《动物毒理实验》课件:实验3 皮肤刺激性试验

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重复性原则
实验应进行多次重复,以提高结果的稳定性 和可靠性。
实验设计的步骤和方法
确定研究目的
明确实验的目标和研 究问题,为后续实验 设计提供指导。
选择实验动物
根据研究目的和实验 需求选择合适的动物 种类、品系、年龄、 性别和数量。
设计实验分组
根据实验需求将实验 动物随机分为实验组 和对照组,确保两组 动物具有可比性。
实验动物福利和伦理审查
实验动物福利
关注实验动物的福利,提供适宜的生活环境和护理,尽可能减轻动 物的痛苦和不安。
伦理审查
进行实验动物伦理审查,确保实验方案符合伦理原则,审查实验的 必要性、替代方法、动物数量、痛苦程度等方面。
记录与报告
对实验过程进行详细记录,包括实验动物的基本信息、实验操作、药 物使用、动物反应等,并对实验结果进行客观、准确、及时的报告。
补毒理学动物实验基础
目 录
• 毒理学动物实验概述 • 实验动物的选择和管理 • 毒理学动物实验的设计与实施 • 毒理学动物实验的安全与防护 • 毒理学动物实验的评估和报告 • 毒理学动物实验的伦理和法规
01 毒理学动物实验概述
毒理学动物实验的定义
毒理学动物实验是指通过使用动物作为实验对象,研究外来物质对动物和人类的 毒性作用、作用机制和剂量-反应关系的实验方法。
应急处理
实验室应制定应急处理预案,确保实验人员在遇 到突发情况时能够迅速、正确地应对。
05 毒理学动物实验的评估和 报告
实验结果的评估和分析
数据分析
对实验数据进行统计分析,包括 描述性统计和推断性统计,以评 估实验结果的有效性和可靠性。
实验结果解读
根据实验结果,解读其对毒理学 研究的意义和潜在影响,以及其 对人类健康的潜在影响。

第十一章 毒理学实验方法讲解

第十一章  毒理学实验方法讲解


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染毒方法:
(1)静式染毒法 (2)动式染毒法

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静式染毒法
静式染毒是将实验动物放在一定体积的密闭容器 (染毒柜)内,加入一定量的受试样品,并使其 挥发,造成试验需要的受试样品浓度的空气,一 次吸入性染毒2h。

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(3)剂量和分组
实验动物随机分为4~5个剂量组。若使用水、植 物油、凡士林、羊毛脂外的赋形剂,则需设赋形 剂对照组。豚鼠或大鼠每一剂量组(单性别)不 少于5只;家兔每一剂量组(单性别)不少于4只。
各剂量组间要有适当的组距,可按等比或等差级 设置剂量,以使各剂量组实验动物产生的毒性反 应和死亡率呈现剂量-反应(效应)关系。
试验基本原则:
以经口灌胃法给予各试验组动物不同剂量 的受试样品,每组用一个剂量,染毒剂量 的选择可通过预试验确定。染毒后观察动 物的毒性反应和死亡情况。试验期间死亡 的动物要进行尸检,试验结束时仍存活的 动物要处死并进行大体解剖。本方法主要 适用于啮齿类动物的研究,但也可用于非 啮齿类动物的研究。
(5)所用染毒浓度和动物分组,每组所用动物性别、数 量及体重范围;
(6)计算LC50的方法; (7)染毒后动物中毒表现及出现时间和恢复情况、死亡
时间、大体解剖所见;
(8)列表报告结果(建议的表格形式见附录1-D),计 算的LC50及其95%可信区间;
(9)结论。


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3、急性经口毒性试验
适用范围:
本方法规定了动物急性经口毒性试验 的基本原则、技术和要求。
本方法适用于评价化学品的急性毒性 作用。

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毒理学实验三

毒理学实验三

毒理学实验三毒理学实验三皮肤刺激、眼刺激试验一、实验目的1、掌握家兔备皮技术2、掌握皮肤刺激性试验方法3、掌握家兔眼刺激试验方法4、学会观察受试物对皮肤和眼的损害作用二、实验材料与器材1、试验动物:家兔,每组1只,4人1组2、器材:手术剪、镊子、注射器,滴管、纱布、无刺激性胶布、玻璃纸三、实验内容及试验方法1、家兔脱毛及皮肤染毒(1)准备:备皮(家兔背部脊柱两侧),不要伤皮肤,范围3 cm×3 cm;(2)染毒:取受试物0.5 ml(500μg)涂一侧皮肤,另一侧为对照(记号笔画);(3)2.5 cm×2.5 cm两层纱布覆盖,加一层油纸后,无刺激性胶布固定;(4)固定时间10min;(5)10min后,用温水除去残留受试物;(6)除去受试物后10min 、20min、30min 观察,对皮肤刺激反应进行评分,评价刺激强度。

