样本采集运输及送检 共25页
病原微生物标本采集运送
病原微生物标本采集运送Coca-cola standardization office【ZZ5AB-ZZSYT-ZZ2C-ZZ682T-ZZT18】病原微生物检验标本采集、运送操作规程正确的标本采集，运送，保存和处理对于微生物检验工作质量至关重要，为了准确检出病原菌，避免漏检与误诊，临床医护人员和实验室工作人员应掌握微生物标本的选择，采集，运送，保存及处理的一般原则。
一、标本采集的一般原则1.早期采集采集时间最好在病程早期，急性期，且必须在使用抗菌药物之前采集，确保病原菌的检出。
2.无菌操作采集标本时应尽量减少或避免感染部位附近或皮肤黏膜正常菌群的污染，使病原菌与正常菌群混淆，造成临床误诊。
采集的标本应存放在无菌容器内，容器不能使用消毒剂处理，标本中也不能添加防腐剂，以免降低病原菌的检出。
3.适量的标本标本量过少可能导致假阴性结果。
4.适当的采集方法对于厌氧菌，需氧菌或兼性厌氧菌的采集方法是不同的，用于厌氧菌培养的标本应尽量用注射器采集抽取物，室温保存，不能冷藏和冷冻。
5.盛放标本的容器采集标本应存放在无菌，防漏，应带有螺旋盖的容器内。
二、标本的运送1.标本采集后立即送检，若有延迟也应在2小时内送到实验室，否则会影响病原菌的检出，一般性的细菌培养标本若需延迟送检时，应置于4度冰箱保存，且不能超过24小时。
2.临床标本最佳运送时间取决于标本的量，少量液体（小于1ml）或组织（小于1cm3）应在15~30分钟内送到实验室，较多量的标本置于运送培养基中可放12~24小时，厌氧培养标本原则上是床边接种，如延迟送检，需保存在厌氧运送培养基中，室温保存，不得超过24小时。
三、不同标本的采集，运送（一）血液标本采集，运送1.血培养指针征当患者出现：发热（大于38度）或低温（小于36度），寒战，白细胞增多,皮肤黏膜出血，休克，多器官衰竭，血压降低，c反应蛋白升高及呼吸加快，血液病患者出现粒细胞减少，血小板减少等，具备上述一种或几种体征时，临床怀疑菌血症应采集血液标本进行血培养，对入院危重感染患者应在未使用抗菌药物治疗前，及时做血培养。
检验标本采集运输手册
目录前言 (3)一临床基础检验 (5)1.1 血液标本的采集 (5)1.2体液和分泌物标本的采集 (7)1.2.1尿液检验 (7)1.2.2 粪便检验标本的采集 (8)1.2.3阴道分泌物检验 (9)1.2.4其他体液标本检验 (9)二血液学检验 (11)2.1血液流变学检验 (11)2.2凝血和纤溶功能的检验 (11)2.3免疫性溶血性贫血的检验 (12)三临床生物化学检验 (12)3.1血液标本的采集 (12)3.3脑脊液标本的采集 (15)3.4胸、腹水标本的采集 (15)四临床免疫学检验 (15)4.1化学发光检验 (15)4.1.1激素 (15)4.1.2肿瘤标志物测定 (16)4.2体液免疫功能测定 (17)4.2.1免疫球蛋白标本的采集 (17)4.2.2感染性疾病免疫学检查 (17)4.2.3自身抗体测定 (18)4.2.4变态反应测定的标本采集 (18)4.3尿液免疫功能标本的采集 (19)五微生物检验 (19)5.1血液标本的采集 (19)5.2骨髓标本的采集 (20)5.3脑脊液标本的采集 (20)5.4其他体液标本的采集 (21)15.6导尿法标本的采集 (21)5.7膀胱穿刺尿标本的采集 (22)5.8呼吸道标本的采集 (22)5.9脓与组织标本 (24)5.10其他标本 (26)5.11内毒素检测样本 (28)六急诊检验 (29)6.1血常规（RT）、血沉（ESR）标本的采集 (29)6.2尿常规标本的采集 (29)6.3粪便常规标本的采集 (30)6.4血型鉴定与输血相关检验 (30)6.5凝血和纤溶功能的检验 (31)6.6急诊生化检查标本的检验 (32)6.7脑利钠肽标本的采集 (32)6.8心肌酶谱标本的采集 (32).2前言为保证临床检验质量，要必须做到全过程质量控制，即对实验室检查的全过程进行全面的质量控制和质量管理。
这包括分析前、分析中和分析后三个阶段的质量控制，其中分析前质量控制是全面质量控制的前提。
样本采集、运输及管理制度
样本采集、运输及管理制度1. 引言本制度旨在规范样本采集、运输及管理流程，确保样本的准确性和完整性，以支持相关工作的准确进行。
2. 样本采集2.1 采集人员资质要求采集人员应具备相关的资质和经验，能够正确、规范地采集样本。
2.2 采集方法与步骤根据采集对象的不同，采用适当的采集方法和步骤进行样本采集。
确保采集过程中的卫生条件和环境。
2.3 样本标识和记录在采集样本时，应为每个样本正确标识，并详细记录相关信息，包括采集时间、地点、采集人员等。
3. 样本运输3.1 运输要求样本运输应符合相关法律法规的规定，并确保样本的安全和完整性。
3.2 运输方式选择根据样本的性质和要求，选择合适的运输方式，如快递、专车等。
3.3 包装和标识样本在运输过程中应进行适当包装，并正确标识样本的内容、数量和运输要求。
4. 样本管理4.1 样本登记对接收到的样本进行登记，包括样本来源、接收时间、接收人员等信息。
4.2 样本储存样本应妥善储存，保持适当的温度和湿度，避免任何可能对样本造成损害的因素。
4.3 样本使用和销毁样本的使用应符合相关规定，并在使用后及时进行销毁或归档。
5. 监督与考核建立相应的监督与考核机制，对样本采集、运输及管理过程进行定期检查和评估，及时改进和纠正存在的问题。
6. 教育培训相关人员应接受必要的培训和教育，了解并掌握样本采集、运输及管理制度，并增强相关意识和能力。
7. 附则本制度由XX部门负责解释和修订，并在全体人员中予以宣传和执行。
如有违反制度的行为，将承担相应的责任和处罚。
以上为样本采集、运输及管理制度的主要内容，为确保实际操作的准确性，请在实施前进行适当的调整和完善。
原材料取样规定及送检要求
原材料取样规定及送检要求(总25页)--本页仅作为文档封面，使用时请直接删除即可----内页可以根据需求调整合适字体及大小--原材料取样规定及送检要求一、电线电缆、开关插座、电线套管每一单位工程同一生产厂家在相同生产工艺条件下生产的，每种规1、电线、电缆：各10米。
2、开关、插座：各6个。
3、电线套管：1·2×6米根。
二、粗、细骨料：粗、细骨料以400立方米或600T为一检验批，不足上述数量者以一批为准三、砂和砂石地基1、每单位工程不应少于3点。
2、1000㎡以上工程，每100㎡至少应有一点。
3、3000以上工程，每300至少有一点。
4、每一独立基础下至少应有一点。
5、基槽每20延米应有一点。
四、土方回填土1、平整后的场地表面应逐点检查。
2、检查点为每100㎡～400㎡取一点，但不应少于10点。
3、长度、宽度和边坡均为每20M取一点，每边部少于一点。
五、各种窗户：1、试件应为按所提供的图样生产的合格产品或研制的试件。
