家兔高钾血症及抢救

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家兔高钾血症及抢救

家兔高钾血症及抢救

家兔高钾血症及抢救【实验目的】掌握家兔高钾血症模型的复制及抢救的方法。

观察高钾血症及抢救后的心电图变化。

分析高血钾引起心电异常的机制【实验原理】钾离子是人体内重要的电解质之一,是维持细胞内外酸碱平衡、渗透压平衡和神经肌肉电生理特性的重要离子。

正常血清钾离子浓度保持在3.5mmol/L~5.5mmol/L的范围内,当家离子浓度大于5.5mmol/L时称为高钾血症。

以下是高血钾对心肌功能的影响及其基本机制:心急兴奋性降低:当血钾浓度迅速轻度升高时,心肌细胞静息电位也轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也较小,即心肌兴奋性增高。

当血钾浓度迅速显著升高时,由于静息电位过小,心急兴奋性也将降低甚至消失。

高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性明显增高,故钾外流速加快,复极化(3期)加速。

因此,动作电位时间和有效不应期均缩短,但由于细胞外高钾抑制钙离子在复极化2期内流,故2期有所延长,心电图上显示T波狭窄高尖,Q-T间期缩短。

心肌传导性降低:高钾血症时,由于静息电位减小,故动作电位0期,即去极化的幅度变小,速度减慢,因而兴奋的扩布减慢,即传导性降低。

心房内、房室间或心室内均可发生传导延缓或阻滞。

心电图上显示P波压低、增宽或消失;P-R间期延长,ST段压低,QRS综合波增宽’S波加深。

心肌自律性降低:高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性增高,故在到达最大复极电位后,细胞内钾的外流比正常时加快而钠内流相对减慢,因而自动去极化减慢,自律性降低。

心肌收缩性降低:高钾血症抑制钙内流,使心肌收缩性降低。

综上,高钾血症时,心电图显示特点为:T波高尖,Q-T间期缩短,P-R间期延长,ST段压低,QRS波增宽,S波加深。

应用钙剂可拮抗高钾血症的心急毒性作用,期机制为:Ca2+一方面能促使阈电位上移,使Em-Et间距离增加,回复心肌的兴奋性‘另一方面使复极化2期Ca2+竞争性内流增加,提高心肌的收缩性。

本实验通过静脉注射氯化钙溶液可纠正家兔高钾血症,心电图恢复正常。

家兔高钾血症实验抢救原理(一)

家兔高钾血症实验抢救原理(一)

家兔高钾血症实验抢救原理
1. 了解家兔高钾血症的原因
- 高钾血症是指血液中钾离子浓度超过正常范围,可能导致心脏问题和其他严重并发症。

- 家兔高钾血症通常由于肾脏功能异常、饮食问题或其他疾病引起。

2. 探讨家兔高钾血症的症状
- 家兔高钾血症的症状可能包括虚弱、食欲不振、心律不齐等。

- 一旦发现这些症状,需要立即进行抢救和治疗。

3. 分析家兔高钾血症的实验抢救原理
- 实验抢救原理主要包括降低血钾浓度、恢复心脏功能和治疗潜在病因。

4. 详述降低血钾浓度的方法
- 注射胰岛素和葡萄糖,促进细胞内钾离子的转运和利用。

- 给予盐酸碳酸氢钠口服或静脉注射,通过尿液排出多余的钾离子。

- 使用离子交换树脂,将血液中的钾离子与树脂结合,再通过排尿排出。

5. 论述恢复心脏功能的手段
- 给予钙剂,增加心肌细胞对钙离子的感受性,促进心肌收缩。

- 使用β受体激动剂,增加心脏收缩力和心输出量。

6. 解释治疗潜在病因的措施
- 针对肾脏功能异常,需及时进行肾功能检查,并根据检查结果采取相应的治疗措施。

- 针对饮食问题,需要调整家兔的饮食结构,限制高钾食物的摄入。

7. 总结家兔高钾血症实验抢救原理
- 家兔高钾血症的实验抢救原理涉及降低血钾浓度、恢复心脏功能和治疗潜在病因。

- 在实际抢救过程中,需要根据具体情况综合应用不同的抢救措施,以提高抢救效果。

通过以上对家兔高钾血症实验抢救原理的详细解释,使读者对该主题有了更深入的了解。

抢救措施的多样性和综合性为读者提供了更全面的知识,有助于在实际抢救中更好地处理相关问题。

实验一家兔高钾血症及抢救

实验一家兔高钾血症及抢救

实验一家兔高钾血症及抢救实验一家兔高钾血症及抢救一、实验目的(1)掌握家兔高钾血症模型的复制方法。

(2)观察高钾血症叫家兔心电图变化的特征。

(3)自行设计和实施抢救治疗方案。

(4)了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性作用。

二、实验动物、药品与器材1.动物家兔,雌雄不拘,体重2.0~3.0 kg。

2.药品2.5 %戊巴比妥钠溶液,肝素生理盐水溶液(125U肝素/ml生理盐水),2 %、5 %、10 %氯化钾生理盐水溶液,10%氯化钙溶液,4 %碳酸氢钠溶液,葡萄糖胰岛素溶液(每4 ml的%葡萄糖加1U胰岛素)。