2、皮肤刺激反应观察、评分及评价(1)10min 、20min、30min分别评分,每个时间段除以实验动物数(每只动物平均分)选最高分为总积分(最强刺激)(见评价表);(2)皮肤刺激:红斑和水肿(不同程度),按表评价刺激强度;(3)多次皮肤刺激试验试验时间为14天,每天涂抹,1 小时后观察,总积分为总和除以实验动物数(每只动物)。

3、家兔眼染毒(1)染毒:受试物0.1ml(100g)滴入家兔一侧眼结膜囊内(轻轻拉开家兔一侧眼睛的下眼睑),另一侧作为空白对照;(2)冲洗:被动闭合1秒(分以下三种情况)(不冲洗、4秒后冲洗、30秒后冲洗)(生理盐水冲洗);(3)观察:记录10s、20s、30s眼局部反应和恢复情况,必要时用2%荧光素钠溶液或裂隙灯、放大镜检查角膜及虹膜的变化;4、眼刺激反应观察、评分及评价四、实验结果1、皮肤刺激反应观察、评分及评价(1)实验观察结果及评分记录10min:红斑形成(0分),水肿形成(0分)。

20min:红斑形成(0分),水肿形成(0分)。

动物实验基本技术ppt课件

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动物实验基本技术
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动物实验基本技术 1 实验动物的分组和编号 2 实验动物的抓取、保定 3 实验动物被毛去除 4 实验动物的给药与取血 55 实验动物的麻醉 6 实验动物的粪便采集 7 实验动物的处死
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一、实验动物编号与分组
(一)编号: 1、被毛涂染法:
实验动物:大鼠、小鼠。 常用染色剂:3-5%苦味酸溶液,可染成黄色。
右手持针,把 灌胃针头的前 端放进动物的 口腔,顺着上 腭部插入咽部, 顺咽后壁轻轻 往下推。
用右手食指将 针栓慢慢往下 压,将注射器 中的药液灌入 动物的胃中。
大鼠的灌胃 video.tudou/v/XMjAyMTgyMTI0.html?from= s1.8-1-1.2
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frpsala11wwwnordridesigncom28皮内注射wwwnordridesigncom将大小鼠放在金属笼或将大小鼠放在金属笼或小鼠固定器小鼠固定器中通过中通过金属笼或金属笼或大小鼠固定器大小鼠固定器的孔拉出鼠尾巴的孔拉出鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴用左手捏住鼠尾巴中下部用中下部用7575酒精棉球反复擦拭尾精棉球反复擦拭尾注射时以左手拇指注射时以左手拇指和中指捏住鼠尾两侧和中指捏住鼠尾两侧用食指从下面托起尾用食指从下面托起尾右手持右手持44号针头的号针头的注射器使针头与注射器使针头与静脉平行小于静脉平行小于3030度角度角大鼠亦可用舌下静脉注射小鼠尾静脉注射http
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眼眶静脉丛采血
方法:用左手捉鼠,拇指及中指抓住头颈部皮肤,食指按 于眼后,使眼球轻度突出,眼底球后静脉丛淤血。右手持
取内径为1.0-1.5mm的玻璃毛细管(临用前折断成1-1.5cm长的毛细管

