神经干动作电位-实验.
实验8神经干动作电位
兴奋性和动作电位的传导。
05 实验结论
CHAPTER
神经干动作电位的形成机制与传导方式
形成机制
神经干动作电位是由多个神经元 兴奋产生的电位变化，通过神经 元之间的电信号传递，最终形成 动作电位。
传导方式
神经干动作电位通过神经元之间 的突触连接传递，通过电信号的 传递，使兴奋在神经元之间传递 ，最终传导至整个神经干。
学习神经干动作电位的实验方法
01
学习如何使用电生理仪器记录神经干动作电位，包 括电极放置、信号放大、滤波等操作。
02
学习如何处理实验数据，包括数据采集、整理、分 析和解释等步骤。
03
了解实验过程中的注意事项和操作规范，以保证实 验结果的准确性和可靠性。
分析神经干动作电位的特点
01 分析神经干动作电位的波形特征，包括幅度、时 程、阈值等参数。
VS
影响因素
神经干动作电位的传导速度受到多种因素 的影响，包括神经元的直径、髓鞘的完整 性、温度等。这些因素通过影响神经元的 电导性和兴奋性来影响动作电位的传导速 度。
神经干动作电位的影响因素分析
01
刺激强度和频率
实验结果表明，神经干动作电位的产生和传导受到刺激强度和频率的影
响。在一定范围内，刺激强度和频率的增加会使神经元更容易兴奋并产
改进方向
未来研究可以进一步探讨不同条件下的神经 干动作电位，以及神经干动作电位与其他生 理过程之间的关系，以更全面地了解其形成 机制和传导方式。
谢谢
THANKS
数据处理与分析
对记录的神经干动作电位数据进行处理，如滤波、降噪等。
分析处理后的数据，如测量峰电位、阈电位等参数，并计算神经干的动作 电位传导速度。
根据实验结果，得出结论并分析可能的原因。
神经干动作电位实验报告
神经干动作电位实验报告一、实验目的研究神经干动作电位的基本特征及产生机制。
二、实验原理神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究。
神经干动作电位是由大量神经细胞同时产生的、电位差较大的电信号。
当神经细胞兴奋峰值超过一定阈值时，会产生神经冲动，传导到轴突末梢，并触发神经干动作电位。
三、实验器材和试剂1.脉冲发生器2.示波器3.探针4.青蛙腓肠神经5.盐水试剂四、实验步骤1.准备工作：将青蛙放入盐水中，使其神经麻痹，然后取出青蛙腓肠神经进行实验。
2.将脉冲发生器的输出端与示波器的输入端相连接，将示波器的探针分别连接到接地端和腓肠神经上。
3.调整脉冲发生器的参数，包括幅值、频率和脉冲宽度等，观察示波器上的波形变化。
4.记录神经干动作电位的波形、幅值和频率等特征。
五、实验结果和分析根据实验结果及已知知识，我们可以进一步分析神经干动作电位的产生机制。
神经细胞内外的离子浓度存在差异，细胞外Na+浓度较高，而细胞内K+浓度较高。
当神经细胞兴奋时，细胞膜上的离子通道会打开，导致Na+离子大量进入细胞内，从而产生快速上升期；随后，Na+通道关闭，而K+通道打开，导致K+离子大量流出，产生快速下降期。
在超极化期，细胞膜上的Na+/K+泵恢复细胞内外离子的平衡，使细胞膜电位恢复至静息状态。
六、实验结论通过神经干动作电位实验，我们掌握了神经干动作电位的基本特征和产生机制。
神经干动作电位具有典型的波形特征，包括快速上升期、峰值期、快速下降期和超极化期。
神经细胞的兴奋状态可以通过记录神经干动作电位来研究，并且神经干动作电位的产生是由于细胞内外离子浓度差异以及离子通道的打开和关闭所导致的。
七、实验总结神经干动作电位是研究神经细胞兴奋状态的重要方法之一、通过实验，我们不仅了解了神经干动作电位的基本特征和产生机制，还掌握了记录和观察神经干动作电位的实验技巧。
该实验对于进一步研究神经细胞的功能和机制具有重要意义。
神经干动作电位的实验报告
神经干动作电位的实验报告神经干动作电位的实验报告引言：神经干动作电位（nerve conduction action potential）是指神经细胞在受到刺激后产生的电信号，它是神经系统正常功能的重要指标之一。
本实验旨在研究神经干动作电位的特征及其在临床应用中的意义。
实验方法：本次实验采用了小鼠尾神经为研究对象。
首先，将小鼠固定在实验台上，用电刺激仪器对尾神经进行刺激。
刺激强度和频率分别为10mA和1Hz。
同时，使用电极记录尾神经上的动作电位，并将信号放大放大后通过示波器显示和记录。
实验结果：经过实验记录和数据分析，我们得到了以下结果：1. 动作电位的波形特征：在实验中，我们观察到尾神经上的动作电位呈现出典型的波形特征。
首先是负向的初始反应，随后是正向的峰值反应，最后是负向的复极化反应。
这一波形特征反映了神经细胞在受到刺激后的电活动过程。
2. 动作电位的幅值和潜伏期：通过测量动作电位的幅值和潜伏期，我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性。
实验结果显示，动作电位的幅值和潜伏期与刺激强度和频率呈正相关关系。
这一结果表明，神经传导速度和神经细胞的兴奋性受到刺激强度和频率的调节。
3. 动作电位的传导速度：实验结果显示，动作电位在尾神经中的传导速度为Xm/s。
这一结果与已有的文献报道相符，进一步验证了本实验的可靠性。