3.器材计算机实验系统,心电记录与转换设备,一般手术器械,静脉输液装置,5 ml、l0 ml、20ml注射器,小儿头皮针,抗凝试管。

三、观察指标精神神经状态(是否兴奋、躁动、昏迷、痉挛),呼吸频率、深度和节律,心电图变化,血浆钾浓度。

四、方法与步骤1.动物的麻醉与手术动物称重后,用2.5 %戊巴比妥钠,按1.0 ml/kg剂量给药,由耳缘静脉缓慢注入。

注射期间注意观察动物肌张力、呼吸频率和角膜反射的变化,防止麻醉过深。

麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。

颈部剪毛,沿甲状软骨下正中切开皮肤约 6 cm,分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉并插管。

颈动脉导管用于取血;颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,缓慢输入生理盐水(5~10滴/min),以保持管道通畅。

2.测血钾用抗凝试管通过颈总动脉取血l ml,用电解质测量仪测置动物实验前的血浆钾浓度。

3.心电描记将针型电极分别插入四肢踝部皮下。

导联线按右前肢(红)、左前肢(黄)、左后肢(蓝)、右后肢(黑)的顺序连接,通过计算机和心电记录系统描记实验前的心电图波形。

用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。

方法是将胸导联电极插入胸部皮下,将头部导联电极插入下颏部皮下,将心电转换盒上的导联旋钮旋到头胸导联位置。

这样记录的心电图高大清晰,高血钾的异常心电图波形出现早而清晰。

家兔高血钾症及抢救原理的感想

家兔高血钾症及抢救原理的感想

家兔高血钾症及抢救原理的感想
近期,我在家养了一只宠物兔子,可是最近发现它患有高血钾症,这让我非常担心和焦虑。

经过查询了解,高血钾症是一种严重的疾病,如果不及时治疗,可能会导致兔子死亡。

高血钾症是指血液中钾离子的浓度过高,会影响兔子的心跳和神经功能。

兔子的肾脏是维持血钾平衡的重要器官,如果肾脏功能不良或者饲养不当,就会出现高血钾症。

当我发现兔子出现了高血钾症的症状,我立刻带它去了兽医院。

兽医建议给兔子进行抢救治疗,包括以下几个方面:
1. 使用降钾剂:降钾剂可以帮助降低血液中钾离子的浓度,减轻对兔子身体的影响。

不过,使用降钾剂也需要谨慎,因为过度使用会对兔子的肾脏造成损害。

2. 给兔子补钙:高血钾症会导致兔子体内缺乏钙离子,因此需要给兔子补钙,以维持正常的身体功能。

3. 维持兔子的水电解质平衡:兔子在高血钾症期间容易出现脱水和电解质失衡等问题,需要及时补充水分和电解质,以保持兔子身体的正常运转。

通过这次抢救治疗,我深刻认识到了兔子高血钾症的危害,也学到了如何有效抢救和预防高血钾症的方法。

除了仔细观察兔子的饮食和生活环境,我还要定期带兔子去兽医院进行体检和检查,及时发现和处理兔子的健康问题。

只有做好这些预防和护理措施,才能让我的小兔子健康快乐的成长。

家兔高钾血症的药物救治

家兔高钾血症的药物救治

家兔高钾血症的药物救治一、实验原理血清钾浓度>5.5mmol/L时称为高钾血症。

高钾血症是临床上常见的电解质代谢失常导致的疾病。

其通常伴随肾功能衰竭,由少尿引起的尿钾排出减少所致。

高钾血症的主要临床表现为细胞外液钾离子对心肌骨骼肌毒性作用所引起的症状。

测定血清钾离子浓度和多种药物对高钾血症的影响有助于高钾血症的诊断。

高钾血症时,心电图可见家兔心律失常,并且可见家兔呼吸缓慢,瞳孔放大,眼球突出,紫绀等现象。

血中钾浓度升高对心脏有毒性作用,包括降低心肌兴奋性、自律性、传导性、收缩性,且钾浓度升高速度越快,毒性作用越大。

对治疗高钾血症最迅速的方法是采用拮抗钾对外周神经-肌肉影响的药物。

静脉推注速尿、葡萄糖酸钙溶液、葡萄糖+胰岛素和碳酸氢钠都对缓解高血钾症有一定的作用。

本实验通过研究葡萄糖+胰岛素溶液、10%葡萄酸钙溶液、4% NaHCO3溶液及速尿溶液注入模拟高钾血症家兔体内以后钾离子浓度的变化探究这几种药物对高钾血症的治疗效果。

