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油脂过氧化值的测定实验报告

油脂过氧化值的测定实验报告

实验报告:
一、实验目的:
了解油脂过氧化值的测定方法,并掌握测定技能。

二、实验原理:
油脂在贮存和加工过程中,会因氧化反应而产生不稳定的过氧化物。

过氧化值是衡量油脂中过氧化物的含量的指标。

本实验采用Iodometric法来测定油脂中的过氧化值。

三、实验步骤:
1. 取1克样品,加入草酸乙酯(20mL)和紫外线吸收剂(2mL),振摇均匀。

2. 加入碘化钾溶液(10mL),并加入1mol/L硫酸溶液(10mL)进行滴定,直至出现紫色溶液变为黄色后停止滴定。

记录所耗的硫酸溶液的体积,记为V1。

3. 验证滴定终点:将草酸乙酯加入碘化钾溶液,出现的淡黄色溶液,在滴加硫酸溶液过程中,溶液的颜色逐渐加深,直到呈现深棕色,即可确认滴定终点正确。

4. 进行白试验:取同样的草酸乙酯和紫外线吸收剂,按照滴定步骤进行配制,确保所耗的硫酸溶液的体积为零。

5. 计算油脂样品的过氧化值:过氧化值=(V1-V0)×0.0056
(mg/kg),其中V1为样品滴定所用的硫酸溶液体积,V0为白试验所用的硫酸溶液体积,0.0056为硫酸亚铁溶液中1mL对应的过氧化值。

四、实验结果:
本次测定的油脂样品滴定所用的硫酸溶液体积为25.0mL,白试验所用的硫酸溶液体积为0mL。

则样品的过氧化值为(25.0-0)×0.0056=0.14mg/kg。

五、结论:
本次实验采用Iodometric法测定了油脂样品的过氧化值为0.14mg/kg。

此值低于过氧化值的卫生标准值,说明样品质量良好。

“铁死亡”研究要测哪些指标?看这篇就够了!

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什么是铁死亡?
铁死亡(ferroptosis)是2012年首次提出的一种铁依赖性脂质过氧化和活性氧(ROS)诱导的调节 性细胞死亡,其细胞形态特征和生化指标等方面与细胞凋亡、自噬和程序性坏死等死亡方式存 在较大差异[表1]。
类型 铁死亡
凋亡 坏死 自噬
形态特征
标信息。
相关代谢 过程
检测指标
检测试剂
细胞活性 细胞毒性
增强型细胞活力检测试剂盒(CCK-8)
铁代谢
铁离子 亚铁离子
铁比色法测试盒 亚铁离子比色法测试盒
MDA 脂质过氧化
丙二醛(MDA)比色法测试盒(TBA法) 丙二醛(MDA)比色法测试盒(细胞)
LPO
脂质过氧化物(LPO)比色法测试盒
ROS
活性氧(ROS)荧光法测试盒
活性氧
超氧阴离子自 抑制与产生超氧阴离子自由基比色法测试盒
由基
(WST-1法)
过氧化氢
过氧化氢(H2O2)荧光法测试盒
SOD
总超氧化物歧化酶(T-SOD)比色法测试盒 (WST-1法)
GSH
还原型谷胱甘肽(GSH)比色法测试盒
T-GSH
总谷胱甘肽(T-GSH)/氧化型谷胱甘肽(GSSG) 比色法测试盒
2、 判 断 铁 死 亡 -ROS
ROS是一种高活性氧化自由基,包括超氧阴离子(O2-)、过氧化氢(H2O2)和羟自由基 (OH-)等,铁可以通过 Fenton(芬顿反应)产生脂质ROS,引起脂质过氧化,促进细胞死 亡,因此,测定脂质过氧化产物(MDA,LPO,TBARS)有利于判断铁死亡。
3、 抑 制 铁 死 亡 -GSH
线粒体膜电位 降低

过氧化物酶含量的测定(比色法)

过氧化物酶含量的测定(比色法)

过氧化物酶含量的测定(比色法)过氧化物酶含量测定是一种常用的生物学和化学学科中的实验方法。

该方法被广泛应用于生物体内氧化应激、氧化物解毒和氧化物代谢等方面的研究。

该方法利用底物的氧化还原反应,通过检测产生的表观色素的变化来测定过氧化物酶的酶活性。

实验原理:过氧化物酶是一种催化酯类和醇类底物的氧化还原反应酶,其底物是一种含有双键的多不饱和酯类及多酚类物质。

这些底物的氧化作用需要过氧化物酶及辅助成分,通过产生艳蓝色淀粉和牛肉素的氧化还原反应来表现出来。

常见的底物是喹啉及其衍生物类化合物。

这些化合物在钠盐和钾盐的存在下,可以和以均等量的0.02%-0.05%的过氧化氢溶液配合使用,产生表观色素(θ=100nm),其中颜色的强度与底物氧化的程度成正比。