不得附有任何多余配件或采用的组装工艺或改善措施。
2、试件镶有应符合设计要求。
3、试件必须按照设计要求组合、装配完好，并保持干燥。
六、各种阀门：同一厂家、同规格尺寸。
DN<50每一规格取设计用量的10%。
DN>50取设计用量的100%。
七、各种管材：1、给排水管材：排水【PVC-U】、给水【PVC-U】、给水【PP-R】每一单位工程，同一生产厂家、生产工艺相同、同一批次情况下，每一规格取×3根。
2、地热管材：给水【PE-X】、给水【PE-RT】每一单位工程，同一生产厂家、生产工艺相同、同一批次情况下：每一规格取5M×1根。
八、砼抗渗：1、同一工程、同一配比取样布少于1次。
2、连续浇筑砼每500立方留置一组试件。
3、每项工程不得少于2组试件。
4、对地下防水预拌砼当连续浇注砼每500立方米应留置不少于2组试件，且每部位（底板、侧墙）试块不少于两组；当每增加250～500立方米砼时，应增加两组试样，当砼增加量在250立方米以内时不再增加试件组数。
培训-样品采集和运送
一、水样的采集
主要依据：国家标准GB/T5750.2-2006 水样的 采集与保存。 同一水源、同一时间采集几类检测指标时，应 先采集检测微生物学指标的水样。 做微生物指标或油类的样品采集时，应直接采 集，不得用水样涮洗已灭菌的采样容器，并避 免手指和其他物品对瓶口的沾污。 做理化指标的样品，采样前要用水样荡洗容器 2~3次。
二、公共卫生突发事件采样
食物中毒采样 流行病采样
1、食物中毒采样
一般采集样品： 病人肛拭 呕吐物 疑似有毒食物 加工工序 采集的样品尽快送实验室化验，特殊情 况下应放冷藏保存。
1、食物中毒采样
食物中毒采样箱 生理盐水管、消毒棉签、酒精灯、镊子、 手术剪、药匙、95%酒精、酒精棉球、 真空采血管、一次性针筒、扎脉带、无 菌食品袋、一次性手套、空白标签、橡 皮胶、笔、冰袋。
四、其他样品采集
食品 餐具 空气 公共场所等
谢 谢！
水样的采集
采自来水和网水时，应先把龙头打开放几分钟然后再采。
采集容器：对无机物、金属、放射性元素的测定，使用聚乙烯塑 料容器；对有机物、微生物学指标测定时，使用玻璃容器。
水样保存： 微生物项目：出厂水和网水每125mL水中加硫代硫酸钠0.1mg以去 除余氯； COD、氨氮、硝酸盐氮：每1L水中加0.8mL浓硫酸； 挥发性酚、氰化物：加氢氧化钠使pH≥12； 一般金属：加硝酸使pH≤2。
2、流行病采样
病毒采样箱 病毒采样管、消毒棉签、酒精棉球、一 次性针筒、一次性手套、酒精灯、镊子、 手术剪、药匙、95%酒精、空白标签、 笔。 采好的病毒采样管置-75℃ 超低温冰箱保 存。
检验科标本采集、运输管理
检验科标本采集运输指南1目的对检验申请、患者的准备、临床标本的采集与运输以及样品在实验室内的传输过程进行控制，以保证检验前样品的质量。
2 范围适用于检验科受理的标本。
3 职责3.1临床医师负责检验的申请，申请单的格式由技术管理层和医院医教部共同制定。
3.2检验科主任负责组织人员编写检验标本采集手册。
3.3医护人员和检验人员均负责指导患者如何正确留取标本。
3.4门诊抽血人员和病房护理人员负责临床标本的采集，特殊标本由临床医生采集。
3.5检验科标本收集人员负责定时到临床各科室收集标本和运输；急诊检验标本和值班时采集的标本由临床科室护理人员直接送检验科。
3.6相关检验人员负责样品在实验室内的传输。
