关于血球计数板的使用
血球计数板计数法
精度高
血球计数板由精密的网格构成，能够精确地 计算细胞数量，误差较小。
样本用量少
血球计数板计数法需要的样本量较少，适用 于珍贵样本的计数。
缺点
主观性强
血球计数板计数法需要人工识别和计数细胞，因此容易受到主观因素 的影响，不同操作者之间可能存在差异。
无法计数非网格区域细胞
血球计数板上的网格区域有限，对于非网格区域的细胞无法计数，可 能会造成计数误差。
改进样本处理方法，提高细胞分散效果，降低细胞聚集现象， 提高计数的准确性。
增加血球计数板的网格密度，以减少计数误差，提高计数的准 确性。
将血球计数板计数法与其他检测方法相结合，如染色法、流式 细胞术等，以提高计数的准确性和可靠性。
06 血球计数板计数法：血常规检测中的血细胞计数
红细胞计数降低
常见于缺铁性贫血、巨幼细胞性贫血、溶血性贫血等，也 可见于慢性病、肿瘤、月经期、孕妇等生理性贫血。
白细胞计数结果解读
白细胞计数正常值
成人（4.0~10.0） × 10^9/L，新生儿 （15.0~20.0） × 10^9/L。
白细胞计数升高
常见于感染、炎症、组织损伤、恶性肿瘤等，也可 见于生理性升高，如剧烈运动、体力劳动、月经期 和排卵期等。
常见于免疫性血小板减少症、再 生障碍性贫血、骨髓增生异常综 合征等，也可见于某些药物影响 或放化疗后骨髓抑制。
05 血球计数板计数法的优缺点
CHAPTER
优点
操作简便
血球计数板计数法是一种直接、快速的细胞 计数方法，操作简便，易于掌握。
适用范围广
该方法适用于各种类型的细胞计数，包括细 菌、红细胞、白细胞等。
总结词
血球计数板计数法在血常规检测中广 泛应用，用于准确计数红细胞、白细 胞和血小板等血细胞数量，为临床诊 断提供重要依据。
血球计数板的计数方法
血球计数板的计数方法血球计数板是一种常见的实验室设备，用于进行血液细胞计数。
本文将详细介绍血球计数板的计数方法，包括准备工作、样本处理、装载计数板、显微镜观察和计算结果等方面。
一、准备工作1.清洁：将血球计数板从存放位置取出，用酒精或去离子水擦拭干净，确保无灰尘和污垢。
2.检查：检查血球计数板是否完好无损，如有破损或变形应及时更换。
3.校准：使用前应进行校准，确保读数准确可靠。
二、样本处理1.采集样本：从受试者的静脉或指尖采集适量的血液样本，并将其加入到已经预先混合好的抗凝剂中。
2.混匀：轻轻摇动管子使其充分混匀，避免产生气泡。
3.稀释：将适量的稀释液加入到混合好的样本中。
通常情况下，白细胞需要进行稀释，而红细胞不需要稀释。
具体稀释倍数应根据实际情况而定。
三、装载计数板1.取出计数板：将血球计数板取出，放在干净的台面上，注意不要碰到玻璃面。
2.装载样本：使用移液器或吸管将稀释好的样本加入到计数板的样本槽中。
注意不要加过多，以免溢出。
3.震荡：轻轻震动计数板，使其充分混合。
四、显微镜观察1.调节显微镜：将显微镜调整到适当的倍率，并调节焦距，以便观察细胞。
2.观察细胞：在计数板上找到一个适当的视野，并开始观察细胞。
对于白细胞和红细胞，应分别选择不同的区域进行观察。
3.计数细胞：使用目镜和标尺，在每个小方格内逐一计数细胞。
对于白细胞和红细胞，应分别进行计数，并记录下来。
五、计算结果1.白细胞计算：根据已经记录下来的白细胞数量和稀释倍数，按照公式进行计算得出白细胞计数结果。
2.红细胞计算：根据已经记录下来的红细胞数量和稀释倍数，按照公式进行计算得出红细胞计数结果。
3.血红蛋白计算：根据已经记录下来的红细胞数量和血红蛋白浓度，按照公式进行计算得出血红蛋白计数结果。
4.其他指标计算：根据实验需要，可以进一步计算其他指标，如平均红细胞体积、平均血红蛋白含量等。
六、注意事项1.避免使用过期或损坏的血球计数板。
2.样本必须充分混匀，以确保稀释均匀。
血球计数板的计数方法
血球计数板的计数方法血球计数板是临床实验室中常用的一种计数工具，用于进行血细胞计数。
正确的计数方法对于获得准确的结果至关重要。
下面将介绍血球计数板的计数方法。
首先，准备工作。
在进行血球计数之前，需要准备好所需的实验器材和试剂。
包括血球计数板、显微镜、计数用盖玻片、血细胞计数液等。
确保实验器材的清洁和完整，以免影响计数结果。
其次，取样。
