建立大鼠骨髓间充质干细胞稳定分离培养体系与鉴定_杨丽

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大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养纯化与鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养纯化与鉴定
ioae t e st rdin e t fg t n a d a h r n utr r m h n ro o h o n sltd wi d n i ga e tc nr u a i n d e e tc l e fo te b e marw ft e y u g SD as.CCK- h y i o u o rt 8 r a e tWa s d t eem ie te go h c re.Lih co c pe r s d t td e mo p oo i e g n Su e o d tr n  ̄ u v h r g tmirs o swee u e osu yt r h lgc ̄au h tms.Flw o
c me ̄ w s a p id t ie t yt e c l .mmu o y c e s y tc n q e w se ly d t e a n e c l a t e s po t a p l o d ni h el I e f s n c t h mi r e h i a mpo e o x mie t el n i n o t u h g
基础研究 ・
大 鼠骨髓 间充 质 干细 胞 的分 离 培 养 纯 化 与鉴 定 *
卢仁 荣 一 陈 良龙 … 江 琼 郭进 建
[ 要 ] 目的 : 讨 骨 髓 间充 质 干 细 胞 ( M C ) 外 获 取 及 培 养增 殖 的方 法 并 鉴 定 。 方 法 : 密 度 摘 探 B Ss体 用
Mei lU i rt dc nv sy,S n n F j n 3 5 0 C ia a ei a mig, ui 6 0 0,oep r a i rccl e o fh o tn clr ad uf ao f oe A s at r bet e T xle ni vr pat am t do t i li , uue n r ct n n i o n t o i h e s ao t pi i i ob

大鼠骨髓间充质干细胞的体外分离培养与鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞的体外分离培养与鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞的体外分离培养与鉴定作者:李兰兰陈玲肖马炬明来源:《中国现代医生》2014年第01期[摘要] 目的建立大鼠骨髓间充质干细胞(bone marrow-derived mesenchymal stem cells,BMSCs)体外分离培养方法。

方法采用全骨髓贴壁法分离培养BMSCs,进行形态学观察,绘制生长曲线,流式细胞仪分析细胞周期、检测细胞表面抗原标志物,并进行成脂、成骨分化诱导。

结果获取的BMSCs形态呈均一成纤维细胞样,并呈集落样生长。

生长曲线呈S形,细胞周期显示86.02% P3代细胞为G0/G1期,保持活跃的扩增能力。

BMSCs 高表达CD44、CD90、低表达CD34、CD45。

成脂诱导21 d后,可见细胞的胞浆内出现大量红染脂滴。

成骨诱导21 d后,可见大量橘红色矿化结节形成。

结论全骨髓贴壁培养法可成功有效地分离培养BMSCs。

[关键词] 骨髓间充质干细胞;全骨髓贴壁法;鉴定[中图分类号] R329.2 [文献标识码] A [文章编号] 1673-9701(2014)01-0007-04BMSCs具有高度增殖的能力、体外基因转移效率高以及多向分化潜能等优点[1-2],使其成为组织工程、细胞替代治疗等领域的首选种子细胞。

但是骨髓中的间充质干细胞含量极低[3],且其含量随年龄增长而逐渐减少[4],需经体外分离、纯化、扩增为纯度高、活力强、生物特性均一的间充质干细胞才能满足组织工程需求。

实验旨在建立一套简便有效的BMSCs原代培养方法,为后续实验做好准备。

1 材料与方法1.1 实验动物清洁级雄性SD大鼠6只,4周龄,体质量100 g,由浙江省实验动物中心提供。

实验过程中对动物的处置符合2006年科技部《关于善待实验动物的指导性意见》的规定。

1.2 时间及地点于2013年1~6月在中国人民解放军第一一七医院干细胞治疗中心完成。

1.3 实验主要试剂低糖DMEM培养基、0.25%胰酶-0.02%EDTA、青/链霉素(吉诺生物),优质胎牛血清(Gibco),anti-CD45、anti-CD90(BD),anti-CD34(Santa Cruz),anti-CD44(Abcam),细胞周期即时检测试剂盒(凯基生物),成骨及成脂诱导分化培养液、茜素红、油红O (Cyagen公司)。

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及GFP转染标记

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及GFP转染标记

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及GFP转染标记发表时间:2011-2-17 15:31:47来源:创新医学网医学编辑部推荐作者:王亭忠,马爱群,蒋文慧,徐正云,席雨涛作者单位(西安交通大学第一医院心内科;教育部环境与疾病相关基因重点实验室,陕西西安710061)【关键词】大鼠,骨髓间充质干细胞;培养;绿色荧光蛋白;转染摘要:目的建立大鼠骨髓间充质干细胞(MSCs)的分离和培养方法,检测绿色荧光蛋白基因转染MSCs的瞬时表达及转染效率。

方法应用Percoll密度梯度离心法分离大鼠MSCs,贴壁法不断纯化,流式细胞仪检测2代细胞表面CD34、CD71和CD90的表达,然后用pEGFPN3与Lipofectamine 2000不同浓度比例转染MSCs,荧光倒置显微镜下观察瞬时表达及转染效率。

结果①原代MSCs多呈纺锤形或梭形,有聚集生长的倾向,多3~5个细胞成为一个集落。

传代后,细胞变为形态均一的排列有序的成纤维细胞样,长梭形,胞浆突起较少,胞体轮廓不甚清晰,胞体也相对较大;②GFP转染后24h即可见绿色荧光蛋白表达,72h表达最强,此后逐渐减弱,到4周时仍可见少量表达;③转染效率与质粒和脂质体的浓度比例有关,1∶2到1∶3最高。