过氧化物酶的酶活性是测定过程中的关键要素,一定的酶浓度可以帮助底物迅速氧化。

实验步骤:1.提取组织过氧化物酶,制备1%避光标准物质。

2.在底部添加适量的底物,并加入0.02%-0.05%的过氧化氢溶液(90min内完成剩余测定)。

第一个反应必须使反应均匀发生,并加入适量的怡宝那和氢氧化钾调节酸度和盐度,然后按照程序进行反应。

最大吸收波长:613nm;试管增量:每5秒;试管量:1ml。

3.利用磁性制动器将试管定在这个位置并将它们降到盘子中心,当酶浓度很低时可以通过上下弯曲试管使溶液更加均匀。

4.测量反应后溶液的吸光度,并确定吸收峰的位置。

根据标准曲线计算出样品中过氧化物酶的浓度,如图所示。

实验注意事项:1.所有的耗材都必须干燥,并且必须在实验过程中保持干燥状态。

2.测定前,必须使用透明质酸纯化介质和亚硫酸钠而不是硫酸钠进行预防性清洁。

3.在进行试管反应时,必须将试管置于盘子的中心位置。

如果实验中涉及液体转移,请务必谨慎操作。

4.严格按照各步骤操作,以保证实验结果的准确性。

总结:通过比色法测定过氧化物酶的酶活性是一种可靠、快速、简便的方法。

该方法的步骤简单,有助于对生物体内的氧化应激、氧化物解毒和氧化物代谢等方面的研究。

过氧化脂质测定

过氧化脂质测定

过氧化脂质测定过氧化脂质测定发布时间:2008-12-5 查看151次过氧化脂质(lipoperoxides,LPO)是自由基使脂质发生过氧化作用而形成的。

它使生物体内细胞膜发生过氧化作用而受到损伤,使体内重要脏器及血管都受害导致疾病和老化。

脂质过氧化反应可形成丙二醛、乙烷、共轭二烯、荧光产物和一些能发光的产物,测定这些产物的变化,就能表明过氧化反应的变化。

因此,该类方法,对开发有效的抑制体内自由基的药物十分重要。

1、血清中过氧化脂质测定(1)TBA荧光测定法 LPO随蛋白沉淀后,沉淀物在酸性环境下膜脂质过氧化而产生丙二醛(malondialdehyde,MDA)与TBA缩合后形成复合物,这种复合物具有高灵敏荧光特性。

从而可用荧光分光光度计来进行测定。

材料与试剂:①TEP标准溶液。

准确吸取四乙氧基丙烷100ml,加甲醇至50ml,含量为8mmol/L,4℃保存期为一个月。

用时以双蒸水稀释成8μmol/L TEP标准应用液。

②20mmol/L TBA溶液。

称取576.6mg TBA溶于80ml水中,60℃以下加热助溶,稀释至100ml,再与冰醋酸等量混合。

③甲醇。

④荧光分光光度计及记录仪。

方法:①取3支10ml带塞玻璃试管,分别为测定管、标准管和空白管,测定管加血清20μl,标准管加TEP标准应用液20μl,空白管加水20μl。

②各管依次加水2ml,TBA溶液1ml混匀,100℃加热60min。

③用流动水冷却,各加甲醇1ml,充分混匀后,用3000r/min,离心10min。

④上清以Ex515mn,Em550nm测定各管荧光强度(F),按下式计算出LPO含量。

血清LOP含量(μmol/L)=(F测定-F空白)/(F标准-F空白)×8本法具有灵敏度高,特异性好、方法快速等优点;对实验用水的纯度和玻璃仪器的清洁度要求较高,实验用水需为双蒸水,玻璃仪器需经50%的硝酸除荧光,否则,空白值较高,干扰测定。

人过氧化脂质(LPO)说明书

人过氧化脂质(LPO)说明书

人过氧化脂质(LPO)酶联免疫分析试剂盒使用说明书本试剂仅供研究使用目的:本试剂盒用于测定人血清,血浆及相关液体样本中过氧化脂质(LPO)的含量。

实验原理:本试剂盒应用双抗体夹心法测定标本中人过氧化脂质(LPO)水平。

用纯化的人过氧化脂质(LPO)抗体包被微孔板,制成固相抗体,往包被单抗的微孔中依次加入过氧化脂质(LPO),再与HRP标记的过氧化脂质(LPO)抗体结合,形成抗体-抗原-酶标抗体复合物,经过彻底洗涤后加底物TMB显色。

TMB在HRP酶的催化下转化成蓝色,并在酸的作用下转化成最终的黄色。

颜色的深浅和样品中的过氧化脂质(LPO)呈正相关。

用酶标仪在450nm波长下测定吸光度(OD值),通过标准曲线计算样品中人过氧化脂质(LPO)浓度。

试剂盒组成:试剂盒组成48孔配置96孔配置保存说明书1份1份封板膜2片(48)2片(96)密封袋1个1个酶标包被板1×481×962-8℃保存标准品:900nmol/L0.5ml×1瓶0.5ml×1瓶2-8℃保存标准品稀释液 1.5ml×1瓶 1.5ml×1瓶2-8℃保存酶标试剂3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存样品稀释液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存显色剂A液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存显色剂B液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存终止液3ml×1瓶6ml×1瓶2-8℃保存浓缩洗涤液(20ml×20倍)×1瓶(20ml×30倍)×1瓶2-8℃保存样本处理及要求:1.血清:室温血液自然凝固10-20分钟,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

仔细收集上清,保存过程中如出现沉淀,应再次离心。

2.血浆:应根据标本的要求选择EDTA或柠檬酸钠作为抗凝剂,混合10-20分钟后,离心20分钟左右(2000-3000转/分)。

索莱宝脂质过氧化物(LPO)含量检测试剂盒说明书

索莱宝脂质过氧化物(LPO)含量检测试剂盒说明书

脂质过氧化物(LPO )含量检测试剂盒说明书微量法注意:本产品试剂有所变动,请注意并严格按照该说明书操作。

货号:BC5245规格:100T/96S产品内容:使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致,有疑问请及时联系索莱宝工作人员。

试剂名称规格保存条件提取液液体110mL×1瓶2-8℃保存试剂一液体11mL×1瓶2-8℃保存试剂二粉剂×2瓶2-8℃保存试剂三液体4mL×1瓶2-8℃保存标准品液体1mL×1支2-8℃保存稀释液液体20mL×1瓶2-8℃保存溶液的配制:1.试剂二:临用前取1瓶试剂二加入7mL 蒸馏水,此试剂较难溶,可以在70℃加热并剧烈振荡以促进溶解,或者通过超声处理以促进溶解。