《动物实验基本技术》PPT课件

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4.腹腔注射
➢准备:注射器吸入待注射药液 ➢过程:
✓一手固定动物,腹部向上,且呈头低位 ✓局部皮肤消毒 ✓一手持注射器刺入下腹部皮下,针头向前推
进3mm后,注射针头与皮肤面呈45°角刺 入腹肌
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4.腹腔注射
➢准备:注射器吸入待注射药液 ➢过程:
✓一手固定动物,腹部向上,且呈头低位 ✓局部皮肤消毒 ✓一手持注射器刺入下腹部皮下,针头向前推
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1.小鼠的抓取保定
➢抓取:
✓右手抓住鼠尾并提起,把小鼠置于笼盖或其 他粗糙面上,向后方轻拉
✓左手拇指和食指捏住其两耳和颈部皮肤 ✓右手拉紧小鼠尾部,拉直鼠身, ✓左手无名指和小指压紧尾巴和后肢,中指和
手掌心夹住背部皮肤,使小鼠呈一直线
➢保定:四肢及门牙用棉线固定在解剖台上
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1.小鼠的抓取保定
➢抓取:
✓右手抓住鼠尾并提起,把小鼠置于笼盖或其 他粗糙面上,向后方轻拉
✓左手拇指和食指捏住其两耳和颈部皮肤 ✓右手拉紧小鼠尾部,拉直鼠身, ✓左手无名指和小指压紧尾巴和后肢,中指和
手掌心夹住背部皮肤,使小鼠呈一直线
➢保定:四肢及门牙用棉线固定在解剖台上
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2.大鼠的抓取保定
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分组原则--随机分组(1)
➢完全随机分组--如小鼠20只,分甲、乙两组
✓小鼠编为1号~20号
✓随机数表中取出20个随机数依次分配给1~20 号动物
✓设单数为甲组,双数为乙组(表1-3-2),结 果甲组9只,乙组11只
✓再查随机数表的第21个数为13,将13÷11=1
余2。则将乙组中的第二位(6号动物)取出

实验三 一次给药皮肤刺激实验

实验三  一次给药皮肤刺激实验

实验三一次给药皮肤刺激实验一、实验目的掌握皮肤染毒技术,了解受试物对皮肤是否有刺激或腐蚀作用。

二、实验器材1、实验动物:小鼠24只,每组4只2、材料共用:剃毛器1把、剪毛剪2把、记号笔1支、透明胶1卷、纯桉叶油素10 mL、50%桉叶油素10 mL、25%桉叶油素10mL、3%吐温80 10mL、清洁温水500 mL 每组:长镊子1支、医用手套2双、、注射器(1 mL)1支、烧杯(50 mL)1个、纱布(1.5 cm×1.5 cm)8张。

三、实验内容与步骤1、保定:一人用一手抓住小鼠颈部皮肤,另一手抓住小鼠尾部,轻轻按住固定在操作台面上。

2、剃毛:小鼠保定后,一人用电动剃毛剪将小鼠背部脊柱两侧的毛剃净,不可损伤表皮,去毛范围左、右各约2 cm×2 cm。

注意需将皮肤绷紧,把剪刀贴紧皮肤剪,但不可用手提起被毛,以免剪破皮肤;依次剪毛,不要乱剪;剪下来的被毛集中在一个装水的烧杯内,勿遗留在和操作台周围。

3、破损皮肤的制备:给药前24 h,用75%酒精消毒小鼠裸露皮肤部位,用消毒针头在剃毛部位做“井”字状划划痕,划破皮肤,以有组织液和血液渗出为度。

3、染毒:吸取1 mL受试物滴于两层灭菌纱布(1.5 cm×1.5 cm)上,将浸有受试物的纱布覆盖在左侧裸露皮肤区域,用透明胶布固定,右侧皮肤以3%吐温80为对照。

4、观察:一次给药4 h后,以温水洗去残留受试物,观察1 h,24 h、48 h、72 h涂抹部位的红斑和水肿等反应。

按表1进行皮肤反应评分,以受试动物积分的平均值进行综合评价,将观察结果填入表3中。

5、结果判定:根据24、48和72 h各观察时点最高积分均值,按表2判定皮肤刺激强度。

6、实验分组:见表4四、注意事项在实验操作过程中,注意安全,以免被小鼠咬伤,防止小鼠丢失;实验使用的有毒化学药品妥善处理;做好实验观察记录。

五、思考题皮肤刺激实验与皮肤毒性实验有何区别?表 1 皮肤刺激反应评分表3 皮肤刺激强度分级表 3 桉叶油素对小鼠急性皮肤刺激性试验结果动物编号1 h 24 h 48 h 72h样品对照样品对照样品对照样品对照红斑水肿总分红斑水肿总分红斑水肿总分红斑水肿总分红斑水肿总分红斑水肿总分红斑水肿总分红斑水肿总分1234总积分均值刺激强度分级表4 实验分组情况组别ⅠⅡⅢⅣⅤⅥ完整皮肤100% 50% 25% 100% 50% 25% 完整皮肤100% 50% 25% 100% 50% 25% 破损皮肤100% 50% 25% 100% 50% 25% 破损皮肤100% 50% 25% 100% 50% 25%。