实验讨论：神经干动作电位的实验结果对于临床应用具有重要意义。
首先，通过测量动作电位的幅值和潜伏期，我们可以评估神经传导速度和神经细胞的兴奋性，从而诊断和监测神经系统疾病。
例如，在神经病学领域，动作电位的异常可以提示神经疾病的存在和发展。
其次，动作电位的传导速度可以用来评估神经损伤的程度和康复进展。
在临床上，这对于神经损伤患者的康复治疗和预后评估非常重要。
此外，神经干动作电位的实验方法还可以应用于药物研发和毒理学研究中。
通过测量动作电位的变化，我们可以评估药物对神经细胞兴奋性的影响，从而指导药物的合理使用和毒性评估。
生理学实验神经干动作电位的测定
⽣理学实验神经⼲动作电位的测定实验四神经⼲动作电位的测定【实验⽬的】学习⽣物电活动的细胞外记录法；观察坐⾻神经⼲动作电位的基本波形、潜伏期、幅值以及时程。
【实验原理】神经组织属于可兴奋组织，其兴奋的客观标志是产⽣动作电位，即当受到有效刺激时，膜电位在静息电位的基础上将发⽣⼀系列的快速、可逆、可扩布的电位变化。
动作电位可以沿着神经纤维传导。
在神经细胞外表⾯，已兴奋的部位带负电，未兴奋的部位带正电。
采⽤电⽣理学实验⽅法可以引导出此电位差或电位变化，根据引导的⽅式不同，所记录到的动作电位可呈现单向或双向的波形。
由于坐⾻神经⼲是由许多神经纤维组成的，所以其产⽣的动作电位是众多神经纤维动作电位的叠加，即为⼀个复合动作电位。
这些神经纤维的兴奋性是不同的，所以在⼀定范围内增⼤刺激强度可以使电位幅度增⼤。
这和单⼀细胞产⽣的动作电位是有区别的。
本实验所引导出的动作电位即为坐⾻神经⼲的复合动作电位。
【实验对象】蛙或蟾蜍。
【实验材料】两栖类⼿术器械 1 套、滴管、BL-410⽣物机能实验系统、神经屏蔽盒、刺激电极、接收电极、任⽒液。
【实验步骤】1．制备坐⾻神经⼲标本坐⾻神经⼲标本的制备⽅法与制备坐⾻神经-腓肠肌标本相似。
⾸先按照制备坐⾻神经- 腓肠肌标本的⽅法分离坐⾻神经，当游离⾄膝关节处时，在腓肠肌两侧找到胫神经和腓神经，任选其⼀剪断，然后分离留下的⼀⽀直⾄⾜趾并剪断。
保留与坐⾻神经相连的⼀⼩段脊柱，其余组织均剪除。
此时，即制成了坐⾻神经⼲标本。
将标本浸于任⽒液中，待其兴奋性稳定后开始实验。
2．接标本与实验仪器1）棉球沾任⽒液擦拭神经标本屏蔽盒内的电极，将标本的脊柱端置于屏蔽盒的刺激电（图 4－1 屏蔽盒）极端（即 0刻度端），其神经部分横搭在各个电极上。
2）取出 BL-410 ⽣物机能实验系统专⽤刺激电极，将其插头插在与主机“刺激”插⼝中，另⼀端的两个鳄鱼夹分别夹在屏蔽盒左侧的两个刺激接⼝上。
红⾊接正极，⿊⾊接负极。
实验神经干动作电位
在神经系统疾病诊断中的应用
神经传导速度测定
通过测定神经传导速度，可以判 断神经传导是否正常，从而辅助
诊断神经系统疾病。
神经肌肉功能评估
神经干动作电位可以反映神经肌肉 功能状态，对于评估神经系统疾病 患者的肌肉功能具有重要意义。
鉴别诊断
通过神经干动作电位的测定，可以 鉴别不同类型的神经系统疾病，如 多发性硬化、脊髓灰质炎等。
神经干的生理状态对动作电位也有影 响。例如，神经干的兴奋性和传导性 能可能会受到温度、离子浓度、神经 调节物质等因素的影响。
04
实验神经干动作电位分析方法
阈值确定与幅度测量
阈值确定
阈值是指引发动作电位的最小刺 激强度。在实验中，通过逐步降 低刺激强度并观察是否引发动作 电位来确定阈值。
幅度测量
幅度是指动作电位的最大值。在 实验中，通过观察动作电位的波 峰与波谷来确定幅度。
神经传导
神经干动作电位是神经传导的基 础，它使得神经冲动能够沿着神 经纤维迅速传递到目的地。
肌肉收缩
神经干动作电位通过影响肌肉细 胞的兴奋性和收缩性，使得肌肉 能够产生收缩和舒张运动。
感觉传递
神经干动作电位还参与感觉传递 过程，它使得感觉信号能够沿着 神经纤维传递到大脑，从而产生 相应的感觉体验。
02
康复评估
01
神经干动作电位可以用于评估患者的康复程度，为制定康复计
划提供依据。
康复治疗指导
02
根据神经干动作电位的测定结果，可以指导康复治疗师制定针
对性的康复治疗方案。
预防并发症
03
通过定期监测神经干动作电位，可以及时发现并预防因神经系
统疾病引起的并发症。
THANKS
谢谢您的观看
神经干电位实验报告
一、实验目的1. 理解神经干动作电位的基本概念和形成机制。
2. 掌握神经干动作电位的引导方法和步骤。
3. 通过实验观察神经干动作电位的特点，包括波形、传导速度和不应期。
4. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化，如刺激强度、损伤和药物作用等。
二、实验原理神经干动作电位是神经纤维在受到有效刺激时产生的可传导的电位变化，是神经细胞兴奋的客观标志。
神经干动作电位是由许多单根神经纤维的动作电位复合而成的，其特征与单根神经纤维的动作电位有所不同。
三、实验材料1. 实验对象：青蛙或蟾蜍2. 实验药品和器材：任氏液，2%普鲁卡因，各种带USB接口或插头的连接导线，神经屏蔽盒，蛙板，玻璃分针，粗剪刀，眼科剪，眼科镊，培养皿，烧杯，滴管，蛙毁髓探针，BL-420N系统四、实验方法和步骤1. 制备神经标本：将青蛙或蟾蜍处死，解剖出坐骨神经干，用任氏液浸泡并保持湿润。
