试验5植物组织水势的测定小液流法
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定（小液流法）实验目的：1. 了解测定植物组织水势的方法及其优缺点2. 学习用小液流法测定植物组织水势的方法实验原理：实验原理1、当植物组织与外液接触时发生水分交换：植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水，外液浓度变大；ψ植物<ψS植物组织的水势高于外液的渗透势（溶质势），组织失水，外液浓度变小；ψ植物> ψS若两者相等，则水分交换保持动态平衡，外液浓度保持不变；ψ植物＝ψS2、同一种物质浓度不同时其比重不一样，浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度实验仪器与试剂试管架试管打孔器毛细管镊子青霉素瓶蔗糖溶液甲烯蓝粉末操作步骤1. 配制不同浓度的蔗糖溶液2.用打孔器在绣球花的不同部位打100-200片，混匀，每个青霉素瓶各放入15-20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶或称量瓶中（用一只移液管由低高，不要润洗）。
放置20—30min，期间摇动数次，以加速水分平衡。
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶中，摇匀，溶液变蓝。
（干燥针头先用蒸馏水湿润，加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致）5.观察液滴升降：用毛细吸管取青霉素瓶有色液插入相应试管中部缓慢从毛细吸管尖端横向放出一滴蓝色溶液，轻轻取出滴管，观察蓝色液滴的移动方向并记录。
（用白纸划一直线置于试管背面，方便观察）6.分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水分势相当的浓度，根据原理公式计算出组织的水势。
实验结果测定植物组织的水势实验记录水势计算ψs=-iCRT实验讨论如果小液流滴在对照溶液中全部上升或下降说明什么问题，应如何改变试验溶液浓度？答：“全部上升”说明实验溶液的浓度都高于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度降低再做；“全部下降”说明实验溶液的浓度都低于植物组织的浓度，应该把试验溶液浓度调高再做。
植物组织水势的测定(小液流法)
实验4 植物组织水势的测定（小液流法）一、原理当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
溶液渗透势的计算：Ψs = - iCRT （ 6 – 1 ）式中：Ψs ——溶液的渗透势，以 MPa 为单位。
R ——气体常数，为 0.008314 MPa · L/ （ mol · K ）。
T ——绝对温度，即 273 + t ℃。
C ——溶液的质量摩尔浓度，以 mol/kg 为单位。
i ——为解离系数， CaCl 2 为 2.6 。
二、实验材料、试剂与仪器设备（一）实验材料植物叶片或洋葱鳞茎。
（二）试剂1 ．甲烯蓝粉末。
2 ． CaCl 2 溶液：包括 0.10 、 0.15 、 0.20 、 0.25 、 0.30 、 0.35 、 0.40 、 0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。
（三）仪器设备大试管 8 支 , 小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，移液管（ 5mL ），毛细吸管 8 支，培养皿，打孔器，剪刀 l 把，镊子 1 把，解剖针 1 支。
三、实验步骤1. 编号贴标签取干燥洁净的大试管 8 支，小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，毛细吸管 8 支，编号贴标签，按序号排好。
2. 打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约 60 片，放在培养皿中，混合均匀。
用镊子分别把 5 ～ 8 个小圆片放到盛有 4 mL 不同质量摩尔浓度 CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置 30 min ，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。
小液流法测定植物组织水势
小液流法测定植物组织水势一、原理将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。
因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）（waterpotential）。
ψw＝ψπ＝－P＝－CRT（大气压）二、材料、仪器设备及试剂（一）材料：小白菜、菠菜、油菜或其它作物叶片（二）仪器设备：1.带塞青霉素小瓶12个；2.带有橡皮管的注射针头；3.镊子；4.打孔器5.培养皿。
（三）试剂：1.0.05、0.10、0.15、0.20、0.25、0.30mol/L 蔗糖溶液；2.甲烯蓝粉末。
三、实验步骤（一）取干燥洁净的青霉素瓶6个为甲组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L蔗糖溶液约4ml（约为青霉素瓶的2／3处），另取6个干燥洁净的青霉素瓶为乙组，各瓶中分别加入0.05～0.30mol/L 蔗糖溶液1ml和微量甲烯蓝粉末着色，上述各瓶加标签注明浓度。