每次用前需检查是否有粉剂析出。

用不完的试剂可在2-8℃中保存一个月。

2.标准品:为1000nmol/mL 的标准溶液产品说明:脂质过氧化物(lipid hydroperoxide LPO )是不饱和脂肪酸链经自由基或活性氧作用后产生的过氧化物。

病理情况下,脂质过氧化反应增强可导致原本低含量的LPO 升高。

LPO 含量升高会对细胞的结构和功能造成损伤,LPO 含量与机体免疫系统和衰老密切相关。

LPO在酸性条件下加热产生丙二醛(MDA),MDA 与硫代巴比妥酸(Thiobarbituric acid ,TBA)缩合,生成棕红色物质三甲川(3,5,5-三甲基恶唑-2,4-二酮),其最大吸收波长在 532nm ,进行比色后可估测样本中LPO 的含量。

注意:实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。

如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。

需自备的仪器和用品:可见分光光度计/酶标仪、台式离心机、水浴锅、可调式移液器、研钵/匀浆器/细胞超声波破碎仪、微量玻璃比色皿/96孔板、冰和蒸馏水。

操作步骤:一、样本处理(可适当调整待测样本量,具体比例可以参考文献)1、组织:按照样本质量(g ):提取液体积(mL )为1:5~10 的比例(建议称取约0.1g 组织,加入1mL 提取MDA+ TBA3,5,5-Trimethyloxazolidine-2,4-dione (532 nm)LPO+液)加入提取液,冰浴匀浆;8000g 4℃离心10min,取上清置冰上待测。

油脂过氧化值的测定实验报告

油脂过氧化值的测定实验报告

油脂过氧化值的测定实验报告一、实验目的。

本实验旨在通过测定油脂过氧化值的方法,掌握油脂的氧化稳定性测定技术,了解油脂的氧化过程及影响因素,为食品加工及质量控制提供参考。

二、实验仪器与试剂。

1. 仪器,恒温水浴器、分光光度计。

2. 试剂,过氧化值试剂盒、乙醇、乙酸、氯仿、硝酸银、硫酸钾、硫酸、硫代硫酸钠、淀粉指示剂。

三、实验原理。

油脂氧化是指油脂中的不饱和脂肪酸受到氧气的作用而发生的化学反应。

过氧化值是油脂氧化程度的指标,是以油脂中的不饱和脂肪酸为基质,在氧气的作用下发生过氧化反应所需的过氧化氢的量。

实验中,通过将样品中的过氧化物与硫代硫酸钠反应,生成硫酸钠,再用硝酸银滴定,根据反应消耗的硝酸银的体积来计算油脂的过氧化值。

四、实验步骤。

1. 取适量的样品,称量至精确质量。

2. 将样品溶解于氯仿-乙醇混合溶液中,加入硫酸钾催化,放置于恒温水浴器中反应。

3. 反应结束后,加入硫代硫酸钠停止反应,用淀粉指示剂进行终点检测。

4. 用硝酸银标准溶液滴定至蓝色终点,记录滴定消耗的硝酸银体积。

5. 重复实验,取平均值计算过氧化值。

五、实验数据记录与处理。

样品质量,0.5g。

滴定消耗硝酸银体积,11.5ml、11.3ml、11.4ml。

平均滴定消耗硝酸银体积,11.4ml。

过氧化值=(11.4ml-空白对照消耗硝酸银体积)×(硝酸银标准溶液浓度)×(样品溶液体积)/(样品质量)。

六、实验结果与分析。

经过计算得出样品的过氧化值为3.42meq/kg。

过氧化值越高,说明油脂中的不饱和脂肪酸含量越高,油脂的氧化程度也越高。

过氧化值的测定结果可以为油脂的储存、使用以及加工过程中的控制提供重要参考依据。

七、实验结论。

通过本次实验,我们成功测定了样品的过氧化值,掌握了油脂氧化稳定性的测定技术。

过氧化值的测定结果为3.42meq/kg,为了确保油脂的质量和稳定性,我们需要加强对油脂氧化过程的监测和控制,以保证食品加工的质量和安全。

lpo 脂质过氧化氧化物

lpo 脂质过氧化氧化物

lpo 脂质过氧化氧化物
脂质过氧化(LPO)是指脂质分子中发生的一种氧化反应,通常由自由基引发。

脂质过氧化物(LPO)则是指在脂质过氧化反应中产生的过氧化物。

这些过氧化物包括脂质过氧化物和脂质过氧化物分解产物,它们可以对细胞膜和细胞器造成损伤,导致细胞功能障碍甚至细胞死亡。

脂质过氧化在生物体内是一个常见的氧化反应,会受到许多因素的影响,例如环境中的氧气浓度、细胞内铁离子水平、抗氧化物质的含量等。

在生理条件下,细胞内通常会存在一定量的抗氧化酶和小分子抗氧化物质来抵御脂质过氧化的损害。

然而,当这些防御系统失效或者受到过多氧化应激的影响时,脂质过氧化就会大量产生,对细胞造成严重损害。

脂质过氧化在许多疾病的发生发展中起着重要作用,例如动脉粥样硬化、癌症、神经退行性疾病等。

因此,研究脂质过氧化的机制以及寻找抑制脂质过氧化的方法具有重要意义。

抗氧化剂的应用就是其中一种方法,可以中和自由基,减少脂质过氧化的产生,从而保护细胞免受氧化损伤。

总的来说,脂质过氧化是一种重要的生物化学反应,对细胞和生物体的健康有着重要的影响,因此对其进行深入研究具有重要意义。

脂质过氧化

脂质过氧化

脂质过氧化英文名称:lipid peroxidation定义:强氧化剂如过氧化氢或超氧化物能使油脂的不饱和脂肪酸经非酶性氧化生成氢过氧化物的过程.应用学科:生物化学与分子生物学(一级学科);脂质(二级学科)氧自由基反应和脂质过氧化反应在机体的新陈代谢过程中起着重要的作用,正常情况下两者处于协调与动态平衡状态,维持着体内许多生理生化反应和免疫反应。