2. 安放引导电极：将引导电极固定在神经干上，确保电极与神经干良好接触。
3. 安放刺激电极：将刺激电极固定在神经干上，距离引导电极适当距离。
4. 启动试验系统：连接BL-420N系统，打开软件，设置实验参数。
5. 观察记录：逐渐增加刺激强度，观察并记录神经干动作电位的波形、传导速度和不应期。
6. 分析实验结果：分析不同刺激强度下神经干动作电位的变化，以及损伤和药物作用对神经干动作电位的影响。
五、实验结果1. 神经干动作电位波形：观察到神经干动作电位呈双相波形，第一相为上升支，第二相为下降支。
2. 神经干动作电位传导速度：随着刺激强度的增加，神经干动作电位传导速度逐渐提高。
3. 神经干动作电位不应期：观察到神经干动作电位存在不应期，不应期随刺激强度的增加而缩短。
六、讨论1. 神经干动作电位的形成机制：神经干动作电位是由许多单根神经纤维的动作电位复合而成的，其特征与单根神经纤维的动作电位有所不同。
2. 刺激强度对神经干动作电位的影响：随着刺激强度的增加，神经干动作电位传导速度逐渐提高，不应期缩短。
实验神经干动作电位
02
实验材料与方法
实验材料准备
01
02
03
04
神经干标本
选择新鲜、无损伤的神经干标 本，如蛙坐骨神经或哺乳动物
的腓肠神经等。
任氏液
用于保持神经干标本的生理活 性，需预先配置并充氧。
电极与刺激器
选择适当类型和规格的电极与 刺激器，用于记录动作电位和
施加刺激。
显微镜与成像系统
用于观察神经干标本的状态和 记录实验过程。
保电极与神经干紧密接触。
刺激参数设置
02
根据实验需求设置刺激参数，如刺激强度、频率和持续时间等
。
动作电位记录
03
在施加刺激的同时记录神经干的动作电位，观察其波形、幅度
和传播速度等指标。
03
实验结果展示
正常神经干动作电位波形图
波形特征
正常神经干动作电位具有典型的“全 或无”现象，波形呈尖峰状，上升支 陡峭，下降支较平缓。
实验动物选择及处理
01
02
03
动物种类选择
根据实验需求选择合适的 动物种类，如蛙、小鼠等 。
动物麻醉与固定
采用适当的麻醉方法和固 定装置，确保动物在实验 过程中保持静止并减轻其 痛苦。
动物手术操作
进行必要的手术操作，如 分离坐骨神经或腓肠神经 等，以获取神经干标本。
记录方法与步骤
电极放置
01
将记录电极和刺激电极分别放置在神经干标本的适当位置，确
04
数据处理与统计分析
数据处理方法介绍
01
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数据清洗
去除异常值、平滑处理、 填补缺失值等操作，以提 高数据质量。
特征提取
提取与神经干动作电位相 关的特征参数，如峰值、 潜伏期、动作电位时长等 。
神经干动作实验报告
一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程；2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法；3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。
二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时，产生的一系列电生理现象。
当神经纤维膜电位达到一定阈值时，钠离子内流，产生动作电位，进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。
本实验通过观察和测量神经干动作电位，了解其传导速度和不应期等参数。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验器材：坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统；3. 实验药品：2%普鲁卡因。
四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本：将蟾蜍麻醉后，解剖出坐骨神经干，置于任氏液中，用玻璃分针轻轻挑起，去除周围组织；2. 安装电极：将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端，连接BL-420N系统；3. 刺激和记录：启动刺激器，给予坐骨神经干一定强度的刺激，观察示波器上的波形，记录动作电位传导速度和不应期；4. 重复实验：改变刺激强度，重复实验，观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。
五、实验结果1. 动作电位传导速度：在实验条件下，坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s；2. 不应期：在实验条件下，坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms；3. 刺激强度与传导速度的关系：随着刺激强度的增加，动作电位传导速度逐渐增加，但增加幅度逐渐减小；4. 刺激强度与不应期的关系：随着刺激强度的增加，动作电位不应期逐渐延长。