（二）取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约50片，放至培养皿中，混合均匀。
用镊子分别夹入5～8个小圆片到盛有不同浓度的甲烯蓝蔗糖溶液的青霉素瓶中（乙组）。
盖上瓶塞，并使叶圆片全部浸没于溶液中。
放置约30～60min，为加速水分平衡，应经常摇动小瓶。
（三）经一定时间后，用注射针头吸取乙组各瓶蓝色糖液少许，将针头插入对应浓度甲组青霉素瓶溶液中部，小心地放出少量液流，观察蓝色液流的升降动向。
（每次测定均要用待测浓度的甲烯蓝蔗糖溶液清洗几次注射针头）。
如此方法检查各瓶中液流的升降动向。
若液流上升，说明浸过小圆片的蔗糖溶液浓度变小（即植物组织失水）；表明叶片组织的水势高于该浓度糖溶液的渗透势；如果蓝色液流下降则说明叶片组织的水势低于该糖溶液的渗透势，若蓝色液流静止不动，则说明叶片组织的水势等于该糖溶液的渗透势，此糖溶液的浓度即为叶片组织的等渗浓度四、结果计算将求得的等渗浓度值代入如下公式：ψw＝ψπ＝－CRTi×1.013×0.1。
小液流法测定植物组织水势
小液流法测定植物组织水势【实验意义】作物水分状况的表现指标中，生理指标的变化先于形态指标的出现。
形态指标的出现时之后的，当植物出现缺水的形态指标时，植物已经收到伤害。
小液流法测定植物组织水势可以测定一个科的一种植物，通过测定结果可以预知整个科属植物的水势，从而有力农肥的合理使用。
【实验原理】测定植物组织水势的方法较多，小液流法是其中一种。
本法是将植物组织置于不同浓度（也即不同水势）的蔗糖溶液中，寻找到一种浓度的蔗糖溶液，其水势与植物组织的水势相等，然后计算该浓度蔗糖溶液的水势，从而知道植物组织的水势。
表1 小液流法原理表测定蔗糖溶液比重的变化，可采用如下简便的方法：即利用毛细管吸取已浸过植物组织的蔗糖溶液（为便于观察，可用甲烯蓝先染上颜色），放一小滴到与其对应的相同浓度的蔗糖溶液中，然后观察滴出的小液滴（蓝色）的移动方向，即可知道浸过植物组织的蔗糖溶液比重的变化（“小液流法”即由此而来）。
【实验材料】：女贞叶片【仪器设备】：试管架、6支带盖小药瓶（容积不大于5mL）、10mL带塞试管6 支、毛细管1支、叶模、镊子、移液管、吸球等、温度计.【试剂药品】0.5mol/L 蔗糖溶液，亚甲烯蓝粉溶液【实验步骤】1．标准梯度浓度蔗糖溶液的配置将0.5mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.05、0.1、0.2、0.3、0 4、0.5mol/L的蔗糖溶液各10ml.从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支编号带盖小药瓶中，盖上盖子。
2．材料处理取3片叶子重叠，用叶模分别在叶脉两侧各取5*1cm，然后把取出的五厘米长得叶分成10等分，最后得到60等分混匀，依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片10片叶圆片要全部浸在溶液中，塞上塞子，每隔5分钟摇动一次。
40分钟后，用镊子取出在小药瓶中德叶片，分别向6支小药瓶中滴入2滴亚甲烯蓝粉溶液。
3、测定取干燥毛细管6支，分别从编号的带盖小药瓶中吸取蓝色溶液，当毛细管不在上升以后，用吸水纸将毛细管外壁的蓝色溶液擦干净，然后插入与编号的小药瓶相对应的10m 1 试管中，使毛细管内的液面高于试管内的液面约 1 -2cm ，然后缓慢放出蓝色溶液一小滴，保持毛细管静止不动（可将毛细管壁靠在试管口上），观察蓝色小液滴的移动方向, 然后缓慢取出毛细管插回5mL 试管中。
植物水势的测定方法
实验题目：植物组织水势的测定(小液流法)教师：XXX实验类型：基础学时：4 (参考)内容：一、实验目的1.学习用小液流法测定植物组织水势的方法2.了解不同组织的水势的大小。
二、实验原理水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物体细胞之间、组织之间以及植物体和环境之间的水分移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势，则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡。
当植物材料浸入不同浓度的溶液中时，由于细胞与溶液之间发生水分交换，使原来的溶液浓度发生改变，浓度的改变又引起了溶液比重的改变。
若将已浸过植物材料的溶液用毛细管吸入一部分，然后移入与原来浓度相同的溶液时，由于其溶液比重的改变。
就会使移入的小液流向上或向下移动或者不移动。
这样，就可以根据小液流的移动情况，求出植物组织的水势。
三、试剂与器材1.材料：菠菜叶片或马铃薯2.试剂：1mol／L蔗糖溶液、甲烯蓝。
3.器材：试管、移液管、毛细滴管(出口处弯成直角)、打孔器。
四、操作方法1.配制不同浓度的蔗糖溶液。
2.试验组8支试管，对照组8支试管,分别编好号。
3.选取实验材料进行实验。
4.观察现象，记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度。
5.计算水势：фW =-RTiC式中фW为细胞水势，R为气体常数0．083×105L·Pa／mol·K，T为绝对温度即273℃+ t(t为实验温度)，i为解离系数(蔗糖为1)，C为等渗溶液的浓度。
五、关键步骤与注意事项1.毛细管尖端弯成直角，试验时从尖端缓慢地横向放出一滴蓝色试验溶液，这样才能观察小液滴上下移动的方向，否则有时小液滴无法从直的毛细滴管尖端放出。
2.不同浓度的溶液都要使用不同的移液管和毛细滴管，微小的浓度变化都会对实验结果造成严重影响。
植物组织水势的测定
