各细胞培养板转染配方
细胞转染实验实验报告
细胞转染是基因工程、分子生物学研究等领域中常用的一种技术，用于将外源基因或RNA导入细胞内，研究基因表达、基因调控等功能。
本实验旨在利用脂质体介导的方法将目的基因转染入HEK293细胞，并观察转染效率及目的基因的表达情况。
二、实验材料1. 细胞：HEK293细胞2. 载体：pEGFP-C1（绿色荧光蛋白基因）3. 试剂：胎牛血清、DMEM培养基、转染试剂（如Lipofectamine 3000）、Trizol 试剂、PCR试剂盒、DNA marker等三、实验方法1. 细胞培养：将HEK293细胞接种于6孔板，培养于含10%胎牛血清的DMEM培养基中，置于37℃、5%CO2的培养箱中培养至对数生长期。
2. 转染：按照Lipofectamine 3000说明书进行操作，将pEGFP-C1质粒与转染试剂混合，室温孵育5分钟，然后加入细胞培养液中，将细胞培养板放入培养箱中继续培养。
3. 检测转染效率：转染后24小时，观察细胞绿色荧光表达情况，以判断转染效率。
4. RT-PCR检测目的基因表达：收集转染后的细胞，使用Trizol试剂提取细胞总RNA，进行RT-PCR扩增目的基因，以判断目的基因的表达情况。
5. Western blot检测目的蛋白表达：收集转染后的细胞，提取细胞总蛋白，进行SDS-PAGE电泳，转膜，加入一抗和二抗，进行Western blot检测目的蛋白表达。
四、实验结果1. 转染效率：转染后24小时，显微镜下观察细胞绿色荧光表达情况，结果显示大部分细胞呈现出绿色荧光，说明转染效率较高。
2. RT-PCR结果：RT-PCR扩增目的基因，结果显示目的基因扩增条带清晰，说明目的基因已成功转染入细胞。
3. Western blot结果：Western blot检测目的蛋白表达，结果显示目的蛋白条带清晰，说明目的蛋白已成功表达。
1. 脂质体介导的转染方法具有操作简单、转染效率高、安全性好等优点，适用于多种细胞类型的转染。
《细胞实验》17 质粒转染实验步骤
质粒转染大肠杆菌材料试剂：胰化蛋白胨，酵母提取物，琼脂，NaCl，NaOH（调pH），氨苄青霉素，卡那霉素，质粒提取试剂盒仪器：高压灭菌锅，42℃恒温水浴锅，，恒温摇床（37℃,225rpm），无菌培养板，消毒1.5ml 离心管，消毒枪头，无菌操作台实验步骤：1.LB培养基的配制：在950 ml去离子水中加入: 胰化蛋白胨10g 酵母提取物5g NaCl 10g 摇动容器直至溶质溶解.用5mol/LNaOH调pH至7.0.用去离子水定容至1L.在15psi高压下蒸汽灭菌20min.固态培养基LB固体培养基及倒板：（1）.配制：100mlLB培养基加入1.5g琼脂粉（2）.抗生素的加入：高压灭菌后，将融化的LB固体培养基置与55℃的水浴中，待培养基温度降到55℃时（手可触摸）加入氨苄抗生素（终浓度为50μg/ml），以免温度过高导致抗生素失效，并充分摇匀。
（3）.倒板：一般10ml倒1个板子。
培养基倒入培养皿后，打开盖子，在紫外下照10-15分钟。
（4）.保存：用封口胶封边，并倒置放于4℃保存，一个月内使用。
2.从-70℃冰箱中取200μl感受态细胞悬液，室温下使其解冻，解冻后立即置冰上。
3.加入质粒DNA溶液（含量不超过50ng，体积不超过10μl），轻轻摇匀，冰上放置30分钟后。
4.42℃水浴中热击45s/90s，热击后迅速置于冰上冷却3-5分钟。
5.向管中加入1ml LB液体培养基（不含Amp），混匀后37℃振荡培养1小时，使细菌恢复正常生长状态，并表达质粒编码的抗生素抗性基因（Ampr ）。
6.将上述菌液摇匀后取100μl 涂布于含Amp的筛选平板上，正面向上放置半小时，待菌液完全被培养基吸收后倒置培养皿，37℃培养16-24小时。
同时做两个对照：对照组1：以同体积的无菌双蒸水代替DNA溶液，其它操作与上面相同。
此组正常情况下在含抗生素的LB平板上应没有菌落出现。
对照组2：以同体积的无菌双蒸水代替DNA溶液，但涂板时只取5μl 菌液涂布于不含抗生素的LB平板上，此组正常情况下应产生大量菌落。
细胞转染步骤
细胞转染及其筛选1.传代：细胞于10cm盘消化后接种于6cm盘向6cm盘中加入3ml培养基,“米”字形摇晃。