六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理：神经干动作电位传导速度的测定原理是，通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间，计算出传导速度；2. 不应期的产生原因：神经干动作电位不应期的产生原因是，神经纤维在兴奋时，膜电位处于超极化状态，此时钠离子内流受到抑制，导致动作电位不能立即产生；3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系：刺激强度与传导速度呈正相关，但并非线性关系；刺激强度与不应期呈正相关。
神经干动作电位实验报告
神经干动作电位实验报告实验目的，通过对神经干动作电位的测定，了解神经细胞的兴奋传导特性，探究不同刺激条件下神经细胞的反应。
实验原理，神经细胞在受到刺激时，会产生电位变化，即动作电位。
通过电极记录这种电位变化，可以观察神经细胞的兴奋传导过程。
实验仪器，本次实验使用的仪器包括生理记录仪、电极、刺激器等。
实验步骤：1. 将动物神经干置于生理盐水中，使其保持活性。
2. 将电极插入神经干内，通过生理记录仪记录下神经干的基础电位。
3. 使用刺激器对神经干进行刺激，记录下不同刺激条件下的动作电位变化。
4. 分析实验数据，观察神经细胞在不同刺激条件下的反应特点。
实验结果：经过实验记录和数据分析，我们得到了以下结论：1. 在不同刺激条件下，神经细胞产生的动作电位幅度和频率均有所不同。
2. 强刺激下，动作电位幅度较大，频率较高；弱刺激下，动作电位幅度较小，频率较低。
3. 在一定范围内，刺激强度与动作电位幅度呈正相关关系，刺激强度与动作电位频率呈正相关关系。
实验讨论：通过本次实验，我们深入了解了神经细胞的兴奋传导特性。
神经细胞在受到刺激时，会产生电位变化，这种动作电位的幅度和频率受到刺激强度的影响。
这为我们进一步研究神经细胞的兴奋传导机制提供了重要的实验基础。
实验结论：本次实验通过对神经干动作电位的测定，深入了解了神经细胞的兴奋传导特性。
不同刺激条件下，神经细胞产生的动作电位幅度和频率均有所不同，刺激强度与动作电位幅度、频率呈正相关关系。
这为进一步研究神经细胞的兴奋传导机制提供了重要的实验基础。
结语：通过本次实验，我们对神经细胞的兴奋传导特性有了更深入的了解。
希望通过这一实验，能够为相关领域的研究工作提供一定的参考和帮助。
神经科学是一个充满挑战和机遇的领域，我们将继续努力，探索更多神经细胞的奥秘。
神经干动作电位-实验
• 神经干由许多神经纤维组成。其动作电位是以膜外记 录方式记录到的复合动作电位
• 如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面，兴 奋波先后通过两个电极处，便引导出两个方向相反的 电位波形，称双相动作电位
双相动作电位
细胞外引导电极 检流计
兴奋区
方法和步骤
制备坐骨神经干标本
1.破坏脑和脊髓 2.剪除躯干上部及内脏 3.剥去皮肤（手及用过的器械用自来水冲洗） 4.分离两腿 5.制坐骨神经干标本
连接实验装置
观察项目
引导神经干双相动作电位
观察刺激强度对动作电位幅度的影响 找出阈强度和最大刺激强度 测量动作电位传导速度： v =s/t 观察单相动作电位和不应期 测定不应期条件：双刺激（串数2）；间隔↓
动作电位传导速度的测定
Measurement of Conduction Velocity of AP
生物信号的采集及 MD2000的使用
生物电信号的采集
程控 生物体
生物 信号
刺激器
换能器
放大器
A/D
微机
程控
换能器
压力换能器 张力换能器
刺激器
刺激方式：单次，连续，定时，串刺激
刺激参数：刺激强度，波宽，频率
神经干动作电位的引 导、传导速度测定和 不应期的观察
动作电位的记录方法
刺激器
输入通道
+
－
R1-
Rr1+ R2-
R2+
S
Δt
传导速度测定 υ=
SAC Δt
注意事项
抓取蟾蜍时，禁忌挤压两侧耳部的毒腺，禁止将蟾蜍头部 对着自己及他人，以免其眼后线处分泌毒液射入眼中。 剥皮后须将手及用过的器械洗净，再进行下一步操作 用玻璃分针去除神经周围的结缔组织，避免用力牵拉神经 或用金属器械夹捏神经，以防神经损伤。
神经干的动作电位实验原理
神经干的动作电位实验原理神经纤维是由许多神经元细胞组成的，它们负责传递电信号，控制身体的各种活动。
神经冲动的传导是通过动作电位来实现的。
动作电位是神经细胞膜上离子通道的开关行为引起的电势变化。
在静息状态下，神经细胞膜内外的离子浓度不同，维持了细胞内负电荷和细胞外正电荷的电位差，称为静息膜电位。
当神经细胞受到足够的刺激时，细胞膜上的离子通道打开，使得细胞内外离子转移，导致细胞内外电位差的改变，形成动作电位。
动作电位的形成过程可分为四个阶段：极化、阈值、去极化和复极化。
首先，在极化阶段，神经细胞膜内外的电位差逐渐增大，细胞内变得更加负电荷，称为次级负荷，这是由于离子通道的打开导致部分正离子转移到细胞内。
当膜内电位达到一定临界值，称为阈值，会引发去极化阶段。
在去极化过程中，大量的钠离子进入细胞内，使膜电位快速变为正值，形成动作电位的峰值。
随后，在复极化阶段，钠离子通道关闭，钾离子通道打开，导致细胞内外离子重新分配，使膜电位恢复到负值，恢复到静息膜电位。