取适量的血液样品，使用吸管或注射器将血液滴在计数板的计数室中。
注意避免气泡的产生，以确保计数的准确性。
然后，计数。
将计数板放置在显微镜上，调节镜头至适当倍数。
在计数室的九个小方格中，选择几个进行计数。
根据所选小方格的面积和深度，计算出所选小方格的体积。
然后在显微镜下观察所选小方格中的血细胞数量，并进行计数。
接着，计算。
根据所选小方格的体积和计数结果，计算出每升血液中的血细胞数量。
通常情况下，计数板上的每个小方格代表的体积是已知的，根据这一体积和计数结果，可以得出血细胞的浓度。
最后，记录。
将计数结果准确记录下来，包括所选小方格的数量、计数板的倍数、计数室的体积等信息。
这些记录对于结果的准确性和可复现性具有重要意义。
在进行血球计数板的计数方法时，需要注意以下几点，首先，要保持耐心和细心，避免因匆忙而导致计数错误。
其次，要进行多次计数，并取平均值，以提高结果的准确性。
最后，要严格按照操作规程进行，避免操作失误。
总之，血球计数板的计数方法是临床实验室中常用的一种技术。
正确的计数方法能够确保结果的准确性，对于临床诊断和治疗具有重要意义。
希望本文介绍的计数方法能够对相关人员有所帮助，提高血球计数的准确性和可靠性。
关于血球计数板的使用及注意事项
血球计数板的使用及注意事项如下：
1.血球计数板在使用前应先进行清洗和消毒，以确保使用时的卫生
性和准确性。
2.使用血球计数板时，应严格按照使用说明书中的步骤进行操作，
避免出现误差。
3.在进行血细胞计数时，应调整显微镜的放大倍数，以确保检测结
果的准确性。
4.使用血球计数板时，应保持操作环境的清洁和安静，避免干扰和
误操作。
5.血盖片应具有一定的重量，平整、光滑、无裂痕，厚薄均匀一致。
6.红细胞稀释液应等渗、新鲜、无杂质微粒。
7.严格操作，从消毒、采血、稀释、充池到计数都应规范。
血球计数板的使用方法
血球计数板的使用方法
一、注意事项
1. 血球计数板只能用于血液检查，不能用于测量其他物质；
2. 将血球计数板放置于平面上，确保平稳，防止晃动和碰撞；
3. 在开始测定之前，要根据靶点的电极安装完整；
4. 滴血时要涂抹几种抗凝剂，防止血液沉淀。
如果血液较深，可在计数前用刨子将血液挖出。
二、步骤
1. 将血液精确滴在血球计数板上；
2. 连接血球计数板上的接头，打开电源；
3. 根据靶点调整电位器；
4. 将光学镜头的焦距调节到节点最佳状态；
5. 通过镜头观察血液样本，一次性计数红细胞、白细胞和血小板的数量；
6. 通过刀片移动的方式，进行血球的细致观察和计数；
7. 计数结束后，关闭电源，清理血球计数板上的血液，清洗各个部分，涂抹上抗菌剂。
血球计数板的使用方法
血球计数板的使用方法
血球计数板是一种用于测量血液中各种血球数量的实验室工具。
下面是使用血球计数板的一般步骤：
1. 准备工作：
- 清洁血球计数板：使用酒精或其他适当的清洁剂将血球计
数板彻底清洁，并确保完全干燥。
- 准备血液样本：采集血液样本，并将其置于抽血管中。
2. 充填血液样本：
- 将橡胶管连接至抽血管的一端，并将另一端放入含有适当
稀释液（例如乙醇，盐水等）的试管中。
- 轻轻压抽血管，让血液与稀释液混合，确保样本适当稀释。
3. 填充计数室：
- 将计数室的一角放入混合好的血液样本液中。
- 逐渐放松手指，使液体自然充满整个计数室。
4. 观察计数室：
- 使用显微镜，在10倍或40倍放大倍数下观察计数室的血
球图像。
- 记录计数室内的血球数量。
5. 计算血球数量：
- 将计数室中各种血球的数量进行计算和统计。
- 根据计数室内的面积和深度，计算总血球数量。
- 可以使用计数室所覆盖的血球数量与已知的面积，以得出
总血球数量的近似值。
6. 清洗和储存：
- 使用适当的清洁剂彻底清洗计数室，确保无血液残留。
- 将计数室储存在干燥，洁净的地方，以防止污染和损坏。
请注意，使用血球计数板可能需要一定的实验室训练和技巧，以确保准确性和可靠性。
在进行血液分析时，应遵循实验室的操作指南和安全规定。
血球计数板的计数方法
血球计数板的计数方法
血球计数板是一种常用的实验仪器，用于计算血球数量。
具体的计数方法如下：
1. 准备工作：首先，确保血球计数板干净，无污染。
可用洗涤剂和双蒸水进行清洗和冲洗，然后用无纹纸巾擦干。