一旦这种协调与动态平衡产生紊乱与失调,就会引起一系列的新陈代谢失常和免疫功能降低,形成氧自由基连锁反应,损害生物膜及其功能,以致形成细胞透明性病变、纤维化,大面积细胞损伤造成进神经、组织、器官等损伤.这种反应就叫脂质过氧化。

脂质过氧化原理脂质过氧化过程中发生的ROS氧化生物膜的过程,即ROS与生物膜的磷脂、酶和膜受体相关的多不饱和脂肪酸的侧链及核酸等大分子物质起脂质过氧化反应形成脂质过氧化产物(Lipid PerOxide, LPO)如丙二醛 (Malonaldehyde, MDA)和4—羟基壬烯酸(4-hydroxynonenal,HNE),从而使细胞膜的流动性和通透性发生改变,最终导致细胞结构和功能的改变.ROS活性氧簇4—羟基壬烯酸(HNE)ELISA分析4—羟基壬烯酸(HNE)ELISA分析(OxiSelect™ HNE-His Adduct ELISA Kit):4—羟基壬烯酸(HNE)是两个强毒力的脂质过氧化终产物之一,常常作为判断脂质过氧化的指标。

HNE 能够通蛋白结合形成稳定的、加合物状态的晚期脂质过氧化终产物,这种被HNE修饰的蛋白质在细胞内会进一步导致被氧化蛋白在功能和结构上的改变。

脂质过氧化检测方案8-异前列腺素F2a ELISA检测(OxiSelect™ 8-iso—Prostaglandin F2α ELISA Kit (8-isoprostane))除了4-羟基壬烯酸(HNE)和丙二醛 (malonaldehyde, MDA)这两个判断脂质过氧化的两个重要标志物,8—异前列腺素F2a目前已被作为动脉粥样化形成、风湿性关节炎以及癌变的重要检测指标,并已被作为脂质过氧化的另一个重要检测指标。

脂质过氧化法测定动物体内自由基含量

脂质过氧化法测定动物体内自由基含量
contents
of added samples werel00.68%.
99.66%and97.95%respectively.1'le
with literatuFra biblioteke.and free radicals in SOD
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do印Ⅲi嘴[叮.口如nl啊mcd 1hm 1997,62.(3):7/18.
浆0.3 mL,分别加入标准晶溶液o.4、0.8、1.2
mL,
g,用无水乙醇一乙醚(1:3)混合溶液250 mL溶
解,超声助溶,即得6.2 IIlg・mL。卵磷脂溶液。
1.2.2脂质过氧化法测定自由基含量的方法用
移液管精密量取组织匀浆的上清液0.4 mL置20
mL
具塞试管中,各管加pn 4.0醋酸一醋酸盐缓冲溶液
4.0醋酸一醋酸盐缓冲溶液500mL溶解,超声助溶, 即得10 nag・mL“硫代巴比妥酸溶液;称取卵磷脂1.
55
图1四甲氧基丙烷标准曲线
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a州of Tet哺m酬的町lp珈pa啦
!.2.4方法的精密度取高、中、低3个浓度的标 准品溶液各3份,同一天内按标准曲线方法操作测 定吸光度,并计算得日内精密度分别为0.81%、 2.72%、7.99%。取高、中、低3个浓度的标准品溶 液各3份,分3 d分别按标准曲线方法操作测定吸 光度,并计算得日问精密度分别为3.71%、5.06%、 6.67%。可见脂质过氧化法测定自由基含量的日内 和日间精密度均较高,方法重复性良好。 1.2.5回收率试验精密量取已知浓度的混和血

医学检验·检查项目:脑脊液脂质过氧化物_课件模板

医学检验·检查项目:脑脊液脂质过氧化物_课件模板
医学·各论:脑脊液脂质过氧化物 >>>
别名: 过氧化脂质。
医学检验·各论:脑脊液脂质过氧化物 >>>
简介:
自由基作用于不饱和脂肪酸形成过氧 化物,Lpo与氧自由基可使生物膜损害而 影响细胞的正常生理功能,可抑制机体的 免疫功能。免疫荧光技术的应用很广,各 学科领域都能应用,如细菌、病毒、寄生 虫、免疫,根据实验的目的选项用不同方 法。
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相关疾病: 蛛网膜下腔出血、脑梗塞、脑出血、出血 性脑梗死、脑外伤后综合征、脑膜炎、脑 蛛网膜下腔出血。
谢谢!
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临床意义: 脑膜炎、蛛网膜下腔出血、脑外伤、
脑梗塞、脑出血患者CSF中Lpo含量升高。
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正常值: 0.49±0.14mmol/ml。
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相关检查: 脑脊液丙二醛、脑脊液细胞学检查、脑脊 液常规检验(CSF)、脑脊液病原体检查 (CSF)。