神经干的动作电位实验通常使用微电极技术来测量。
微电极是一种精细的电极，可以插入神经纤维中，并记录细胞膜上的电位变化。
实验中，将微电极插入到神经纤维上，通过定位和调整，使电极与神经纤维接触并获取到动作电位信号。
动作电位信号经过放大和滤波处理，可以显示为波形图，用于分析和研究神经细胞的电活动。
神经干的动作电位实验可以用于研究神经传递机制、神经疾病的发生机制以及药物的作用等方面。
通过观察和分析动作电位的形成过程和特征，可以了解神经细胞的兴奋性、传导速度和稳定性等重要参数。
研究人员可以通过改变刺激强度、频率和类型等条件，来研究神经元的兴奋性和传导特性。
另外，也可以使用药物干预的方法，来研究不同药物对神经细胞电活动的影响，探索新的药物治疗途径。
总之，神经干的动作电位实验通过测量神经细胞膜上的电位变化来研究神经电活动。
该实验方法可以提供神经元兴奋性、传导速度和稳定性等参数的信息，有助于深入了解神经系统的功能和神经疾病的机制，为药物研发和治疗提供重要的依据。
生理实验报告神经干复合动作电位
生理实验报告神经干复合动作电位实验目的：1.了解神经干复合动作电位的形成和传导。
2.掌握记录和分析神经干复合动作电位的方法。
3.观察和分析神经干复合动作电位在不同刺激条件下的变化。
实验原理:神经干是指神经纤维在离开整个神经系统后，在肌骨、脏器等部位的展开。
神经干复合动作电位（CNAPs）是指由神经干上的多个神经元细胞同时参与形成的电信号，它是神经干传导时产生的电生理事件。
通常情况下，神经干复合动作电位由4个不同的组分组成，依次是起始变化、顶峰反射、降落相和后期反射。
这些组分的形成和传导过程会受到不同因素的影响，如刺激的强度、频率和持续时间等。
实验设备：1个主机1台示波器1个刺激电极2个测量电极1箱生理盐水1张生理实验纸实验步骤：1.将示波器的探头分别连接到刺激电极和测量电极上，探头的地线连接到主机上的地线端。
2.将测量电极分别放置在神经干上和离神经干较远的位置上，测量电极间距应足够大，以避免电信号重叠。
3.用生理盐水湿润纸片，将刺激电极夹在纸片中央的合适位置上。
4.调整示波器的放大倍数和时间基准以获得清晰的信号波形。
5.将主机上的刺激按钮设置为适当的参数，并按下开始按钮开始记录信号。
6.根据实验要求分别改变刺激电流的强度、频率和持续时间，并记录相应的信号波形。
7.重复实验步骤4-6，直到完成所有实验要求。
实验结果分析：1.观察到的信号波形应包含起始变化、顶峰反射、降落相和后期反射这四个组分，根据波形的形态和振幅变化可以分析神经传导的速度和强度。
2.改变刺激条件后，观察信号波形的变化，记录并分析不同刺激条件下的神经传导特点如传导速度、传导延迟、反射强度等。
实验结论：1.神经干复合动作电位是由神经干上的多个神经元细胞参与形成的电信号。
2.神经干复合动作电位的形成和传导受到多种因素的影响，包括刺激强度、频率和持续时间等。
3.改变刺激条件可以观察到神经干复合动作电位的变化，进而分析神经传导的特点。
4.通过实验可以掌握记录和分析神经干复合动作电位的方法，并获得相关实验结果。
神经干动作电位实验报告
神经干动作电位实验报告神经干动作电位实验报告引言：神经干动作电位是一种记录和研究神经元活动的重要方法。
通过测量神经元在受到刺激时产生的电信号，我们可以了解神经元的兴奋性、传导速度以及神经网络的功能。
本实验旨在探究神经干动作电位的特性和应用，并通过实际操作来加深对该实验的理解。
实验步骤：1. 实验前准备：将被试者坐于舒适的位置，确保其放松且不受干扰。
将电极贴于被试者的皮肤上，通常选择头皮、手腕或脚踝等部位。
2. 刺激信号的产生：使用外部刺激器，如电极或光纤，对被试者进行刺激。
可以选择不同的刺激方式，如电流、光线或声音等。
3. 信号采集：使用生物电放大器将神经干动作电位信号放大，并通过电极将信号输入到计算机或记录设备上。
确保信号的质量和稳定性，以获取准确的实验结果。
4. 数据分析：通过对采集到的信号进行处理和分析，可以得到神经干动作电位的特征参数，如幅值、潜伏期和传导速度等。
同时，还可以对不同刺激条件下的实验结果进行比较和统计。
实验结果与讨论：1. 神经干动作电位的特征参数：根据实验数据的分析，我们可以得到神经干动作电位的幅值、潜伏期和传导速度等参数。
这些参数可以反映神经元的兴奋性和传导能力，从而帮助我们了解神经系统的功能和病理变化。
2. 神经干动作电位的应用：神经干动作电位在临床医学和科学研究中有着广泛的应用。
例如，通过测量神经干动作电位，可以评估神经系统的功能状态，如神经病变、神经损伤和神经炎等。
此外，神经干动作电位还可以用于研究神经网络的连接和传导机制，对于理解大脑的工作原理和神经系统疾病的发生机制具有重要意义。
3. 实验的局限性和改进方向：在进行神经干动作电位实验时，也存在一些局限性。
例如，信号的稳定性和噪声的干扰可能影响实验结果的准确性。
此外，实验中使用的刺激方式和参数的选择也可能对结果产生影响。
因此，未来的研究可以进一步改进实验设计和信号处理方法，以提高实验的可重复性和准确性。
结论：神经干动作电位实验是一种重要的方法，用于研究神经元活动和神经系统功能。
6.神经干动作电位的测定.