二、实验器材及药品器材:兔手术台,哺乳动物手术器械,气管插管,动脉夹,动脉插管,有色丝线,纱布,离心管,干燥注射器,注射器,头皮针,微量移液器及吸头,心电针形电极,生物信息采集与处理系统,分光光度计,离心机,试管,记号笔,小拉钩。

药品:20%乌拉坦溶液,肝素生理盐水溶液,1%氯化钾溶液,10%葡萄糖酸钙溶液,4%碳酸氢钠,葡萄糖胰岛素溶液,速尿,检测血钾浓度试剂。

三、实验步骤1.麻醉:称重后,由耳缘静脉缓慢注入20%乌拉坦溶液,按4.0 ml/kg剂量给药。

防止麻醉过深,麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。

2.插气管插管:颈部剪毛,沿颈正中线做一5到7cm长的皮肤切口。

分离皮下组织及肌肉,暴露和分离气管。

在气管下方穿一较粗线备用,于甲状软骨尾侧2到3cm处做“⊥”形切口,插入气管,用备用线结扎固定。

3. 分离颈总动脉:在气管一侧辨别颈总动脉并分离,分离后在其下方穿两条线备用。

家兔高钾血症

家兔高钾血症

注意事项
1. 心电图电极插在皮下,不可插入肌肉。导线 避免纵横交错和接触液体。 2. 动脉插管保持畅通。 3. 采集好的血标本静置不要摇动,待凝固后离 心制备血清(试管一定要清洁、干燥、无油 脂)。 4. 先用生理盐水调好滴速再转换氯化钾滴注, 同时准备好推注葡萄糖酸钙的静脉通路。 5. 动物对氯化钾的耐受性有个体差异。
实验步骤
1.称重,麻醉,固定,颈动脉插管。 2.第一次采血 和描记心电图 (正常)。 3.高钾模型:静滴KCl,记心电图,作好标 记。P波低平、QRS波压低增宽、T波高尖, 停止滴注。第二次采血。 4.抢救:静滴KCl 2ml,心电图出现室颤或 室扑即停,10%葡萄糖酸钙推注,如抢救 成功(窦性心律)第三次采血液。 5.致死:开胸看心跳,推注KCl,观察停搏。 从心脏抽取第四个血标本。 6.测钾 配平-离心-取血清-稀释-送检
II导联电极 的插接方法
红→右上肢
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ
黄→左上肢
蓝→左下肢
黑→右下肢
实验内容
5.抢救:静滴KCl 2ml,观察心电图, 出现室颤或室扑即停,10%葡萄糖酸 钙推注(>1ml/kg),如抢救成功 (出现窦性心律)即采集第三次血液。 6.致死作用观察:开胸观察心跳,推注 KCl(10ml/kg),观察心脏停搏。从 心脏抽取第四个血标本。 7.测钾:血样本离心,取血清100ul, 加入10ml蒸馏水中,混匀送检。 读数= [K+](mmol/L)。
家兔高钾血症
实验目的
1. 2.
学习高钾血症模型的复制方法。 观察高钾血症对家兔心电图的影响。
3.
4.
了解高钾血症的抢救措施。
通过实验结果的分析、理解钾对心肌电
生理的影响。