For personal use only in study andresearch; not for commercial use植物生理学实验报告实验题目：植物组织水势的测定姓名班级学号一、实验原理和目的根据渗透作用的原理，用小液滴法测得蔗糖溶液与植物组织中之间的等渗浓度，根据公式ΨW (细胞水势) =Ψs = — CRT求得溶液的水势，从而得知植物组织的水势。
二、实验器具和步骤植物材料：女贞叶片实验器具：细滴管；试管及指形管；烧杯；镊子、剪刀；移液管；标签纸试剂：1 mol/L蔗糖溶液；甲烯蓝溶液实验步骤:1.用短滴管吸取1M蔗糖溶液取0.5ml、 1ml、 2ml、 3ml 、4ml 分别放入10ml 刻度试管中，加蒸馏水至10ml，盖上塞子上下倒转混匀，配成0.05M、0.1M、0.2M、0.3M、0.4M的糖液。
2.用移液管从浓度各试管中吸出1ml注入对应的指形管内，各管均加塞，并贴上标签。
3.将女贞叶片在叠在一起，沿中脉两边用钻孔器打取10片小圆片，分别放入小指形管内，放置20min(期间摇动2~3次）后，加甲烯蓝1滴摇匀。
4.用长滴管吸取着色溶液放入原相应的蔗糖溶液中，慢慢放出一滴蓝色溶液，在白色纸片上观察小液滴升降情况，并作记录。
三、实验数据和作业Ψ W (细胞水势) =Ψ s = — CRT式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以 MPa 为单位。
R ——气体常数，为 0.008314 MPa·L/（mol·K ）。
T ——绝对温度，即 273 + t ℃, 单位为K。
C ——溶液的摩尔浓度，以 mol/L 为单位。
实验所得浓度为（0.05+0.1）/2(mol/L)=0.075 mol/Lt=17 T=273+17=290Ψ W (细胞水势) =Ψ s = — CRT=-0.075*0.008314*290MPa=-0.1808295MPa 四、数据分析1．由于液滴在浓度为0.05mol/L上升和在浓度0.1mol/L下降，所以取0.75mol/L为细胞液的浓度。
植物生理学实验报告
植物生理学实验报告实验一、植物组织水势测定（小液流法）一、实验原理水总是从水势高的系统流向水势低的系统。
将植物叶片分别与一系列不同浓度的蔗糖溶液接触，蔗糖溶液浓度从小到大，开始时，植物叶片水势低于蔗糖溶液，溶液中水分向叶片转移，蔗糖溶液浓缩，蔗糖溶液密度较原始浓度升高；蔗糖溶液高到一定浓度后，蔗糖溶液水势低于植物叶片，叶片水分向溶液中转移，蔗糖溶液稀释，密度较原始浓度降低。
如果植物组织的水势等于蔗糖溶液的水势，水分不发生净移动，外液浓度较原浓度不发生变化上述浸泡过植物组织、浓度发生改变的蔗糖溶液为乙组。
原始浓度的蔗糖溶液为甲组。
将乙组溶液染色后，取乙组溶液一小滴（小液流），放入对应浓度的甲组溶液中，观察小液流因密度不同而下降、上升或不动的情况，记录与之相对应的甲组溶液的浓度。
二、材料与设备1.材料：植物叶片；2.仪器设备：试管、试管架、打孔器、尖头镊子、尖头针、移液管、毛细滴管；3.试剂：1M蔗糖液、甲烯蓝粉。
三、实验步骤1.蔗糖溶液配制：l)取干燥洁净试管5支，贴标签标记，用1M蔗糖母液配制蔗糖溶液，浓度由小到大分别为0.1、0.25、0.5、0.75、1M，每个浓度均配8m1，放入对应标记的试管中，作为甲组（一定要混匀）2）另取干燥洁净的指形管5支，标明0.1、0.25、0.5、0.75、1M浓度的蔗糖溶液，分别从甲组取相应浓度蔗糖溶液1m1置于指形管，作为乙组。
2.取样及测定1)选取生长一致的叶片，用打孔器钻取小圆片4-6片/管，将小圆片全部浸入乙组指形管溶液中，摇动20分钟；2）用针尖蘸取少许甲烯蓝粉末，分别放入乙组各指形管中，摇匀，可看见乙组指形管中溶液颜色变蓝：3）用毛细滴管吸取蓝色溶液，轻轻插入相应浓度的甲组溶液中部，用吸耳球轻柔吹气，以帮助蓝色溶液从毛细滴管中流出。
在流出的一瞬间观察并记录液滴的升降情况；4）若液滴下降，说明组织吸水使溶液变浓，比重变大；若液滴上升，说明组织失水使溶液变稀，比重变小；若液滴静置不动，说明此溶液的溶质势与叶圆片组织的水势相等，水分交换平衡，溶液比重不变，根据溶液的浓度可计算水势：若前一浓度溶液小液流下沉，而后一浓度溶液中上浮，则组织的水势值介于两蔗糖溶液水势之间，可取平均值计算。
小液流法测定植物组织水势
【实验材料】
土豆
【实验试剂与器材】
实验器材： ⑴试管20支；⑵移液管； ⑶毛细滴管；⑷解剖刀；⑸试管架。
实验试剂： ⑴甲烯兰；⑵1M的蔗糖 溶液。
【实验步骤】
1.
配制一系列浓度不同的蔗糖溶液，分别是：0.5, 0.4, 0.3, 0.25, 0.20, 0.15, 0.10, 0.05 M
10-15块片，加塞并经常摇动，30min后，向试验组的每支试管中加一滴甲烯兰溶液，
摇动试管，使溶液均匀着色。
4.Biblioteka 用毛细滴管（或小量程移液管）吸取浸有材料的兰色溶液，然后插入对照组相同编
号的试管，在液体的中部轻轻放出一滴兰色试验溶液，仔细观察液滴移动的方向，
并记录之。
溶液浓度/M 0.05 0.1 0.15 0.2 0.25 0.3 0.4 0.5
II 露点法测定植物叶片水势
【实验原理】
将叶片或组织汁液密闭在体积很小的样品室内，经一 定时间后，样品室内的空气和植物样品将达到温度和 水势的平衡状态。此时，气体的水势（以蒸气压表示） 与叶片的水势（或组织汁液的渗透势）相等。因此， 只要测出样品室内空气的蒸气压，便可得知植物组织 的水势（或汁液的渗透势）。由于空气的蒸气压与其 露点温度具有严格的定量关系，本仪器便通过测定样 品室内空气的露点温度而得知其蒸气压。
【思考与作业】
植物组织切块的大小和数量对组织水 势的测定结果是否有影响？
加入甲烯兰溶液会影响实验结果吗？ 为什么？
该实验具体操作中应该注意的事项主 要有哪些？
各10ml，共8管。注入试管中，各管都加上塞子并编号，按编号顺序排成一列，放
在试管架上，作为对照组。
2.