当细胞生长到50％-70%时，根据细胞的生长速度可进行转染2.配置转染体系:(6cm盘)2。
4ug基因载体质粒；9ul转染试剂；200ul无血清培养基.混匀后室温静置10—15min孵育。
3.将6cm盘中的旧培养基弃去，换新的培养基3ml。
4.将配置好的转染体系加入到6cm盘中，混匀6-18h内换液。
5.12小时，换液后进行显微镜拍照观察。
6.再过6h加入G418，进行筛选(始终在6cm盘中进行）,使用G418浓度：600µg/mlG418的配置：取1gG418溶于1mlHEPES液中，加蒸馏水至10ml，过滤消毒4℃保存。
7.3-5天换液一次（换液不用PBS冲洗），此时仍要加G418，浓度不变,只到细胞呈单个细胞那种，当细胞死的过多时,可考虑药物浓度减半.筛选出稳定表达的cell。
8.挑克隆：1制备细胞悬液，细胞计数，用培养基稀释细胞到1个/10ul,在96孔板中加入培养基150ul/孔,在加入细胞悬液10ul/孔,待其逐渐增多后转入24孔板、6孔板、6cm 盘增殖。
2.伴随着细胞的生长,可能最后会变成细胞簇,故可以用黄枪头把细胞菌落挑出，放入24孔板里面。
9.单克隆鉴定:提取细胞RNA后，进行RT-PCR检测其表达量。
10.先做RT-PCR筛选一部分,在做western继续筛选一部分.所需物品:1。
转染试剂（Attractene Transfection Regent）；2.96孔板；3。
24孔板；4.6孔板；5.6cm盘；6。
G418 7. 1mlHEPES液。
各种转染试剂的中文转染方法
各种转染试剂的中文转染方法FuGENE6（Roche）转染步骤：转染前一天将细胞分至培养板，转染当天细胞应50-80％融合。
将细胞以1-3×105/2 ml接种于6孔板后孵育过夜将达到如此密度。
将FuGENE6 Reagent在室温孵育10-15分钟。
使用之前将FuGENE6颠倒混匀一下。
1. 在PCR管中加入不含血清和双抗的营养液以稀释FuGENE6，直至总体积到100 ul。
2. 将3-6 ul FuGENE6 Reagent直接加入营养液，轻弹管壁混合。
3. 加入1-2 ug的DNA溶液（0.02－2.0 ug/ul），轻弹管壁混合。
4. 室温孵育20分钟。
5. 将6孔板中的旧营养液吸出，加入约1 ml不含血清和双抗的营养液洗涤一次，再加入2 ml不含血清和双抗的营养液。
6. 将转染复合物加入细胞，混匀使之均匀分布。
7. 3-8小时后，加入血清或换成含血清的营养液。
Lipofectamine 2000(Invitrogen)转染试剂转染步骤（6孔板）：1. 转染前一天，胰酶消化细胞并计数，细胞铺板，使其在转染日密度为90-95％。
细胞铺板在2 ml含血清，不含抗生素的正常生长的培养基中。
2. 对于每孔细胞，使用250 ul无血清培养基（如OPTI-MEM I培养基）稀释4.0 ugDNA，轻轻混匀。
3. 使用前将Lipofectamine 2000转染试剂轻轻混匀，用250 ul无血清培养基（如OPTI-MEM I培养基）稀释10 ul Lipofectamine 2000转染试剂，轻轻混匀。
Lipofectamine 2000稀释后，在5分钟内同稀释的DNA混合（<30分钟）。
NOTE：若使用DMEM培养基，则需在5分钟内同稀释的DNA混合。
4. 混合稀释的DNA（第二步）和稀释的Lipofectamine 2000（第三步）。
室温放置20分钟。
5. （optional）将6孔板中的旧营养液吸出，用无血清培养基清洗两次。
各种转染试剂的中文转染方法
各种转染试剂的中文转染方法FuGENE6（Roche）转染步骤：转染前一天将细胞分至培养板，转染当天细胞应50-80％融合。
将细胞以1-3×105/2 ml接种于6孔板后孵育过夜将达到如此密度。
将FuGENE6 Reagent在室温孵育10-15分钟。
使用之前将FuGENE6颠倒混匀一下。
1. 在PCR管中加入不含血清和双抗的营养液以稀释FuGENE6，直至总体积到100 ul。
2. 将3-6 ul FuGENE6 Reagent直接加入营养液，轻弹管壁混合。