4、内容第一部分标本采集一血液检验标本采集方法血液检验标本分为全血、血浆、血清等。
全血标本主要用于临床血液学检查,例如血细胞计数和分类、形态学检查等；血浆标本适合内分泌激素、血栓和止血检测血清标本多适合于临床化学和免疫学的检测。
按照血标本采集部位的不同，分为静脉血、动脉血和毛细血管血三种。
绝大多数检查采用静脉血,少数检查如血气分析、乳酸和丙酮酸测定等需要采集动脉血，毛细血管血主要用于各种微量法检查或大规模普查。
静脉血是最常用的实验室检查标本，真空采血法是最好的静脉血采集技术。
基本原理是双向针的一端插入真空试管内，另一端在持针器的帮助下刺入静脉，血液在负压作用下自动流入试管内。
由于在完全封闭状态下采血，避免了血液外溢引起的污染，并有利于标本的转运和保存。
标准真空采血管采用国际通用的头盖和标签颜色显示采血管内添加剂种类和检测用途，可根据需要选择相应的盛血试管。
（一）静脉血采集方法、注意事项和采集样品所用材料的安全处置：1止血带或压脉器：采集静脉血时，止血带压迫静脉时间不宜过长,以不超过40秒为宜，否则容易引起淤血、静脉扩张，并且影响某些指标的检查结果,如乳酸升高、pH 值降低、K+、Ca2+、肌酸激酶升高等。
2 采血时间与部位：大多数化验检查要求清晨、空腹、采集静脉血应尽可能避免在输液同时取血,输液不仅使血液稀释，而且对实验室检查结果发生严重干扰，特别是血糖和电解质。
样本采集运输及送检
咽拭子
correct
例子
wrong
2. 鼻咽拭子
1. 插入干的拭子到鼻 孔伸入鼻咽部
2. 停留片刻 3. 缓慢旋转退出
鼻咽拭子
4. 另一个鼻孔使用另一 个棉签
5. 将棉签的尾部折断后 放入含有VTM的采样 管中。
3. 鼻咽吸取液的收集
1. 将吸液管与真空泵相连 2. 将软管与上腭平行插入鼻孔 3. 使用真空泵 4. 缓慢的移出同时轻轻旋转 5. 使用同一个管子采集另一鼻孔的液体 6. 收集的液体用3 ml VTM 冲洗出，放入采
标本采集方法-3
❖ 深咳痰液：要求病人深咳后，将咳出的痰液收集 于50ml含3ml采样液的螺口塑料管中。
❖ 呼吸道灌洗液：将收集器头部从鼻孔或气管插口 处插入气管约30cm深处，注入5ml生理盐水， 接通负压，旋转收集器头部并缓慢退出。收集抽 取的粘液，并用采样液5ml涮洗收集器（亦可用 小孩道尿管接在50ml注射器上代替收集）。
流感病毒分离成功与否很大程度上 取决于临床标本的质量，及其保存 运输等环节。
现场标本采集准备工作
标本采集和现场检测用品 1)人感染高致病性禽流感病例或密切接触者采样登记表; 2)采血用品:1Oml外螺旋带密封垫圈螺口塑料管、医用5ml
或lOml一次性注射器针管或5ml真空针管、2ml血清管、 带有冰排的冰壶或冰包、止血带、棉拭子、酒精、腆酒; 3)采集鼻咽拭子用物品:鼻咽拭子保存管、15ml螺口管、35ml样本运送液（常用普通肉汤培养基、MEM、等渗盐 溶液或磷酸盐缓冲）、15ml螺口管,棉拭子; 4）粪便、痰液、尸检组织保存管:5Oml螺旋带密封垫圈螺 口塑料管; 5)其他:油性记号笔;一次性纸杯、一次性纸漏斗、冰壶;污物 袋;样品编号标签纸或条码纸。
传染病病例标本采集和运输
▪ 标本采集种类
▪ 血液标本（抗凝血与非抗凝血）
▪ 呼吸道标本
▪ 上呼吸道标本（咽拭子、鼻拭子、鼻咽抽取物、咽漱液、痰液等）
▪ 下呼吸道标本（呼吸道抽取物、支气管灌洗液、胸腔积液、肺组织活检标本等）。
▪ 消化道标本 （粪便和肛拭子）