油脂过氧化值的测定实验报告

油脂过氧化值的测定实验报告

油脂过氧化值的测定实验报告实验目的:
通过本实验,我们的目的是测定油脂的过氧化值,了解油脂的氧化稳定性,为食品加工和储存提供参考数据。

实验原理:
油脂在储存和加工过程中容易受到氧化作用的影响,产生酸价和醛类化合物,影响食品的品质和安全。

因此,测定油脂的过氧化值对于评价油脂的氧化稳定性具有重要意义。

本实验采用的是脂肪酸过氧化值的测定方法,通过测定油脂中过氧化物的含量来评价油脂的氧化程度。

实验步骤:
1. 样品准备,取适量的油脂样品,并将其溶解在乙醇中,制备成5%的溶液。

2. 过氧化反应,将样品溶液与甲醇和KOH混合,加入甘汞指示剂,然后进行振荡。

3. 滴定,用碘酸钾溶液对反应产物进行滴定,直至出现淡蓝色终点。

4. 计算,根据滴定所需的碘酸钾溶液的体积,计算出油脂的过氧化值。

实验结果:
经过实验测定,得出油脂的过氧化值为XX meq/kg。

实验结论:
根据实验结果,我们可以得出结论,油脂的过氧化值越高,说明油脂的氧化程度越高,氧化稳定性越差。

因此,在食品加工和储存中,应选择氧化稳定性好的油脂,并采取适当的保鲜措施,以确保食品的品质和安全。

实验注意事项:
1. 实验中需注意操作规范,避免产生化学品的溅洒和挥发。

2. 实验过程中应注意安全,避免接触到有毒化学品。

3. 实验结束后,应及时清洗实验器具,保持实验室的整洁。

总结:
通过本次实验,我们成功测定了油脂的过氧化值,并得出了相应的结论。

这对于食品加工和储存具有重要的指导意义。

希望本实验能够对大家有所帮助,谢谢!。

脂肪酸β氧化速率比色法检测试剂盒产品说明书(中文版)

脂肪酸β氧化速率比色法检测试剂盒产品说明书(中文版)

脂肪酸β氧化速率比色法检测试剂盒产品说明书(中文版)主要用途脂肪酸β氧化速率(β oxidation rate)比色法检测试剂是一种旨在通过棕榈酰肉碱氧化依赖性铁氰化物还原,即单位时间还原产物的峰值降低,即采用比色法来测定线粒体裂解样品中脂肪酸β氧化速率的权威而经典的技术方法。

该技术经过精心研制、成功实验证明的。

其适用于各种细胞、组织中线粒体裂解悬液样品(动物、人体等)脂肪酸β氧化速率的检测。

产品严格无菌,即到即用,操作简捷,性能稳定。

技术背景脂肪酸β氧化过程(β-oxidation)在动物组织的线粒体发生的脂肪酸代谢通路,可概括为活化、转移、β氧化及最后经三羧酸循环被彻底氧化生成CO2和H2O,并释放能量等四个阶段,是体内,尤其是组织器官,例如肝脏、心脏和骨骼肌等能量内平衡的关键代谢通路。

食物中甘油三酯提供体内三分之一的能量供给,骨骼肌和心脏消耗80%的总能量。

脂肪酸代谢异常,将导致脂质聚集在非脂肪组织内,产生慢性病的病理基础,例如糖尿病、心衰、肥胖症等。

其中β氧化,包括脱氢、水合、二次脱氢和硫解,是将活化的各种长度脂酰辅酶酯(acyl CoA esters)不断缩短为乙酰辅酶A(acetyl CoA)单位,最后经过三羧酸循环和呼吸链氧化成CO2和水。

脂酰基辅酶A脱氢酶(acyl CoA dehydrogenase;AD;EC.1.3.99.3)是脂肪酸代谢进入β-氧化后工作的重要酶之一。

通过底物棕榈酰肉碱(palmitoyl carnitine)的氧化产生的电子,由铁氰化物(ferricyanide)捕获而还原,其还原速率的检测,来评价β氧化的速率,即吸光值(420nm波长)的下降与时间的对应关系。

产品内容缓冲液(Reagent A)毫升反应液(Reagent B)毫升底物液A(Reagent C)毫升底物液B(Reagent D)毫升阴性液(Reagent E)毫升产品说明书1份保存方式保存反应液(Reagent B)、底物液A(Reagent C)和底物液B(Reagent D)在-20℃冰箱里;其余的保存在4℃冰箱里;底物液A(Reagent C)和底物液B(Reagent D)避免光照;有效保证6月用户自备1.5毫升离心管:用于反应操作的容器比色皿:用于比色的容器分光光度仪:用于比色分析实验步骤一、测定准备1.准备好待测样品(例如纯化线粒体),至于冰槽里备用2.开启并设定好分光光度仪(温度为25℃):波长420nm和470nm,间隔1分钟,读数6次(共5分钟),并置零3.从-20℃冰箱里取出试剂,置于冰槽里融化;底物液A(Reagent C)和底物液B(Reagent D)避免光照4.缓冲液(Reagent A)室温下均衡温度二、背景对照测定1.移取xx微升缓冲液(Reagent A)到新的比色皿2.加入xx微升反应液(Reagent B)3.加入xx微升底物液A(Reagent C)4.加入xx微升底物液B(Reagent D)5.上下倾倒数次,混匀6.在25℃温度下孵育3分钟7.加入xx微升阴性液(Reagent E)8.上下倾倒数次,混匀(限定在3秒之内)9.即刻放进分光光度仪检测,此为背景空对照【(OD420—OD470)0分钟-(OD420—OD470)5分钟】三、样品测定1.移取xx微升缓冲液(Reagent A)到新的比色皿2.加入xx微升反应液(Reagent B)3.加入xx微升底物液A(Reagent C)4.加入xx微升底物液B(Reagent D)5.上下倾倒数次,混匀6.在25℃温度下孵育3分钟7.加入50微升待测样品(500微克线粒体蛋白)(注意:样品须清澈)8.上下倾倒数次,混匀(限定在3秒之内)9.即刻放进分光光度仪检测,此为样品读数【(OD420—OD470)0分钟-(OD420—OD470)5分钟】四、计算氧化速率注意事项1.本产品为20次操作,包括背景对照2.操作时,须戴手套3.系统操作过程中,背景测定只需1次4.样品须澄清,至关重要5.加样后3秒内比色测定6.测定值由高到低变化;测定可持续5分钟7.比色测定后,比色皿须清洗彻底8.样本测定0分钟读数高于5分钟读数表明具有氧化功能9.建议待测样本线粒体蛋白浓度为500微克/50微升(本公司提供Bradford蛋白质浓度定量试剂盒-GMS30030.1)10.如果待测样品浓度过高或过低,可以调整样品浓度11.本公司提供系列脂肪酸代谢检测试剂产品质量标准1.本产品经鉴定性能稳定2.本产品经鉴定检测敏感。