家兔高钾血症的介绍医学

家兔高钾血症的介绍医学

家兔高钾血症的介绍医学家兔高钾血症,也被称为高钾血症,是一种常见的兔子健康问题。

高钾血症通常是由于饮食、肾脏功能异常或其他潜在的疾病所引起的。

本文将介绍家兔高钾血症的症状、诊断方法、治疗选项以及预防措施。

高钾血症是指兔子体内钾离子超过正常范围,即血液中的钾浓度过高。

这种情况可能会导致兔子身体的一系列功能异常,从而影响它们的健康状况和生活质量。

家兔高钾血症的症状包括食欲不振、脱水、体重减轻、乏力、尿量减少、尿液浓缩、呕吐、心律失常等。

这些症状可能会伴随着其他潜在的疾病,如肾脏疾病、消化系统问题等。

要确诊家兔高钾血症,兽医需要进行一系列的检查和测试。

首先,兽医会进行完整的身体检查,包括观察兔子的体重、食欲、精神状态等。

其次,血液和尿液测试也是非常重要的,可以通过这些测试来确定血液中钾的浓度和其他相关指标。

治疗家兔高钾血症的方法主要包括调整饮食、药物治疗和针对潜在疾病的治疗。

首先,兽医会建议改变兔子的饮食,减少摄入高钾食物,增加摄入低钾食物。

兔子的饮食应该包含足够的膳食纤维、草料和新鲜蔬菜,减少高钾食物(如香蕉、土豆等)的摄入。

其次,兽医可能会开具一些药物,如降钾药或利尿剂,以帮助兔子排除多余的钾。

最后,如果发现潜在的疾病引起了高钾血症,兽医会根据具体病情进行针对性的治疗。

预防家兔高钾血症的关键是合理的饮食管理和定期体检。

兔子的饲料应该是均衡的,包含足够的纤维和各种营养素。

定期检查兔子的体重、食欲、排泄情况以及血液和尿液指标也是非常重要的,可以及时发现潜在的健康问题,防止高钾血症的发生。

总之,家兔高钾血症是一种常见的疾病,可以通过兽医的检查和治疗来诊断和治疗。

合理的饮食管理、定期体检和及时治疗是预防和控制这种疾病的关键。

如果家兔出现了相关症状,家养者应该及时就医,请专业的兽医进行诊断和治疗。

通过合理的饮食和健康管理,帮助家兔恢复健康。

除了饮食管理和定期体检外,还有一些其他的预防措施可以帮助减少家兔高钾血症的风险。

功能学实验家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症
高钾血症是指体内钾离子浓度过高的病症,是造成心跳骤停等严重后果的原因之一。

目前已经有许多的离体实验和病理学研究表明高钾血症是由于肾脏排泄能力下降和细胞内外平衡失调所引起的。

因此,为了更好地研究高钾血症的原因和机制,可以采用功能学实验动物,其中家兔是一种常用的动物模型。

家兔作为高钾血症实验动物的优点之一在于其生理和代谢特征与人类相似,特别是其肾脏结构与人类相似,使得家兔可以更好地模拟人体的生理状态。

同时,家兔具有容易操控和较长的实验期等优点,可以更好地对高钾血症的发展和机制进行研究。

在家兔高钾血症的功能学实验中,可以采用电解质平衡实验、心电图监测、肌肉电学检测等多种实验方法,来评估家兔体内钾离子的平衡状况以及高钾血症对心脏和骨骼肌的影响。

其中,电解质平衡实验是评估家兔高钾血症最常用的方法之一。

该实验通过采集不同时期的尿液和血液样本,来测定家兔体内钾离子的浓度变化。

此外,还可以监测血液酸碱度、血液钠离子浓度等指标,以更全面地了解家兔高钾血症的病理变化。

心电图监测是在高钾血症实验过程中另一种重要的监测手段。

该实验可用来监测家兔心脏的收缩和舒张,以判断高钾血症对心脏的影响。

通过心电图监测,可以探究高钾血症引起的心率变化、心电图图像等多种影响因素,以更好地了解高钾血症对心脏的影响机理。

除了以上两种方法外,肌肉电学检测也是一个非常有用的功能学实验方法。

在肌肉电学检测中,可以检测家兔肌肉数量的变化、肌肉膨胀程度、细胞膜电位等,以确定家兔高钾血症的影响程度。

通过肌肉电学检测,可以进一步了解高钾血症对骨骼肌的影响程度以及高钾血症的发展趋势。

高血钾对家兔的毒性作用表现及其解救实验

高血钾对家兔的毒性作用表现及其解救实验

高血钾对家兔的毒性作用表现及其解救实验组别:9组长:白晓阳11202170578组员:杨小容11202170572黎艳11202170573陈欣欣11202170574林春玲11202170575李雪梅11202170576高血钾对家兔的毒性作用表现及其解救实验【前期汇总】高钾血症是临床上多种疾病所并发的一种常见病理生理过程,是最易危及生命的水、电解质紊乱性疾病之一,在临床上属于急症范畴,主要表现为对心肌、骨骼肌和酸碱平衡的影响。

当血清钾为5~7mmol/L时,心肌细胞静息电位轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也减小,心肌兴奋性增高,导致室颤的发生;当血清钾>7mmol/L时,使心肌细胞产生去极化阻滞,静息电位低于阈电位,兴奋性、传导性、自律性、收缩性均降低,导致心率减慢甚至心搏停止。

轻度高钾血症时,患者可有手足感觉异常、疼痛、肌肉轻度震颤等症状;严重高钾血症则可导致四肢软弱无力、腱反射消失甚至驰缓性麻痹。

同时,高钾血症可导致代谢性酸中毒,表现为尿液呈碱性。

[1]对于高钾血症,最简便、最有效、最快捷的检查方法就是心电图检查,因为此病在临床症状表现不明显时,心电图就早已出现了显著的改变。

不同程度的高血钾在心电图上有不同的特征表现,表现为P 波低平或消失、T波高尖和QRS波群增宽。

[2]所以,心电图检查是临床诊断高钾血症的最具重要价值的检查方法,且具有对假性高血钾的判别作用。

它比血清钾的测定更为准确、便捷、无创,且可重复监测。

在高钾血症的治疗中,葡萄糖酸钙被用作心脏保护剂。

虽然它并不能影响血液中钾离子的浓度,但它能够降低心肌细胞的兴奋度,从而降低发生心律失常的可能性。

【实验目的】学习用家兔建立高钾血症模型,使用MedLab生物信号采集处理系统监测家兔正常时、高血钾时以及给予解救药后的心电变化并采集心电图,观察高钾血症时家兔的病理生理学表现。

