一种从发酵液中提取己二酸的方法[发明专利]

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(19)中华人民共和国国家知识产权局
(12)发明专利申请
(10)申请公布号 (43)申请公布日 (21)申请号 201710622975.1
(22)申请日 2017.07.27
(71)申请人 江南大学
地址 214122 江苏省无锡市蠡湖大道1800

(72)发明人 邓禹 赵梅 毛银 赵运英 
卢伟强 陆春波 
(74)专利代理机构 哈尔滨市阳光惠远知识产权
代理有限公司 23211
代理人 张勇
(51)Int.Cl.
C07C 51/42(2006.01)
C07C 51/43(2006.01)
C07C 51/47(2006.01)
C07C 51/48(2006.01)
C07C 55/14(2006.01)C12P 7/44(2006.01)
(54)发明名称
一种从发酵液中提取己二酸的方法
(57)摘要
本发明公开了一种从发酵液中提取己二酸
的方法,属于生物工程领域。

本发明的方法是将
发酵液经过固液分离、超滤、浓缩、离子交换、溶
液萃取、蒸发和结晶等步骤处理后,获得成品己
二酸产品。

采用本发明的提取方法提取得到的己
二酸收率和纯度都达到较高的水平,最终收率高
达71.7%,纯度可达95.
86%。

权利要求书1页 说明书5页CN 107382706 A 2017.11.24
C N 107382706
A
1.一种从发酵液中提取己二酸的方法,其特征在于,所述方法包括如下步骤:
(1)固液分离:发酵液去除菌体和杂质后,收集发酵液清液;
(2)超滤:利用超滤膜系统,将发酵液清液中的大分子蛋白及高分子杂质去除,收集超滤透过液;
(3)浓缩:浓缩超滤透过液;
(4)离子交换:将浓缩后的发酵液加入到经碱洗、去离子水洗、酸洗、去离子水洗至中性的阳离子交换树脂中,搅拌均匀,使树脂充分吸附后,过滤收集滤液;
(5)溶剂萃取:将收集到的滤液使用酸调节pH至酸性,然后使用有机溶剂萃取,收集萃取液;
(6)蒸发:蒸发萃取液中的有机溶剂;
(7)结晶:将旋转蒸发剩余的液体于4-8℃低温结晶,结晶后,于20-40℃进行完全结晶,得到己二酸成品。

2.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(1)中的发酵液中己二酸含量为10-30g/L。

3.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(1)中的发酵液是以重组大肠杆菌Mad2ΔatoB发酵得到;所述重组大肠杆菌Mad2ΔatoB是以敲除了atoB基因的大肠杆菌BL21(DE3)为宿主,分模块过量表达来自褐色喜热裂孢菌的异源基因β-酮硫解酶基因,3-羟酰基-辅酶A脱氢酶基因,3-羟基己二酰脱氢酶基因,5-羧基-2-戊烯酰辅酶A还原酶基因,己二酰辅酶A合成酶基因片段Tfu_2576、Tfu_2577;其中,β-酮硫解酶基因、3-羟酰基-辅酶A脱氢酶基因以pRSFDuet-1为表达载体;3-羟基己二酰脱氢酶基因、5-羧基-2-戊烯酰辅酶A还原酶基因以pTrc99a为表达载体;己二酰辅酶A合成酶基因片段Tfu_2576、Tfu_2577以pCDFDuet-1为表达载体。

4.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(2)中超滤膜系统采用的超滤膜元件为卷式膜,超滤膜的截留分子量为500-3000。

5.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(3)中浓缩是将超滤透过液浓缩至超滤液的60-90%。

6.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(4)中的阳离子交换树脂为732阳离子交换树脂;阳离子交换树脂的预处理方式为:首先用去离子水将阳离子交换树脂清洗3次,后用NaOH调节pH至10,搅动半小时后,用去离子水冲洗直至pH中性后加H 2SO 4调节pH至1,然后再用去离子水冲洗至中性。

7.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(4)中所述阳离子交换树脂的活性基团为H +。

8.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(5)中的有机溶剂为乙醇、甲醇或乙酸乙酯。

9.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(5)中的有机溶剂的体积为滤液的2-4倍,萃取次数为3次。