专题一 兽药的毒理学试验和安全性评价ppt课件

专题一 兽药的毒理学试验和安全性评价ppt课件
专题一 兽药的毒理学试验和安全性评价
一般毒性试验: 急性毒性试验 亚慢性毒性试验 长期毒性试验
特殊毒性试验: “三致”试验 致畸、致突变、致癌
2021/4/17
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第一节 一般毒性试验ห้องสมุดไป่ตู้
一、急性毒性试验 (1)经口或注射给药的急性毒性试验 (2)经皮给药的急性毒性试验
目的: (1)求出受试物的半数致死量(LD50)。 (2)阐明受试物急性毒性的剂量-反应关系与中毒特征,为急
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7.试验步骤
TA97a TA98 TA100 TA102
增菌培养液 增菌培养液 增菌培养液 增菌培养液
37 ℃水浴 振荡培养
活菌数不得少于1~2 x 109/ml
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试验步骤
受检物 + 菌液 + S9混合液 或磷酸盐缓
(0.1-0.2ml) (0.1ml) (0.5ml)
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组氨酸缺陷型(即突变型) 鼠伤寒沙门氏菌
缺乏组氨 酸的培养基
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加有致突变原 的培养基
野生型(能合成组氨酸)
。。。。 。。。
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2.菌种 组氨酸营养缺陷型鼠伤寒沙门氏菌TA97a、TA98、 TA100、TA102 四个标准株。
3.剂量分组 每次试验要求4--5个剂量组,每个剂量做三个平行平皿。
给药途径:与临床用药途径相同。内服时需灌胃。
给药剂量:以LD50为依据,设三个剂量组。
高剂量组 LD50的0.8-0.5 ; 低剂量组 LD50的0.05-0.1
并设阴性对照和阳性对照组,阳性对照物可选用已知的
能诱发微核阳性的诱变剂。

毒理学实验 ppt课件

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3. 经皮肤染毒
① 斑贴法(家兔)
被毛的去除:剪毛、拔毛、脱毛
② 浸尾法(大、小鼠)
4. 注射染毒:静脉注射、肌肉注射、腹腔注 射、皮下注射、皮内注射
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(七)生物标本采集
1.血液采集:
① 大、小鼠鼠尾采血法
② 眼眶静脉丛采血法
③ 腹主动脉或股动(静)脉采血法 ④ 断头采血法
⑤ 家兔耳缘静脉采血法
6.麻醉后急性放血法 7.空气栓塞法 8.化学药物致死法 9.开放性气胸法
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微核实验动物染毒
• 阴性对照组:生理盐水 • 阳性对照组:环磷酰胺40-60mg/kg • 高剂量组:敌敌畏20mg/kg • 中剂量组:敌敌畏10mg/kg • 低剂量组:敌敌畏5mg/kg
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实验二 急性经口毒性试验
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• 强酸或强碱物质如pH≤2或pH≥11.5, 由于可预见其腐蚀特性,不必做本试验;
• 若已知受试样品有很强的经皮吸收毒性 (LD50≤200mg/kg bw)的物质不必 进行本试验;
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试验方法
1、受试样品
• 液态受试样品采用原液或人类实际应用浓度
• 固体受试样品经研磨,过100目筛后用水或 适当的赋形剂(如凡士林、阿拉伯树胶、乙
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2) 染毒
• 受试样品0.5ml(g)直接涂布在皮肤上, 用二层纱布(2.5cm×2.5cm)和一层玻 璃纸或类似物覆盖,再用无刺激性胶布和 绷带加以固定。另一侧皮肤作为对照。采 用封闭试验,敷用时间为4h。
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• 对化妆品产品而言,可根据人的实际使用 和产品类型,延长或缩短敷用时间。