结论利用Percoll密度梯度离心法结合贴壁法可以获得比较纯的MSCs;GFP转染是一种较好的MSCs标记方法。

Rat mesenchymal stem cells culture and label withgreen fluorescent protein gene transfectionWang Tingzhong, Ma Aiqun, Jiang Wenhui, Xu Zhengyun, Xi Yutao(Department of Cardiology, First Hospital of Xi an Jiaotong University, Key Laboratory of Environment and Genes Related to Diseases of Ministry of Education, Xian 710061, China)ABSTRACT: ObjectiveTo establish a method of isolation and culture of the rat mesenchymal stem cells (MSCs), and to investigate the transient expression of green fluorescent protein gene transfection into MSCs. Methods MSCs, which were initially isolated from the bone marrow of rats, were cultured in vitro and tested by flow cytomertry. Then they were transfected with pEGFPN3 by means of Lipofectamine 2000. The ratio of plasmid to Lipofectamine varied according to the experiment design. The results of the transient expression of GFP and transfection efficiency were observed by fluorescence microscope. Results MSCs were adherent, elongated, and spindleshaped in the primary culture after 24 hours of plating, and then became several little clones; During mitosis the cells regained a rounded appearance, and remained loosely attached until division was completed. When they reached 80% confluence, MSCs were subcultured and gained uniform shape and similar growth pattern. The expression of GFP began at 24 hours after transfection, and reached the peak at 72 hours and decreased in 1 week; however, the transient expression remained for more than 4 weeks. Transfection efficiency was correlated with the ratio of plasmid to lipofectamine. Conclusion High pured MSCs can be obtained by Percoll gradient centrifuging and adherent method. GFP transfection is a better method to label MSCs.KEY WORDS: rat; mesenchymal stem cell; culture; green fluorescent protein; transfection 骨髓间充质干细胞(mesenchymal stem cells, MSCs)存在于骨髓基质中,是由Friedenstein最初在骨髓培养中发现的一种容易贴壁的纺锤状细胞[1]。

骨髓间充质细胞的提纯和分离、增殖

骨髓间充质细胞的提纯和分离、增殖

骨髓间充质干细胞分离及条件培养基在其培养扩增中的作用摘要:【目的】建立一种简便、快速、实用的大鼠骨髓间充质干细胞(mesenehymal stem cells,MSCs)体外分离、纯化和扩增的方法。

【方法】采用贴壁法分离纯化大鼠骨髓MSCs(rMSCs),并对其形态学特征进行观察,培养时观察条件培养基对rMSCs生长的影响。

【结果】贴壁法能有效地分离rMSCs,采用条件培养液培养,细胞活力好,增殖能力强,对维持细胞正常形态有着重要作用。

【结论】贴壁分离法能成功地进行rMSCs的体外分离,采用爷件培养液建立的rMSCs培养方法有效可行。

关键词:骨髓问充质干细胞/分离和提纯;细胞培养骨髓间充质干细胞(MSCs)是一种成体干细胞,具有较强的可塑性,能被诱导分化为成骨细胞、成软骨细胞、成脂肪细胞、成肌细胞等⋯1,同时发现MSCs还具有独特的免疫调节作用[2-4J。

细胞学、组织学及器官学的研究者均把目光投向MSCs,同时MSCs也受到药理研究者的关注。

MSCs除了可作为组织工程较理想的种子细胞外,也可作为药物作用的靶标或药理研究的工具,利用MSCs体内外生物学性质进行中药作用机理的研究已有众多报道I 。

但由于骨髓中的MSCs含量很低,1 个骨髓单核细胞中仅含有1~2个MSCs~11 J,加之MSCs主要存在于骨内膜_】,要获得满足药物研究所需的数量比较困难。

因此,采用合适的MSCs分离、纯化和扩增的方法是许多研究的重要前提。

1 材料与方法1.1 动物Sprague Dawley(SD)大鼠,性别不限,体质量100~120 g,本校实验动物中心提供,合格证号为SCXK (粤)2003.0001。

1,2 主要试剂低糖Dulbeceo改进的Eagle培养基(1ow glucose Dulbecco’s Modified Ea e Medium,LDMEM)由GIBCO 公司提供;胎牛血清(fetalbovine serum,FBS)由杭州四季青生物工程材料有限公司提供;2.5 g/L胰酶(含0.2 g/L EDTA)由吉诺生物医药技术有限公司提供;HEPES为Sigma产品,广州威佳公司分装;青霉素、链霉素由华北制药有限公司提供;兔抗大鼠CD44、CD54、I 型胶原抗体,生物素化抗生蛋白链菌素复合(Streptavidin.Biotin.Complex,SABC)试剂盒,二氨基联苯胺(diaminobenzidine,DAB)显色试剂盒均由武汉博士德公司提供。

大鼠骨髓间充质干细胞分离培养标记及向移植肺趋化的实验研究

大鼠骨髓间充质干细胞分离培养标记及向移植肺趋化的实验研究

清( 美 国 Hy c l o n e公 司) , DAP I 试剂( 美国S i g ma公 司) , C D3 4 F I TC 抗 体 ( 美 国 S a n t a C r u z公 司 ) 、 C D 4 4 一 P E抗 体 ( 英国 S E RO TE C公 司 ) , C D1 1 b — P E
1 . 2 . 1 MS C的分 离 、 培 养 及 鉴 定 全 骨 髓 贴 壁 法 分离培 养 MS C s 。取 大 鼠 股 骨及 胫 骨 , 骨髓细胞 以 2 ×1 0 e m 密度 接 种 , 使用低糖 D ME M 培 养 。通
高度 增殖 的能 力 。1 9 7 6年 由 F r i e d e n s t e i n发现 并描
MS C s 向移植肺的趋化现象 。 方法 全 骨 髓 贴 壁 培 养 法 分 离 培 养 大 鼠 MS C s , 流 式 细 胞 法 检 测 细 胞 表 型 。 观 察
包括细胞形态学 、 生长 曲线 在 内 的生 物学 特 征 。通 过 定 向诱 导 MS C s向 成 骨 和 成 脂 肪 分 化 鉴 定 其 多 向分 化 潜 能 。
发 现 MS C s 在肺缺 血再 灌注 损伤 、 急性 心肌梗 死 、 急 性 肝功 能损 伤 、 脑梗死等组织损 伤修复方面 , 优 势
显 著 。 ] 。 目前 研究 发 现 MS C s 具 有 分 化 为 脂 肪 细 胞、 成 骨细 胞 、 心肌细胞、 软骨细胞、 肝 细 胞 以 及 神 经细 胞等 多种 类型 细 胞 的潜 能 , 已 成 为重 要 的 组织 工程 种子 细胞 。本 实验 对 MS C s 进 行分 离培养 及 表 型 鉴定 , 并应 用 D AP I 和 G F P双 重标记 观 察其 能 否 趋 化到 同种 异体 移植 肺 内。