10.根据权利要求1所述方法,其特征在于,所述步骤(6)中的蒸发是将有机溶剂蒸发至萃取液的10-20%。

权 利 要 求 书1/1页CN 107382706 A
一种从发酵液中提取己二酸的方法
技术领域
[0001]本发明涉及一种从发酵液中提取己二酸的方法,属于生物工程领域。

背景技术
[0002]己二酸(Adipic acid,adipate)又称肥酸,是一种重要的有机二元酸,广泛应用于化工生产、有机合成工业、医药、润滑剂制造等方面。

[0003]目前己二酸的生产方式主要采用空气氧化法或硝酸氧化法,但是此种方法的产品收率低于60%,废水量排放量较大,原料和中间产物毒性很强,而且过程中产生大量的N2O 等温室气体,环境污染严重且不可持续。

因此,人们将目光聚焦到生物合成己二酸的道路上,且做了大量的基础工作。

以葡萄糖为底物全生物合成己二酸具有工艺流程简单、总投入成本低、可循环利用等突出优点,因此备受研究人员青睐。

但是这些方法均未涉及到发酵液中己二酸的提取,在发酵液中提取己二酸主要存在的问题是发酵液中杂酸多,难以分离一种有机酸,纯度无法保证。

而且菌生长状况等因素,也会导致发酵液中的有机酸提取比较困难。

[0004]本发明从葡萄糖为底物全生物合成己二酸的发酵液中提取己二酸,回收率达60%以上,纯度达90%以上。

方法简单绿色,提取出来的己二酸纯度高,无需二次处理,可直接使用。

发明内容
[0005]本发明的目的在于提供一种从发酵液中提取己二酸的方法,所述方法包括如下步骤:
[0006](1)固液分离:发酵液去除菌体和杂质后,收集发酵液清液;
[0007](2)超滤:利用超滤膜系统,将发酵液清液中的大分子蛋白及高分子杂质去除,收集超滤透过液;
[0008](3)浓缩:浓缩超滤透过液;
[0009](4)离子交换:将浓缩后的发酵液加入到经碱洗、去离子水洗、酸洗、去离子水洗至中性的阳离子交换树脂中,搅拌均匀,使树脂充分吸附后,过滤收集滤液;
[0010](5)溶剂萃取:将收集到的滤液使用酸调节pH至酸性,然后使用有机溶剂萃取,收集萃取液;
[0011](6)蒸发:蒸发萃取液中的有机溶剂;
[0012](7)结晶:将旋转蒸发剩余的液体于4-8℃低温结晶,结晶后,于20-40℃进行完全结晶,得到己二酸成品。

[0013]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(1)中的发酵液中己二酸含量为10-30g/L。

[0014]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(1)中的发酵液是以重组大肠杆菌Mad2△atoB发酵得到;所述重组大肠杆菌Mad2△atoB是以敲除了atoB基因的大肠杆菌BL21(DE3)为宿主,分模块过量表达来自褐色喜热裂孢菌的异源基因β-酮硫解酶基因,3-羟酰基-辅酶
A脱氢酶基因,3-羟基己二酰脱氢酶基因,5-羧基-2-戊烯酰辅酶A还原酶基因,己二酰辅酶A 合成酶基因片段Tfu_2576、Tfu_2577;其中,β-酮硫解酶基因、3-羟酰基-辅酶A脱氢酶基因以pRSFDuet-1为表达载体;3-羟基己二酰脱氢酶基因、5-羧基-2-戊烯酰辅酶A还原酶基因以pTrc99a为表达载体;己二酰辅酶A合成酶基因片段Tfu_2576、Tfu_2577以pCDFDuet-1为表达载体。

[0015]在本发明的一种实施方式中,所述发酵液的制备是:重组大肠杆菌Mad2△atoB种子液以2%的接种量接种至装有3L SOB培养基的5L发酵罐中,搅拌转速400rpm,通气量1vvm,2M NaOH维持pH为6.8~7.2,发酵温度37℃,培养至OD600为0.6-0.8时加1mM IPTG,降温至30℃诱导;待发酵培养基里面的葡萄糖消耗剩2g/L左右时补加甘油,以维持甘油浓度在4g/L的速度进行补料,直至甘油补加总量达到100g/L。