2. 取血样：使用无菌针头采集一定量的血液样本，通常使用的样本量为0.02毫升。
3. 加样：将血液样本滴入血球计数板的计数区。
滴落的血液应均匀地分布在计数区的每个小方格内。
4. 观察：视觉放大镜或显微镜的帮助下，通过目镜观察计数区的血球数量。
5. 计数：随机选择若干个小方格，计算这些方格中血球的数量。
一般使用的计数面积为3个或4个方格。
6. 计算：将所选方格中的血球数量相加，然后乘以血球计数板的稀释倍数和倒干涉系数。
根据计算公式，可得出血球的浓度，常用单位为每立方毫米的血液中血球的数量。
7. 结果：将最终计算出的血球浓度记录下来，并报告给相关的医务人员或研究人员。
使用血球计数板进行血球计数时，需要严格按照操作规程进行，
避免出现污染或操作错误。
在完成计数后，要及时清洗血球计数板，以备下次使用。
血球计数板计数实验
环工综合实验血球计数板计数实验实验报告环境科学与工程学院实验中心使用血球计数板计数时，先要测定每个小方格中微生物的数量，再换算成每毫升菌液（或每克样品）中微生物细胞的数量。
2.血球计数板计算微生物数量的优缺点是什么？血球计数板与平板稀释法对细菌个数进行测定，结果往往差别很大。
分析原因。
答：⑴将细菌（或其他微生物）以染料（例如结晶紫）染色后，直接以显微镜观察的方式计数，再推算回细菌数，所得即为总菌数，即死菌、活菌一并计算。
优点：简单、快速、重复性高。
不足：不能区分死细胞和活细胞，应用范围较窄；一些小的细胞在显微镜下很难看到；样品中菌液浓度不能低于106个/mL；不能用于菌丝体或呈链状而不分散的微生物测定⑵血球计数板计量时所得到的结果为死菌与活菌的总数，而平板稀释法培养得到的为活菌数目，因此结果差异较大。
四、实验步骤1.稀释：取接种酵母菌的斜面一支，加入5ml无菌水，摇晃试管一分钟，使形成菌液；将菌液倒入洁净的150ml锥形瓶中，加结晶紫三滴，摇晃2分钟，再加入无菌水至50ml。
2.镜检计数室：在加样前，先对计数板的计数室进行镜检。
若有污物，则需清洗后才能进行计数。
2.加样品：将清洁干燥的血球计数板盖上盖玻片，再用无菌的细口滴管将稀释的酿酒酵母菌液由盖玻片边缘滴一小滴（不宜过多），让菌液沿缝隙靠毛细渗透作用自行进入计数室，一般计数室均能充满菌液。
注意不可有气泡产生。
4.显微镜计数：静止5分钟后，将血球计数板置于显微镜载物台上，先用低倍镜找到计数室所在位置，然后换成高倍镜进行计数。
在计数前若发现菌液太浓或太稀，需重新调节稀释度后再计数。
一般样品稀释度要求每小格内约有5—10个菌体为宜。
每个计数室选5个中格（可选4个角和中央的中格）中的菌体进行计数。
位于格线上的菌体一般只数上方和右边线上的。
如遇酵母出芽，芽体大小达到母细胞的一半时，即作两个菌体计数。
计数一个样品要从两个计数室中计得的值来计算样品的含菌量。
血球计数板计数法
5×400×10000×10＝2×108 。
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例6、 在用血球计数板（2mm×2mm方格）对某一稀释 50倍样品进行计数时，发现在一个计数室内（盖玻片下 的培养液厚度为0.1mm）酵母菌平均数为16个，据此估 算10mL培养液中有酵母菌 ▲ 个。
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计数室的刻度一般有两种规格，一种是一个 大方格分成16个中方格，而每个中方格又分成25 个小方格，共400小格；另一种是一个大方格分 成25个中方格，而每个中方格又分成16个小方格， 总共也是400小格。所以无论是哪种规格的计数 板，每一个大方格中的小方格数都是相同的。 每一个大方格边长为1㎜，则每一大方格的面积 为1㎜2，盖上盖玻片后，载玻片与盖玻片之间的 高度为0.1㎜，所以计数室的容积为0.1㎜3。
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5.对每个样品计数三次，取其平均值， 计算每1ml菌液中所含的酵母菌个数。
第一室 第二室
各中格中菌数
A
B
二室平均值
12345
A-五个中方格的总菌数 B-稀释倍数
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菌数/ml 16