实验资料(脂肪氧化过氧化值及酸价的测定)

实验资料(脂肪氧化过氧化值及酸价的测定)

脂肪氧化、过氧化值及酸价的测定(滴定法)一、目的要求熟悉油质的卫生标准,掌握反映油质酸败指标的测定方法。

二、原理脂肪氧化的初级产物是氢过氧化物ROOH,因此通过测定脂肪中氢过氧化物的量,可以评价脂肪的氧化程度。

同时脂肪氧化的初级产物ROOH可进一步分解,产生小分子的醛、酮、酸等,因此酸价也是评价脂肪变质程度的一个重要指标。

本实验通过油脂在不同条件下贮藏,并定期测定其过氧化值和酸价,了解影响油脂氧化的主要因素。

与空白和添加抗氧化剂的油样品进行比较,观察抗氧化剂的性能。

实验中过氧化值的测定采用碘量法,即在酸性条件下,脂肪中的过氧化值与过量的KI反应生成I2,用Na2S2O3滴定生成的I2,求出每千克油中所含过氧化物的毫摩尔数,称为脂肪的过氧化值(POV)。

酸价的测定是利用酸碱中和反应,测出脂肪中游离酸的含量。

油脂的酸价以中和1克脂肪中游离酸所需消耗的氢氧化钾的毫克数表示。

三、实验材料、仪器与试剂(一)实验材料油脂。

(二)仪器小广口瓶(40ml)2个,应保证规格一致,并干燥。

(三)试剂:1.丁基羟基甲苯(BHT);2.0.01mol/L Na2S2O3:用标定的0.1mol/L Na2S2O3稀释而成;3.氯仿一冰乙酸混合液:取氯仿40ml加冰乙酸60ml,混匀;4.饱和碘化钾溶液:取碘化钾10g,加水5ml,贮于棕色瓶中,如发现溶液变黄,应重新配制;5.0.5%淀粉指示剂:500mg淀粉加少量冷水调匀,再加一定量沸水(最后体积约为100ml);6.0.1mol/L氢氧化钾(或氢氧化钠)标准溶液;7.中性乙醚—95%乙醇(2:1)混合溶剂:临用前用0.1mol/L碱液滴定至中性;8.1%酚酞乙醇溶液。

四、操作步骤1.油脂的氧化:在干燥的小烧杯中,将60g油分为二等分,向其中一份中加入0.006g BHT,两份油脂作同样程度的搅拌至加入的BHT完全溶解。

向一个广口瓶中装入20g未添加BHT的油脂,另一个瓶中装入20g已添加BHT的油脂,按下表所列编号存放,一星期后测定过氧化值和酸价。

甘油三酯试剂盒(GPO-PAP法)标准化操作规程TG-SOP

甘油三酯试剂盒(GPO-PAP法)标准化操作规程TG-SOP

甘油三酯试剂盒(GPO-PAP 法)标准化操作规程1 目的规范实验室操作,保证检验工作顺利有效进行特制定此规程。

2 授权操作人经培训且考核通过的实验室检验人员。

3 适用范围试剂适用于体外定量检测人血清或血浆中甘油三酯的浓度。

4 检验方法本试剂盒采用氧化酶法测定甘油三酯的浓度。

5 检验原理样品中的甘油三酯在试剂中脂蛋白脂酶(LPL)的催化下水解成甘油和游离脂肪酸,在甘油激酶(GK)和三磷酸腺苷(ATP)的作用下生成的甘油被磷酸化,形成3-磷酸甘油,并经试剂中磷酸甘油氧化酶(GPO)的作用与氧产生过氧化氢和磷酸二羟丙酮,过氧化氢在过氧化物酶(POD)的催化下与苯胺类色原物质和4-氨基安替比林作用产生水和醌亚胺色素,醌亚胺色素的生成量与样品中甘油三酯的含量成正比,通过测定特定波长处反应最终生成的色素量,可以计算出样品中甘油三酯的浓度。

甘油三酯 + H 2O 甘油 + 游离脂肪酸甘油 + ATP 3-磷酸甘油 + ADP3-磷酸甘油 + O 2 GPO 磷酸二羟丙酮 + H 2O 2H 2O 2+ 4-氨基安替比林 + 苯胺类色原物质 POD 醌亚胺色素 + 水6 标本要求6.1样本为血清或血浆。

样本应在禁食10~14小时后采取,不应溶血。

采血管应避免使用甘油成分润滑的物品。

6.2血清分离后,请于当日测定,如当日不能完成测定,样本在2℃~8℃可稳定3天、-20℃可稳定数周。

6.3请勿在室温保存样本,以免引起测定值偏高。

7 试剂及配套品7.1试剂来源长春迪瑞医疗科技股份有限公司甘油三酯试剂盒(氧化酶法) 7.2试剂组成试剂盒组成 主要组成成份 浓度/范围 试剂1(R1)缓冲液100mmol/LLPL2Mg G K脂蛋白脂酶 ≥1250 U/L 甘油激酶 ≥1250 U/L硫酸镁 12.5mmol/L 三磷酸腺苷 0.70mmol/L EDTA 10mmol/LTOOS 1.875mmol/L 甘油磷酸氧化酶 ≥5000 U/L试剂2(R2)缓冲液 100mmol/LEDTA 10mmol/L 过氧化物酶 ≥750U/L 4-氨基安替比林 2.0mmol/L7.3试剂的稳定性与贮存:7.3.1试剂在2˚C~8˚C条件下,干燥、避光、密封贮存,有效期18个月。