皮肤刺激,皮内试验PPT课件

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供试品制备
根据产品标准的规定制备供试品。
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试验动物
应使用清洁级健康、初成年的、未使用 过的试验用(新西兰)兔,雌雄兼用, 同 一品系,同一饲养条件 体重不低于2kg。
预试验
试验材料初试至少采用2只动物。
初试反应如可疑或不明确, 应考虑进行复 试。
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试验步骤
刺激最高记分
记分
0 1 2 3 4 0 1 2 3 4 8
注: 记录并报告皮肤部位的其他异常情况。
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表15皮肤刺激试验结果评价
反应类型
极轻微 轻度 中度 重度
平均记分
0.0 ~ 0.4 0.5 ~ 1.9 2.0 ~ 4.9 5.0 ~ 8.0
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结果评价
按下列规定确定原发性刺激指数(PII)。 将每只动物在每一规定时间试验材料引起的
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表17 刺激记分
反应
记分
红斑和焦痂形成
无红斑
0
极轻微红斑(勉强可见)
1
清晰红斑
2
中度红斑
重度红斑(紫红色) 至焦痂形成
3
水肿形成
4
无水肿
0
极轻微水肿(勉强可见)
1
清晰水肿 (肿起, 不超出区域边缘) 中度水肿(肿起约1mm)
2
重度水肿(肿起超过1mm, 并超出接触区)
3
4
刺激最高记分
按下表规定的分类系统, 描述每一接 触部位在每一规定时间内皮肤红斑和水 肿反应情况并评分, 记录结果以出具试验 报告。
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表14 观察损伤情况及评分标准

局部刺激实验课件

局部刺激实验课件
急性皮肤刺激试验结果从动物外推到人的可靠性很有 限。白色家兔在大多数情况下对有刺激性或腐蚀性的物质 较人类敏感。若用其他品系动物进行试验时也得到类似结 果,则会增加从动物外推到人的可靠性。
局部刺激实验
14
表3 皮肤刺激反应评分
局部刺激实验
15
表4 皮肤刺激强度评价
局部刺激实验
16
4
测试动物在反复接触40.6%阿维菌素·炔螨特微乳剂 后,机体产生免疫传递的皮肤反应的可能性,从而确定 该农药的变态反应性(致敏)。
二、 实验原理
具有致敏作用的化学物经一定途径进入机体,与组 织蛋白结合形成完全抗原,刺激免疫活性细胞产生致敏 淋巴细胞或体液抗体;经1-2周致敏期,使体内免疫反 应得到充分发展,形成一定数量的致敏淋巴细胞或特异 抗体。当再次接触(激发)时使机体对该化合物产生感 受性增高的状态,以一定的异常形式表现出来。
局部刺激实验
13
40.6%阿维菌素·炔螨特微乳剂的皮肤刺激试验
五、 结果判断及评价
于清除受试样品后的1h、24h、48h和72h各观察受试 部位的皮肤反应,按表3进行皮肤反应评分,以受试物积 分的平均值进行综合评价,根据24h、48h和72h各观察时 点最高积分均值,按表4判定皮肤刺激强度。
皮肤刺激评价除根据表4的评分外,还应结合刺激作 用的性质、恢复程度等进行化学品刺激作用的综合评价。 单独的积分值不能作为受试样品的刺激性质的最后评判, 可以作为参考值。
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表5 皮肤致敏反应试验评分标准
局部刺激实验
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表6 致敏率强度分级表
局部刺激实验
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若实验结果如下:
皮肤刺激平均分值为3;眼刺激积分指数 (I.A.O.L)最高为18.5,平均积分指数 (M.I.O.L)7d后小于20;致敏率为0%。如何 对结果进行分级和评价?

一般毒性实验-ppt课件

一般毒性实验-ppt课件
(五)观察指标
一般观察:外观体征、行为活动、体重、摄食 眼部检查 血生化指标 尿常规检查 体温、心电图检查 病理检查:大体解剖、组织病理学 特异性指标
(二) 一般毒性试验
结果评价
剂量依赖性趋势 反应重现性 相关指标变化 性别差异 效应的时间变化趋势 效应差异的大小 历史对照的作用:差异是否由受试物引起
概念
亚慢性毒性:实验动物或
人连续较长期(约相当于生 命周期的1/10)接触外源化 学物所产生的中毒效应。
(二) 一般毒性试验
第三节:亚慢性和慢性毒性试验
概念
慢性毒性:实验动物或人
长期接触外源化学物所引起 的中毒效应。长期对啮齿类 动物至少12个月,也可终身 染毒。
(二) 一般毒性试验
亚慢性和慢性毒性试验主要目的
参考资源
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谢谢!
亚慢性毒性的剂量选择 阴性对照组 低剂量组 中剂量组 高剂量组
急性毒性的阈剂量 1/20~1/5 LD50
组距:2~4倍
(二) 一般毒性试验
慢性毒性的剂量选择 阴性对照组 低剂量组 中剂量组 高剂量组
亚慢性阈剂量或其 1/5~1/2 1/10 LD50
组距:2~10倍
(二) 一般毒性试验
g/kg体重 g/60kg体重
<0.05
0.1
0.05
3
中等毒
50
100
44
0.5
30
低毒 微毒
500 5000
1000 10000
350 2180
5 >15
250 >1000
(二) 一般毒性试验
第二节:局部毒性试验 急性眼刺激试验
皮肤刺激试验