6．清洗血球计数板 血球汁数板使用后，用自来水冲洗，切
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推导：1mm×1mm方格的计数
1mm×1mm表示计数室的边长，即一个大方格的边长。由于计 数室厚度为0.1mm，所以计数室的总体积为0.1mm3。
1．16×25型的计数公式： 酵母细胞个数／1mL=100个小方格细胞总数/ 100
×400×10000×稀释倍数
高中生物 必修3 血球计数板使用及相关计算
5．对于压在方格界线上的酵母菌应当计数同侧相邻两边上 的菌体数，一般可采取“数上线不数下线，数左线不数右 线”的原则处理，另两边不计数。
6．计数一个样品要从两个计数室中计得的平均数值来计算， 对每个样品可计数三次，再取其平均值。
7．血球计数板的清洁 血球计数板使用后，用自来水冲洗，切勿用硬物洗刷，洗 后自行晾干或用吹风机吹干，或用95%的乙醇、无水乙醇、 丙酮等有机溶剂脱水使其干燥。通过镜检观察每小格内是 否残留菌体或其他沉淀物。若不干净，则必须重复清洗直 到干净为止。
血球计数板的使用方法步骤
1．镜检计数室。在加样前，先对计数板的计数室进行镜检。 若有污物，则需清洗，吹干后才能进行计数；
2．加样品。将清洁干燥的血球计数板的计数室上加盖专用的 盖玻片，用吸管吸取稀释后的酵母菌悬液，滴于盖玻片边缘， 让培养液自行缓缓渗入，一次性充满计数室，防止产生气泡， 多余培养液可用滤纸吸去；
3．计数。稍待片刻（约5min），待酵母菌细胞全部沉降到 计数室底部后，将计数板放在载物台的中央，先在低倍镜下 找到计数室所在位置后，再转换高倍镜观察、计数并记录。
1．每天同一时间，各组取出本组的试管，用血球计数板计 数酵母菌个数，并作记录，连续观察7天。
2．从试管中吸出培养液进行计数之前，要将试管轻轻震荡 几下，这样使酵母菌分布均匀，求得的培养液中的酵母菌数 量误差小。
例2、 检测员将1 mL水样稀释10倍后，用抽样检测的方法 检测每毫升蓝藻的数量；将盖玻片放在计数室上，用吸管 吸ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ少许培养液使其自行渗入计数室，并用滤纸吸去多余 液体。已知每个计数室由25×16＝400个小格组成，容纳 液体的总体积为0．1 mm3。
现观察到图中该计数室所示a、b、c、d、e 5个中格80个 小格内共有蓝藻n个，则上述水样中约有蓝藻 ▲个／mL。 （参考答案：5n×105 ）
血细胞计数板的使用
血细胞计数板的使用：
①取清洁干燥的血球计数板，加盖玻片盖住网格和两边的槽。
②将待测菌液充分摇匀后，用无菌吸管吸少许，由盖玻片边缘或槽内加入计数板，使其自行渗入计数室内，计数室内不能有气泡。
静置5-10分钟。
③在低倍镜下找到小方格网后更换高倍镜观察计数，上下调动细螺旋，以便看到小室内不同深度的菌体。
位于分格线上的菌体，只数两条边上的，其余两边不计数。
即数上线就不数下线，数左边线就不数右边线。
④计数时，若使用刻度为25中方格×16小方格的计数板，计数四个角的4个中方格，及中央1个中方格的菌数（即80小方格）；若使用刻度为16中方格×25小方格的计数板，就数四个角的4个中方格（即100小方格）内的菌数。
每小方格中菌数以5-10个为宜，如菌液过浓可适当稀释。
⑤每个样品重复计数2-3次，取其平均值，按下式计算样品中的菌数。
刻度为25中方格×16小方格的计数板：
每毫升菌数=80小格内的菌数/80*4*10的6次方*稀释倍数
刻度为16中方格×25小方格的计数板：
每毫升菌数=100小格内的菌数/100*4*10的6次方*稀释倍数。
血球计数板法
血球计数板法
步骤
• • • • • • • 1.配制和分装马铃薯培养液(每管10ML) 2.另取一组试管每管加入10ML无菌水 3.灭菌(高压蒸汽灭菌) 4.接种(每次吸取0.1ML酵母菌溶液,不易过多) 5.培养 6.在相同条件下培养 7.定期取样测定酵母菌数量(每日取样时间相同,取样量为 1ML) • 8.血细胞计数 • 9.计数,记录 • 10.计算10ML酵母菌种群数量
单位时间的增长率R — 0.17 0.28 0.40 0.52 0.60 0.90 1.28