3. 加入1-2 ug的DNA溶液（0.02－2.0 ug/ul），轻弹管壁混合。
4. 室温孵育20分钟。
5. 将6孔板中的旧营养液吸出，加入约1 ml不含血清和双抗的营养液洗涤一次，再加入2 ml不含血清和双抗的营养液。
6. 将转染复合物加入细胞，混匀使之均匀分布。
7. 3-8小时后，加入血清或换成含血清的营养液。
Lipofectamine 2000(Invitrogen)转染试剂转染步骤（6孔板）：1. 转染前一天，胰酶消化细胞并计数，细胞铺板，使其在转染日密度为90-95％。
细胞铺板在2 ml含血清，不含抗生素的正常生长的培养基中。
2. 对于每孔细胞，使用250 ul无血清培养基（如OPTI-MEM I培养基）稀释4.0 ugDNA，轻轻混匀。
3. 使用前将Lipofectamine 2000转染试剂轻轻混匀，用250 ul无血清培养基（如OPTI-MEM I培养基）稀释10 ul Lipofectamine 2000转染试剂，轻轻混匀。
Lipofectamine 2000稀释后，在5分钟内同稀释的DNA混合（<30分钟）。
NOTE：若使用DMEM培养基，则需在5分钟内同稀释的DNA混合。
4. 混合稀释的DNA（第二步）和稀释的Lipofectamine 2000（第三步）。
室温放置20分钟。
5. （optional）将6孔板中的旧营养液吸出，用无血清培养基清洗两次。
各种转染试剂中文说明
FuGENE6（Roche）转染步骤:转染前一天将细胞分至培养板，转染当天细胞应50-80％融合。
将细胞以1-3×105/2ml接种于6孔板后孵育过夜将达到如此密度。
将FuGENE6 Reagent在室温孵育10-15分钟。
使用之前将FuGENE6颠倒混匀一下。
1.在PCR管中加入不含血清和双抗的营养液以稀释FuGENE6，直至总体积到100ul。
2.将3-6ul FuGENE6 Reagent直接加入营养液，轻弹管壁混合。
3.加入1-2ug的DNA溶液（0.02－2.0ug/ul），轻弹管壁混合。
4.室温孵育20分钟。
5.将6孔板中的旧营养液吸出，加入约1ml不含血清和双抗的营养液洗涤一次，再加入2ml不含血清和双抗的营养液。
6.将转染复合物加入细胞，混匀使之均匀分布。
7.3-8小时后，加入血清或换成含血清的营养液。
Lipofectamine 2000(Invitrogen)转染试剂转染步骤（6孔板）：1.转染前一天，胰酶消化细胞并计数，细胞铺板，使其在转染日密度为90-95％。
细胞铺板在2ml含血清，不含抗生素的正常生长的培养基中。
2.对于每孔细胞，使用250ul无血清培养基（如OPTI-MEM I培养基）稀释4.0ugDNA，轻轻混匀。
3.使用前将Lipofectamine 2000转染试剂轻轻混匀，用250ul无血清培养基（如OPTI-MEM I培养基）稀释10ul Lipofectamine 2000转染试剂，轻轻混匀。
Lipofectamine 2000稀释后，在5分钟内同稀释的DNA混合（<30分钟）。
NOTE：若使用DMEM培养基，则需在5分钟内同稀释的DNA混合。
4.混合稀释的DNA（第二步）和稀释的Lipofectamine 2000（第三步）。
室温放置20分钟。
5.（optional）将6孔板中的旧营养液吸出，用无血清培养基清洗两次。
加入2ml无血清配养基。
转染实验方法 (全)
转染实验方案1.LB培养基的配制：500ml（5皿+2锥形瓶）准备：500ml玻璃瓶1个，250ml玻璃瓶2个，500ml容量瓶一个，平皿5个称取：酵母浸提液 5.0g 蛋白胨10.0g 氯化钠10.0g实验操作：混合后加去离子水（或注射用水）水400ml，待充分溶解后加水定容至500ml，取100ml 做固体培养基用装入A瓶，余下装入500ml B瓶中（400ml/瓶）称取1.5g琼脂粉加入A瓶中另取一瓶（C瓶）接100ml水（稀释氨苄西林用）将以上3瓶高压灭菌：121°C , 30min取氨苄西林一支：规格：1g/支加水于安瓶中溶解后，移入C瓶中，浓度：10mg/ml按照50 μg/ml氨苄西林的浓度加到A B C三瓶中A瓶：0.5ml（即为LB固体培养基）——松弛型100 μg/ml,严紧型50 μg/mlB瓶：2ml（即为LB液体培养基）将A瓶按20ml/平皿，分别移到5个平皿中，待冷却后即为固体培养基。