S0131 脂质氧化_MDA_检测试剂盒 说明书

S0131 脂质氧化_MDA_检测试剂盒 说明书

脂质氧化(MDA)检测试剂盒产品简介:碧云天的脂质氧化(MDA)检测试剂盒(Lipid Peroxidation MDA Assay Kit)采用一种基于MDA 和硫代巴比妥酸(thiobarbituric acid, TBA)反应产生红色产物的显色反应,随后通过比色法用于对血浆、血清、尿液、动植物组织或细胞裂解液中MDA 进行定量检测,广泛用于脂质氧化(lipid peroxidation) 水平检测的试剂盒。

丙二醛(Malondialdehyde, MDA)是一种生物体脂质氧化的天然产物。

动物或植物细胞发生氧化应激(oxidative stress)时,会发生脂质氧化。

一些脂肪酸氧化后逐渐分解为一系列复杂的化合物,其中包括MDA 。

此时通过检测MDA 的水平即可检测脂质氧化的水平,因此MDA 的测定被广泛用作脂质氧化的指标。

生物体内的一些其它生化反应也会产生MDA ,例如thromboxane synthase 也可以催化产生,但只要在测定时设置适当对照即可观察到脂质氧化水平的变化。

丙二醛在较高温度及酸性环境中可与TBA 发生反应,形成红色的MDA-TBA 加合物,相应的反应原理图如下:MDA TBA MDA-TBA AdductMDA-TBA加合物在535nm 处有最大吸收,据此可以通过比色法进行检测。

另外,MDA-TBA 加合物也可以在535nm 被激发产生最大发射波长553nm ,据此也可以进行荧光检测。

特点:本试剂盒中采用了特殊的抗氧化剂,可以有效地抑制样品在检测过程中产生新的MDA ,使检测更加准确。

同时本检测试剂盒在检测过程中可以把部分MDA 天然形成的聚丙二醛分解成MDA ,使对脂质氧化的测定更加准确。

本试剂盒可以检测低达1μM 的MDA 。

血浆、血清样品中的MDA 含量通常在约2-4μM ,尿液中的MDA 含量通常在约5-30μM ,在本试剂盒的检测范围内,可以直接用本试剂盒检测血浆、血清、尿液样品等。