【动物与器材】同实验7。
【方法与步骤】
1．制备蟾蜍或蛙的坐骨神经标本。要求神经干 尽量分离得长些。
2．连接好仪器7个电极。各仪器的工作参数参考 前面的实验执行。
3. 根据扫描速度，测量从刺激伪迹至两个动作 电位起始点之间的时间差（t），此即为神经 冲动从第一对引导电极传导到第二对引导电 极所需要的时间。
谢谢欣赏
THANK YOU FOR WATCHING
【思考题】
1．说明单相和双相动作电位的产生原理。
2．解释在一定范围内神经干动作电位的振幅随 刺激强度而改变，是否与单个神经纤维动作电 位的“全或无”定律相矛盾。
3．改变神经干的方向后，动作电位的波形发生 了什么变化，为什么？
实验2 坐骨神经不应期的测定
【目的要求】 1．学习测定神经不应期的基本原理和方法。 2．掌握BL－420的使用方法。
ห้องสมุดไป่ตู้
【基本原理】
神经在一次兴奋后，其兴奋性发生周 期性的变化，而后才恢复正常。一般把这 些变化分为四个时期：绝对不应期、相对 不应期、超常期和低常期。应用电生理学 方法可以观察或测定神经的不应期。
通过调节刺激器的连续双脉冲的时间间
隔，可测定坐骨神经的不应期。当双脉冲的 间隔时间为20ms左右时，荧光屏上呈现两个 同样大小的动作电位。逐渐缩短双脉冲之间 的间隔，第二个动作电位逐渐向第一个动作 电位靠近，振幅也随之降低，最后可因落在 第一个动作电位的绝对不应期内而完全消失。
5．调节刺激器“强度”旋钮，使其从0逐渐增加。当强 度达到一定数值时，即可出现双相动作电位。仔细观 察其波形，并测量其阈刺激、阈上刺激和最大刺激强 度的幅值以及最大刺激强度时整个动作电位的持续时 间及幅度。
6．倒换神经干的放置方向，动作电位有无变化。
【机能实验】神经干动作电位
3.测定传导速度(自动/手动)
（1）V=S/t（m/s）
（2）AP1与AP2的波峰的时差 r1点与r3点间的距离
20
S1 S2
S(cm)
r1 r2
r3 r4
21
4.检测兴奋性周期变化
• 绝对不应期 ∞
0
• 相对不应期 阈上
• 超常期
阈下
• 低常期
阈上
22
最大刺激强度
保持刺激强度和波宽不变
υ＝ S R1- R2- / Δt 计算出AP的传导速度。
+-
R1- R1 +
R2- R2 +
Central end
S R1- R2-
Peripheral end
υ=
S R1- R2-
Δt
Δt
10
2.5 测定单相动作电位 （monophasic action potential，MAP） 用镊子 夹伤对1对引导电极间的神经 干，然后用1.0V电压，波宽 0.1ms的单个方波激刺激神经 干中枢端，测定末梢端MAP振 幅和时程。
蛙离体神经干生物电信 号与兴奋性检测
1
RM-6240生物信号采集系统
2
1.材料和方法 (Materials and methods ) 1.2药品(drug) 任氏液
每升任氏液含 NaCl 6.5 g、KCl 0.14 g、CaCl2 0.12 g,、NaHCO3 0.20 g、NaH2PO4 0.01 g。
S+ S- E R1 - R1+ R2- R2+
刺激 电极
引导 电极
引导 电极
神经干标本盒
S+、S-刺激电极，E接地电极 ，r1- 、r1+和r2- 、r2+引导电 极，
神经干动作电位电生理实验
刺激伪迹
（四）神经干AP不应期的测定
（前后两个刺激，一对引导电极）逐渐缩小两Fra bibliotek刺激间的脉冲间隔
ARP
RRP
图2 神经干动作电位不应期测定 由图可测得 绝对不应期（ARP）＝2ms， 相对不应期（RRP）＝3ms
（四）绘制刺激时间－强度曲线
（4至5对刺激参数，一个刺激，一对引导电极）
I
0.1 0.2 0.3 0.4 0.6
神经干动作电位电生理实验
[原理] （一）神经干动作电位的特点 1. 复合电位，细胞外记录 2. 不完全符合“全”或“无”原则 3. 双向电位
（二）神经干动作电位记录方法
接地
刺激 引导 引导 12
（三） 神经干动作电位传导速度的测定
(一个刺激，两对引导电极) V= L (m/s)
T2-T1
L
T1 T2
刺激强度1=0.6V, 脉冲宽度=0.1ms, 前延时
（2）测定神经干动作电位的不应期（正常情况）
刺激强度1=刺激强度2，脉冲宽度=0.1ms, 脉冲间隔从10ms开始逐渐减小至2左右
（3）绘制刺激强度—时间曲线
脉冲宽度从0.1开始逐渐增大，刺激强度1逐渐减小
（4）给药： 2%普鲁卡因→动作电位传导速度 利多卡因→动作电位不应期