动物学研究毒性机制的研究左ppt课件

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1.单线态氧
单线态氧具有较高的反应性。
➢ Δ单线态氧(1ΔgO2) 寿命很长,但不含不 配对电子,不属于自由基。 ➢ Σ单线态氧(1ΣgO2) 具有很高的反应性。 半减期很短,形成后立即衰变为Δ单线态氧 状态。
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2.超氧阴离子自由基(O2-·)
双原子氧经单电子还原而形成,其 化学特性主要取决于溶液环境。
损害或外源化学物存在时,可大大提高 这一来源的ROS。细胞色素还原酶参与细 胞色素P450和b5的氧化还原反应,当它们 催化某些外源化学物还原然后发生自氧化时, 也能产生O2-·和H2O2。
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2.外源化学物的氧化还原代谢
许多外源化学物可通过各种不同氧化 还原循环(redox cycling)途径形成自由基 。 (图4-3)。
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(5)过氧化酶体
刺激过氧化酶体生物合成的化学物能诱 导H2O2的过量生成。
过氧化酶体含有高浓度的氧化酶,如乙 醇酸氧化酶(glycollate oxidase)或D-氨 基酸氧化酶(D-amino acid oxidase),能 催化分子氧二价还原形成H2O2。
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➢ 水溶液中,弱氧化剂,能氧化某些分子 (维生素C和巯基);
➢ 强还原剂,能还原几种含铁复合物, (细胞色素C和Fe2+-EDTA)。
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O2-·是两种增毒途径的启动物质
➢ 形成过氧化氢,然后形成羟基自由基(·OH); ➢ 产生过氧亚硝基[peroxynitrte(ONOO-)], 最终形成二氧化氮(·NO2)和碳酸盐阴离子自 由基(CO3-·)。
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皮肤刺激

皮肤刺激

皮肤刺激反应评分
红斑形成 无红斑 勉强可见 明显红斑 中等~严重红斑 紫红色红斑并有焦痂形成 水肿形成 无水肿 勉强可见 皮肤隆起轮廓清楚 水肿隆起约1mm 水肿隆起超过1mm,范围扩大 总分
积分 0 1 2 3 4 0 1 2 3 4 8
红斑形成总分+ 红斑形成总分+水肿形成总分 反应积分均值= 反应积分均值= 合计动物数
硫酸。 3.涂抹受试物:选择的受试物为4%硫酸。 涂抹受试物:选择的受试物为 硫酸 脱毛后定量涂敷1ml受试物 , 再盖上医 受试物, 脱毛后定量涂敷 受试物 用纱布、胶布加以固定 , 开始计时 。 受 用纱布 、 胶布加以固定,开始计时。 试物与皮肤接触1.5~2h后取下包扎 , 用 后取下包扎, 试物与皮肤接触 后取下包扎 温水洗净皮肤上的残存受试物。 温水洗净皮肤上的残存受试物。Fra bibliotek步 骤
1.动物的选择:选用兔,2.0~3.0kg。 动物的选择:选用兔, 。 动物脱毛:将动物固定, 2.动物脱毛:将动物固定,局部被毛用剪刀剪 去 , 去毛范围为左右各约 去毛范围为左右各约3cm×3cm。 取脱毛 × 。 剂在剪毛区均匀地涂一薄层, 剂在剪毛区均匀地涂一薄层,3~5min后,用细 后 玻璃棒轻轻刮动去毛, 玻璃棒轻轻刮动去毛,并用棉球沾温水轻轻擦 或用温水冲洗,洗净脱毛剂。 洗,或用温水冲洗,洗净脱毛剂。
动物皮肤刺激试验
目 的
学习实验动物脱毛技术, 学会通 学习实验动物脱毛技术 , 过观察皮肤刺激反应评价刺激强度, 过观察皮肤刺激反应评价刺激强度 , 掌握急性皮肤刺激试验的方法。 掌握急性皮肤刺激试验的方法。
目的及要求
学习实验动物脱毛技术, 1 . 学习实验动物脱毛技术 , 学会通过 观察皮肤刺激反应评价刺激强度。 观察皮肤刺激反应评价刺激强度。 2.掌握急性皮肤刺激试验的方法。 掌握急性皮肤刺激试验的方法。