大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离、鉴定与培养

大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离、鉴定与培养

大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离与鉴定大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离与鉴定材料试剂(一)主要设备和产地1.手术器械上海手术器械厂2.台式水平离心机Eppendorf,5810R德国3.Nanopure超纯水仪日本SANYO公司4.AA一200型电子天平美国Denver Instrumol/Lent公司5.低温高速离心机ThermoForma公司6.90一2型磁力搅拌器上海沪西分析仪器厂7.电动匀速垂直转轮上海沪西分析仪器厂8.微量移液枪德国Eppendorf公司9.烧杯、容量瓶上海实生公司10.全自动酶标光度仪美国Bio-Rad公司11.6cm/10cm细胞培养皿美国Conring12.2mL冻存管、细胞冷冻储存器美国Conring13.低温高速离心机ThermoForma公司产品14.YJ-875超净工作台苏州工业园区三兴净化科技有限公司15.C02培养箱3111型美国Thermo Forma公司16.CK40-F200型倒置显微镜日本Olympus公司17.10ml注射器美国BD公司(二)试剂和材料1.谷氨酰胺(L-Glutamine)美国Hyclone公司2.75%消毒酒精上海生工3.肝素美国sigma公司4.胰蛋白酶美国Amresco公司5.胎牛血清美国Gibco公司6.α-MEM培养液美国Hyclone公司7.5-6周龄SD大鼠上海斯莱克实验动物有限公司8.Percoll细胞分离液美国GE公司9.DMSO(细胞培养级)美国Sigma公司Rat BMSC的分离与培养分离颈椎脱臼法处死大鼠,75%酒精中浸泡5分钟,超级工作台内依次取下大鼠两条胫骨及两条股骨。

用手术器械将长骨上附着的肌肉组织尽量去除干净,整个过程保持无菌。

用剪刀剪去长骨两端,10ml注射器吸取加入肝素的完全培养液(10%FBSα-MEM),从长骨一端开口处注入,将骨髓腔内的细胞出入到50ml离心管内,直至长骨冲洗的发白,认为骨髓腔内的细胞都被吹入离心管内。

大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞的培养与鉴定干细胞研究一直是生物医学领域的前沿热点,其中骨髓间充质干细胞(BMSCs)因其具有多向分化潜能和低免疫原性而备受。

在众多研究中,大鼠BMSCs的体外培养和鉴定方法为其在科研和临床领域的应用提供了基础。

本文将就大鼠BMSCs的培养、鉴定方法进行详细介绍,并结合实验数据进行阐述。

BMSCs是一种成体干细胞,具有自我更新和多向分化潜能,可以分化为多种细胞类型,如成骨细胞、脂肪细胞、肌肉细胞等。

因其来源广泛,免疫原性低,大鼠BMSCs已成为再生医学、免疫调节等领域的重要研究对象。

近年来,随着生物技术的不断发展,BMSCs的培养和鉴定方法也得到了不断优化和改进。

BMSCs的培养需要无菌环境,常用的培养基为DMEM、F12等,添加适量的生长因子和抗生素以维持细胞的生长和存活。

细胞的鉴定主要包括形态学观察、表面标志物检测和多向分化潜能的证实。

其中,表面标志物如CDCD90等可用来区分BMSCs和其他细胞,多向分化潜能的证实包括成骨、成脂和成肌等方向的诱导分化。

本实验采用大鼠BMSCs的常规体外培养方法。

具体步骤如下:采集大鼠骨髓:在无菌环境下,用注射器抽取大鼠股骨和胫骨骨髓,加入肝素抗凝。

细胞分离:将采集的骨髓用密度梯度离心法分离出单个核细胞。

细胞培养:将单个核细胞接种于培养瓶中,用含10%血清、1%抗生素和1%谷氨酰胺的培养基培养。

细胞鉴定:经过约7-10天的培养,细胞达到80%-90%融合时,进行细胞鉴定。

通过形态学观察、表面标志物检测和多向分化潜能的证实,对BMSCs进行鉴定。

通过观察细胞的形态和生长情况,发现培养的BMSCs呈典型的长梭形,且细胞间连接紧密(图1)。

经表面标志物检测,BMSCs表达CD29和CD90等间充质干细胞表面标志物(图2)。

在多向分化潜能的证实中,我们发现BMSCs经成骨、成脂和成肌诱导后,可分别形成矿化结节、脂肪滴和肌纤维(图3)。

这些结果说明所培养的细胞为BMSCs。

普通贴壁法分离、培养大鼠骨髓间充质干细胞(BMMSCs)及其生物特性研究

普通贴壁法分离、培养大鼠骨髓间充质干细胞(BMMSCs)及其生物特性研究

普通贴壁法分离、培养大鼠骨髓间充质干细胞(BMMSCs)及其生物特性研究作者:吴春朋张潜方宁刘金伟刘祖林章涛来源:《中国保健营养·中旬刊》2013年第03期【摘要】目的:建立从大鼠骨髓分离、培养间充质干细胞的标化流程,并探讨BMMSCs 生物学特性。