▪ 尿液标本 ▪ 其他人体标本 （脑脊液、疱疹液、淋巴结穿刺液等） ▪ 尸体解剖标本采集 ▪ 媒介和动物标本采集 ▪ 环境标本采集
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病原微生物标本的保存
▪ 实验室必须对所有标本建立追踪系统，此系 统中必须严格注明标本基本信息，如标号， 标本唯一识别码，采样日期，地点，采样人 等；患者的基本信息、临床诊断检测结果， 以及实验室检测信息，如检测项目、时间和 结果。从而可随时了解标本涞源信息，追踪 原始出处。
▪ A类之外，仅具有一般危险性，引起感染的机会较少的感染性 物质感染性物质为B类（联合国编号UN3373），采用P650包装要
求。
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A类包装和B类包装区别1
定义 运输专用名称 英文运输专用名
UN编号 运输对象
UN专用标记
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病原微生物标本的采集
▪ 标本采集中的注意事项 ➢ 采样时生物安全的考虑 ➢ 采样时间及部位 ➢ 采样容器 ➢ 采样标本的标识 ➢ 各种标本的采样方法
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病原微生物标本的采集
▪ 采样时生物安全的考虑
▪ 1)具有掌握相关专业知识和操作技能的工作人员；
器。 ▪ 对容器基本要求是选耐用材料制成，容器包
样品的采集运输保存【共28张PPT】
标本采集
4.血液
2）采样操作：通常采血部位为肘静脉，将止血带 扎在静脉取血部位的上方，采用商品化的一次性注 射器或真空采血管采血；
拿下止血带，用无菌棉压迫止血；
标本采集
三、采集方法
5.鼻咽抽吸物
用商品化的粘液抽吸器从双侧鼻孔中抽吸获得，导管在鼻 尖到外耳道中间的位置连接，不停的转动导管，采用负压
标本编号:无锡识别号+县区识别号+医疗机构识别号+标本序号
采集份数
具有PCR检测资质的县（市）级及以上（含二级、三级）医疗机构作为省级
监测点： ➢ PCR检测：对流感样病例详细询问流行病学史，开展相关医学检查、检验，
在抗病毒治疗前进行进行甲型流感病毒通用引物PCR检测，剩余核酸样本约 45ul于-20℃冻存 ➢ 标本采集：若胶体金检测结果阳性，在抗病毒治疗前再采集1份咽拭子（ 或呼吸道分泌物）3管。同时用5ml促凝管采集静脉血1份（5ml）标记编号 ，并填写阳性标本登记表。 ➢ 监测工作开展第一周同时采集咽拭子和血标本，第二周开始只采集咽拭子，血标本 可以不采。标本编号:无锡识别号+县区识别号+医疗机构识别号+标本序号。
将拭子头插入病毒采样管中。
监测工作开展第一周同时采集咽 和血标本，第二周开始只采集咽拭子，血标 拭子 用商品化的粘液抽吸器从双侧鼻孔中抽吸获得，导管在鼻尖到外耳道中间的位置连接，不停的转动导管，采用负压100mmHg持续15秒的间歇性抽吸后慢慢退出。
本可以不采。 于超声雾化器雾化杯中加入4％的NaCl溶液40ml，吸入高渗盐溶液15～25min，嘱病人漱口，用力咳出深部痰，收集入无菌采集容器中送检。
由临床医生按相应操作规程，采集标本置 入无菌采集容器中，标本量应≥5 ml，立即送检， 但必须注意采集标本时尽可能避免咽喉部正常菌群 的污染。
检验标本采集运输指南.