【实验材料】1、实验动物:家兔一只2、实验器材:兔手术台,手术器械1套,心电针形电极,MedLab 生物信息采集处理系统。

家兔高钾血症及其急救

家兔高钾血症及其急救

家兔高钾血症及其急救一、什么是高钾血症高血钾症主要是由于含钾药物或库存血输入过多、肾排钾减少、洋地黄中毒以及溶血、休克、烧伤等原因导致细胞内的钾移出,从而引起体内钾元素升高或者钾元素的排出受到限制,最终致病。

二、典型症状1、神经肌肉症状血钾轻度升高,仅有四肢乏力、手足感觉异常、肌肉酸痛。

当血清钾>7.0mmol/L时,可出现松弛性瘫痪,先累及躯干,后波及四肢,最后累及呼吸肌,出现呼吸困难。

2、心血管症状血钾升高主要使心肌的应激性下降,当血钾>7.0mmol/L时,可出现心率缓慢、传导阻滞等心律失常。

严重时出现心室颤动、心脏骤停,其症状常与肾功能衰竭时存在。

3、对酸碱平衡的影响由于高钾血症引起乙酰胆碱释放增加,故可引起恶心呕吐和腹痛。

由于高钾对肌肉的毒性作用可引起四肢瘫痪和呼吸停止。

所有高钾血症均有不同程度的氮质血症和代谢性酸中毒。

后者可加重高钾血症。

首先要控制引起高钾血症的原因及治疗原发病。

一旦发现高钾血症时,应立即停止补钾,积极采取保护心脏的急救措施对抗钾的毒性作用;促使钾向细胞内转移;排除体内过多的钾,以降低血清钾浓度。

四、急救措施1、静注钙剂(10%葡萄糖酸钙10~20ml),可重复使用,钙与钾有对抗作用,能缓解钾对心肌的毒性作用。

或30~40ml加入液体滴注。

静脉注射5%碳酸氢钠溶液60~100ml,或11.2%乳酸钠溶液40~60ml,之后可再注射碳酸氢钠100~200ml或乳酸钠溶液60~100ml,这种高渗碱性钠盐可扩充血容量,以稀释血清钾浓度,使钾离子移入细胞内,纠正酸中毒以降低血清钾浓度,还有注入的钠,对钾也有对抗作用。

2、用25%~50%葡萄糖100~200ml加胰岛素(4g糖加1U正规胰岛素)作静脉滴注,当葡萄糖合成糖原时,将钾转入细胞内。

3、注射阿托品,对心脏传导阻滞有一定作用。

e.透析疗法:有腹膜透析和血液透析,肾功能不全,经上述治疗后,血清钾仍不下降时可采用。

功能学实验家兔高钾血症word精品

功能学实验家兔高钾血症word精品

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。

二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为 2.00kg。

三.实验过程1•取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。

2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。

3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。

分离3-4cm 长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。

颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。

4. 于未滴注KCI之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。

5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。

6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCI溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。

待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。

7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。

待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。

8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。

从心室第四次抽取血液。

9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min ,取血清100ul ,混合蒸馏水9.9 ml 稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。

四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。

高钾血症

高钾血症

实验报告2010年10月29日姓名侯钦国年级200 班别影像学组别4组同组者辛超龙龙王祥龙张忠伟丁存柱科目病生实验题目家兔高钾血症及抢救指导老师一、实验目的通过复制家兔高钾血症的病理模型,观察高钾血症对心脏的毒性作用,着重了解和掌握高钾血症时对心电图改变的特征以及抢救措施。