用膜封口放入4℃保存。
2.感受态转化与培养（TOP10）准备：37℃摇床，37℃烘箱，10cm培养皿（LB琼脂凝胶+氨苄=50 ml LB+0.75 g琼脂+50μl氨苄），冰盒，42℃水浴,无菌牙签，氨苄溶液40~60 μg/ml实验前：水浴调至42℃，SOC培养液放至室温，LB加氨苄培养皿于37度烘箱中加热半小时实验操作：1)将质粒短暂离心后迅速放入冰浴中2)冰上解冻TOP103)吸取1到10μl质粒加入TOP10中，轻轻敲打混匀（切记不可用移液枪混匀）。
剩余的质粒可储存于-20℃中4)冰上孵育TOP10离心管30min。
5)42℃水浴30s（精确），不要晃动离心管6)迅速转入冰浴2-3min，加入250μl预热的soc溶液，保证过程无菌7)37℃摇床水平225 rpm摇1h8)吸取200μl用三角耙铺板（最好同时做不同加入量的2个皿，LA培养皿预热），剩余溶液储存于4 ℃9)正置20min，倒置37 ℃培养过夜10)第二天取出平皿，观察菌落，选择较大菌落，用牙签挑取菌落放入对应的试管中，加入15 μl氨苄西林（C瓶母液），最后加3ml LB液体培养基，试管放架子上37 ℃摇4-6 h（预培养）11)按照培养基：菌液=200ml：2ml进行转菌，剩余菌液放入EP管中-20℃保存（复苏加时100μl菌液预培养）。
细胞铺板
细胞铺板：
Day1，细胞长至85-95%时传代，24孔板每孔铺1.5X105细胞，加入900ul培养基；
Day2，24h之内做质粒转染，以上细胞量大约细胞密度为35%-45%；
24孔板细胞转染：
1. 转染前准备工作：1XPBS、无血清无PS的DMEM预热；操作台面、移液器紫外灭菌15min；
2. 转染前一小时：吸去原来的培养基，用1XPBS洗一次，然后换成900ul 无血清无PS的DMEM培养基，放入培养箱中；
3. 配制DNA稀释液：准备1.5ml EP管，加入50ul Opti-MEM，再加入1ug 大提质粒，弹EP管15-20下混匀；
4. 配制PEI稀释液：准备1.5ml EP管，加入50ul Opti-MEM，再加入X ul PEI（1mg/mL），弹EP管25-35下混匀；室温孵育5min；
5. 将DNA稀释液加入PEI稀释液中，并用枪头吹打15-25下混匀；再弹15-25下EP管混匀；
6. 室温孵育20-25min；
7. 将混合液逐滴加入孔中，均匀滴在孔面的各处，摇晃孔板扩散混匀；
8. 8h后将培养基换成DMEM+10%FBS+1%PS培养基；
9. 24h后观察转染效率。
PEI转染细胞方法的标准操作规程
PEI转染细胞方法的标准操作规程（编号：031）1、目的及适用范围该SOP用来规范利用PEI为转染试剂进行转染的操作。
2、主要仪器细胞培养箱、细胞培养皿、微量移液器3、试剂及配制方法3.1 PEI (2μg/μL)：采用生理盐水配成2μg/μL，60℃烘箱助溶，完全溶解并冷却后，调pH至7.0（不可回调），0.22μm微孔滤器过滤，分装于1.5mL离心管，储存与4℃备用。
3.2生理盐水：0.9g NaCl溶于100mL纯水中，灭菌后微孔滤器过滤分装于1.5mL离心管，储存于4℃备用。
4、操作步骤4.1 细胞铺于细胞培养皿中，培养过夜；4.2 在转染前1-2h，将细胞培养皿中换成预热的培养基；4.3 将要转染的质粒和转染试剂PEI分别用生理盐水稀释，室温处理5min。
质粒和转染试剂的质量比为1:6；一般质粒和PEI稀释后的每管体积为50μL，如转染的质粒量多，则可对应适当增加生理盐水的量；4.4 将处理好的两者混匀，室温放置15-30 min；4.5 将处理好的样品轻轻且均匀滴加到细胞中；4.6 转染后6-8 h换液；4.7 根据实验需要，在转染后的特定时间收集样品，进行分析。
5、注意事项5.1 细胞如何健康而茁壮成长转染前细胞最好经过1～2次传代，以保证细胞生长旺盛，容易转染。
注意，贴壁细胞生长到几乎汇片时就要赶快进行下一次传代，千万不要使细胞保持融合超过24h，一旦长满了，转染效率便会降低。