[0016]在本发明的一种实施方式中,所述SOB培养基的成分为2g/100ml胰蛋白胨、0.5g/ 100ml酵母粉、0.05g/100ml NaCl、2.5mM KCl、10mM MgCl2、0.8g/100ml葡萄糖、50μg/ml硫酸卡那霉素、50μg/ml氨苄青霉素、50μg/ml链霉素。

[0017]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(2)中超滤膜系统采用的超滤膜元件为卷式膜,超滤膜的截留分子量为500-3000。

[0018]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(3)中的浓缩是将超滤透过液浓缩至超滤液的60-90%。

[0019]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(4)中的阳离子交换树脂为732阳离子交换树脂;阳离子交换树脂的预处理方式为:首先用去离子水将阳离子交换树脂清洗3次,后用NaOH调节pH至10,搅动半小时后,用去离子水冲洗直至pH中性后加H2SO4调节pH至1,然后再用去离子水冲洗至中性。

[0020]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(4)中的阳离子交换树脂的活性基团为H+。

[0021]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(5)中的有机溶剂为乙醇、甲醇或乙酸乙酯。

[0022]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(5)中的有机溶剂的体积为滤液的2-4倍,萃取次数为3次。

[0023]在本发明的一种实施方式中,所述步骤(6)中的蒸发是将有机溶剂蒸发至萃取液的10-20%。

[0024]本发明的优点在于:使用此方法提取发酵液中的己二酸纯度高,产率高,节约时间及原料,降低生产成本。

采用本发明的方法,己二酸最终收率高达71.7%,纯度可达95.86%。

[0025]本发明将膜分离技术应用到己二酸提取中,有效去除发酵液中的大分子蛋白及糖类物质,有利用乙酸乙酯的萃取,有效避免了加入乙酸乙酯后形成乳浊液,无法分层,使得提取产物不纯的问题。

具有自动化程度高、能耗低、污染小等优势。

[0026]本发明采用阳离子树脂进行离子交换,可最大程度去除在发酵液中引入的盐分,有效避免了在提取过程中反复调节pH。

[0027]本发明在离子交换前采用膜过滤及浓缩,减轻了树脂的污染,并延长树脂使用寿命;另一方面也有效提升了树脂的吸附量和处理效率。

具体实施方式
[0028]实施例1:重组大肠杆菌Mad2△atoB的获得
[0029]Tfu_0875、Tfu_2399、Tfu_0068、Tfu_1648、Tfu_2576、Tfu_2577的序列已于申请日前在NCBI中公布。

[0030]EcoR I和HindIII双酶切质粒pRSFDuet-1,切胶回收目的基因片段(3798bp),用同样的酶酶切质粒pUC57-Tfu_0875,切胶回收得到目的基因片段Tfu_0875,然后将两个目的片段用T4DNA连接酶连接,化转JM109,菌落PCR挑取阳性转化子,并提取质粒酶切验证,验证正确后的质粒命名为pRSF-Tfu_0875。

Bgl II和Kpn I酶切质粒pRSF-Tfu_0875,切胶回收4936bp的目的基因片段,用同样的酶酶切质粒pUC57-Tfu_2399,切胶回收目的基因片段,然后将两个目的片段用T4DNA连接酶连接,化转JM109,菌落PCR挑取阳性转化子,并提取质粒酶切验证,验证正确后的质粒命名为pAD-1。

[0031]其他质粒使用同样的方法进行构建,最终片段Tfu_0068、Tfu_1648通过NcoⅠ、Hind Ⅲ连接到质粒pTrc99a上形成pAD-4质粒;Tfu_2576、Tfu_2577通过NcoⅠ、HindⅢ连接到质粒pCDFDuet-1上形成pAD-6质粒。

[0032]将pAD-1、pAD-4、pAD-6转入已敲除atoB基因的大肠杆菌BL21(DE3)中,制备得到重组大肠杆菌Mad2△atoB。

参见专利CN106834200A。

[0033]实施例2:上罐发酵及结果分析
[0034]3L培养基:SOB培养基,成分为2%胰蛋白胨+0.5%酵母粉+0.05%NaCl+2.5mM KCl +10mM MgCl2+8g/L葡萄糖+50μg/ml硫酸卡那霉素+50μg/ml氨苄青霉素+50μg/ml链霉素,补料加100g/L甘油。