增长倍数 λ — 2.00 1.85 1.65 1.51 1.39 1.42
K/2
1.88 1.65
10
11 12 13
521
558 589 627
0.83
0.62 0.52 0.63
最 大 增 长 率
1.42 1.44 1.27
种群特征之间的关系
预测 影响
年龄组成
种群数量
性别比例
决定
迁移率
种群密度
决定
出生率、 死亡率
（凹型） ：生命早期有极高的死亡率，但是一旦活到某一年龄，死亡率就变得很 低而且稳定，如鱼类、很多无脊椎动物等。 （直线型）：种群各年龄的死亡基本相同，如水螅。小型哺乳动物、鸟类的成年 阶段等。 （凸型）：绝大多数个体都能活到生理年龄，早期死亡率极低 ，但一旦达到一 定生理年龄时，短期内几乎全部死亡，如人类、盘羊和其他一些哺乳动物等。
பைடு நூலகம்
例1 在用血球计数板（2mm×2mm方格）对某 一稀释50倍样品进行计数时，发现在一个方格 内（盖玻片下的培养液厚度为0.1mm）酵母菌平 均数为16，据此估算10mL培养液中有酵母 菌 ▲ 个。
关于血球计数板的使用及相关问题
个小方格细胞总数 ×400×10000×稀释倍数血球计数板的构造（三）（25×16） 二、血球计数板的使用方法步骤 1．镜检计数室。
在加样前，先对计数板的计数室进行镜检。
若有污物，则需清洗，吹干后才能进行计数； 2．加样品。
将清洁干燥的血球计数板的计数室上加盖专用的盖玻片，用吸管吸取稀释后的酵母菌悬液，滴于盖玻片边缘，让培养液自行缓缓渗入，一次性充满计数室，防止产生气泡，多余培养液可用滤纸吸去； 3．计数。
稍待片刻（约5min），待酵母菌细胞全部沉降到计数室底部后，先在低倍镜下找到计数室所在位置后，再转换高倍镜观察、计数并记录。
三、血球计数板的使用注意事项 《培养液中酵母菌种群数量的动态变化》实验是一个历时较长（7天左右）的实验，事前一定要做好周密的计划，定程序、定时间、定人员。
每天采用抽样检测法使用血球计数板对酵母菌进行计数，在计数时应从以下几方面注意。
1．每天同一时间，各组取出本组的试管，用血球计数板计数酵母菌个数，并作记录，连续观察7天。
2．从试管中吸出培养液进行计数之前，要将试管轻轻震荡几下，这样使酵母菌分布均匀，防止酵母凝聚沉淀，提高计数的代表性和准确性，求得的培养液中的酵母菌数量误差小。
3．如果一个小方格内酵母菌过多，难以数清，应当对培养液进行稀释以便于酵母菌的计数。
具体方法是：摇匀试管，取1mL 酵母菌培养液，加入成倍的无菌水稀释，稀释n 倍后，再用血球计数板计数，所得数值乘以稀释倍数。
以每小方格内含有4—5个酵母细胞为宜。
特别是在培养后期的样液需要稀释后计数。
4．活酵母有芽殖现象，若芽体达到母细胞大小的一半时，即可作为两个菌体计数，若芽体小于母细胞一半时为1个酵母细胞。
5．对于压在方格界线上的酵母菌应当计数同侧相邻两边上的菌体数，一般可采取“数上线不数下线，数左线不数右线”的原则处理，另两边不计数。
计数时，如果使用16格×25格规格的计数室，要按对角线位，取左上、右上、左下、右下4个中格(即100个小格)的酵母菌数；如果规格为25格×16格的计数板，除了取其4个对角方位外，还需再数中央的一个中格(即80个小方格)的酵母菌数。
血细胞计数板计数法
血细胞计数板计数法
血球计数板是一种特制玻片，厚度比普通载玻片厚。
玻片中有四条下凹的槽，构成三个平台。
中间平台较宽，被一短横槽隔为两半，每半边上面刻有一个方格网。
方格网上刻有9个大方格，其中只有中间的一个大方格为计数室，供微生物计数使用。
计数室通常有两种规格，分别是16×25型和25×16型。
不管是哪一种构造，每一大方格都是由400个小方格组成。
16×25型的计数板将计数室放大，可见它含16中格。
一
般取四角（1、4、13、16）四个中方格（100个小方格）计数。
细胞个数／1mL＝100个小方格细胞总数/ 100×400××稀释倍数。
25×16型的计数板中央大方格以双线等分成25个中方格，每个中方格又分成16个小方格，供细胞计数使用。
一般计数
四个角和中央的五个中方格（80个小方格）的细胞数。
细胞
个数／1mL＝80个小方格细胞总数/ 80×400××稀释倍数。
注意事项：从培养瓶中取培养原液计数必须摇匀培养液后再取样，培养后期的样液稀释后再计数。