四、皮肤刺激性腐蚀性试验

四、皮肤刺激性腐蚀性试验

四、皮肤刺激性腐蚀性试验四、皮肤刺激性/腐蚀性试验Dermal Irritation/Corrosion Test1 范围本规范规定了动物皮肤刺激性或腐蚀性试验的基本原则、要求和方法。

本规范适用于化妆品原料及其产品安全性毒理学检测。

2 规范性引用文件OECD Guidelines for Testing of Chemicals (No.404, July 1992)USEPA OPPTS Harmonized Test Guidelines (Series 870. 2500, Aug. 1998 )3 试验目的确定和评价化妆品原料及其产品对哺乳动物皮肤局部是否有刺激作用或腐蚀作用及其程度。

4 定义4.1 皮肤刺激性(Dermal irritation):皮肤涂敷受试物后局部产生的可逆性炎性变化。

4.2 皮肤腐蚀性(Dermal corrosion):皮肤涂敷受试物后局部引起的不可逆性组织损伤。

5 试验的基本原则将受试物一次(或多次)涂敷于受试动物的皮肤上,在规定的时间间隔内,观察动物皮肤局部刺激作用的程度并进行评分。

采用自身对照,以评价受试物对皮肤的刺激作用。

急性皮肤刺激性试验观察期限应足以评价该作用的可逆性或不可逆性。

6 试验方法6.1 受试物液体受试物一般不需稀释,可直接使用原液。

若受试物为固体,应将其研磨成细粉状,并用水或其它无刺激性溶剂充分湿润,以保证受试物与皮肤有良好的接触。

使用其它溶剂,应考虑到该溶剂对受试物皮肤刺激性的影响。

受试物为强酸或强碱(pH值 ?2或?11.5),可以不再进行皮肤刺激试验。

此外,若已知受试物有很强的经皮吸收毒性,经皮LD小于200mg/kg体重或在急性经皮毒性试验中受试50物剂量为5000mg/kg体重仍未出现皮肤刺激性作用,也无需进行急性皮肤刺激性试验。

6.2 实验动物和饲养环境多种哺乳动物均可被选为实验动物,首选白色家兔。

应使用成年、健康、皮肤无损伤的动物,雌性和雄性均可,但雌性动物应是未孕和未曾产仔的。

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皮肤刺激强度分级
皮肤局部反应
无刺激性 轻度刺激性
无异常改变 充血、红斑
中等刺激性
红斑,少量小出血点,水肿, 少量丘疹以及小水疱
强刺激性
红斑,皮下出血,水肿,有很 多小水疱并有可能合并成大水 疱,糜烂,表皮剥落,有溃疡 形成等
评分 0 <2
2~6
>6
方法评价
皮肤刺激试验的结果不仅与检测技术有关, 也与试验过程中的质量控制相关。
经4~8h后,除去斑贴物,每24h观察一次各小区皮肤的局部 反应,连续观察4d,按皮肤刺激反应评分(表1),定量地 评定受试化学物对皮肤局部刺激作用的强度。红斑通过肉眼 观察,水肿通过轻轻触摸的方法来评分。
表1 皮肤刺激强度反应评分
皮肤反应强度
评分
无红斑