T1 = 0.1ms, I1 = mV T2 = 0.2ms, I2 = mV T3 = 0.3ms, I3 = mV T4 = 0.4ms, I4 = mV T5 = 0.6ms, I5 = mV
T
步骤
1、制备蟾蜍坐骨神经、腓神经标本。 2、观察项目。
（1）测定神经干动作电位的传导速度（正常情况）
实验结果的书写
V=20m/s
实验七神经干动作电位动物学实验
神 经 干 动 作 电 位
如果将两引导电极置于正常完 整的神经干表面， 整的神经干表面，当神经干一端兴 奋后， 奋后，兴奋波先后通过两个引导电 极，可记录到两个方向相反的电位 偏转波形，称为双相动作电位 双相动作电位。 偏转波形，称为双相动作电位。
神 经 干 动 作 电 位
神 经 干 动 作 电 位
目的 神 经 干 动 作 电 位
2.观察蛙坐骨神经干复合动作电位 2.观察蛙坐骨神经干复合动作电位 的波形，并了解其产生的基本原理。 的波形，并了解其产生的基本原理。 1.学习电生理实验方法。 1.学习电生理实验方法。 学习电生理实验方法
静息电位及其产生机理 神 经 干 动 作 电 位
枪乌贼的巨大神经轴突-70mV； 枪乌贼的巨大神经轴突-70mV； 蛙缝匠肌-90mV； 蛙缝匠肌-90mV；哺乳动物骨骼 90mV。人类红细胞-10mV。 肌-90mV。人类红细胞-10mV。
实验材料： 实验材料：
1.青蛙 1.青蛙 2.任氏液 2.任氏液 3.蛙类手术器械 3.蛙类手术器械 4.生物机能实验系统 4.生物机能实验系统
神 经 干 动 作 电 位
实验方法与步骤: 实验方法与步骤
1.制备蛙坐骨神经腓神经标本 1.制备蛙坐骨神经腓神经标本 2.标本放置于神经标本盒中 2.标本放置于神经标本盒中 3.选用实验模块中动作电位项目开始实验 3.选用实验模块中动作电位项目开始实验 选用实验模块中动作电位 4.按实验指导完成各项目 4.按实验指导完成各项目
神 经 干 动 作 电 位
注意事项: 注意事项
1.小心分离神经 1.小心分离神经 2.标本盒中任氏液不可过多 2.标本盒中任氏液不可过多
*静息电位的概念 静息电位的概念 细胞未受刺激时存在于细胞膜内外 两侧的电位差。 两侧的电位差。
实验一、神经干动作电位
完全强直收缩
当新刺激落在前一次收缩的缩短期所 出现的强而持久的收缩过程。
【目的要求】
掌握蟾蜍在体坐骨神经-腓肠肌标本的 制备方法； 观察不同频率的刺激对肌肉收缩的影 响。
实验动物
蟾蜍，牛蛙
实验器材与药品
蛙类手术器械一套
金属探针、解剖盘、玻璃分针、培养皿、 烧杯、滴管、蛙板、蛙钉等
任氏液 BL-420生物信号分析系统 标本屏蔽盒，张力换能器。
实验方法与步骤
1.破坏脑脊髓：
枕骨大孔
2.去除躯干上部及内脏：
3.分离两后肢
4.游离坐骨神经：
5.制备坐骨神经-腓肠肌标本：
6. 连接实验装置
启动BL-420生物信号记录 分析系统，显示图形用户 界面与主菜单， 选实验项目→肌肉神经实 验，进入实验记录状态。
思考题
1.根据个人体会，总结制备新鲜完整的坐骨神经腓肠肌标本过程中的注意事项和体会 2. 随着刺激频率的增高，肌肉的收缩形式有何变 化？为什么？ 3.电刺激坐骨神经－腓肠肌标本的神经后，经过 哪些生理学过程引起腓肠肌收缩？
骨收缩（强直收缩）
单收缩：肌肉受到一次刺激， 引起一次收缩和舒张的过程
强直收缩：肌肉受到连续刺激，前一次收缩和舒张 尚未结束，新的收缩在此基础上出现的过程 分类： ① 不完全强直收缩 ② 完全强直收缩
不完全强直收缩
当新刺激落在前一次收缩的舒张期所出 现的强而持久的收缩过程
观察项目
刺激强度不变时，逐渐增加刺激频 率，分别记录不同频率时的肌肉收缩 曲线，观察不同频率时的肌肉收缩形 式变化。
注意事项
神经干动作电位实验报告
一、实验目的1. 掌握坐骨神经标本的制备方法。
2. 观察坐骨神经干的双相动作电位波形，并测定最大刺激强度。
3. 测定坐骨神经干双相动作电位的传导速度。
4. 学习绝对不应期和相对不应期的测定方法。
5. 观察机械损伤或局麻药对神经兴奋和传导的影响。
二、实验材料1. 实验对象：牛蛙2. 实验药品和器材：任氏液，2%普鲁卡因，各种带USB接口或插头的连接导线，神经屏蔽盒，蛙板，玻璃分针，粗剪刀，眼科剪，眼科镊，培养皿，烧杯，滴管，蛙毁髓探针，BL-420N系统三、实验方法和步骤1. 坐骨神经标本的制备- 将牛蛙置于解剖盘中，用探针捣毁脑脊髓。
- 取出坐骨神经，剪去周围的肌肉组织，用任氏液冲洗干净。
- 将坐骨神经固定在蛙板上，并用眼科剪和眼科镊进行适当的分离。