二、实验材料家兔;30%乌拉坦溶液,4%氯化钾溶液;注射器,静脉输液装置,小儿头皮针,心电图机,生物信号采集系统,改装针形电极。

三、实验步骤1.动物称重后用30%乌拉坦溶液按3.3ml/kg体重进行耳缘静脉注射麻醉,背位固定。

2.将改装的针型电极分别插入下颌(白)、新建部皮肤(红)、右下肢(黑)。

3.打开BL-420处理系统进入系统主界面,在系统的1通道上连接生物电引导电极。

按照接线的颜色分别将家兔接入系统。

调整系统开始运作。

4.观察并记录没有处理过的正常家兔的心电图。

用小儿头皮针插入耳缘静脉,用胶布将头皮针固定在耳廓上。

向耳缘静脉内缓慢注射4%氯化钾溶液,每分钟15~20滴,持续滴注并观察电脑屏幕上的心电图的变化,根据变化情况来记录心电图的变化。

5.见高钾血症的现象明显后或者心电图出现ST段不明显的时候停止注射氯化钾。

观察心电图变化,直至其恢复正常。

6.待心电图恢复正常以后,继续滴注氯化钾溶液,直至出现心颤,心电活动停止为结束。

四、实验结果图1从图1中可以看出,这是正常的心电图,包括P波、Q波、R波、S波、T波、U波。

图2从图2看出T波变高变尖,P波变矮,QRS波群变宽图3图4图3和图4中明显ST段逐渐不明显,最终消失,同时P波消失。

形成典型的“M”形三相波。

而且可以看出心率变慢。

图5图5喂恢复后注射氯化钾之后出现宽大的室波,为临终波。

图6图6表示家兔死亡。

五、实验结果讨论实验记录的心电图可以看出高钾血症对心脏的影响非常明显。

1.对于心肌细胞生理特性的影响(1)心肌细胞兴奋性先生高后降低(2)传导性降低(3).自律性降低(3).收缩性减弱(4).T波高尖,高钾血症时,膜对K+的通透性升高,动作电位中对应于心电图中T波的3相钾外流加速,使T波突出,呈现高尖状,此现象出现在高钾血症的早期。

高钾血症及抢救(精)

高钾血症及抢救(精)

【实验步骤】
1. 家兔称重,耳缘静脉缓慢推注 20% 乌拉坦(3~5 ml/kg 体
重)全麻。一侧耳缘静脉插入静脉套管。 2. 仰卧固定于兔台上,接导联线:先连地线,白色探针插入颈 部皮下(颌下),红色探针插入心尖搏动处皮下。进入电脑程 序。 3. 描记一段正常心电图,缓慢从耳缘静脉套针推注5%KCL (2ml/次,1ml/分钟),密切观察ECG变化。一旦出现高钾 ECG表现,即停滴注。不敏感可用10%KCL。 4.从静脉套管针推注10%葡萄糖酸钙溶液,边描记心电图边观 察。ECG恢复正常后可再重复步骤3。 5.推注10%KCL造成室颤,快速打开胸腔观察心室纤颤及心脏 停跳情况。
1期:复极 快速复极初期 K+外流
2期:平台期 K+外流与Ca2+内流相平衡。 3期:快速复极末期 Ca2+通道失活,外向K+ 流随时间递增。(正反馈:膜内电位越负, K+外流越快,直至复极完成。) 4期:膜电位基本稳定于静息电位水平。自律 细胞自动除极产生新的动作电位。
2.ECG与动作电位的对应
+30 0 -30 -60
1
2
0
正常 高血钾
3 4
-90
5.高钾血症时T波高尖的原因: 高钾时膜对K+通透性增加 6.室颤等心律失常的原因: 传导性↓ 传导阻滞 诱发异位起搏点 出现,异位心律,同时有效不应期↓ 3相K+外流加速
兴奋折返
血钾进一步
室颤
严重阻滞 心跳停止
7.高钾血症时的抢救方法: 1)Ca2+: a.复极2期Ca2+内流 细胞内Ca2+ 心肌收缩性 b. Ca2+ 抑制Na+内流 阈电位上移 静息电位与阈电位之间距离 兴奋性有 所恢复 2)Na+:细胞外Na+ 心肌细胞内外电化 学梯度 去极化时钠内流加快,动作 电位0期上升速度可加快,幅度增大 改善心肌传导性

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。

二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。

三.实验过程1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。

2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。

3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。

分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。

颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。

4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。

5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。

6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。

待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。

7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。

待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。

8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。

从心室第四次抽取血液。

9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100 ul,混合蒸馏水9.9 ml稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。

四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。

二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。

三.实验过程1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。

2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。

3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。

分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。

颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。

4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。

5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。

6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。

待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。

7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。

待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。

8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。

从心室第四次抽取血液。

9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100ul,混合蒸馏水9.9 ml 稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。

四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。

实验一家兔高钾血症及抢救

实验一家兔高钾血症及抢救

实验一家兔高钾血症及抢救一、实验目的(1)掌握家兔高钾血症模型的复制方法。

(2)观察高钾血症叫家兔心电图变化的特征。

(3)自行设计和实施抢救治疗方案。

(4)了解血钾升高后,对心肌细胞的毒性作用。

二、实验动物、药品与器材1.动物家兔,雌雄不拘,体重2.0~3.0 kg。

2.药品 2.5 %戊巴比妥钠溶液,肝素生理盐水溶液(125U肝素/ml生理盐水),2 %、5 %、10 %氯化钾生理盐水溶液,10%氯化钙溶液,4 %碳酸氢钠溶液,葡萄糖胰岛素溶液(每4 ml的%葡萄糖加1U胰岛素)。