另用8支试管，与前一组试管对应编号，作为试验组，然后由对照组各试管中分别
植物组织水势的测定 ( 小液流法 )
植物组织水势的测定(小液流法)一、目的学会用小液流法来测定植物组织水势。
二、原理当植物组织浸入外界溶液中时，若植物的水势小于外液的水势，则细胞吸水,使外液浓度变大；反之,植物细胞失水，外液浓度变小，若细胞和外液的浓度相等，则外液浓度不发生变化。
溶液浓度不同其比重也不同，不同浓度的两溶液相遇，稀溶液比重小而会上升，浓溶液比重大而会下降。
根据此理,把浸过植物组织的各浓度液滴滴回原相应浓度的各溶液中，液滴会发生上升、下降或基本不动的现象。
如果液滴不动，说明外液在浸过组织后浓度未变，那么就可根据该溶液的浓度计算出其水势。
此水势值也就是待测植物组织水势。
小液流法就根据这个原理，把植物组织浸人一系列不同浓度的煎糖液中,由于比重发生了变化，通过观察滴出小液滴在原相应浓度中的反应而找出等渗浓度，从而就可算出溶液的水势。
三、材料指管木架、指形管(带软木塞)、弯头毛细吸管(带橡皮头)、小镊子、移液管、温度计、打孔器、不同浓度的蔗糖液(0.2～0.6mol/L)、甲烯蓝(亚甲基蓝)、叶片。
四、方法与步骤1、配制一系列不同浓度的蔗糖溶液0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6mol/l各10ml注入7支试管编号按顺序排列作为对照组。
2、另取7支试管编号按顺序排列作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液5ml移入相同编号的试验组试管中。
3、用打孔器在马铃薯上打孔然后用刀片将马铃薯切成厚薄相等的小块若干片。
向试验组的每一试管中加20片马铃薯小块，摇动数次放置30分钟，后向每一试管中各加甲烯蓝粉末少许并振荡此时溶液变成蓝色。
4、用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取蓝色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部。
缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了。
如果有色液滴向下移动则说明细胞从溶液中吸了，水溶液变浓比重变大。
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定【摘要】本实验通过小液流法测量植物组织的水势。
将植物组织放入不同浓度的蔗糖溶液中，叶片组织的水势与溶液的水势不等，会发生水分的转移至水势相等。
该溶液经染色后，吸去少量蓝色液滴至原浓度的蔗糖溶液中，观察小液流的运动，寻找与之等势蔗糖溶液浓度。
通过计算得出组织的水势。
关键词：小液流法，水势【材料与试剂】栾树叶片，蔗糖溶液（1mol/L)，亚甲基蓝溶液 【实验内容】 原理：水势（water potential ）是指每偏摩尔体水的化学势（差），即水的化学势（w μ） 与同温同压同一体系中纯水的化学势（0w μ）之差除以水的偏摩尔体积所得的商:这样定义的水势其单位是压力单位，用帕（Pa ）或兆帕（MPa ）表示。
与过去曾用单位atm 、bar 的换算关系为：1MPa = 610 Pa = 10 bar =9.87atm植物细胞的水势有以下几部分组成： （1）液泡的渗透势s ψ；（2）细胞壁对内容物的压力势p ψ；（3）原生质亲水胶体对水分子吸附作用产生的衬质势m ψ即m p s w ψψψψ++=植物体和环境之间的水分移动方向由水势差决定，当植物组织的水势与其环境的水势相等时，在组织与环境间便不发生水分的迁移。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势，则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡。
当植物材料浸入不同浓度的溶液中时，由于细胞与溶液之间发生水分交换，使原来的溶液浓度发生改变，浓度的改变又引起了溶液比重的改变。
若将已浸过植物材料的溶液用毛细管吸入一部分，然后移入与原来浓度相同的溶液时，由于其溶液比重的改变。
就会使移入的小液流向上或向下移动或者不移动。
这样，就可以根据小液流的移动情况，求出植物组织的水势。
步骤：1.将1mol/L 的蔗糖溶液分别稀释成0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5、0.6mol/L 的蔗糖溶液。
植物组织水势的测定(小液流法)
植物组织水势的测定（小液流法）【实验原理】水势表示水分的化学势，象电流由高电位处流向低电位处一样，水从水势高处流向低处。
植物细胞、组织之间以及植物体和环境间的水分间移动方向都由水势差决定。
当植物细胞或组织放在外界溶液中时，如果植物的水势小于溶液的渗透势（溶质势），则组织吸水而使溶液浓度变大；反之，则植物细胞内水分外流而使溶液浓度变小；若植物组织的水势与溶液的渗透势相等，则二者水分保持动态平衡，所以外部溶液浓度不变，此溶液的渗透势即等于所测植物的水势．可以利用溶液的浓度不同其比重也不同的原理来测定试验前后溶液浓度的变化，然后根据公式计算渗透势．【实验仪器】试管毛细滴管烧杯移液管刀片打孔器镊子甲烯蓝蔗糖溶液(1mol/L)【药品】蔗糖溶液(1mol/L)【实验材料】灰莉【实验操作步骤】1. 配制一系列不同浓度的蔗糖溶液：0.05、0.1、0.2、0.3、0.4、0.5mol/L 各10ml，注入6支试管，并编号，按编号顺序在试管架上排成一列，作为对照组。