大多数已建立的细胞系都是非整倍体，细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变，总染色体重组或基因调控变化等而演化，这会导致和转染相关的细胞行为的变化。
如果随时间发生61。
SiRNA转染protocol
siRNA转染SOP1.细胞种板：24孔板中以5x105 细胞/孔密度进行接种（6孔板或96孔板接种密度进行相应调整），接种孔数根据具体实验方案进行确定，接种后置于37℃，5%CO2培养箱中培养12h-16h；2.细胞生长融合度达85-90%后即可准备进行siRNA转染，实验每组设置3个复孔，siRNA以Nuclease-Free Water稀释至储存液浓度（浓度按照说明书指示，通常为20 μM）；3.根据siRNA终浓度进行溶液配制（以下溶液配制以50 nM为siRNA最终浓度，24孔板中终液体体积为500 μl为例），溶液1配制：每孔1.25 μl siRNA储存液以无血清无双抗培养基稀释至25 μl，按此比例依照孔数进行扩大，将最终液体进行充分混匀；溶液2配制：每孔2 μl Lipo 2000转染试剂（可用其他替代，用量参照说明书推荐或自行优化）以无血清无双抗培养基稀释到25 μl，按此比例依照孔数进行扩大，将最终液体进行充分混匀；上述2种溶液混匀后分别室温静置5 min；4.将溶液1滴加至溶液2中并进行充分混合（每孔为50 μl），室温静置20-30 min；5.此期间可将细胞从培养箱中取出，弃去培养基，用PBS进行清洗3次，末次清洗干净后将所有液体小心吸出，尽量不要有残留；6.静置完成后，将上述混合液滴加进去24孔板中，每孔50 μl，注意滴加不要过快，以防冲起细胞，滴加完成后每孔加入450 μl无血清无双抗培养基，充分混匀，将板放入37℃，5%CO2培养箱中培养6 h；7.6 h后取出24孔板，弃去培养基，加入预热的含10%FBS的无双抗培养基1 ml，37℃，5%CO2培养箱中培养；8.24-48 h后弃去培养基，每孔以100 μl胰酶进行冲洗后弃去胰酶，放入培养箱中进行消化，具体时间以具体细胞为准，消化完全后加入500 μl 完全培养基终止消化并充分将细胞吹起吹匀，将细胞液吸至1.5 ml离心管中并做好标记，再向孔内加入500 μl培养基进行充分吹打，确认细胞完全洗下后将其吸至离心管中；9.常温6000 rpm离心5min，充分弃去上清，尽量吸干，将细胞沉淀置于-80℃冰箱备后续实验使用。
lipo2000转染protocal6孔板中文
转染6孔板
1、转染前一天，接种到6孔培养板上。
（4*105/ml.）
转染时，细胞要达到90~95%的融合。
细胞铺板在2ml含血清，不含抗生素的正常生长的培养基中。
2、溶液A：240ul 无血清培养基 + 10 ul lipofectamine 2000 per well （总体积250 ul）（温育5min）如果D-MEM做为Lipofectamine 2000的稀释液，必须在5分钟内同稀释的DNA混合。
3、溶液B：246 ul 无血清培养基 + 4 ug 质粒 per well（总体积250 ul）（此为推荐剂量）
｛摸5个梯度分别是4 ug 质粒：4ul lipo，
4ug 质粒：6ul lipo
4 ug 质粒：8ul lipo
4ug 质粒：10ul lipo
4ug 质粒：12ul lipo
4、将溶液A与溶液B混合，室温下置20min。
5、与此同时，将6孔板中的细胞用无血清培养基冲洗细胞两遍后，加入2ml 无血清培养基。
6、将溶液A与溶液B的混合液逐滴加入孔中，摇动培养板，轻轻混匀。
在37℃，5％的CO2中保温5~6小时。
7、6小时后，更换含有血清的全培养基，在37℃，5％的CO2中48~72h 检测转染水平。
8、如果做稳定转染，换全培养基培养后24h，即可以1：10或更高的稀释比例（根据细胞的生长情况）接种到新的培养板，加抗生素进行筛选。
[说明]转染详细步骤大攻略
![[说明]转染详细步骤大攻略](https://img.taocdn.com/s3/m/8d4c02e6bb68a98270fefa98.png)