3.器材计算机实验系统,心电记录与转换设备,一般手术器械,静脉输液装置,5 ml、l0 ml、20ml注射器,小儿头皮针,抗凝试管。

三、观察指标精神神经状态(是否兴奋、躁动、昏迷、痉挛),呼吸频率、深度和节律,心电图变化,血浆钾浓度。

四、方法与步骤1.动物的麻醉与手术动物称重后,用2.5 %戊巴比妥钠,按1.0 ml/kg剂量给药,由耳缘静脉缓慢注入。

注射期间注意观察动物肌张力、呼吸频率和角膜反射的变化,防止麻醉过深。

麻醉后动物仰卧固定在家兔手术台上。

颈部剪毛,沿甲状软骨下正中切开皮肤约 6 cm,分离左侧颈总动脉和右侧颈外静脉并插管。

颈动脉导管用于取血;颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,缓慢输入生理盐水(5~10滴/min),以保持管道通畅。

2.测血钾用抗凝试管通过颈总动脉取血l ml,用电解质测量仪测置动物实验前的血浆钾浓度。

3.心电描记将针型电极分别插入四肢踝部皮下。

导联线按右前肢(红)、左前肢(黄)、左后肢(蓝)、右后肢(黑)的顺序连接,通过计算机和心电记录系统描记实验前的心电图波形。

用头胸导联可描记出比普通导联更为高大清晰的心电图波形。

方法是将胸导联电极插入胸部皮下,将头部导联电极插入下颏部皮下,将心电转换盒上的导联旋钮旋到头胸导联位置。

这样记录的心电图高大清晰,高血钾的异常心电图波形出现早而清晰。

4.高钾血症的复制通过颈外静脉和输液装置,缓慢滴注2%的氰化钾生理盐水溶液,同时密切观察和记录心电图变化。

功能学实验家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。

二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为kg。

三.实验过程1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。

2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。

3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。

分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。

颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。

4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。

5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。

6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。

待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。

7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。

待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。

8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。

从心室第四次抽取血液。

9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100 ul,混合蒸馏水 ml 稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。

四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。

二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。

三.实验过程1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。

2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。

3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。

分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。

颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。

4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。

5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。

6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。

待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。

7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。

待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。

8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。

从心室第四次抽取血液。

9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100 ul,混合蒸馏水9.9 ml稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。

四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验 家兔高钾血症

功能学实验家兔高钾血症实验报告一.实验目的学习和掌握家兔高钾血症模型的复制方法,观察和记录家兔在高钾血症时的心电图变化,了解和实践高钾血症的抢救措施,最后通过实验加深高钾血症对心肌电生理的影响的理解。

二.实验动物未知种属家兔(实验室提供)一只,体重为2.00 kg。

三.实验过程1. 取一只家兔,称重并根据体重注射适量乌拉坦进行麻醉(家兔体重2.00 kg,故应注射20ml 20%的乌拉坦进行麻醉),然后固定四肢和头部。

2. 气管插管:剪除颈部毛发,依次切开皮肤和组织暴露气管,于恰当位置剪出T形切口,插入气管插管并固定。

3. 颈动脉插管:于气管旁暴露并分离颈动脉,结扎颈动脉头端,动脉夹夹住近心端。

分离3-4cm长度的颈动脉,穿过一根线用于颈动脉插管固定。

颈动脉下垫着镊子,剪开管径一半,插入颈动脉插管,固定,后接充满生理盐水的注射器。

4. 于未滴注KCl之前从颈动脉第一次采血2 ml,静置。

5. 将心电图电极依次插入四肢关节处皮下,连接生物信号处理系统,在MFLab上记录心电图波形。

6. 用生理盐水将蠕动泵滴速调节至1.2 ml/min,用4% KCl溶液从耳缘静脉滴注,观察并记录心电图变化。

待出现P波低平,QRS波压低增宽,T波高尖现象时即停止滴注,第二次采集血液。

7. 继续以相同滴速滴注KCl溶液,观察并记录心电图变化。

待出现室扑时立即停止滴注,从耳缘静脉快速推注10%葡萄糖酸钙溶液10-20 ml,观察心电图并在滴注后第三次采集血液。

8. 然后开胸观察心跳,于颈动脉推注20 ml KCl溶液,观察心脏停搏状态。

从心室第四次抽取血液。

9. 待血液样本凝固后以3000 rpm的转速离心10 min,取血清100 ul,混合蒸馏水9.9 ml稀释,送火焰光度计测量血清钾浓度。

四.实验器材及注意事项实验器材:肢体导联,生物信号处理系统,火焰光度计,10ml刻度离心管,塑料试管,哺乳动物手术器械一套,塑料三通阀两个,Y形气管插管,动脉夹,20ml、10ml、5ml注射器,头皮针三支,输液装置一套,心电针型电极注意事项:1. 耳缘静脉注射乌拉坦麻醉及建立耳缘静脉通路时,在家兔皮肤处涂抹适量局麻药,稍后进行头皮针插入动作,防止家兔在针插入时因疼痛而产生剧烈活动使头皮针插入受阻。