2. 另取6支试管，编好号，按顺序放在试管架上，作为试验组。
然后从对照组的各试管中分别取溶液4ml移入相同编号的试验组试管中。
3. 用打孔器在灰莉叶片中部靠近主脉附近打取叶贺片，随机取样，向试验组的每项一试管中放入相等数目（15-30片）的叶贺片，加塞，放置３０分钟，在这段时间内摇动数次，处理后，向每一试管中各加2滴甲烯蓝溶液，并振荡，溶液变成蓝色。
4. 用毛细滴管从试验组的各试管中依次吸取着色的液体少许，然后伸入对照组相同编号试管的液体中部，缓慢从毛细管尖端横向放出一滴蓝色试验溶液，观察小液滴移动的方向。
如果小液滴向上移动，说明溶液从细胞液中吸出水分而被冲淡，比重比原来小了；如果有色液滴向下移动，则说明细胞从溶液中吸了水，溶液变浓，比重变大；如果液滴不动。
则说明试验溶液的密度等于对照溶液，即植物组织的水势等于溶液的渗透势。
5. 记录液滴不动的试管中蔗糖溶液的浓度，并将结果代入公式。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+toC) ×浓度压力室法：根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖→将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀，使加压速率达0.1bar,仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
植物生理学实验
植物⽣理学实验⼀．植物组织⽔势的测定（⼩液流法）【器材与试剂】1.实验仪器试管，移液管，长弯针头，直径0.5cm打孔器，镊⼦。
2.实验试剂 1.00mol/L蔗糖溶液（342.3g/L）,10%甲烯蓝（⽤⽔配制）。
3.实验材料菠菜叶⽚【实验步骤】1.⽤1mol/L蔗糖母液配制⼀系列不同浓度的蔗糖溶液（0.2，0.3，0.4，0.5，0.8mol/L）各10mL，注⼊5⽀编号号的试管中，各管都加上塞⼦，按标号顺序在试管架上排成⼀列，作为对照组。
将原液稀释10倍配10mL吸原液 2 mL 3 mL 4 mL 5 mL 8 mL加⽔ 8 mL 7 mL 6 mL 5 mL 2 mL2.另取5⽀试管或青霉素⼩瓶，对应于对照组各管编号，作为试验组。
然后从对照组的各管中分别取4mL溶液移⼊相同编号的试验组试管或青霉素⼩瓶中，并都加上塞⼦。
3.菠菜洗净，⽤打孔器在叶⽚中部靠近主脉附近打取页原⽚，随机取样，向试验组的每⼀试管或青霉素⼩瓶中放⼊相等数⽬（10⽚）的叶圆⽚，加塞，放置30min，每⼗分钟摇动⼀次，每次30秒钟。
4.⽤点样针头蘸⼀下10%甲烯蓝溶液（如有条件的话，⽤微量移液器吸取1µL）加⼊每⼀试管或青霉素⼩瓶中，。
震荡，此时溶液呈蓝⾊。
5.⽤5⽀⾃制长弯针头，从试验组的各管中⼀次吸取着⾊的液体少许，吸取溶液量应相等，赶⾛溶液中⽓泡，如针头有液珠必须擦⼲，然后伸⼊对照组同样浓度溶液的中部，缓慢从针头尖端横向放出⼀滴蓝⾊溶液，轻轻取出滴管。
6.观察蓝⾊液滴的移动⽅向，如果蓝⾊液滴向上移动，说明⽐重⼩，原组织细胞失⽔，溶液从叶⽚细胞中吸出⽔分⽽被冲淡，密度⽐原来⼩了外液失⽔变浓，⽐重⼤；如果液滴向下移动，则说明叶⽚细胞从溶液中吸了⽔，溶液密度变⼤，外液失⽔变稀，⽐重⼩；如果液滴不动，则说明叶⽚与溶液的⽔分交换平衡，即叶⽚的⽔势与此种浓度的溶液的渗透式相等。
7.记录液温。
⾊滴不动的相应温度。
8.书写实验报告。
植物组织水势的测定 小液流法
植物组织水势的测定小液流法植物组织的水势测定在植物生理学研究中起着重要的作用。
小液流法是一种常用的测定植物组织水势的方法。
本文将介绍小液流法的原理、操作步骤和注意事项，帮助读者了解和掌握这一方法。
小液流法是通过测量植物组织的液体流动速度，来推断组织水势的高低。
其原理基于渗透压的作用。
渗透压是物质在溶液中扩散过程中产生的压力差，植物细胞内高浓度的溶液会吸引水分进入细胞，形成渗透压差。
根据渗透压差的大小，可以推断出细胞内部的水势。
液体在细胞内的扩散速度与细胞内水势成反比，因此，测量液体扩散速度可以间接得到组织水势的大小。
进行小液流法测定前，首先需要准备好实验所需的材料和仪器。
主要包括：测量液体（一般为含有示踪剂的染液）、试管、玻璃棒、显微镜和计时器等。
接下来，按照以下步骤进行实验：1. 取一根新鲜的植物茎段，并将其放入试管中。
2. 在试管内注入适量的测量液体，确保茎段完全浸泡其中。
3. 用玻璃棒轻轻搅拌试管内的液体，使其均匀分布。
4. 使用显微镜观察试管内液体的流动情况。
5. 同时启动计时器，并记录液体从茎段内向外扩散的时间。
6. 根据液体扩散的速度和时间，计算出液体的扩散速率。
7. 根据扩散速率，推断出植物组织的水势大小。
在进行小液流法测定时，需要注意以下几点：1. 选择合适的测量液体和示踪剂，以保证实验结果的准确性和可重复性。
2. 保证试管内液体的温度和浓度稳定，避免影响液体扩散速率的因素。
3. 在观察和记录液体扩散速度时，要尽量减小误差，可以多次进行实验并取平均值。
4. 当观察的茎段比较短时，可以考虑将茎段剪成一定长度，以增加实验的精确性。
5. 在实验过程中，要保持实验环境的稳定，避免外界因素对实验结果的干扰。
小液流法是测定植物组织水势的一种有效方法，其操作相对简单，结果可靠。
通过掌握这一方法，可以更好地理解植物的生理过程，为进一步研究植物的水分平衡和调节机制提供有力的支持。
小液流法测定植物水势实验综述报告