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20 mL×1 瓶
20 mL×1 瓶
2-8℃避光保存 6 个月
试剂三 (Reagent 3)
试剂四 (Reagent 4)
酸溶液 (Acid Reagent)
100 μmol/L 标准品 (100 μmol/L Standard
Solution)
10 mL×1 瓶 6 mL×1 瓶
20 mL×1 瓶 2-8℃保存 6 个月 6 mL×1 瓶 2-8℃保存 6 个月
结果计算
标准品拟合曲线:y = a x + b 血清 ( 浆 ) 中 LPO 浓度计算公式: LPO(μmol/L)= (ΔA586 - b) ÷ a × f 组织中 LPO 浓度计算公式: LPO(μmol/gprot)= (ΔA586 - b) ÷ a × f ÷ Cpr
注: y:标准 OD 值 - 空白 OD 值 x:标准品的浓度 a:标曲的斜率 b:标曲的截距 ΔA586:测定 OD 值 - 空白 OD 值 f:样本加入检测体系前的稀释倍数 Cpr:样本的蛋白浓度(gprot/L)
1
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基本信息 用途
本试剂盒适用于检测血清(浆)、尿液、组织样本中脂质过氧化物的含量。 检测范围及灵敏度
检测范围:0.70-80 μmol/L 灵敏度:0.70 μmol/L
2. Hraper H H, Hadley M. Malondialdehyde Determination as Index of Lipid Peroxidation[J]. Methods in Enzymology, 1990: 421-431.
3. Reed T T. Lipid peroxidation and neurodegenerative disease[J]. Free Radical Biology & Medicine, 2011, 51(7): 1302-1319.
20
700
30
600
40
500
50
200
80
标准品浓度(μmol/L):加入到反应体系之前的标准品浓度。
操作步骤
① 标准管:取 200 μL 8 个不同浓度的标准品,加入到 1.5 mL EP 管中; 测定管:取 200 μL 待测样本,加入到 1.5 mL EP 管中。
② 向步骤①中各管加入 650 μL 显色剂工作液,盖上盖,充分混匀。 ③ 向步骤②中各管加入 150 μL 试剂三。 ④ 盖上盖,充分混匀,45℃水浴 60 min 后流水冷却至室温。 ⑤ 将各管 1100×g,离心 10 min。 ⑥ 取上清 200 μL 于 96 孔板中,酶标仪 586 nm 处,测定各孔 OD 值。 注:试剂加入酶标孔时,应触酶标板底加入;加样要慢,避免产生气 泡。(气泡影响测定结果)
检测原理 在酸性且 45℃条件下,脂质过氧化物与显色剂结合,产生稳定的显色 基团,在 586 nm 处有最大吸收峰,在一定范围内吸光度值与浓度成正比。 本试剂盒检测组织和细胞样本时,需测定总蛋白浓度,推荐使用 BCA 法(货号:E-BC-K318-M)。
1
提供试剂和物品
试剂: 双蒸水、生理盐水(0.9% NaCl)或 PBS(0.01 M,pH 7.4)。 安全提示 配制试剂之前,请穿戴好防护装备。试剂盒中部分试剂含有危险性物 质。禁止食入,吸入,直接接触眼睛、皮肤和衣物。使用完后的试剂 瓶经彻底清洗后再处理。
3
实验准备
实验关键点 ① EP 管的密封性要好,避免泄露。 ② 加入到孔板中的上清液一定要澄清,否则再次离心。 ③ 在通风良好的地方操作。
LPO 浓度(μmol/L) <80
80-800
样本与双蒸水的体积比 不稀释 1:9
稀释倍数 1 10
4
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操作过程
检测环境室内温度 25-30℃,最佳检测波长 586 nm。 微量移液器的注意事项 ① 移液器取试剂前,请用该试剂平衡枪头(缓慢吸液,反复吹打三次)。 ② 不能将枪头外壁上的液体加入到反应体系。
背景介绍 脂质过氧化是指含有许多碳 - 碳双键的脂质被氧化的过程,是细胞和 组织氧化应激的一种指标 [1]。脂质过氧化是自由基与多不饱和脂肪酸 相互作用,产生脂质过氧化物。脂质过氧化物很不稳定,进一步分解 为丙二醛、4- 羟基 -2- 壬烯醛、丙烯醛、异前列腺素 [4,5],其中丙二醛 和 4- 羟基 -2- 壬烯醛为主要脂质过氧化产物 [2,3]。
批内差
用一个试剂盒,检测在检测范围内的高浓度样本、中浓度样本和低浓 度样本,各个浓度的样本重复检测 6 次 (n=6),计算出平均批内差 3.1%
CV=
s x
× 100%
s---Standard deviation
10
Focus on your research Service for life science 灵敏度 在加样量为 200 μL 的条件下,按照试剂盒操作规程测定 20 个空白和标 曲的 OD 值。绘制标准曲线,算出空白 OD 值的标准差。根据 IUPAC 公 认的公式 3 倍的标准差除以标曲斜率计算出灵敏度 0.70 μmol/L 回收率 向样本中添加高、中、低三个浓度的标准品,每个浓度样本重复检测 3 次(n=3),做回收率实验,得出平均回收率 99%
6
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操作表
标准管
不同浓度的标准品(μL)
200
待测样本(μL)
--
显色剂工作液(μL)
650
盖上盖,充分混匀
试剂三(μL)
150
测定管 -200 650
150
盖上盖,充分混匀,45℃水浴 60 min 后流水冷却至室温,1100×g, 离心 10 min。取上清 200 μL 于 96 孔板中,酶标仪 586 nm 处,测定 各孔 OD 值
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实例分析 例如检测人血清: 取 0.2 mL 人血清,按操作操作,结果如下: 标准曲线:y = 0.0162x -0.0065,空白管平均 OD 值为 0.073,测定管平均 OD 值为 0.219,计算结果为:
LPO(μmol/L)=(0.219 - 0.073 + 0.0065)÷ 0.0162×1 = 9.41(μmol/L)
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参考文献
1. Devasagayam T P, Boloor K K, Ramasarma T. Methods for estimating lipid peroxidation: an analysis of merits and demerits[J]. Indian J Biochem Biophys, 2003, 40(5): 300-308.
4. Wood L G, Gibson P G, Garg M L. Biomarkers of lipid peroxidation, airway inflammation and asthma[J]. European Respiratory Journal, 2003, 21(1): 177-186.
试剂准备 ① 检测前,试剂盒中的试剂平衡至室温。 ② 显色剂工作液:
将试剂一:试剂二按 3:1 的体积比混匀,现用现配。
样本准备
① 样本处理 具体操作请参见附录 2。
② 样本的稀释 在正式检测前,需选择 2-3 例预期差异大的样本稀释成不同浓度 进行预实验,根据预实验的结果,结合本试剂盒的线性范围(0.7080 μmol/L),请参考下表稀释:
标准曲线(数据仅供参考)
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附录 2 样本制备
样本要求 在测试之前选择 2-3 个预期差异大的样本进行预实验。以下样本处理 方法仅供参考
血清样本 取新鲜血液,在 25℃条件下静置 30 min 使血液凝结。4℃,2000×g 离 心 15 min,取上层淡黄色澄清液体即为血清。血清置于冰上待测,若 不能当天检测,于 -80℃保存,可储存一个月。
96 孔酶标板
1板
96 孔覆膜
2张
样本位置标记表
1张
注:试剂严格按上表中的保存条件保存,不同批次试剂盒中的试剂不能混用。
2
ห้องสมุดไป่ตู้
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所需自备物品 仪器: 酶标仪(580-590 nm)、水浴锅、离心机、涡旋混匀仪、微量移液器(1000 μL,200 μL,100 μL)。 耗材: 枪头(1000 µL,200 µL,100 μL)、EP 管(1.5 mL)。
0.70-80 μmol/L 0.70 μmol/L 99%
平均批间差
3.5%
平均批内差
3.1%
批间差
用三个不同生产批号的试剂盒,检测在检测范围内的高浓度样本、中 浓度样本和低浓度样本,每个批号每个浓度的样本重复检测 3 次(n=3), 分别计算每个批号各浓度样本的均值,并按公式计算出各浓度样本的 相对偏差,最后得出平均批间差 3.5%
编号
试剂一 (Reagent 1)
名称
储备液 (Substrate Stock
Solution)
规格 1
规格 2
(Size 1() 48T) (Size 2)(96T)
保存方式 (Storage)
30 mL×1 瓶
60 mL×1 瓶
2-8℃避光保存 6 个月
试剂二 (Reagent 2)
稀释液 (Diluent)
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