[说明]转染详细步骤大攻略转染详细步骤大攻略范例----真核重组表达质粒pDsRed-N1-NS1在A549细胞中表达按上海索莱宝生物科技有限公司去内毒素质粒小提试剂盒说明书方法进行质粒抽提，测得质粒浓度为410.32ng/µl。
将培养的A549细胞铺板，待细胞密度长到90%左右时，按lipo2000说明书转染A549细胞，36h后于荧光显微镜下观察DsRed-NS1融合蛋白的表达情况。
具体操作步骤如下: 1)质粒准备按上海索莱宝生物科技有限公司去内毒素质粒小提试剂盒说明书方法进行质粒抽提，具体步骤如下:(1) 取1-5ml细菌培养物，12000rpm离心1 min,尽量吸除上清(菌液较多时可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中)。
(2) 向留有菌体沉淀的离心管中加入200µl溶液P1(请先检查是否已加入RNaseA),使用移液器或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。
(注:如果菌块未彻底混匀，会影响裂解导致质粒提取量和纯度偏低)(3)向离心管中加入200µl溶液P2，温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。
(注:混匀一定要温和，以免污染基因组DNA，此时菌液应变得清亮粘稠，所用时间不应超过5min，以免质粒受到破坏)(4)向离心管中加入250µl溶液P3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀，此时会出现白色絮状沉淀。
12000rpm 离心10min，用移液器小心地将上清转移到另一个干净的离心管中，尽量不要吸出沉淀。
(注:溶液P3加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。
如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上清)(5)加入1/5体积冰预冷的去内毒素清除剂，振荡混匀，溶液变浑浊，冰浴2min至溶液变清亮。
(6)37?水浴5 min，不时振荡，溶液又变浑浊。
12000rpm室温离心5min，溶液应分为两相，上层水相含质粒DNA，下层油状相含内毒素。
(7)将质粒DNA上层水相转移至新管，弃下层油状相，注意不要吸入油状相，重复抽提三次，即重复步骤5-7三次。
师姐整理之细胞转染技巧
师姐整理之细胞转染技巧1、细胞转染有脂质体转染，病毒转染、电转染、磷酸钙法、显微注射….下面主要讲最常用的脂质体lip2000介导的细胞转染。
2、转染效率影响因素：1、细胞种类，细胞状态，2、质粒大小，3、转染试剂。
3、转染前细胞的状态和密度都非常影响转染效率和后期的实验结果。
转染时细胞的密度为50%-80%较好，同时注意在转染后收细胞时的密度不要过爆。
比如转染质粒到细胞内，48小时后做WB，那么此时细胞的密度最好不要长满. 因为细胞长的过爆严重影响细胞的状态（周期进程阻滞，凋亡增加等）从而影响实验结果。
一般为前一天下午铺板，第二天上午进行转染，48小时候收细胞进行功能检测。
4、不同的质粒和脂质体最佳搭配比例不同，转染前，应该摸一个最佳配比。
质粒：脂质体=1：1， 1：1.5， 1：2， 1：2.5， 1：3，1：3.5的梯度比例来检测最佳转染比例（一般质粒有带荧光，可以通过观察每组荧光强弱来判断转染效率，没有荧光的只能通过qPCR来检测各组转染效率）。
5、质粒的纯度影响转染效率：1、脂质体转染基于电荷吸引原理，如果DNA不纯，如带少量的盐离子，蛋白，代谢物污染都会显著影响转染复合物的有效形成及转染的进行。
2、含有内毒素的质粒对细胞有很大的毒性作用。
建议使用QIAGEN公司的超纯质粒抽提试剂盒。
6、转染时，小心轻柔的将lip2000加到培养基中并轻轻混匀（说明书上的用词为：Mix gently），避免粗暴用力吹打，会导致脂质体失效。
7、转染时各种培养皿添加的质粒和脂质体参考量见下表：8、虽然现在的大多数转染试剂可以使用带血清的培养基进行转染，但转染时建议用无血无抗生素的opti-MEM培养基提高转染效率。
转染后6小时更换培养基，一是lip2000具有一定毒性，二是培养基需要更换成有血清培养基。