方法:无菌条件下剪取2~3周龄SD大鼠两侧完整股骨,采用D-PBS冲洗骨髓腔,含骨髓细胞的洗脱液经离心后收集细胞沉淀,用含10%FBS的LG-DMEM,于37ºC、5% CO2、饱和湿度环境下进行BMMSCs原代培养,每2 d换液1次,同时洗脱未贴壁的血细胞;当BMMSCs生长汇合度达60%~70%时,按2~5×105/ml细胞密度进行传代培养。

采用流式细胞术对第3代BMMSCs进行CD45、CD29和CD90表型分子检查。

结果:分离纯化的BMMSCs具有典型MSCs特征,高表达CD90和CD29,不表达CD45;结论:表明普通贴壁法成功分离培养了具有间充质干细胞表型特征的大鼠BMMSCs【关键词】间充质干细胞;大鼠【中图分类号】R587.1 【文献标识码】A 【文章编号】1004-7484(2013)03-0044-02引言研究表明,骨髓含有造血干细胞(hemopoietic stem cells, HSCs)、内皮祖细胞(endothelial progenitor cells, EPCs)和间充质干细胞(mesenchymal stem cells,MSCs)等多种成体干细胞。

EPCs主要分化为血管内皮细胞,有助于血管疾病组织的血管新生;而HSCs和MSCs均具有多向分化潜力的特点,研究表明,骨髓间充质干细胞(bone marrow mesenchymal stem cells, BMMSCs)可分化为成骨、软骨、心肌、肌腱、上皮、内皮等几乎所有三胚层类型细胞的能力[1-3],基于这个特性使BMMSCs成为了中药诱导、临床移植及一些分子生物学实验的种子细胞源。

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养和外源基因的导入

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养和外源基因的导入
维普资讯
山盘 医药 07 20 年第 4 卷第 2 7 期
大 鼠骨髓 间充质干细胞 的分离培养和 外 源基 因 的导 入
王 晓军 崔 连群。李 , , 4 东省科 技 大 学) 山
[ 摘要] 目的 探讨绿色荧光蛋 白基因转 染骨髓间质干细胞的可行性 。 方法 采用 FclP q e P u 淋 巴 i l a ul 1s 0—  ̄
t e x a d d b u c l r u c s i e y Th r h l g s o s r e t h s c n r s c o c p .Th h n e p n e y s b u t e s c e sv l . u e mo p o o y wa b e v d wih p a e o t a tmi r s o e e
i mmu o p e o y eo h S r v la e t mmu o y o h m i lme h d . Th I S2EGFP ta s n - h n tp ft eM Cs wee e au td wih i n e tc e c to s a ep RE . r n fre S yme n fee to o ain e rd M Csb a so lcr p rt .Tr n fref in y we ee au tdb l o ec n Co c p n lw o a se f ce c r v lae y f r se tmir so ya d f i u o
g n rto Th y u i r y e p e sd CD,,CD“,CD1 .CD5,b tn tCD3 La nn、 l g n Ⅱ.Flw y e ea in; e nf ml x rse o 9 0 6 ‘ u o ¨ mii Col e a o c

大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离、鉴定与培养

大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离、鉴定与培养

大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离与鉴定大鼠骨髓间充质干细胞(BMSC)的分离与鉴定材料试剂(一)主要设备和产地1.手术器械上海手术器械厂2.台式水平离心机Eppendorf,5810R德国3.Nanopure超纯水仪日本SANYO公司4.AA一200型电子天平美国Denver Instrumol/Lent公司5.低温高速离心机ThermoForma公司6.90一2型磁力搅拌器上海沪西分析仪器厂7.电动匀速垂直转轮上海沪西分析仪器厂8.微量移液枪德国Eppendorf公司9.烧杯、容量瓶上海实生公司10.全自动酶标光度仪美国Bio-Rad公司11.6cm/10cm细胞培养皿美国Conring12.2mL冻存管、细胞冷冻储存器美国Conring13.低温高速离心机ThermoForma公司产品14.YJ-875超净工作台苏州工业园区三兴净化科技有限公司15.C02培养箱3111型美国Thermo Forma公司16.CK40-F200型倒置显微镜日本Olympus公司17.10ml注射器美国BD公司(二)试剂和材料1.谷氨酰胺(L-Glutamine)美国Hyclone公司2.75%消毒酒精上海生工3.肝素美国sigma公司4.胰蛋白酶美国Amresco公司5.胎牛血清美国Gibco公司6.α-MEM培养液美国Hyclone公司7.5-6周龄SD大鼠上海斯莱克实验动物有限公司8.Percoll细胞分离液美国GE公司9.DMSO(细胞培养级)美国Sigma公司Rat BMSC的分离与培养分离颈椎脱臼法处死大鼠,75%酒精中浸泡5分钟,超级工作台内依次取下大鼠两条胫骨及两条股骨。

用手术器械将长骨上附着的肌肉组织尽量去除干净,整个过程保持无菌。

用剪刀剪去长骨两端,10ml注射器吸取加入肝素的完全培养液(10%FBSα-MEM),从长骨一端开口处注入,将骨髓腔内的细胞出入到50ml离心管内,直至长骨冲洗的发白,认为骨髓腔内的细胞都被吹入离心管内。