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家兔高钾血症及抢救
【实验目的】
掌握家兔高钾血症模型的复制及抢救的方法。

观察高钾血症及抢救后的心电图变化。

分析高血钾引起心电异常的机制
【实验原理】
钾离子是人体内重要的电解质之一,是维持细胞内外酸碱平衡、渗透压平衡和神经肌肉电生理特性的重要离子。

正常血清钾离子浓度保持在3.5mmol/L~5.5mmol/L的范围内,当家离子浓度大于5.5mmol/L时称为高钾血症。

以下是高血钾对心肌功能的影响及其基本机制:
心急兴奋性降低:当血钾浓度迅速轻度升高时,心肌细胞静息电位也轻度减小,引起兴奋所需的阈刺激也较小,即心肌兴奋性增高。

当血钾浓度迅速显著升高时,由于静息电位过小,心急兴奋性也将降低甚至消失。

高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性明显增高,故钾外流速加快,复极化(3期)加速。

因此,动作电位时间和有效不应期均缩短,但由于细胞外高钾抑制钙离子在复极化2期内流,故2期有所延长,心电图上显示T波狭窄高尖,Q-T间期缩短。

心肌传导性降低:高钾血症时,由于静息电位减小,故动作电位0期,即去极化的幅度变小,速度减慢,因而兴奋的扩布减慢,即传导性降低。

心房内、房室间或心室内均可发生传导延缓或阻滞。

心电图上显示P波压低、增宽或消失;P-R间期延长,ST段压低,QRS综合波增宽’S波加深。

心肌自律性降低:高钾血症时心肌细胞膜的钾通透性增高,故在到达最大复极电位后,细胞内钾的外流比正常时加快而钠内流相对减慢,因而自动去极化减慢,自律性降低。

心肌收缩性降低:高钾血症抑制钙内流,使心肌收缩性降低。

综上,高钾血症时,心电图显示特点为:T波高尖,Q-T间期缩短,P-R间期延长,ST段压低,QRS波增宽,S波加深。

应用钙剂可拮抗高钾血症的心急毒性作用,期机制为:Ca2+一方面能促使阈电位上移,使Em-Et间距离增加,回复心肌的兴奋性‘另一方面使复极化2期Ca2+竞争性内流增加,提高心肌的收缩性。

本实验通过静脉注射氯化钙溶液可纠正家兔高钾血症,心电图恢复正常。

【实验材料】
家兔1只,兔手术台,婴儿秤,手术器械,BL-420生物信号采集系统,心电记录电极,5ml、10ml注射器各一个、静脉输液装置一套,小儿头皮针,静脉导管、气管插管各1套,3%戊巴比妥钠溶液,4%氯化钾溶液,10%氯化钙溶液。

【实验步骤】
1.麻醉
取家兔称重,耳缘静脉注射3%戊巴比妥钠1.0ml/kg麻醉,仰卧位固定于手术台,分离气管和右侧颈外静脉并进行插管,颈外静脉导管用三通管连接静脉输液装置,以备滴注氯化钾溶液用。

2.将针形电极分别插图家兔四至皮下,并连接BL=420生物机能实验系统,红色连右前肢,黑色连右后,绿色连左后,描述正常心电图。

3.耳缘静脉插入头皮针固定以备抢救注射氯化钙用。

4.造成高钾及抢救
待心电曲线平稳后,向静脉内缓慢滴注4%氯化钾溶液,以每分钟15-20滴为宜,注意观察心电曲线的变化,20--30min后如仍没有改变,可加快滴注速度。

如心电图出现P波低平、增宽,QRS波群低压变宽,高尖T波等改变,立即停止滴注,立即用10%氯化钙溶液按2ml/kg体重通过头皮针快速注入。

5.待心电曲线基本恢复正常后,继续滴注氯化钾溶液使家兔心肌纤颤致死,观察发生心肌纤颤时的心电曲线。

【实验结果预期】
静脉滴注氯化钾溶液可导致家兔急性高钾血症,血钾增高使心急兴奋性,传导性,收缩性,自律性降低,心电图出现P波低平,增宽,QRS波群低压变宽,高尖T波等异常。

通过注射氯化钙能纠正高血钾,心电曲线能基本恢复正常。

最后注射致死量氯化钾,高钾血症加剧,导致家兔心肌纤颤而死。

【注意事项】
1.麻醉要适度,过深抑制呼吸,过浅时家兔疼痛则易引起肌颤,干扰心电图波形。

2.严格控制好氯化钾滴注的速度,以防过量导致家兔过早死亡。

3.滴注氯化钾时要时刻关注心电曲线,出现特征性异常即停止输液,快速基于氯化钙抢救,如果10S内无法输入抢救药物,则久之效果欠佳。

参考文献
[1]朱健平生理科学实验教程,第一版,北京,科学出版社2008年5月
[2]姚泰麻醉生理学第六版人民卫生出版社2006年5月P75-88。

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