[0035]种子液制备:甘油保藏的菌种于平板上划线,挑取单菌落接种于盛有50ml的LB液体培养基的250ml锥形瓶中,37℃、250rpm/min摇瓶过夜。

次日取500μl菌液转接于60ml LB 液体培养基中,37℃、250rpm培养至OD600达到0.6-0.8时,接种于5L发酵罐中。

[0036]发酵条件:2%接种量,37℃培养至OD600为0.6-0.8左右时加1mM IPTG 30℃诱导,搅拌转速400rpm,通气量1vvm,2M NaOH维持pH为6.8~7.2。

待发酵培养基里面的葡萄糖消耗剩2g/L左右时补加甘油,以维持甘油浓度在4g/L的速度进行补料,直至甘油补加总量达到100g/L。

[0037]结果分析:发酵过程中每4h取一次样,10000r/min离心2min将发酵液与菌体分离,0.22μm滤膜处理发酵液,用于进行HPLC(高效液相色谱法,美国伯Bio-Rad伯乐Aminex HPX-87H有机酸柱)检测,HPLC检测中流动相为5mM H2SO4,柱温为30℃,紫外检测器210nm。

上罐发酵己二酸产量为25.57g/L。

[0038]实施例3:发酵液中有机溶剂提取己二酸
[0039]按照以下方法提取实施例2的发酵液中的己二酸:
[0040](1)上罐发酵液首先通过离心机离心去除菌体及杂质,收集发酵液清液;[0041](2)将发酵液清液通过截留分子量为2500的卷式膜过滤以除去大的蛋白及高分子杂质,收集超滤透过液;
[0042](3)将超滤透过液80℃下旋蒸浓缩,将超滤透过液浓缩至超滤液的80%,收集浓缩液;
[0043](4)将浓缩液使用732阳离子交换树脂进行吸附,将发酵液中的Na+进行吸附,置换成H+,首先用去离子水将732阳离子交换树脂清洗3次,后用NaOH调节pH至10,搅动半小时后,交去离子水冲洗直至pH中性后加H2SO4调节pH至1后用去离子水冲洗至中性。

然后将浓缩液加入到阳离子树脂中,搅拌均匀,使树脂充分吸附后,通过漏斗过滤收集滤液;[0044](5)收集完的滤液使用H2SO4调节pH至3左右,后用滤液3倍体积的乙酸乙酯萃取3次,收集萃取液;
[0045](6)然后60℃旋蒸萃取液,旋蒸至萃取液的10%;
[0046](7)将旋蒸后的液体放于4℃冰箱进行低温结晶,结晶后,放于30℃烘箱中进行完全结晶,结晶后使用液相进行提取率的计算。

[0047]结果分析:每步提纯的液体用于进行HPLC(高效液相色谱法,美国伯Bio-Rad伯乐Aminex HPX-87H有机酸柱)检测,HPLC检测中流动相为5mM H2SO4,柱温为30℃,紫外检测器210nm,检测每步损失。

最终收率高达71.7%,纯度可达95.86%。

[0048]实施例4:发酵液中有机溶剂提取己二酸
[0049]按照以下方法提取实施例2的发酵液中的己二酸:
[0050](1)上罐发酵液首先通过离心机离心去除菌体及杂质,收集发酵液清液;[0051](2)将发酵液清液通过截留分子量为500的卷式膜过滤以除去大的蛋白及高分子杂质,收集超滤透过液;
[0052](3)将超滤透过液80℃下旋蒸浓缩,将超滤透过液浓缩至超滤液的90%,收集浓缩液;
[0053](4)将浓缩液使用732阳离子交换树脂进行吸附,将发酵液中的Na+进行吸附,置换成H+,首先用去离子水将732阳离子交换树脂清洗3次,后用NaOH调节pH至10,搅动半小时后,交去离子水冲洗直至pH中性后加H2SO4调节pH至1后用去离子水冲洗至中性。

然后将浓缩液加入到阳离子树脂中,搅拌均匀,使树脂充分吸附后,通过漏斗过滤收集滤液;[0054](5)收集完的滤液使用H2SO4调节pH至3左右,后用滤液3倍体积的乙酸乙酯萃取3次,收集萃取液;
[0055](6)然后60℃旋蒸萃取液,旋蒸至萃取液的20%;
[0056](7)将旋蒸后的液体放于8℃冰箱进行低温结晶,结晶后,放于40℃烘箱中进行完全结晶,结晶后使用液相进行提取率的计算。