不同周龄大鼠骨髓间充质干细胞体外培养的对比研究

不同周龄大鼠骨髓间充质干细胞体外培养的对比研究

不同周龄大鼠骨髓间充质干细胞体外培养的对比研究于波;赵劲民;苏伟;李晓峰;许国杰【摘要】目的:寻求大鼠周龄对骨髓间充质干细胞体外培养的影响,并进行细胞形态学观察和表面分子鉴定.方法:分别对1,4,8周龄SD大鼠采用全骨髓贴壁法体外分离、培养、纯化骨髓间充质干细胞,进行形态学观察,绘制生长曲线,流式细胞仪检测细胞表面标记物.结果:全骨髓贴壁法能有效的获得大鼠骨髓间充质干细胞,以梭形细胞为主,细胞集落呈鱼群状或放射状排列.传代至第3代以后能获得较高纯度的骨髓间充质干细胞,表面分子鉴定CD44、CD90呈阳性表达,CD34、CD45呈阴性表达.原代及传代细胞的融合时间相比较,小周龄BMSCs较大周龄BMSCs明显缩短.细胞培养达80%融合时间:原代细胞依次为(5±0.7),(7.8±0.8),(10.2±1.1)d,第3代细胞依次为(3.8±0.4),(5.2±0.5),(6±0.7)d,结果均有明显差异(P<0.05).结论:1,4,8周龄SD大鼠骨髓间充质干细胞经多代传代培养后,1周龄SD大鼠骨髓间充质干细胞较4周龄和8周龄SD大鼠骨髓间充质干细胞能维持更好的细胞状态和细胞活性.应用1周龄SD大鼠进行全骨髓贴壁法分离体外培养骨髓间充质干细胞,能更经济、更快捷、更高效地为组织工程研究提供数量充足、状态良好的种子细胞.【期刊名称】《广西医科大学学报》【年(卷),期】2014(031)002【总页数】4页(P197-200)【关键词】骨髓间充质干细胞;原代培养;周龄【作者】于波;赵劲民;苏伟;李晓峰;许国杰【作者单位】广西医科大学第一附属医院创伤骨科手外科南宁 530021;广西医科大学第一附属医院创伤骨科手外科南宁 530021;广西医科大学第一附属医院创伤骨科手外科南宁 530021;广西医科大学第一附属医院创伤骨科手外科南宁530021;广西医科大学第一附属医院创伤骨科手外科南宁 530021【正文语种】中文【中图分类】R-33骨髓间充质干细胞(Bone marrow mesenchymal stem cells,BMSCs)来源于中胚层,具有分裂增殖和多向分化潜能,在适宜条件下可分化为成骨细胞、成软骨细胞、脂肪细胞、腱细胞、肌肉细胞和神经细胞等,在组织工程、基因治疗、细胞移植等领域被广泛应用。

大鼠骨髓间充质干细胞分离鉴定方法及生物学特性

大鼠骨髓间充质干细胞分离鉴定方法及生物学特性

大鼠骨髓间充质干细胞分离鉴定方法及生物学特性曹华;高建华;刘小龙;林思思【期刊名称】《中国组织工程研究》【年(卷),期】2017(021)009【摘要】背景:如何能简便高效地获得均质性的骨髓间充质干细胞群是软骨组织工程研究的重点。

目的:分离培养大鼠骨髓间充质干细胞,观察其生物学特性。

方法:抽取30只SD大鼠股骨以及胫骨骨髓,采用全骨髓贴壁培养法体外分离培养骨髓间充质干细胞,流式细胞仪测定细胞表面标记物的表达,细胞计数法观察细胞生长增殖能力,MTT法检测细胞存活率。

结果与结论:(1)刚分离培养的细胞呈圆形、椭圆形,部分细胞呈三角形,接种12-15 d后,细胞开始融合,传代后细胞增殖速度加快,传代2 h后细胞均匀分布在瓶底;(2)随着传代次数的增加,细胞增殖能力出现下降趋势,第1-5代细胞存活率均超过95%,显著高于第6代和第7代(P〈0.05);(3)骨髓间充质干细胞表面CD34呈阴性表达,CD44呈阳性表达;(4)结果表明,采用全骨髓贴壁法可有效分离大鼠骨髓间充质干细胞,获得的细胞生长稳定,增殖能力强,可选用前5代细胞作为软骨组织工程的种子细胞。

【总页数】5页(P1357-1361)【作者】曹华;高建华;刘小龙;林思思【作者单位】[1]江西医学高等专科学校,江西省上饶市334000;[2]南昌大学医学部,江西省南昌市330006【正文语种】中文【中图分类】R394.2【相关文献】1.骨髓间充质干细胞分离鉴定及在糖尿病大鼠肾脏保护中的机制研究 [J], 康岩;李志杰;王丽娜;郭玉卿;刘璠;张洁2.大鼠骨髓间充质干细胞的分离鉴定及免疫调节性能初探 [J], 张志强;刘义;李克秋;李光3.大鼠骨髓间充质干细胞分离鉴定方法及生物学特性 [J], 曹华;高建华;刘小龙;林思思4.大鼠骨髓间充质干细胞的分离鉴定及其在胶质瘤治疗中的作用 [J], 刘辉;张鹏幸;范菲艳;刘楠;任东妮;张永生;涂艳阳5.不同分离及培养方法对大鼠骨髓间充质干细胞生长增殖和生物学特性的影响 [J], 贾贵清;张明鸣;杨平;程惊秋;陆燕蓉;伍晓汀因版权原因,仅展示原文概要,查看原文内容请购买。

大鼠骨髓间充质干细胞培养方法的比较及细胞鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞培养方法的比较及细胞鉴定
Yo ngc hu an Ho s pi t a l,Cho n gq i ng Me di c al Un i v e r s i t y,Cho n gq i n g 4 0 21 6 0, Chi an)
Ab s t r a c t :Ob j e c t i v e To s t u d y t h e d i f f e r e n c e s o f d i f f e r e n t me t h o d s t o c u l t u r e r a t b o n e ma r r o w me s e n c h y —
第3 6卷 第 1 O期
2 0 1 3年 1 0月
新 疆 医 科 大 学 学 报
J o u r n a l o f Xi n j i a n g Me d i c a l Un i v e r s i t y
V oI . 3 6 No . 1 0 Oc t . 2O1 3
的表 达 率 。 结 果 2种 培 养 方 法 所 获 得 的 细 胞 形 态 均 呈 长 梭 形 , 呈 特 征 性 的漩 涡 状 生 长 。 全 骨 髓 培 养 法 细 胞 增
殖 较 快 。全 骨髓 培 养 法 获 得 的 细 胞 表 面 标 志 C D2 9 、 C D 3 4 、 C D 4 4 、 C D 4 5的 表 达 率 分 别 为 9 1 . 0 、4 . 3 、 8 7 . 1 、 0 . 1 ; 密 度梯度 离心 法 获得 的 细胞 表 面标 志 C D2 9 、 C D 3 4 、 C D 4 4 、 C D 4 5的 表 达 率 分 别 为 9 6 . 9 、 3 . 6 、 8 9 . 7 、
Co m pa r i s o n o f di f f e r e n t c u l t u r e me t h o ds f o r r a t b o n e ma r r o w me s e n c hy ma l s t e m c e l l s a nd c u l t u r e d c e l l i d e n t i f i c a t i 0 n