血球计数板的使用方法
血球计数板的使用方法血球计数板是临床实验室中常用的一种工具，用于进行血液细胞计数。
它可以帮助医生了解患者的血液情况，对于疾病的诊断和治疗起着至关重要的作用。
下面我们来详细介绍一下血球计数板的使用方法。
首先，准备工作。
在使用血球计数板进行血液细胞计数之前，需要准备好所需的材料和设备。
包括血球计数板、显微镜、载玻片、吸管、生理盐水、血液标本等。
确保这些材料和设备的清洁和完好，以免影响实验结果。
接着，取血液标本。
使用无菌的吸管从患者的静脉或指尖抽取一定量的血液标本，然后将血液标本滴在载玻片上。
注意要避免气泡的产生，以免影响后续的观察和计数。
然后，稀释血液标本。
将取得的血液标本与生理盐水按照一定比例进行稀释，通常是1:100或1:200的比例。
确保充分混合后，取适量的稀释后的血液标本滴在血球计数板的计数室内。
接下来，观察计数室。
将已经滴上血液标本的血球计数板放在显微镜下，调节到合适的放大倍数。
观察计数室内的血细胞，包括红细胞、白细胞和血小板等。
注意观察细胞的形态和分布情况，以便后续的计数和分析。
然后，进行计数。
在显微镜下，随机选择若干个计数室内的小方格进行细胞计数。
根据所选小方格内的细胞数量，计算出单位体积内的细胞数量。
通常情况下，需要计数多个小方格，然后取平均值作为最终的计数结果。
最后，记录结果。
将所得的血细胞计数结果记录在相关的报告单或实验记录表上，确保结果的准确性和完整性。
同时，对实验过程中的注意事项和异常情况进行记录，以便后续的分析和审查。
总之，血球计数板的使用方法并不复杂，但需要严格按照操作规程进行。
只有在正确使用的情况下，才能得到准确可靠的实验结果，为临床诊断和治疗提供有力的支持。
希望本文所介绍的血球计数板的使用方法能对您有所帮助。
血球计数板的使用方法
血球计数板的使用方法血球计数板是临床检验中常用的一种实验工具，用于进行血液细胞计数。
它能够帮助医生了解患者的血液状况，对于疾病的诊断和治疗起着重要的作用。
在使用血球计数板时，我们需要按照一定的步骤和方法进行操作，下面将详细介绍血球计数板的使用方法。
首先，准备工作。
在进行血球计数板的使用前，需要准备好所需的仪器和试剂，包括血球计数板、显微镜、计数用液等。
同时，要确保仪器的清洁和完好，避免因为仪器问题导致实验结果的不准确。
第二步，取样。
在进行血球计数前，需要从患者的静脉血中抽取一定量的血液样本。
在抽取血样时，要注意使用无菌注射器和采血针，避免引入外部细菌或其他污染物质。
第三步，稀释。
将取得的血液样本进行稀释处理，使其浓度适合于在血球计数板上进行观察和计数。
通常情况下，我们会采用一定比例的稀释液将血液样本稀释，以便于在显微镜下观察到合适数量的血细胞。
第四步，填充血球计数板。
将稀释后的血液样本填充到血球计数板的计数室中。
填充时要注意不要使得计数室过满或者过少，以免影响后续的观察和计数。
第五步，观察计数。
将填充好的血球计数板放置在显微镜下，以适当的放大倍数观察血细胞的数量和形态。
在观察过程中，要仔细观察每一个计数室，并记录下其中的红细胞、白细胞和血小板的数量。
第六步，计数。
根据观察到的血细胞数量，进行相应的计数。
通常情况下，我们会选择几个计数室进行计数，并取其平均值作为最终的计数结果。
在计数过程中，要注意避免重复计数或者漏计，保证结果的准确性。
最后，记录结果。
将观察和计数的结果记录在实验记录表中，并进行相应的数据处理和分析。
在记录结果时，要注意标明样本的来源和处理方法，以便于后续的结果验证和分析。
总之，血球计数板的使用方法包括准备工作、取样、稀释、填充、观察计数、计数和记录结果等步骤。
在进行实验时，要严格按照操作规程进行，确保实验结果的准确性和可靠性。
希望以上介绍能够帮助大家正确使用血球计数板，提高实验效率和结果质量。
血球计数板计数公式
血球计数板计数公式
血球计数板计数公式用于计算血球计数板上各种细胞的浓度。
计数板计数公式为：
浓度 = 平均计数细胞数 / 血样体积
其中，平均计数细胞数是指在计数板上平均计数的细胞数，血样体积是指用于计数的血液样品的体积。
注：在使用血球计数板进行计数时，通常有一个乘数与预定视野上的计数格数相乘，以校正血球计数板上的视野面积与实际视野面积之间的差异。