小液流法测定植物水势实验综述报告一、实验的原理小液流法测定植物水势是基于渗透压平衡原理的一种方法。
植物细胞内的渗透压是细胞内外水分的平衡因素，通常由离子、有机溶质和水分子共同组成，当细胞外的水势低于细胞内的水势时，水分分子将向细胞内部移动，直到两者达到平衡。
通过在细胞外加入不同浓度的蔗糖溶液，使得细胞内外的水势达到平衡，从而可以测定植物的水势。
二、实验的操作步骤1. 实验材料的准备：需要准备新鲜的植物样品、天平、榨汁器、小液管、标尺、离心机等实验设备以及蔗糖溶液等试剂材料。
2. 样品的处理：将植物样品放入榨汁器中，榨取植物原汁液，去除植物残渣。
3. 准备小液管：在小液管中注入不同浓度的蔗糖溶液，通常包括0.1M、0.2M、0.3M 等不同浓度。
4. 测定水势：将小液管插入植物样品中，等待一段时间使得细胞内外的水势达到平衡，然后通过标尺等测定小液管中的液位变化，从而测定植物的水势。
5. 数据处理：根据实验测得的数据，利用公式计算出植物的水势数值，并进行统计分析。
三、仪器设备1. 榨汁器：用于榨取植物原汁液。
2. 小液管：用于注入不同浓度的蔗糖溶液，并插入植物样品中测定水势。
3. 天平：用于称量试剂和样品的质量。
4. 离心机：用于离心植物原汁液，去除悬浮颗粒。
5. 标尺：用于测定小液管中的液位变化。
四、实验应用小液流法测定植物水势的方法简单易行，因此在植物生理学、生态学以及农学领域得到了广泛的应用。
通过测定植物的水势，可以研究植物的水分利用效率、胁迫适应机制以及生长发育特性，为植物的栽培管理和资源利用提供依据。
还可以利用小液流法测定植物水势来评价不同品种或种群在水分应激条件下的抗性，为植物育种和抗旱工作提供重要参考。
小液流法测定植物水势的方法具有重要的应用价值。
小液流法测定植物水势实验综述报告
小液流法测定植物水势实验综述报告植物的水势是指其细胞内和细胞外的水势差，通常可以用负数表示。
水势是植物细胞内水分向细胞外或环境中移动的驱动力，是植物水分吸收和输送的重要指标。
小液流法是一种常用的测定植物水势的方法，本文将对小液流法测定植物水势实验进行综述和报告。
小液流法是根据水分在渗透膜上的液体流动性质来测定水势的一种方法。
实验主要步骤如下：从被测植物的根部截取一段饱满的茎段，并用剪刀将其两端剪成倒锥形；然后，在茎段下方加上一段玻璃毛细管，用隔气橡皮塞将其固定在茎段内；接着，将茎段和毛细管浸入一定浓度的甘露醇溶液中，并使甘露醇溶液的浓度逐渐降低；用一个玻璃注射器从毛细管上方抽取液体，并记录液体被抽到玻璃注射器的高度差。
根据玻璃注射器的高度差，可以计算出植物的水势值。
小液流法测定植物水势的优点在于操作简单，结果准确可靠。
但也存在一些需要注意的问题。
实验过程中要保证被测植物茎段完整无损，在操作过程中要小心谨慎，以免造成茎段的断裂或漏液等情况。
选择合适的甘露醇浓度和溶液浸泡时间是重要的，过高或过低的甘露醇浓度都可能影响实验结果的准确性。
实验室条件的控制也很重要，温度、湿度和光照等因素都可能对实验结果产生影响。
通过小液流法测定植物水势，可以帮助我们了解植物的水分吸收和输送能力，从而更好地理解植物的生长和适应环境的能力。
小液流法的原理和方法也可以应用于其他领域，比如测定土壤水势等。
小液流法是一种常用的测定植物水势的方法，通过实验可以准确地测定植物的水势值，并对植物的水分吸收和输送能力进行研究。
在实施实验时需要注意操作的小心和实验条件的控制，以保证结果的准确性和可靠性。
小液流法具有简单、准确可靠的优点，可以在植物生理研究和农业生产中得到广泛应用。
植物组织水势的测定(小液流法)
2.用打孔器在灰莉叶的不同部位打120片，混匀，每个青霉素瓶各放入
20片，（打孔要迅速，避开叶脉，选边缘整齐无破损的叶片）
3.从配制好的试管中各取2ml（量准确？）到相应的青霉素瓶中（用一
只移液管由低
高，不要润洗）。放置20—30min，期间摇动数
次，以加速水分平衡。
植物组织水势的测定
4. 染色：用接种针沾入微量甲烯蓝粉末加入青霉素瓶 中，摇匀，溶液变蓝。（干燥针头先用蒸馏水湿润 ，加入的甲烯蓝量一定少，使各瓶中颜色基本一致 ）
外液浓度保持不变； ψ植物＝ψS
植物组织水势的测定
2、同一种物质浓度不同时其比重不一样， 浓度大的比重大，把高浓度的溶液一小液滴放 到低浓度溶液中时，液滴下沉；反之则上升。
3、根据外液浓度的变化情况即可确定与 植物组织相同水势的溶液浓度。根据以下公式 计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
【实验原理】
《植物生理实验》 安排及综合性实验方案
第一轮需要完成的实验内容： 实验 小液流法测定植物组织 水势 实验 缺素培养 实验 膜透性鉴定
第二轮需要完成的实验内容：综合性实验
(一) 目的要求： 利用《植物生理学》课堂理论—植物的矿质营养、植物的 光合作用、植物的逆境生理等相关知识综合分析“玉米或 烟草等植株完全液培养和缺素培养苗的生理差异”。 (二) 需要完成的实验内容： 实验四 植物水溶液和缺素培养症状观察,TTC法测根系活
植物组织水势的测定实验原理植物材料浸入不同浓度溶液中植物材料水势低于溶液水势植物材料水势等于溶液水势植物材料水势高于溶液水势材料吸水外界溶液浓度变大比重变大外界溶液浓度不变比重不变材料失水外界溶液浓度变小比重变小植物组织水势的测定浸过材料的溶液同一浓度而未浸过材料的溶液中比重小的液流上浮比重不变的液流静止比重大的液流下沉此溶液的水势即等于所测材料的水势溶液的渗透势以mpa为单位