大鼠骨髓间充质干细胞的分离和培养

大鼠骨髓间充质干细胞的分离和培养
4h 8 时观察贴壁 细胞 以分 散方式和 克隆方 式生长 ,以后克 隆逐渐 增大 ,首次传代 的细胞为 成纤维细胞样 细胞 。经过 23  ̄ 次传代培 养 , 细胞融合生长 时,呈放射状或旋涡状生长 。 2 . 2骨髓 间充质干细胞 的形态 4h 8换液后 ,倒置显微镜观察 ,贴壁细胞约有6%的细胞呈梭形 、 0 多边形 、星形 ,这3 细胞梭形细 胞最多 ,传 代12 后贴 壁细胞分布 种  ̄d 均匀细胞形态以梭形为主。
1. .1实验动物 1
12  ̄ 个月龄S 大鼠一只, D 体质量8 ̄ 0g 0 10 ,泸州医学院实验动物中
心提供。
1. .2主要试剂 1 DME M高 糖培 养 基 ( I C 公 司 ) ,02 %胰酶 ( I C GB O .5 G B O公 司 ),胎牛血清 ( y l e 司)。 H Co 公 n 1. .3主要仪器 1
细胞 、骨 细胞 、软 骨细胞 、脂 肪细 胞等 中胚层 细胞 分化 。 【 关键 词】 间 充质干 细胞 ;骨髓 ;培 养;S 大 鼠 D
中 图分类 号 :Q 6 42
文献标 识 码 :B 源自文章 编号 :1 7- 14 (0 2 1 0 8— 2 6 1 8 2 1)2— o 6 0 9
版) 0 0 4 4 : 7 —3 8 , 1 , ()1 4 1 5 . 2 0 6
poi rt nJ J il hm, 0 ,8 (5: 1 —9 6 rl e i [ .B o e 2 9 4 1 ) 9 79 2 . f a o ] C 0 2 9 [】 S ake nM, ’ e l L ,u e a dK , . a e c t n 9 h clt O R iy A S t r n D e a I i d at i o l h l t 1mp r l a o

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及生物学特性

大鼠骨髓间充质干细胞的分离培养及生物学特性


( 1青 岛大 学 医学院 , 东青 岛 2 6 0 ; 岛市立 医院 ; 山 6 0 3 2青 3即墨 市 中医 医院 ;
胞 特 性 , 保 持 细 胞 活 性 。证 实 密 度 梯 度 离 心结 合贴 壁 法 以 及 消 化传 代 能有 效 分 离纯 化 和 扩增 骨 髓 MS s培 养 并 C, 的 细 胞 具 有 骨 髓 MS s的 基 本 表 型 和特 性 。本 研 究 可 为 临床 进 行 细 胞 移 植 奠 定 基 础 。 C
二抗 , 3 置 7l C反应 3 i 免疫荧 光组化 染 色 。② 0r n行 a
透 射 电镜 观 察 : 集第 2 骨 髓 MS s 15 0rri 收 代 C . 0 / n a
离 心 1 n 得 到的细胞 应用 2 5 戊二 醛前 固定 . 5mi , . 4
1 1 材 料 1月 龄 雄性 S 大 鼠 1只 ( 岛市 立 医 . D 青 院 实验 动物基 地提 供 , 重 1 2g 。 置相 差显微 镜 体 0 ) 倒 ( y u Olmp s公 司 ) 3 C、 O2 温 培 养 箱 ( e au ,7 C 恒 H re s 公 司 ) 离 心机 ( rc s 司 4 0 , Hea u 公 0 E型 ) 超 净工 作 台 , ( 京半 导 体设 备 厂 ) 透射 电镜 (E 北 , J C公 司 ) 荧 光共 , 聚焦显 微 镜 ( y u Olmp s公 司) ME 培 养基 ( — 。D M Hy
维普资讯
山东 医药 2 0 0 7年第 4 7卷第 5 期
大 鼠骨髓 间充 质 干 细胞 的分 离 培 养及 生 物 学 特性
张承 韶 杨利 民 , 其亮 王希 强。王 , 张 , , 4泰 山 医学院 )

大鼠骨髓间充质干细胞的无血清培养与鉴定

大鼠骨髓间充质干细胞的无血清培养与鉴定
大减少 。( 4 ) 交互作用 。由以上因素 的交互作用引起 的问题有 : 在僵化 的课程考试 制度 下 , 教师将教学工作看做是学生在一定 时间 内完成某 种教材 的学 习 , 考出高分 ; 而在班级 人数较多 的 情况 下 , 要使教学工作顺利 、 如期完成 , 教师往往先把教材整理 成有条不紊 的知识 体系再传 授给学生 , 而非提 出开放性 的问题
[ 4 】 路振富. 日 本医学院校 P B L - T 模式在我校 口腔解剖 生理教学 中的应 用 [ C 】 . 第六次全 国口腔医学教育学术会议暨 2 0 0 7年国际 口腔医学教 育研讨会论文汇编 , 2 0 0 7 . 【 5 】 杜鹃 , 柯道平 , 孔德虎 , 等. P B L 教学法在生理学实验教学 中的应用探 i - , J I . 1 ] 。 基础 医学教育 , 2 0 1 1 ( 1 0 ) : 2 6 — 2 8 .
医科大学 , 2 0 0 7 .
从结构层 面来看 , 有 以下 因素可能会成为 P B L 教学小组合作 的 障碍 : 班级 人数太多 , 教 室空间太小 , 实验 经费有限 , 课程考试 制度僵化 。“ 一人开讲 、 众人听讲 ” 的传统讲授式教学虽然具有
经济 、 有效 的特点 , 但使 创新教学及 师生合作学 习的可能性大
血清组的 4 6 . 4 %, 两组差异有显著性。结论 无血清培养基的条件能较好地使细胞处 于 G d G 。 期, 保持更好 的分化 潜能及 干
细胞 特 性 。
关键词 : 骨髓 间充质干细胞 ; 无血 清培养 ; 细胞培养 ; 流式细胞仪
中图分类号 : G 4 2 4 . 3 1
文献标识码 : B
近年来研究发现 , MS C s 还可 以分化为神经元、神经胶质细胞 、