9、支原体污染会严重影响细胞转染的效率，且支原体污染不会像细菌污染那么明显可见，转染前可以用环丙沙星杀一杀支原体。
细胞铺板
细胞铺板：
Day1，细胞长至85-95%时传代，24孔板每孔铺1.5X105细胞，加入900ul培养基；
Day2，24h之内做质粒转染，以上细胞量大约细胞密度为35%-45%；
24孔板细胞转染：
1. 转染前准备工作：1XPBS、无血清无PS的DMEM预热；操作台面、移液器紫外灭菌15min；
2. 转染前一小时：吸去原来的培养基，用1XPBS洗一次，然后换成900ul 无血清无PS的DMEM培养基，放入培养箱中；
3. 配制DNA稀释液：准备1.5ml EP管，加入50ul Opti-MEM，再加入1ug 大提质粒，弹EP管15-20下混匀；
4. 配制PEI稀释液：准备1.5ml EP管，加入50ul Opti-MEM，再加入X ul PEI（1mg/mL），弹EP管25-35下混匀；室温孵育5min；
5. 将DNA稀释液加入PEI稀释液中，并用枪头吹打15-25下混匀；再弹15-25下EP管混匀；
6. 室温孵育20-25min；
7. 将混合液逐滴加入孔中，均匀滴在孔面的各处，摇晃孔板扩散混匀；
8. 8h后将培养基换成DMEM+10%FBS+1%PS培养基；
9. 24h后观察转染效率。
细胞转染操作步骤
RNAi or siRNA Transfection以24孔板为例，其余规格的转染见表11 中板，细胞密度为30-50%适宜。
注意：根据转染后细胞检测时间长短决定细胞中板密度，如果转染后需要长时间后检测，则细胞中板密度适当降低，已避免细胞过度生长导致存活降低。
2 第二天（24-36小时后）每个孔转染方式如下：A 将20pmol siRNA溶于50ul Opti-mem无血清培养基中。
B 将1ul lipo2000溶于50ul Opti-mem无血清培养基中，混匀室温放置5min。
C 将A B两管混合，放置20min。
3 转染期间，将24孔板培养基换成无血清培养基，每孔400ul。
将C管mix加入24孔板对应孔中，4-6小时候换成有血清培养基。
Plasmid DNA TransfectionDNA(ug):lipo 2000(ul)=1:2-3转染时细胞密度越高，转染效率，表达效率也越高，并且可以降低细胞毒性。
1 中板。
贴壁细胞：0.5-2X105 cells/well，第二天待细胞密度达到90%以上时转染悬浮细胞：4-8X105 cells/well，中板后随即转染。
2 转染。
A 将0.8ug DNA溶于50ul Opti-mem无血清培养基中。
B 将2ul lipo2000溶于50ul Opti-mem无血清培养基中，混匀室温放置5min。
C 将A B两管混合，放置20min。
转染期间，将24孔板培养基换成无血清培养基，每孔400ul。
将C管mix加入24孔板对应孔中，4-6小时候换成有血清培养基。
Table 1. Culture Shared reagents DNA transfection RNAi transfection*：中板密度根据不同细胞不同实验有所不同，这里仅提的数据仅供参考**：6孔板细胞质粒转染量1-2ug足以。
***：6cm dish细胞质粒转染量4-6ug足以。
基因编辑质粒转录转染细胞方法
基因编辑质粒转染细胞方法基因编辑载体/体外转录RNA可以使用多种转染试剂进行转染：1) 以24 孔培养板操作为例，转染前一天，将0.5~2×10 5个细胞接种于培养板中，每孔中加入约500 μL 无抗生素的培养基，使转染时的细胞密度能够达到30~50％；2) 取1 μL/ 孔Lipofectamine2000（使用前轻轻摇匀），用50 μL Opti-MEM I Reduced Serum Medium 稀释。
轻轻混和后在室温孵育5 分钟；3) 取1 μg 质粒载体/ 体外转录RNA，用50 μL Opti-MEM I Reduced Serum Medium 稀释，轻轻混和均匀;4) 稀释后的Lipofectamine2000 经过5 分钟孵育后，与稀释后的质粒载体/ 体外转录RNA 轻轻混和，室温静置20 分钟，以形成载体- 转染试剂混和物/RNA- 转染试剂混和物；注意：稀释后的Lipofectamine2000 尽量在25 分钟之内，和质粒载体/ 体外转录RNA 混和，如果放置时间过长，可能导致转染试剂活性的降低。
