体差异等均会影响动物缺氧耐受性。
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家兔缺氧实验报告
篇一：家兔解剖实验
一、实验目的
1. 通过对家兔的外形观察、骨骼系统及内部解剖的观察，掌握哺乳类躯体轮廓、消化系统、呼吸系统、循环系统、泌尿系统和生殖系统的结构特点
2. 掌握哺乳纲动物的主要特征，理解其进步性特征
3. 熟练解剖动物的方法
二、实验原理
将家兔处死是利用静脉注射空气致死：向静脉注射空气后，进入血液形成空气栓，空气栓随血流回流至右心室，然后被送到肺动脉，造成肺栓塞，大面积的肺栓塞使人体不能进行气体交换，发生严重的缺氧和二氧化碳储留，导致猝死。
三、实验器材
活家兔、解剖盘、酒精棉球、注射器、镊子、烧杯、手术刀、手术剪、骨钳、止血钳等
四、实验步骤
1、外形观察，处死
家兔身体分为头、颈、躯干、尾和四肢五部分。
颈很短，躯干较长，背部有明显的腰弯曲。
前肢短小，有5指，后肢较长，具4趾。
尾短小，位于躯干末端，腹部腹面近尾根处有泄殖孔和肛门，肛门在后。
肛门两侧各有一个无毛区，提
起此处皮肤，开口，打开皮肤。
取10ml注射器，抽入10ml空气，三个人按住兔子，用酒精棉球将其一侧耳外侧毛擦湿，注射空气，到静脉血管。
挣扎一会后死亡。
2、打开皮肤
润湿腹部中间的毛，小心用剪刀从泄殖孔稍前方剖一横口，向上剪至颈部，用手术刀使皮肤和肌肉分离，将剥下的皮肤向左右尽可能拉开露出腹部。
3、开腹腔：原位观察膈、胰腺、肝脏、各系统观察，肾脏冠切
从泄殖孔的切口处沿腹中线同样左右割开腹壁至胸骨剑突处，暴露腹腔。
先观察各器官的自然位置。
可观察到：胰腺：分散附着于（十二指肠）弯曲处的肠系膜上，为粉红色、分布零散而不规则的腺体。
胃：囊状，横卧于膈肌后面，入口称喷门，出口称幽门。
小肠：肠管长而细，分为十二指肠、空肠和回肠三段。
十二指肠呈“ U ”形，空肠和回肠界限不易区分。
大肠：分为盲肠、结肠和直肠三段。
盲肠为大肠的起始段，肠管最粗大，相当于一个发酵罐，其末端有蚓突，结肠表面有横褶，直肠细长。
膈肌：呈粉色，上面血多有放射状红色细丝
肾脏：移开胃后，可在其下观察到两肾，分布于两侧，
其前端内缘各有一小的淡黄色扁圆形为肾上腺，由肾门伸出的一条白色细管为输尿管，与肾血管、神经管相伴行，向后通入膀胱的背侧。
取下一颗肾脏做冠切后，可看到肾脏的构造：在最外侧颜色较深的为肾皮质，里面颜色较浅的为肾髓质，在动、静脉附近可观察到肾乳头、肾盂、两个肾小盏及位于中间的肾大盏。
肝脏：在膈肌的下面呈红色的即为肝脏，翻开肝脏下方，用镊子轻轻拨开，即可看到墨绿色的胆囊。
各系统总结：
（1）消化系统：消唾液腺（四对，即耳下腺、颌下腺、舌下腺、眶下腺）、口腔和咽部（口腔顶部为硬腭，后部是软腭，软腭之后为咽部）、胃、小肠（分为十二指肠、空肠和回肠三段）、大肠（分为盲肠、结肠和直肠三段）胰腺（2）呼吸系统：空气通过外鼻孔进入鼻腔再经内鼻孔入咽，再由咽进入喉门。
喉门由几种软骨组成，喉与气管相接。
气管以“ C ”字形软骨支撑。
肺呈海绵状，分左右两叶，位于胸腔内，左肺两叶，右肺四叶
（3）循环系统：心脏、动脉（动脉弓向后弯曲，在胸腔的一段称为胸主动脉，穿过膈肌进入腹腔后，称为腹主动脉。
从右心室发出的肺动脉分为左右肺动脉入肺）、静脉（全身回流的静脉通过一对前大静脉和一支后大静脉注入右心房）
（4）泌尿系统：肾脏（位于腹腔后面脊柱两侧其内侧前缘有一肾上腺）、输尿管、膀胱
（5）生殖系统：雄性：睾丸一对（位于腹腔内，性成熟后下降到阴囊内）附睾、输精管
雌性生殖器官：由一对卵巢、输卵管和子宫构成。
4、开胸腔：心脏观察、胸腺观察、心脏解剖
用左手轻轻掀起胸骨，右手持骨钳在胸骨左右侧剪断肋骨，暴露胸腔。
轻轻拨开心脏和相邻的部分血管，可以看见气管及其背部的食管。