查验标本采集运输指南博兴县医院查验科2021 年 11 月重要警告语将每一份标本都看作是没法从头获取、独一的标本，一定当心地：采集、保留、转运。
依据时间次序，从临床医生开出医嘱开始，到剖析查验报告发回的步骤，包含：查验申请、患者准备、原始样品采集、运送到实验室达成剖析前的质量控制。
全局部工作都是医生、护士、运输人员、查验人员共同协调达成。
在实验室检测之外空间达成的剖析前的质量管理最易出现问题。
临床反应不满意的查验结果， 60%报告最后可溯源到标实质量不合格。
靠谱的查验结果，第一个环节一定依靠于标本的高质量。
要获取高质量的标本：临床医生：应主动明确地告之患者怎样配合好护理人员和查验人员：采集好、检测好标本运输人员：实时快速标准转运好标本在实验室进行检测、查验结果审查、报告数据发回。
一、采集标本前质量保证、对策〔一〕增强交流，合理选项医生应仔细、完好地填写查验申请单，特别是：患者服药史、特别病理变化、留取标本、送检标本的时间等。
〔二〕患者准备，至关重要医护人员应认识在标本采集前影响结果的非病理性要素〔药物、饮食、运动、治疗、生理变化、生活环境和习惯、标本采集时间〕正确指导患者，采纳确实举措，标准采集标本前患者的全部行为，保证采集的标本切合疾病的实质状况，留取合格的标本。
应告之患者：试验名称、所需标本种类、为何要检测、检测报告时间、怎样获取结果。
〔三〕采集前准备： 1、条码生成与粘贴。
2、合格的采血人员。
3、标准化的采血程序。
4、合格的采血器械。
二.标本根本类型全血、血浆、血清、尿液、粪便、脑脊液、心包积液、胸腔积液和腹腔积液关节积液、前列腺液和精液、痰其余〔包含乳汁、泪液、房水、唾液、脓液和各样分泌物等〕各样穿刺物[血液标本的采集 ]一.血液标本根本要求保持标本完好性：控制各样扰乱要素保持标本新鲜：最好的尺度是时间拒绝不合格血标本：脂血、溶血、凝结等二.标本采集的时间〔一〕随机和急诊标本随机和急诊标本是指无时间限制或没法例准时限而一定采集的血和尿等标本，一般没法让代谢相对较稳固的检查物质，或受体内外扰乱较小的检查物质。
12.1标本采集、运送、检测方法
第九章临床常见病原体检测一、标本的采集运送和检查方法二、病原体耐药检测三、临床常用检测项目和应用四、病毒性肝炎检测五、性传播疾病病原体检测标本的采集运送和检查方法标本的采集运送根据病史与临床表现确定标本采集的类型与部位，尽量采集病变明显部位标本。
在发病的早期或急性期采集标本，最好在抗生素使用前（如使用过抗生素应在申请单上注明）。
采集标本防止污染，并置于无菌容器，加盖密封、立即送检。
标本必须贴上标签，与检验申请单同时送检。
所有的标本都视为感染性标本，做好安全防护。
血液菌血症、败血症或脓毒血症发热初期、寒颤时或发热高峰到来前2小时成人：10-20婴儿、儿童：1-524小时内采血3次采集频率采血量（ml ）采集时间需厌氧同时采集可增加阳性率标本采集的基本原则（一）血液（二）尿液标本的采集采集量：10-20ml中段尿晨尿注意清洁外生殖器导尿更换新的导尿管穿刺尿考虑厌氧菌感染标本采集的基本原则一、标本采集和运送（二）尿液标本采集的基本原则一、标本采集和运送（三）粪便取含脓、血或黏液的粪便置于清洁容器。