大鼠骨髓间充质干细胞分离培养及向脂肪细胞分化的实验研究

大鼠骨髓间充质干细胞分离培养及向脂肪细胞分化的实验研究

爬 片显示约有 6 骨髓 间充质干 细胞分化为脂肪细胞 。结论 O
导分化 为脂肪 细胞 。
大 鼠骨髓 间充质 干细胞能进 行体外 分离 培养并能诱
【 关键词 】 骨髓细胞 ;问充质干细胞;脂肪细胞;细胞分化 【 中图分类 号1 R 2 . 39 2 【 文献标 识码】 A
E p rm e to f e e ta i n o tB n a r w e e c y a t m lsi t i o y e x e i n f Dif r n i to fRa o e M r o M s n h m l e Ce l n o Ad p c t S
c n an n e a eh s n n s l rTh n d f r n i d c l r e i c t d b u a V t i o t i ig d sm t a o e a d i u i e i e e t n r f ae e swe ei n f ae y S d I sar l dt i n _Reu t sl s
mar w. utrd a d p sa e. ro c l e n a sg d M C r n u e o dfee t t no a io ye n id cin me im u s wee id c t i rni e i dp c ts i n u t d u d f a t o
t e 1 t a fe en n u e ,p r xma ey 6 r t h 2 hd yat rb igi d c a p o i t l 0 d a M C swe ei d c t dp g n cc l  ̄ C i u i n r n u e o a io e i el d s o ̄ s o Csc n c l r n i e e t t t d p c tsi i . a u t e a d d f r n i e i o a io y e vt u f a n n r o