植物组织水势的测定-小液流法
植物组织水势地测定小液流法中文摘要：本实验以菠菜叶为实验材料，用小液流法，对植物组织水势进行测定.如果小液滴向上移动，则组织水势大于外界溶液水势；如果小液滴向下移动，则组织水势小于外界溶液水势；如果小液滴静止不动，则组织水势等于外界溶液地渗透势.英文摘要：, . , . , . , . , .【实验原理】当植物组织浸入一系列递增地不同浓度地蔗糖溶液中时，如果植物组织地水势小于溶液地渗透势，则组织吸水而使蔗糖溶液地浓度增高；反之，则降低；若二者相等，则水分保持动态平衡，蔗糖溶液浓度不变.溶液浓度发生变化，比重随之变化.取浸过植物组织地溶液一小滴，放在原来浓度相同而未浸植物组织地溶液中，比重减小地液流往上浮；比重加大地液流往下沉；如液流停止不动，则说明溶液浸过植物组织后浓度未变.可把这个溶液地渗透势看作组织地水势，根据公式计算其渗透势.【实验目地】掌握植物组织水势地测定方法,并了解渗透系统中水势大小是水分移动方向地决定因素. 【实验器材和试剂】植物材料:菠菜实验器材:吸水纸、容量管、试管、带盖青霉素小瓶、胶头细玻璃弯管、移液管、打孔器、软木塞、试管架、温度计、镊子实验试剂蔗糖溶液、甲烯蓝粉末【实验步骤】用地蔗糖溶液配制一系列浓度递增地蔗糖溶液如，、、、、、、、各十毫升，注入编号地试管中，各管都要加塞子，并按编号顺序放在试管架上，作为对照组.另取个已编号地小瓶，按编号顺序排列，作为实验组.然后由对照组地各个试管中用移液管分取毫升溶液移入相同比编号地试验组小瓶中.选取生长势一致地叶子，在其下面垫以橡皮塞，用打孔器钻取叶圆片，迅速投入小瓶地蔗糖溶液中并盖紧，每瓶投入片，数量以占蔗糖溶液地为宜.叶片应全部进入蔗糖溶液中.塞紧，定时摇动.在室温下分钟（等待时间内不断依次摇动有叶片地小瓶）.用针挑起极少量甲烯兰粉末，投入各试验组小瓶中依次吸取着色地液体少许，并用吸水纸吸掉吸管外壁地溶液；然后小心地伸入对照组地相同编号试管内地液体地中部，缓慢地放出一滴蓝色试验溶液.然后轻轻取出玻璃管，并观察小液滴流动地方向.按公式ψ计算出植物组织地水势【注意事项】材料要新鲜、无病斑、叶片要大打孔器一定要锋利，尽量减少损伤，操作迅速叶片投入小瓶要快，小瓶要及时加盖，防止叶内或小瓶中水分蒸发影响实验结果加入小瓶地甲烯蓝粉末不宜过多，以免影响溶液比重胶头滴管要专管专用，乳痈一直滴管要从低浓度到高浓度依次吸取溶液释放蓝色液滴要缓慢，防止释放过急，挤压冲力影响液滴移动观察液滴移动状况要放在白色背景下进行【实验结果】实验室温度：测定植物组织地水势实验记录浓度（）开始时间结束时间液滴移动情况下移下移缓慢下移缓慢上移上移上移上移上移水势计算ψ【实验讨论】如果小液流滴在对照溶液中全部上升或下降说明什么问题，应如何改变试验溶液浓度？答：“全部上升”说明实验溶液地浓度都高于植物组织地浓度，应该把试验溶液浓度降低再做；“全部下降”说明实验溶液地浓度都低于植物组织地浓度，应该把试验溶液浓度调高再做.。
小液流法测定植物组织水势
小液流法测定植物组织水势【实验意义】作物水分状况的表现指标中，生理指标的变化先于形态指标的出现。
形态指标的出现时之后的，当植物出现缺水的形态指标时，植物已经收到伤害。
小液流法测定植物组织水势可以测定一个科的一种植物，通过测定结果可以预知整个科属植物的水势，从而有力农肥的合理使用。
【实验原理】测定植物组织水势的方法较多，小液流法是其中一种。
本法是将植物组织置于不同浓度（也即不同水势）的蔗糖溶液中，寻找到一种浓度的蔗糖溶液，其水势与植物组织的水势相等，然后计算该浓度蔗糖溶液的水势，从而知道植物组织的水势。
表1 小液流法原理表测定蔗糖溶液比重的变化，可采用如下简便的方法：即利用毛细管吸取已浸过植物组织的蔗糖溶液（为便于观察，可用甲烯蓝先染上颜色），放一小滴到与其对应的相同浓度的蔗糖溶液中，然后观察滴出的小液滴（蓝色）的移动方向，即可知道浸过植物组织的蔗糖溶液比重的变化（“小液流法”即由此而来）。
【实验材料】：女贞叶片【仪器设备】：试管架、6支带盖小药瓶（容积不大于5mL）、10mL带塞试管6 支、毛细管1支、叶模、镊子、移液管、吸球等、温度计.【试剂药品】0.5mol/L 蔗糖溶液，亚甲烯蓝粉溶液【实验步骤】1．标准梯度浓度蔗糖溶液的配置将0.5mol/L蔗糖溶液的母液分别配成0.05、0.1、0.2、0.3、0 4、0.5mol/L的蔗糖溶液各10ml.从上述的大试管中各取2ml溶液，分别放到另6支编号带盖小药瓶中，盖上盖子。
2．材料处理取3片叶子重叠，用叶模分别在叶脉两侧各取5*1cm，然后把取出的五厘米长得叶分成10等分，最后得到60等分混匀，依次分别在小试管的蔗糖溶液中各放入叶圆片10片叶圆片要全部浸在溶液中，塞上塞子，每隔5分钟摇动一次。
40分钟后，用镊子取出在小药瓶中德叶片，分别向6支小药瓶中滴入2滴亚甲烯蓝粉溶液。
3、测定取干燥毛细管6支，分别从编号的带盖小药瓶中吸取蓝色溶液，当毛细管不在上升以后，用吸水纸将毛细管外壁的蓝色溶液擦干净，然后插入与编号的小药瓶相对应的10m 1 试管中，使毛细管内的液面高于试管内的液面约 1 -2cm ，然后缓慢放出蓝色溶液一小滴，保持毛细管静止不动（可将毛细管壁靠在试管口上），观察蓝色小液滴的移动方向, 然后缓慢取出毛细管插回5mL 试管中。
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告植物组织水势的测定实验报告一、实验目的和要求了解植物组织中水分状况的另一种表示方法及用于测定的方法和它们的优缺点。
二、实验原理小液流法测定新鲜白萝卜的组织水势。