5) 将载体- 转染试剂混和液/RNA- 转染试剂混和物加入含有细胞及培养液（约含400 μL）的孔中，轻轻摇晃孔板，使其混和；6) 在37 ℃的CO 2 培养箱中培养，4~6 小时后可将培养基换为含血清的完全培养基( 该步骤可以省略)；7) 如果载体含荧光基因，转染24 小时后即可在荧光显微镜下观察到荧光，一般转染后72 小时，收集细胞检测突变。
转染24~48小时后可利用载体表达荧光，通过流式细胞仪富集转染细胞，或通过载体表达puro，通过抗性富集转染细胞。
如果体外转录RNA 为荧光基因mRNA，转染6 小时后即可在荧光显微镜下观察到荧光，24~48 小时荧光强度较强，48 小时之后荧光强度逐渐降低，到120 小时基本消失。
注：体外转录RNA 转染细胞时使用无RNase 枪尖及EP 管。
上海常用转染试剂配方
上海常用转染试剂配方
转染试剂是在细胞培养研究中必不可少的试剂。
它将核酸或蛋白质带入目标细胞中，以达到研究目的。
本文将介绍上海常用的几种转染试剂配方。
1. Lipofectamine 2000转染试剂
Lipofectamine 2000是一种常用的脂质体转染试剂，其用途广泛且转染效率高。
其配方如下：
无血清培养基：500μL
要转染的DNA：2μg（根据实验需要调整）
将Lipofectamine 2000试剂与无血清培养基混合，放置5分钟，再加入要转染的DNA 液体，混合后放置15分钟，滴加在细胞上。
2. PEI转染试剂
聚乙烯亚胺（PEI）是一种阳离子高分子，由于其能够形成与DNA负电荷的缔合物，使其成为一种有效的转染试剂。
PEI转染试剂可用于转染细胞以获得较高的转染效率。
其配方如下：
PEI试剂：4μg/μL，将其与等体积的无血清培养基混合。
3. PolyJet转染试剂
PolyJet是一种高效、无毒、具有低细胞损伤的DNA转染试剂。
其配方如下：
4. FuGENE HD转染试剂
细胞的转染操作应该注意以下几点：
1. 转染时间应该控制在半小时至1小时内，过长或过短都会对转染效率造成影响。
2. 转染的DNA浓度应该适当，过高的DNA浓度会对细胞产生毒性。
3. 转染试剂与DNA的混合比例也应该适当，过多或过少都会导致转染效率降低。
总之，合理选择转染试剂和配方，并严格按照操作步骤进行转染可以提高实验的可靠性和成功率。
个人总结用clontech的磷酸钙转染试剂包装慢病毒方法
个人总结用clontech的磷酸钙转染试剂包装慢病毒方法
1.转染24小时前，在10cm培养板接种1.5-3×106个293T细胞，添加10ml的
条件下过夜。
保证在加入转染复合物培养基(DMEM+10%FBS)。
在37℃，5%CO
2
前培养板有50-80%的覆盖率。
2.转染前3小时换液为新鲜培养基并加入终浓度为15ul 50mM的
Choloroquine。
3.Vortex转染所需试剂，每个10cm培养板转染样品需准备两个50ml离心管（马
振毅等用15ml离心管），按顺序添加如下试剂
4.一边轻轻vortex solution A（调节转速确保液体不会溅出）或者一边用1ml
一次性移液管往solution A中吹泡泡。
逐滴轻轻加入solution B。
完成后溶液由于沉淀形成应呈不透明状(promega加入顺序与clontech相反是边混匀B液逐滴加入A液)。
5.室温孵育15min(promega说明书室温22-25℃30min较适合转染复合物形成)。
6.将转染复合加入细胞之前再次vortex混匀。
逐滴并多位置轻轻滴加入培养
板，完全加入后前后来回摇晃培养板以以便沉淀均匀地吸附在细胞表面。
7.在37℃，5％CO2培养箱中孵育。
转染8h后换液(或8-12h)。
8.如果包装的慢病毒质粒携带荧光基团，24-48h后可观察到荧光。
9.转染30h后再换新鲜培养基。
10.收集转染48h后的病毒上清（也可再收集72h的病毒）。
11. option：浓缩病毒。
12.分装病毒保存于-80℃。