一般乘数为1/10。
因此，对于使用该乘数的情况，应该将平均计数细胞数乘以1/10后再用上述公式计算浓度。
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关于“使用血球计数板对酵母菌进行计数”的问题探讨
摘要：“培养液中酵母菌种群数量的动态变化”是新课标教材“必修3：稳态与环境”中的学生分组实验，需要学生学会使用血球计数板进行准确计数酵母。
通过结合“培养液中酵母菌种群数量的动态变化”这一实验和有关血球计数板的命题的分析，对血球计数板的计数原理和操作方法中遇到一些问题进行探讨。
在人教版高中生物教材中，“探究培养液中酵母菌种群数量变化”只作了基本的原则性指导，对一些操作过程的细节，没有作细化阐述，而这些细节都是实验成功的关键所在。
如何正确使用血球计数板对酵母菌种群数量进行计数，是本实验的重点和难点。
根据中学实验条件，用显微镜直接计数法相对容易，只要指导学生掌握血球计数板的正确使用便可。
但学生对血球计数板结构的认识不够明确，教师也讲解不清晰。
而在近年来的高考题或模拟题中多次出现相关的试题，而且不仅从如何计算酵母的数量的角度来考查学生，还从操作方法或操作过程中出现的一些问题以及处理方法来考查学生。
而教师在遇到这些问题往往让学生记答案，学生对这些问题仍是感到疑惑。
笔者在近年来的教学实践中，将教师和学生在做该实验和相关命题遇到的一些问题，进行了分析探讨。
1 血球计数板的构造和计数原理
虽然不同版本的教材推荐使用的血球计数板的规格不同，人教版建议使用2mmx2mmx0.1mm方格，苏教版推荐使用1mmx1mmx0.1mm方格，但是血球计数板的使用原理和方法是相同的。
以下以1mmx1mmx0.1mm方格的计数板为例分析结构和计数原理。
每个血球计数板上有两个计数室（图1）。
血球计数板上的符号和数字（图1）的含义是：XB-K-25为计数板的型号和规格，表示此计数板中计数室分25个中格；0.1mm为盖上盖玻片后计数室的高；1/400mm2表示计数室面积是1mm2（计数室边长1mm），分400个小格，每小格面积是1/400mm2（图2），9个大方格中只有中间的有小方格的中央大方格才是计数室。
不要认为9个大方格都是计数室。
计数室通常也有两种规格：一种是16x25型，即大方格内分为16中格，每一中格又分为25小格（图2）；另一种是25x16型，即大方格内分为25中格，每一中格又分为16小格。
但是不管计数室是哪一种构造，它们都有一个共同的特点，即每一大方格都是由16x25=25x16=400个小方格组成。
计数时，若计数室是由16个中方格组成，数左上、左下、右上、右下的4个中方格（即100个小方格）的菌数。
如果是由25个中方格组成的计数室，除数上述4个中方格外，还需数中央1个中方格（即80个小格方）的菌数（图3）。
计数时对压在中格四条线上的细胞只计数相邻两边及其夹角上的细胞（一般选左边和上边的线）。
以1minx1mmx0.1 mm方格的计数板为例，如果是25个中格的计数室，计数的5个中格菌数共N个，那么1mL培养液中菌数=N/5x25x10000x稀释倍数。
如果是16个中格的计数室，计数的4个中格菌数共N个，那么1mL培养液中菌数=N/4x16x10000x稀释倍数。
2 血球计数板操作方法的注意事项
教师在介绍血球计数板的操作方法时，往往是比较简略的。
学生在操作中因为对操作要求不理解而造成操作不当，或者对操作中出现的异常问题的处理不知如何处理。
而通过分析近几年的有关血球计数板的相关试题，更注重操作方面的考查，而教师在这方面对学生分析阐述得少。
（1）在取样计数前，为什么要将酵母菌培养液进行振荡摇匀？
因为这样使酵母菌分布均匀，防止酵母凝聚沉淀，提高计数的代表性和准确性，减小培
养液中的酵母菌数量误差。
（2）为什么要先在计数室上盖上盖玻片，再滴加菌液？
通常滴加菌液时，采用的是“渗入法”：先将盖片盖住计数室，盖片的两端应搭放在计数室两侧的支持柱上。
从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的下边缘滴入一小滴（不宜过多，一般将滴管口沿盖片边缘与计数平台之间的空隙轻轻靠一靠即可），让菌悬液渗入并充满计数室，勿使气泡产生，并用吸水纸吸去多余菌液。