观察到：
心脏：由左心房、右心房、左心室、右心室四部分组成，前部为左右心房，呈红褐色；后部为心室，呈圆锥型，其壁较心房厚。
尤其是左心室最厚。
左右房室口有瓣膜，左边为二尖瓣，右边三尖瓣，能防止血液倒流。
沿心室剪开可观察到房室瓣腱索，乳头肌，三尖瓣等。
5、喉部软骨观察
沿着刚才剪开的胸骨继续向上剪开，即可观察到喉部（喉头和气管），在根部用剪刀剪下，剥开肌肉，观察到喉部软骨：环状软骨、甲状软骨、杓状软骨、会厌软骨
6、颅腔：脑的各部分观察
取家兔头颅，剥下皮，用骨钳慢慢剪开家兔头骨，可观察到：嗅脑（头部最前方）、大脑（体积最大）、中脑四叠体（用镊子稍稍拨开大脑即可看到）、小脑（中脑下方）、延髓
（最下方，伸至脊髓），轻轻拨开小脑可见其下一个空腔为第四脑室
篇二：家兔呼吸运动的调节：实验报告及结果分析
家兔呼吸运动的调节
一、正常呼吸曲线的记录
家兔正常的呼吸曲线
曲线上升阶段为吸气；下降阶段为呼气。
吸气时肺扩张，剑突软骨上升，拉着剑突软骨的细线放松；呼气时肺缩小，剑突软骨下降，细线紧绷。
因此曲线上升阶段为吸气；下降阶段为呼气。
二、各种影响因素所造成的呼吸曲线的改变
增加无效腔后呼吸运动曲线
前面一个箭头指：正常呼吸曲线；后面一个箭头指：增加无效腔后的呼吸曲线
分析：增大气道长度后，家兔的呼吸张力增强，呼吸频率增加。
增加的气道长度等于增加的无效腔，气道加长使得呼吸阻力增大，呼吸加深加快。
三、肺牵张反射对呼吸运动的影响
剪断双侧迷走神经对呼吸运动的影响
剪断双侧迷走神经后，呈现很明显的慢而深的呼吸。
分析：迷走神经中含有肺牵张反射的传入纤维。
肺牵张反射中的肺扩张反射（亦称吸气抑制反射）的生理作用，在
于阻止吸气过长过深，促使吸气及时转为呼气，从而加速了吸气和呼气动作的交替，调节呼吸的频率和深度。
当剪断双侧迷走神经以后，中断了左右两侧的肺牵张反射的传入道路，肺扩张反射的生理作用就被完全消除，故呈现很明显的慢而深的呼吸。
篇三：病理-空气栓塞实验报告
空气栓塞实验报告
空气栓塞实验
实验目的：通过空气栓塞实验，了解栓子运行的途径、空气栓塞的部位及后果。
实验动物：成年兔子一只实验用品：5ml注射器、5号针头(本文来自：小草范文网:家兔缺氧实验报告)、手术剪、7号缝合丝线、四方盘、手术刀，止血钳、大
烧杯
实验步骤：1.由兔耳缘静脉注入6ml空气
2.注完空气，放开兔子，观察兔子症状
3.家兔死亡后，立即打开胸腔(离胸骨左右缘1～2cm处切断肋骨)，暴露心脏，心脏还在继
续收缩，观察扩张的右心耳及肺动脉薄壁是否有空气泡。
再将同心脏走走出的
大血管都结扎、并在远端剪断，然后将心肺一并取出，游离并结扎心脏，并放
在水的玻璃器皿中，在水中将右心切开，此时观察是否有空气溢出水面出现气
泡。
实验结果：注射完空气后，兔子开始兴奋，烦躁，挣扎，抽搐，呼吸急促，过了31s后，兔
子开始张口呼吸，呼吸逐渐变慢，58s后，兔子死亡；在打开兔子胸腔后，观察
到兔子心脏还在继续跳动，右心房内有泡沫状血液；在水中将右心房切开，观察
到右心房有气泡逸出。
讨论：注射的空气进入耳缘静脉以后，沿上腔静脉，迅速到达右心，由于心脏的收缩和舒张，
从而将空气和血液搅拌成大量的泡沫血，当心肌收缩时可阻塞肺动脉出口导致猝死。
由于血液不能到达肺部进行气体交换，从而使机体缺氧，导致家兔活动增多，烦躁，呼吸加深加快予以代偿，由于是泡沫血，缺氧继续存在，导致家兔活动减弱，最终致死。
？对医疗实践中的意义：我们在颈部及胸外科手术时，不要损伤大静脉，静脉插管置留时或
血透时循环管路连接要牢固，尤其是血泵；分娩时气体可经损伤的内
膜或破裂的子宫颈静脉窦入血，使用腔镜时用气体扩腔，
气体亦可经
破裂的静脉入血；深水作业时(尤其是下潜30m以下)要缓慢上升，不
要屏气，以防出现减压病。