极轻微红斑(勉强可见)
1
A.红斑和 边界清晰的红斑(明显红斑,淡红至鲜红色) 2
本法与局部全封闭斑贴法不同之处在于: 1.每组的白色家兔数不应少于3只; 2.采用纱布作斑贴物,在无刺激作用的前提下,用半封
闭敷料固定; 3.斑贴不需要在擦伤皮肤上进行; 4.斑贴4h,然后去掉斑贴并清洗皮肤,观察0.5h、1h、
24h、48h和72h后的皮肤反应。 皮肤刺激反应评分同全封闭法。
结果分析
皮肤刺激试验又称皮肤原发性刺激试验。
试验目的
了解受试化学物对皮肤的直接刺激作 用以及刺激强度。
试验材料——实验动物
实验动物:成年白色家兔或白色豚鼠, 首选白色家兔。
在皮肤刺激试验中,动物品种的选择 很重要。目前多选用兔和豚鼠,对于 强刺激或无刺激作用的化学物选用家 兔检测效果好,但对作用缓和的刺激 性化学物,选用豚鼠所获得的试验结 果较准确。
试验材料——受试化学物
受试化学物:应用受试化学物原液或 根据需要原液稀释成若干个不同浓度 的稀释液,也可应用受试化学物的细 粉。
每小区皮肤的应用剂量为液体受试化 学物0.3~0.5 ml(84液),粉状受试 化学物0.1~0.5 g (洗衣粉)。
试验材料——其他
脱毛剂
大头针、纱布、棉球、胶布、塑料薄膜 移液器、天平
凡是杀虫剂、杀真菌剂、杀鼠剂以及具有刺 激性的兽药等化学物均需进行局部皮肤刺激 试验,以保护接触人员的健康。
试验药物的量一般以0.5ml或0.5g为宜,评 价固体受试化学物时不一定要将其配成溶液, 具体可酌情而定。
试验方法——脱毛
在动物脊柱两侧或躯干中部用化学药 品脱去被毛准备好脱毛区。
脱毛方法:先将被毛剪短,然后在所 需部位涂上一薄层脱毛剂,2~3min 后用玻璃棒刮去被毛,并用温水清洗 脱毛剂,纱布擦干。
采用局部全封闭斑贴法或局部半封闭 斑贴法进行皮肤刺激试验。
试验方法——局部全封闭斑贴法
当以动物背部脊柱两侧的皮肤做受试部位时,先将其 两侧脱毛区分成若干个小区,小区面积的总和应约为 动物体表面积的1/10 。将其中一侧的各个小区,分别 用大头针在皮肤上划一“#”字形擦伤,以观察受试 化学物对损伤皮肤的刺激作用;另一侧用以观察受试 化学物对完整皮肤的刺激作用。
将表1中A项和B项评分结果相加,凡总分低 于2分者可视为无刺激性或轻度刺激性; 2~6分之间者具有中等刺激性;6分以上者 具有强刺激性。
刺激性极强的物质,试用前需经适当稀释后 再进行斑贴,如稀释用的溶剂本身具有刺激 作用,则需作溶剂对照试验。
另外,也可按表2中的标准来判断试验结果。
表2 皮肤刺激强度分级标准
实验三 急性皮肤刺激试验
目录
试验原理 试验目的 试验材料 试验方法 结果分析 方法评价
试验原理
局部刺激试验是毒理学试验中的一项重要内 容,对可能具有局部刺激作用的化学物必须 进行此项试验,但对具有强酸(pH≤2 )或 强碱(pH≥11.5 )性质的化学物不需做本 试验,因为这些化学物属于腐蚀性物质。另 外,已知具有高毒性的化学物也不必进行皮 肤刺激试验。
焦痂形成 中等至严重的红斑(鲜红至深红色)
3
极严重红斑(深红至紫红色),并有焦痂形成
(真皮层受损)
4
无水肿
0
极轻微水肿(勉强可见)
1
B.水肿形 轻度水肿(边缘明显地高出周围皮肤)
2

中度水肿(水肿区高出边缘皮肤约1mm)
3
严重水肿(水肿区高出边缘皮肤1mm以上,面 积超出斑贴区)
4
试验方法——局部半封闭斑贴法
将受试化学物原液及不同浓度的稀释液,分别直接涂 敷于受试皮肤的若干个小区,然后在各区皮肤上放一 块4~6层的纱布块或其他半吸水性惰性物 (1cm×1cm或直径为1cm)。
试验方法——局部全封闭斑贴法
固体药剂可直接加到皮肤上,再用湿纱布覆盖或是放于预先 浸湿的皮肤上,也可将糊状受试化学物涂于纱布块上,再将 其贴于皮肤上,然后在纱布块上覆盖一层较大的不透气的塑 料薄膜,用胶布和绷带固定。
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