合格的痰标本：低倍镜视野中鳞状上皮细胞≤10个、白细胞≥25个（四）呼吸道标本（五）脑脊液与其他无菌体液1.脑脊液应立即保温送检或床边接种2.胸水、腹水和心包液宜采集较大量标本送检，可接种于血培养瓶3.腹膜透析液含菌量非常低，至少需采集50ml（五）脑脊液与其它无菌体液采集胸水腹水心包液无菌采集是培养成功的首要因素!脑膜炎奈瑟菌肺炎链球菌流感嗜血杆菌不耐冷！（六）眼、耳标本采集采样容器：运送拭子眼部标本：亦可在局部麻醉后取角膜刮屑。
耳标本：外耳道疖和中耳道炎用拭子采样，鼓膜穿刺亦可用于新生儿和老年人。
（六）眼、耳部标本1.眼部标本运送拭子或角膜刮屑2.中耳标本运送拭子采样（八）创伤、组织和脓肿标本不同部位采集多份标本 采集脓液及病灶深部分泌物无菌干燥注射器抽取取脓液后立即排净注射器内空气，针头插入无菌橡皮塞送检。
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采集血液样本
Serum separator tubes (SST)
标本保存
医院内检测的标本可按本院规章对样品进行留样及 消毒处理。
用于病毒分离和核酸检测的标本应尽快送样进行检 测
24小时内能检测的标本可置于4℃保存 24小时内无法检测的标本则应置于-70℃或以下保存
如无－70℃保存条件，则于－20℃冰箱暂存
采样对象
单个不明原因肺炎病例
当县级卫生行政部门组织的专家组会诊后，仍不 能排除SARS或人禽流感时
聚集性不明原因肺炎病例
发现后立即采样送检
标本种类和采集时间（1）
临床标本
呼吸道标本
上呼吸道标本：咽拭子、鼻拭子、鼻咽抽取物、咽漱液、深咳痰液 下呼吸道标本：呼吸道抽取物、支气管灌洗液、肺组织活检标本 尽早采集上述标本，发病一至两周也可采集
粪便标本：采集5-10g粪便置于含5-10ml采样液 的无菌螺口管中，严格密封。
血清标本：用真空负压采血管采集血液标本5ml， 室温静置换30分钟，1500-2000rpm离心10分钟， 收集血清于2ml无菌螺口塑料管中。
咽拭子
容易操作 在可疑的病例中发现禽流感病毒的可能性
较高 请病人尽量把嘴张开 当拭子触及咽后时病人不要往后躲，应该
胸水：在B超定位下进行胸腔穿刺，抽取胸水5ml， 至于无菌的塑料螺口管中。
标本采集方法-4
肺组织活检标本：在超声或X线定位下，经皮穿 刺取肺组织活检标本，置于含3ml采样液的塑料 螺口管中。
尸检标本：每一个采集部位分别使用不同消毒器 械，以防交叉污染；每种组织应多部位取材，各 部位应取20-50g，淋巴节取2个。
同时采集血标本、分泌物或渗出物 没有条件进行尸体解剖的，可采集呼吸道灌洗液或经皮穿刺采集肺
组织标本
其他标本
可采集胸水、肺活检标本，还可采集枸橼酸盐抗凝血
标本采集方法-1
鼻拭子：将1根带有聚丙烯纤维头的拭子轻轻插入鼻道 内鼻腭处，停留片刻后缓慢转动退出。以另一拭子拭另 侧鼻孔。将拭子头浸入采样液中，尾部弃去，旋紧盖管。
lOml一次性注射器针管或5ml真空针管、2ml血清管、带 有冰排的冰壶或冰包、止血带、棉拭子、酒精、腆酒; 3)采集鼻咽拭子用物品:鼻咽拭子保存管、15ml螺口管、35ml样本运送液（常用普通肉汤培养基、MEM、等渗盐溶 液或磷酸盐缓冲）、15ml螺口管,棉拭子; 4）粪便、痰液、尸检组织保存管:5Oml螺旋带密封垫圈螺口 塑料管; 5)其他:油性记号笔;一次性纸杯、一次性纸漏斗、冰壶;污 物袋;样品编号标签纸或条码纸。