技巧：用吸水纸吸去多余的培养液时要迅速，保证计数室被培养液充满，以减少误差。
但也可采用“压滴法”：先将适量菌液滴加在计数平台上，再将盖片从一侧压到计数扳上，使盖片搭放在两则支持柱上，将菌液滴压平。
不管用哪种方法，都必须把握3个原则：加入待测菌液后，计数室内不能产生气泡；不能将菌悬液沾到盖玻片表面，以免污染显微镜的高倍镜头；不能将菌液沾到计数平台两侧的支持柱表面。
比较而言，渗入法更容易操作。
（3）如果先滴加菌液，再加盖玻片，容易出现什么误差？怎么处理？
如果先滴加菌液，再加盖玻片（压滴法），容易使菌液沾到计数平台两侧的支持柱表面，在支持柱表面形成一层水膜而使盖片不能完全落在支持柱上。
盖玻片由于液滴的表面张力作用而未能严密的盖到计数板表面上，使计数室内的体积增大，计数结果将偏高。
应将血球计数板和盖玻片洗净、烘干重做。
（4）如果计数室中出现气泡，会出现什么误差？怎么处理？
如果计数室中出现气泡，会使盖玻片下有部分空间没有充满菌液，是待计数的菌液体积减少，导致结果偏小。
应将血球计数板和盖玻片洗净、烘干重做。
也就要重新制片。
为什么不采用在盖玻片一侧滴加菌液，另一侧用吸水纸吸引的“引流法”？这是因为通过引流法，将盖玻片下方的液体可以进行置换，可能会去除部分气泡，但很难除尽气泡。
引出的菌液会带走部分细胞，造成误差。
菌液也容易沾到盖玻片表面，污染显微镜的高倍镜头而看不到目标。
（5）血球计数板应该如何正确清洗？
血球计数板使用结束后，应采用清水浸泡和冲洗的方式清洗，并进行烘干或自然晾干或用吹风机吹干。
不能使用试管刷等硬物进行擦洗。
镜检每个小格中是否存有污物、残菌，如不清洁，需重新清洗直至洁净。
这是因为血球计数板的方格线非常精细、脆弱，当用试管刷擦洗时会造成线条磨损。
也不能用普通的餐巾纸等进行拭擦，可能磨损线条，也会在计数室中留下纸纤维等污物。
要用专用的拭镜纸轻轻擦拭。
另外在使用血球计数板前需要在显微镜下检查，不干净要清洗烘干再使用。
（6）使用显微镜下进行计数，要注意哪些问题？
①血球计数板加样后，需静置片刻再使用显微镜计数。
这是因为计数室中的菌悬液有一定的高度（0.1mm）。
需要让细胞沉降到计数室底部的网格线中，避免细胞分布在不同液层深度，导致计数时被遗漏。
②先在低倍镜下，找到网格，也就是要先找到计数室（有小网格的部分）。
将第一个计数中格移到视野中心，再换高倍镜逐小格观察并计数。
观察时还应安排一个顺序，比如，依次按照左上中格、左下中格、右下中格、右上中格。
若有第五中格时，当计数到右上中格时，先向左移动两个中格，再往下移动两个中格便是最中间的一个中格。
小格的观察顺序最好是从左到右，从上到下逐格进行。
计数时压线的细胞本着计上不计下，计左不计右的原则，以免重复计数。
活酵母有芽殖现象，若芽体达到母细胞大小的一半时，即可作为两个菌体计数；若芽体小于母细胞一半时为一个酵母细胞。
③因为生活酵母细胞的折光率和培养液的折光率相近，所以观察时要减弱光照的强度，
将视野调暗些。
但不能太暗，否则也看不清。
④每个样品计数应重复3次（每次数值不应相差过大，否则应重新操作），取其平均值。
（7）如果细胞数目过多，难以数清，应该采取什么措施？
如果一个小方格内酵母菌过多，难以数清，应该进行稀释，然后再进行计数。
一般样品稀释度要求每小格内约有5～10个菌体为宜。
稀释时要注意：将1mL样液稀释10倍，不是加10mL无菌水，而是加9mL无菌水，即加水稀释后的体积是原来的10倍。
这点不仔细就很容易分析错。
例如将1mL样液稀释100倍，就应该加99mL水。
而不是90mL水。
（8）能不能区分活酵母细胞和死酵母细胞，避免计数出现较大误差？
探究“酵母菌种群数量变化”，理应为培养液中活菌体的数量变化，人教版教材中没有提出活菌和死菌的分开计数问题。
易理解成用总的菌体数作计数结果；苏教版教材中虽建议用台酚蓝染液染色，但没有说明这是对活菌（无色）和死菌（蓝色）的区分，并且是将染液直接滴在血球计数板上，菌液浓度改变，造成误差。
正确的做法应是另外制作装片，通过染色对活菌和死菌加以区分，算出两者比例，进一步换算出总菌体数中的活菌数。
由于台酚蓝染液配制相对复杂，且台酚蓝有一定致癌性，建议用吕氏碱性美蓝（亚甲蓝）染液对酵母菌染色，活的酵母细胞呈无色，死的或代谢衰弱的酵母细胞呈蓝色。