植物细胞是一个渗透系统。
当组织水势低于溶液渗透势，组织吸水，溶液变浓，比重增加，小液流下沉。
当组织水势高于溶液渗透势，组织失水，溶液变稀，比重下降，小液流上浮。
当组织水势等于溶液渗透势，组织与溶液达到水分进出动态平衡，溶液浓度和比重不变，小液流不动。
压力室法测定海桐叶片组织水势,植物叶片通过蒸腾作用产生蒸腾拉力。
导管中的水分由于内聚力的作用而形成连续的水柱。
因此，对于蒸腾着的植物，其导管中的水柱由于蒸腾拉力的作用，使水分连贯地向上运输。
当叶片或枝条被切断时，木质部中的液流由于张力解除迅速缩回木质部。
将叶片装入压力室钢筒，切口朝外，逐渐加压，直到导管中的液流恰好在切口处显露时，所施加的压力正好抵偿了完整植株导管中的原始负压。
三、主要仪器设备小液流法：白萝卜、打孔器、10ml离心管、小刀、镊子、注射器、1mol/L蔗糖溶液、甲基橙压力室法：压力室四、操作方法和实验步骤小液流法：1、用1mol/l的蔗糖溶液配制0.05、0.10、0.20、0.30、0.40、0.50M一系列不同浓度的蔗糖溶液(10mL)，用力混匀。
2、分别取4ml不同浓度的溶液到另一组相应的试管中。
每管加入厚度约为1mm的萝卜圆片，加塞放置30min。
期间晃动（3-4次）。
3、用针蘸取少量甲基橙放入每支试管，混匀。
4、用注射器取少许黄色溶液，伸入对应浓度的蔗糖溶液中部，缓慢挤出一滴小液滴，观察小液滴移动方向并记录。
Ψw(Mpa) = -iCRT = -0.0083×(273+toC) ×浓度压力室法：根据植物材料选取枝条（或叶片）型的压力室盖→将试样装入压力室盖的孔（或槽）中夹紧，压入压力室并顺时针旋转紧固。
打开钢瓶阀门，使控制阀朝向加压，缓慢打开测定阀，使加压速率达0.1bar,仔细观察伸出压力室盖的植物样品，一发现木质部转湿润液体溢出，立即关闭测定阀，记录压力表读数。
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实验5 植物组织水势的测定（小液流法）
一、原理
当植物组织与外液接触时，如果植物组织的水势低于外液的渗透势（溶质势），组织吸水、重量增大而使外液浓度变大；反之，则组织失水、重量减小而外液浓度变小；若两者相等，则水分交换保持动态平衡，组织重量及外液浓度保持不变。
根据组织重量或外液浓度的变化情况即可确定与植物组织相同水势的溶液浓度，然后根据公式计算出溶液的渗透势，即为植物组织的水势。
溶液渗透势的计算：
Ψ s = - iCRT （ 6 – 1 ）
式中：Ψ s ——溶液的渗透势，以 MPa 为单位。
R ——气体常数，为0.008314 MPa · L/ （mol · K ）。
T ——绝对温度，即273 + t ℃。
C ——溶液的质量摩尔浓度，以 mol/kg 为单位。
i ——为解离系数， CaCl 2 为 2.6 。
二、实验材料、试剂与仪器设备
（一）实验材料
植物叶片或洋葱鳞茎。
（二）试剂
1 ．甲烯蓝粉末。
2 ． CaCl 2 溶液：包括 0.10 、 0.15 、 0.20 、 0.25 、 0.30 、 0.35 、 0.40 、 0.45 mol/kg 8 种不同质量摩尔浓度的溶液。
（三）仪器设备
大试管 8 支 , 小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，移液管（ 5mL ），毛细吸管 8 支，培养皿，打孔器，剪刀 l 把，镊子 1 把，解剖针 1 支。
三、实验步骤
1. 编号贴标签取干燥洁净的大试管 8 支，小试管 8 支，青霉素小瓶 8 支，毛细吸管 8 支，编号贴标签，按序号排好。
2. 打取、浸泡叶片取待测样品的功能叶数片，用打孔器打取小圆片约 60 片，放在培养皿中，混合均匀。
用镊子分别把 5 ～ 8 个小圆片放到盛有 4 mL 不同质量摩尔浓度 CaCl 2 溶液的青霉素小瓶中，浸没叶片，盖紧瓶塞，放置 30 min ，并不断轻摇小瓶，以加速水分平衡（如温度低时可延长放置时间）。
3. 染色到预定时间后，用解剖针尖蘸取微量甲烯蓝粉末，加入各青霉素小瓶中，并摇动，使溶液染色均匀。
4. 测定把试管中的不同浓度的系列标准液分别倒入相同编号的小试管中，用毛细吸管吸取相同编号青霉素小瓶内的有色溶液少许，插入相同编号的小试管溶液中部，轻轻挤出有色溶液一小滴，小心取出毛细管（勿搅动有色液滴），观察有色液滴的升降情况，并记录于表 6 –1 中。
若有色溶滴上升，表示浸过叶片的溶液浓度变小（即植物叶片组织中有水排出），说明叶片组织的水势大于该浓度溶液的溶质势；若有色液滴下降，则说明叶片组织的水势小于该浓度的溶质势；若有色小液滴静止不动，说明叶片组织的水势等于该浓度溶液的溶质势。
若在前一浓度溶液中下降，而在后一浓度中上升，则植物组织的水势可取二种浓度溶液的溶质势的平均值。
分别测定不同浓度中有色液滴的升降，找出与组织水势相当的浓度。
记录实验时的温度，根据原理中公式（ 6 – 1 ）计算出组织的水势。
表 6-1 小液流法现象观察记载表
[ 注意事项 ]
1. 所取材料在植株上的部位要一致，打取叶圆片要避开主脉和伤口。
2. 取材以及打取叶圆片的过程操作要迅速，以免失水。
3. 带结晶水的甲烯蓝不易溶于 CaCl 2 溶液，可在100 ℃下烘干成无水甲烯蓝粉末使用。
4. 毛吸管尖端弯成直角，以保证从中出来的液滴不受向下力的影响。
[ 思考题 ]
用小液流法测定植物组织水势时，为什么应强调所用试管、毛吸管应保持干燥，打取小圆片并投入试管中时动作应迅速，加入甲烯蓝不能太多？。