骨髓间充质干细胞的分离培养和生物学鉴定

骨髓间充质干细胞的分离培养和生物学鉴定
实验动 物 中心 ) 。
12 方 法 .
12 1 大鼠 骨髓 间充质 干 细 胞 的分 离和 培 养 将 . . S D大 鼠处死 后 , 菌条 件 下 取 出大 鼠股 骨 和 胫 骨 , 无
用 P S冲出骨髓 , B 充分混匀后 , 1 按 :2比例缓慢加 在 比重 为 10 3 ecl分 离 液 上 , 0 rm 离 心 . 7pro1 200p 3mi, 0 n 吸取 液 面交 界 处 的 单个 核 细 胞 , 糖 D M 低 ME 培养 液洗 涤 2次 。将 上述 细胞 以 1x1 ml / 密度 接 0 种于含 1% 胎牛血 清 的 D M—G培 养基 ( m 谷 0 ME L 2M 氨酰胺 、O u m 青 霉素 、0 u ml 霉素 ) 2 c lO / l 10 / 链 的 5m 培养瓶 中 , 于 3 ℃ 、 和湿 度 、 % C 培 养 箱 中 置 7 饱 5 O 进行 原代 培养 , 培养 7 h后 首次 换液 , 2 以后 每 3天 换
甘凤英 肖丽霞 , , 陈彬 娟 叶德 富 ,
(. 1赣南 医学 院第一 附属 医院风湿免疫科 ;. 2 赣南 医学 院第一 附属 医院内分泌科 , 江西 赣州 3 10 4 00; 3 江西 省莲花 县人 民医院 , . 江西 莲花 3 7 0 ;. 3 10 4 福建 医科大学第一 附属医院风湿科 , 福建 福州 30 0 ) 50 6 摘 要: 目的 : 建立体外分离 、 扩增 培养 大 鼠骨髓 间充 质 干细胞 ( C ) MS s 的方法 , 描述 MS s的生 物学 特征 , C 探索 M C 作 为组织工程 种子细胞 的可行性 。方法 : Ss 采用 密度梯度离心法结合贴壁培养法 , 离纯化大 鼠 MS s 分 C 。利用 流式细胞仪检测细胞表面标志物 C I 、 D 9 C 3 、 I 、 D 0 D 4 C 2 、D 4 CM5 C 15的表达率 。取第 4代 MS s C 进行 成骨 、 成脂肪 、 成软骨诱导分化 , 观察 细胞 的形态变化情况 , 在诱 导第 1 d 4 进行茜 素红染色和油 红染 色 以检 测 MS s C 是否分化成 骨和脂肪细胞 ; 在诱 导第 2 d用阿新蓝染 色法 检测 MS s 否分 化成软 骨细胞。结果 : 骨髓 分离获 得的 MS s 1 C是 从 C 为体积小 、 核浆 比大、 呈旋 涡状生 长 的梭 形细 胞。第 3代 细 胞表 面标 记 物 阳性率 分 别 为 C 1 0 6 % , D 9 D 4:. 7 C 2 : 9 . % , D 4 0 7 % , D 50 3 % ,D 0 : 6 3 % 。M C 在 相应 的诱导 条件 下, 化成 骨 、 肪 、 4 5 C 3 :.2 C 4 :.9 C 15 8 .6 Ss 分 脂 软骨 细胞。 结论 : 密度梯度离心结 合贴 壁培养法 可分离 出较纯 的 MS s 经扩增 培养 后获取 足够数量 的 MS s 能满 足组织工 C, C, 程的需要 。MS s C 具有 多向分化 的潜能 , 可在体外诱 导分 化成骨 细胞 、 脂肪细胞 和软 骨细 胞 , 有广 阔 的应 用前 具 景。 关键 词: 骨髓 问充 质干 细胞 ; 软骨 ; ; 骨 脂肪
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中国组织工程研究与临床康复 第13卷 第6期 2009–02–05出版Journal of Clinical Rehabilitative Tissue Engineering Research February 5, 2009 Vol.13, No.6P .O. Box 1200, Shenyang 110004 10641Department of Chinese MateriaMedica, 3Department of Pharmacology, College ofPharmacology, Jinan University, Guangzhou510632, Guangdong Province, China; 2Medical Department, Disable Veteran RehabilitationHospital, Guangzhou 510260, Guangdong Province, ChinaYang Li ☆, Doctor, Lecturer, Department of Chinese Materia Medica, College of Pharmacology, Jinan University, Guangzhou510632, Guangdong Province, China doctormonkey@ Supported by: the National Nature Science Foundation of China, No. 30472274*; the Special Program of Traditional Chinese Medicine Scientific Research of the State Administration of Traditional Chinese Medicine, No.04-05JL19*; a grant from Natural Science Foundation ofGuangdong Province,No. 04105837*; an Accented and Lead Term from Social Development Project of Guangdong Province, No. 2004B33001004*Received: 2008-06-18 Accepted: 2008-12-10建立大鼠骨髓间充质干细胞稳定分离培养体系与鉴定****☆杨 丽1,张荣华1,谢厚杰2,蔡 宇1,黄 丰3Establishment of a stable isolation culture system and identification of rat bone marrow mesenchymal stem cellsYang Li 1, Zhang Rong-hua 1, Xie Hou-jie 2, Cai Yu 1, Huang Feng 3AbstractBACKGROUND: Bone marrow mesenchymal stem cells (BMSCs) are widely used as seed cells in tissue engineering and other fields. Therefore, the establishment of a stable isolation and identification system of BMSCs is very important.OBJECTIVE: To in vitro harvest rat BMSCs through various methods, to observe cell morphology, and to assess surface marker and multi-directional differentiation.DESIGN, TIME AND SETTING: This cytology in vitro controlled experiment was performed at the Jinan University from August to December 2005.MATERIALS: Five SPF grade female Sprague Dawley rats, aged 3-months old, were provided by the Animal Experimental Center of Sun Yat-sen University.METHODS: Rat double lower limbs were isolated sterilely. Bone marrow was obtained by rinsing using low-glucose DMEM.BMSCs were isolated and purified by the whole bone marrow adherence method and density gradient centrifugation. BMSCs were purified by the differential adherence. At the third passage, BMSCs were incubated in osteogenous, adipogenic and chondrogenic medium for 14 days.MAIN OUTCOME MEASURES: The morphology of BMSCs was observed by the inverted phase contrast microscope. Expression of BMSC surface antigens was detected by flow cytometer. Osteogenous potential was assessed by alkaline phosphatase staining. Adipogenic potential was evaluated by Oil red O staining. Chondrogenic potential was assessed by toluidine blue staining. RESULTS: Compared with the density gradient centrifugation, BMSCs isolated by the adherence separation had shorteradherence time and faster multiplication rate, which could be purified by subculture. At the third passage, BMSCs showed the typical polar swirl morphology. BMSCs were negative for CD34 and CD45, but positive for CD29 and CD44. Following induction, alkaline phosphatase staining, Oil red staining and toluidine blue staining produced a strong reaction in cells.CONCLUSION: BMSCs by the adherence separation method have a good homogeneity, and the outcome is better compared with the density gradient centrifugation. The cells isolated and cultured in vitro in this study are identified as rat BMSCs by morphology, surface antigens and differentiation into osteoblasts, adipocytes and chondrocytes, which have the biological characteristics of BMSCs.Yang L, Zhang RH, Xie HJ, Cai Y, Huang F.Establishment of a stable isolation culture system and identification of rat bone marrow mesenchymal stem cells.Zhongguo Zuzhi Gongcheng Yanjiu yu Linchuang Kangfu 2009;13(6): 1064-1068(China) [ ]摘要背景:骨髓间充质干细胞作为种子细胞在组织工程等领域应用广泛,建立稳定的分离培养体系和统一鉴定标准尤为重要。

目的:以不同方法体外分离培养大鼠骨髓间充质干细胞,并进行细胞形态学观察、表面标志物鉴定及多向分化能力检测。

设计、时间及地点:细胞学体外对比观察,于2005-08/12在暨南大学完成。

材料:SPF 级3月龄SD 雌性大鼠5只,由中山大学实验动物中心提供。

方法:无菌条件下分离大鼠双下肢,低糖DMEM 培养液冲出骨髓,分别运用全骨髓贴壁法和密度梯度离心法体外分离骨髓间充质干细胞,利用差速贴壁原理对细胞进行纯化扩增。

取生长状态良好的第3代骨髓间充质干细胞,分别加入成骨、成脂、成软骨诱导培养基,培养14 d 。

主要观察指标:倒置相差显微镜下观察骨髓间充质干细胞的生长状态,流式细胞仪检测细胞表面标志物的表达,采用碱性磷酸酶染色鉴定成骨能力,以油红O 染色鉴定成脂能力,以甲苯胺蓝染色鉴定成软骨能力。

结果:与密度梯度离心法相比,全骨髓贴壁法分离获得的骨髓间充质干细胞贴壁时间短,增殖快,经传代后能够纯化。

第3代骨髓间充质干细胞形态单一均匀,呈典型的极性漩涡状生长,不表达造血前体细胞标志抗原CD34和白细胞标志抗原CD45,表达整合素家族成员CD29和黏附分子CD44,经诱导后碱性磷酸酶染色、油红O 染色和甲苯胺蓝染色均呈阳性。

结论:采用全骨髓贴壁法可稳定获得均质性良好的大鼠骨髓间充质干细胞,效果优于密度梯度离心法。

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