咽拭子：用2根带有聚丙烯纤维头的拭子擦拭双侧咽扁 桃体及咽后壁，同样将拭子头浸入采样液中，尾部弃去， 旋紧盖管。 注：亦可将鼻、咽拭子收集于同一采样管 中，以便提高分离率，减少工作量。
鼻咽抽取物：用与负压泵相连的收集器从鼻咽部抽取粘 液或从气管抽取呼吸道分泌物。先将收集器头部插入鼻 腔或气管，接通负压，旋转收集器头部并缓慢退出。收 集抽取的粘液，并用采样液3-5ml涮洗收集器3次。
血清可在4℃存放3天、-20℃以下长期保存。标本运 送期间应避免反复冻融。
标本送检程序
医院内临床检验标本由专人进行送检，和检 验科室办理交接手续
病原学检测标本由疾控中心专业人员按时到 医院取样或由医院专业人员送样至疾控中心， 并办理交接手续
采集物品包
装好VTM的样品采集管 聚酯纤维拭子 无菌生理盐水
(0.85% NaCl) 痰或粘液吸取管 压舌板 采样杯或平皿 吸管
其它样品管 冰袋 采血的物品 PPE 防水的Marker笔,用于标本
的标记
现场标本采集准备工作
现场个人防护用品:手套、防护眼镜、符合 "N95"标准的防护口罩、全面型呼吸防护器、 鞋套、白大衣、隔离衣、洗手液、75%酒精 等消毒液等。
抵住
咽拭子
correct
例子
wrong
2. 鼻咽拭子
1. 插入干的拭子到鼻 孔伸入鼻咽部
2. 停留片刻 3. 缓慢旋转退出
鼻咽拭子
4. 另一个鼻孔使用另一 个棉签
5. 将棉签的尾部折断后 放入含有VTM的采样管 中。
3. 鼻咽吸取液的收集
1. 将吸液管与真空泵相连 2. 将软管与上腭平行插入鼻孔 3. 使用真空泵 4. 缓慢的移出同时轻轻旋转 5. 使用同一个管子采集另一鼻孔的液体 6. 收集的液体用3 ml VTM 冲洗出，放咳出的痰液收集 于50ml含3ml采样液的螺口塑料管中。
呼吸道灌洗液：将收集器头部从鼻孔或气管插口 处插入气管约30cm深处，注入5ml生理盐水，接 通负压，旋转收集器头部并缓慢退出。收集抽取 的粘液，并用采样液5ml涮洗收集器（亦可用小 孩道尿管接在50ml注射器上代替收集）。
血清标本
第一份血清应尽早（最好在发病后7天内）采集 第二份血清应在发病后第3～4周采集 在病愈出院或死亡前采集血标本1份
粪便标本
发病后尽可能早的采集粪便标本
标本种类和采集时间（2）
尸检标本
病人死亡后应尽早进行解剖，在严格按照生物安全防护的条件下， 进行尸检
主要采集肺、气管、肝、肾、脾、心脏、脑、胃、肠、淋巴结等可 疑组织标本
标本采集方法-2
漱口液：用10 ml生理盐水漱喉。漱时让 患者头部微后仰，发“噢”声，让生理盐 水在咽部转动。然后，用平皿或烧杯收集 洗液
鼻洗液：患者取坐姿，头微后仰，用移液 管将5 ml生理盐水注入一侧鼻孔，嘱患者 同时发K音以关闭咽腔。然后让患者低头 使生理盐水流出，用平皿或烧杯收集洗液。 重复此过程洗两侧鼻孔。
对基层医务人员的培训
－提高对人禽流感的发现报告能力
标本采集、保存与送检
自治区疾控中心 李新兰 2019.4.
流感病毒分离成功与否很大程度上 取决于临床标本的质量，及其保存 运输等环节。
现场标本采集准备工作
标本采集和现场检测用品 1)人感染高致病性禽流感病例或密切接触者采样登记表; 2)采血用品:1Oml外螺旋带密封垫圈螺口塑料管、医用5ml或