[0057]结果分析:每步提纯的液体用于进行HPLC(高效液相色谱法,美国伯Bio-Rad伯乐Aminex HPX-87H有机酸柱)检测,HPLC检测中流动相为5mM H2SO4,柱温为30℃,紫外检测器210nm,检测每步损失。

最终收率达62.2%,纯度可达96.1%。

[0058]实施例5:发酵液中有机溶剂提取己二酸
[0059]按照以下方法提取实施例2的发酵液中的己二酸:
[0060](1)上罐发酵液首先通过离心机离心去除菌体及杂质,收集发酵液清液;[0061](2)将发酵液清液通过截留分子量为3000的卷式膜过滤以除去大的蛋白及高分子杂质,收集超滤透过液;
[0062](3)将超滤透过液80℃下旋蒸浓缩,将超滤透过液浓缩至超滤液的85%,收集浓缩液;
[0063](4)将浓缩液使用732阳离子交换树脂进行吸附,将发酵液中的Na+进行吸附,置换
成H+,首先用去离子水将732阳离子交换树脂清洗3次,后用NaOH调节pH至10,搅动半小时后,交去离子水冲洗直至pH中性后加H2SO4调节pH至1后用去离子水冲洗至中性。

然后将浓缩液加入到阳离子树脂中,搅拌均匀,使树脂充分吸附后,通过漏斗过滤收集滤液;[0064](5)收集完的滤液使用H2SO4调节pH至3左右,后用滤液3倍体积的乙酸乙酯萃取3次,收集萃取液;
[0065](6)然后60℃旋蒸萃取液,旋蒸至萃取液的15%;
[0066](7)将旋蒸后的液体放于4℃冰箱进行低温结晶,结晶后,放于20℃烘箱中进行完全结晶,结晶后使用液相进行提取率的计算。

[0067]结果分析:每步提纯的液体用于进行HPLC(高效液相色谱法,美国伯Bio-Rad伯乐Aminex HPX-87H有机酸柱)检测,HPLC检测中流动相为5mM H2SO4,柱温为30℃,紫外检测器210nm,检测每步损失。

最终收率高达72.5%,纯度可达91.3%。

[0068]实施例6:发酵液中有机溶剂提取己二酸
[0069]省略步骤(2)的超滤步骤,其他步骤与实施例3一致,结果发现加入乙酸乙酯萃取时形成乳浊液,无法分层或者分层不明显,需要离心进一步分离,若离心还不行,则下步将无法进行,提取不能完成。

这步省略不仅加倍了工作量,耗时,浪费乙酸乙酯。

[0070]实施例7:发酵液中有机溶剂提取己二酸
[0071]省略步骤(3)的浓缩步骤,其他步骤与实施例3一致,结果发现所有试剂的用量增加,工作处理量增加,由于每步处理量多,因此损失也会增加。

[0072]结果分析:每步提纯的液体用于进行HPLC(高效液相色谱法,美国伯Bio-Rad伯乐Aminex HPX-87H有机酸柱)检测,HPLC检测中流动相为5mM H2SO4,柱温为30℃,紫外检测器210nm,检测每步损失。

最终收率高达45.3%,纯度可达87.6%。

[0073]实施例8:发酵液中半制备液相提取己二酸
[0074](1)上罐发酵液首先通过离心机离心去除菌体及杂质,仅留下发酵液。

[0075](2)卷式膜过滤以除去大的蛋白及高分子杂质。

[0076](3)将过滤后的发酵液通过waters1525半制备液相进行收集。

[0077]结果分析:发酵液进行HPLC(高效液相色谱法,Waters Xbrige C18)检测,HPLC检测中流动相为A:MeOH(80%)、B:H2O(20%),梯度洗脱运行时间为25min,柱温为40℃,紫外检测器210nm,检测每步损失。

最终收率高达83%,纯度可达100%。

但是此方法耗时,需要使用较多的甲醇,成本较高。

而且半制备液相需要人为操作,一般手动,耗费人力。

[0078]虽然本发明已以较佳实施例公开如上,但其并非用以限定本发明,任何熟悉此技术的人,在不脱离本发明的精神和范围内,都可做各种的改动与修饰,因此本发明的保护范围应该以权利要求书所界定的为准。

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