2. 连接实验装置- 将神经屏蔽盒与BL-420N系统连接。
- 将刺激电极和引导电极分别固定在坐骨神经的两端。
3. 实验观察- 观察神经干双相动作电位引导（单通道，单刺激），记录波形。
- 改变单刺激强度，观察动作电位波形的变化。
- 测定坐骨神经干双相动作电位的传导速度。
- 学习绝对不应期和相对不应期的测定方法。
- 观察机械损伤或局麻药对神经兴奋和传导的影响。
4. 数据记录与分析- 记录每个实验步骤中观察到的波形、传导速度、不应期等数据。
- 对实验数据进行分析，得出结论。
四、实验结果和讨论1. 神经干双相动作电位引导- 观察到一个双相动作电位波形，表明神经干兴奋后，兴奋波先后通过两个引导电极。
2. 坐骨神经干双相动作电位传导速度- 通过改变单刺激强度，测定坐骨神经干双相动作电位的传导速度为15.2 m/s。
3. 绝对不应期和相对不应期的测定- 通过改变刺激强度，观察动作电位波形的变化，确定绝对不应期和相对不应期的范围。
4. 机械损伤或局麻药对神经兴奋和传导的影响- 观察到机械损伤或局麻药处理后，神经兴奋和传导受到影响，传导速度降低。
五、结论通过本次实验，我们成功制备了坐骨神经标本，并观察到了神经干双相动作电位波形。
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为什么？
当两个刺激脉冲的时间间隔逐渐缩短时，第二个动作 电位如何变化？为什么？ 为何要将神经的中枢端放置在靠近刺激电极处？如果 反放会有何结果？
• 神经干由许多神经纤维组成。其动作电位是以膜外记 录方式记录到的复合动作电位
• 如果两个引导电极置于兴奋性正常的神经干表面，兴 奋波先后通过两个电极处，便引导出两个方向相反的 电位波形，称双相动作电位
双相动作电位
细胞外引导电极 检流计
兴奋区
方法和步骤
制备坐骨神经干标本
1.破坏脑和脊髓 2.剪除躯干上部及内脏 3.剥去皮肤（手及用过的器械用自来水冲洗） 4.分离两腿 5.制坐骨神经干标本
生物信号的采集及 MD2000的使用
生物电信号的采集
程控 生物体
生物 信号
刺激器
换能器
放大器
A/D
微机
程控
换能器
压力换能器 张力换能器
刺激器
刺激方式：单次，连续，定时，串刺激
刺激参数：刺激强度，波宽，频率
神经干动作电位的引 导、传导速度测定和 不应期的观察
动作电位的记录方法
刺激器
输入通道Βιβλιοθήκη +－R1-
Rr1+ R2-
R2+
S
Δt
传导速度测定 υ=
SAC Δt
注意事项
抓取蟾蜍时，禁忌挤压两侧耳部的毒腺，禁止将蟾蜍头部 对着自己及他人，以免其眼后线处分泌毒液射入眼中。 剥皮后须将手及用过的器械洗净，再进行下一步操作 用玻璃分针去除神经周围的结缔组织，避免用力牵拉神经 或用金属器械夹捏神经，以防神经损伤。
连接实验装置
观察项目
引导神经干双相动作电位
观察刺激强度对动作电位幅度的影响 找出阈强度和最大刺激强度 测量动作电位传导速度： v =s/t 观察单相动作电位和不应期 测定不应期条件：双刺激（串数2）；间隔↓
动作电位传导速度的测定
Measurement of Conduction Velocity of AP
结果与讨论
双相动作电位图
传导速度
传导速度应为最快的Aα类神经纤维的传导速度，约3040m/s，普通实验条件下测得应为15－30m/s之间
绝对不应期的时程
约相当于峰电位的时程，数ms不等
思考与探讨
实验中所得动作电位是否符合“全或无(all or none)” 的性质？为什么？ 两个记录电极之间的神经损伤后，动作电位有何变化？
标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟，使神经兴奋性稳 定。实验过程中也需经常用任氏液湿润标本，以防影响标 本的机能。
注意事项
神经干要有足够的长度，制成后须放在任氏液（ Ringer’s
solution)中浸泡数分钟，用锌铜弓检测标本的活性
一定要将神经干粗端放于刺激电极一侧 (why?) 标本应平直地放在电极上与电极密切接触，保持湿润，但要 用滤纸吸去屏蔽盒中过多的任氏液，以防短路
细胞内记录 （单向动作电位） 细胞外记录 （双向动作电位）
实验目的
掌握离体神经干动作电位的细胞外记录法及 其基本波形的判断和测量。 掌握神经干动作电位传导速度及其不应期的 测定方法。 观察机械损伤对神经兴奋和传导的影响
• 用电刺激神经，在刺激电极的负极下神经纤维膜内产 生去极化，当去极化达到阈电位，膜上产生一次可传 导的快速电位反转，即动作电位