关于6600叶绿素和蓝绿藻读数
蓝绿藻答疑
1，蓝绿藻的实验室测量，是否有国标？目前实验室比较通行的方法是两种，一种是人工计数法，也就是采样后制成标本，然后在显微镜下进行人工数数的方法。
另外一种与我们的测量原理类似，采用荧光原理进行分析，但似乎并非是国家标准测量方法，我所看到的标准里面关于藻类还是以人工计数法为标准的。
人工计数法并非一个一个的数数，因为藻类在水中是以“团”或者“链”的形式存在的，人眼在显微镜下也只能看见一“团”藻，因此在计数时都是估计的量值，比如小团计50－100个，中团计150左右，大团计250左右（非标准，只是参考），因此人工计数法本身的误差就很大，一个人前后两次计数或者不同的人计数相差可能到2000000个/升都很正常。
2，Hydrolab 测量蓝绿藻的原理是什么？是否符合国标？是否有什么国际标准参考？采用荧光法。
基本原则是，蓝绿藻中所含的藻蓝素会接收特定波长x的光线，然后释放出具有特征波长y的另一种光线，释放光线的强度与水中的藻蓝素数量成正比，探头通过测量藻蓝素所释放的y光线强度从而实现对蓝绿藻含量的测量。
这种原理并非国家标准测量方法，但是国家标准对于测量蓝藻目前还停留在一个比较低的水平，目前，国外用荧光法测量水中的相应色素是得到认可的，蓝绿藻所含的藻蓝素就是其中的一种。
3，如何进行Hydrolab蓝绿藻的标定？Hydrolab是否提供标液？若没有标液，该如何标定？初次标定可以采用人工计数法，即同样的水样，用实验室方法来对仪器进行校准。
Hydrolab提供二次校准模块对探头进行后续的校准。
二次校准模块是一个记录探头光学信息的模块，用来记录初次校准以后的探头的光学信息，以后校准时，只需要把这些光学信息重新导入探头即可。
蓝绿藻是没有标准溶液的。
只能通过人工计数法来采用同一水样进行校准。
4，浊度对Hydrolab蓝绿藻测量是否有影响？若有如何削除？既然是光学原理的探头，那么浊度的存在肯定会对光线的强弱造成影响，探头在设计时就考虑了浊度带来的影响，因此浊度对测量结果不会有很大的影响。
叶绿素a法测定富营养化湖泊中藻量的感想
叶绿素a法测定富营养化湖泊中藻量的感想叶绿素a法测定富营养化湖泊中藻量的感想叶绿素a法是一种常用的方法，用于测定富营养化湖泊中的藻类数量。
藻类是湖泊生态系统中不可或缺的一部分，它们是湖泊中的初级生产者，对水体性质的改变和生态系统的稳定起着重要作用。
通过测量叶绿素a的含量，我们可以快速、准确地评估湖泊中的藻量，为湖泊生态环境的恢复和管理提供科学依据。
在实际操作中，叶绿素a法主要是通过光谱测量的原理来确定叶绿素a 的浓度。
叶绿素a是藻类中最常见的一种叶绿素，其含量与藻类生物量呈正相关关系。
通过测定叶绿素a的浓度可以间接反映湖泊中藻类的数量。
叶绿素a法的测量过程相对简单，操作方便。
需要从湖水中取样，然后将样品过滤，提取出其中的叶绿素a。
接下来，使用光谱仪或叶绿素荧光仪对提取液的吸光度进行测量，并根据已有的标准曲线，计算出叶绿素a的浓度。
根据叶绿素a的浓度，结合湖泊的水量，可以计算出湖泊中的藻类数量。
通过叶绿素a法测定富营养化湖泊中的藻量，我们可以对湖泊生态系统的变化进行准确监测和评估。
在富营养化的湖泊中，藻类数量往往过多，导致水体浑浊，水质恶化，甚至引起水华等严重问题。
通过及时测定藻类数量，我们可以对湖泊中的富营养化程度进行评估，并针对性地采取相应的措施来改善湖泊生态环境。
然而，在使用叶绿素a法进行藻量测定时，也存在一些问题和限制。
叶绿素a法只能测定叶绿素a的浓度，而不能提供其他藻类的信息。
不同种类的藻类在湖泊中有不同的生态功能和生态作用，因此仅仅通过叶绿素a的浓度无法全面了解湖泊中藻类的组成和结构。
叶绿素a 法只能在湖泊表层水体中进行测定，无法对湖泊底泥和深层水体中的藻类进行评估。
在一些深水湖泊中，底泥中的藻类可能对湖泊生态系统的健康产生重要影响，但使用叶绿素a法无法直接获取这些信息。
叶绿素a法是一种快速、准确测定富营养化湖泊中藻量的有效方法。
它为湖泊生态环境的管理和恢复提供了重要的技术支持。
然而，我们也需要意识到叶绿素a法的局限性，进一步研究和探索其他方法，以便更全面地了解湖泊中藻类的数量和组成。
[叶绿素含量测定]叶绿素含量测定
![[叶绿素含量测定]叶绿素含量测定](https://img.taocdn.com/s3/m/e49fc262ed630b1c59eeb5c1.png)
[叶绿素含量测定]叶绿素含量测定[叶绿素含量测定]叶绿素含量测定篇一 : 叶绿素含量测定叶绿素含量的测定根据朗伯-比尔定律，某有色溶液的吸光度A值与其中溶质浓度C以及光径L成正比，即A,aCL。
,)各种有色物质溶液在不同波长下的吸光值可通过测定已知浓度的纯物质在不同波长下的吸光度而求得。
如果溶液中有数种吸光物质，则此混合液在某一波长下的总吸光度等于各组分在相应波长下的吸光度的总和，这就是吸光度的加和性。
今欲测定叶绿体色素提取液中叶绿素a、b含量，只需测定该提取液在2 个特定波长下的吸光度度值，并根据叶绿素a与b在该波长下的吸光系数即可求出各自的浓度。
在测定叶绿素a、b含量时，为了排除类胡萝卜素的干扰，所用单色光的波长应选择叶绿素在红光区的最大吸收峰。
已知叶绿素a、b的80 ,丙酮提取液在红光区的最大吸收峰分别为663nm 和645nm，又知在波长663nm下，叶绿素a、b在该溶液中的比吸收系数分别为82.04 和9.27，在波长645nm下分别为16.75和45.60，可根据加和性原则列出以下关系式:A663=82.04Ca +9.27Cb………………A645=16.75Ca+45.6Cb………………式中A663、A664分别为波长663nm和645nm处测定叶绿素溶液的吸光度值;Ca、Cb分别为叶绿素a、b的浓度。
解联立方程、可得以下方程:Ca=0.0127A663-0.00269A645…………Cb=0.0229A645-0.00468A663…………如把叶绿素含量单位由g/L改为mg/L，、式则可改写为:Ca=12.7A663-2.69A645…………Cb=22.9A645-4.68A663…………叶绿素总量CT=Ca+Cb=20.2A645+8.02A663……叶绿素总量也可根据下式求导A652=34.5×CT由于652nm为叶绿素a与b在红光区吸收光谱曲线的交叉点，两者有相同的比吸收系数，因此也可以在此波长下测定一次吸光度求出叶绿素总量: CT=A652/34.5CT=A652×1000/34.5………因此，可利用、式可分别计算叶绿素a与b含量，利用式或式可计算叶绿素总量。
蓝绿藻测试标准
蓝绿藻测试标准
蓝绿藻是一类固氮藻类，它们是一种重要的生态系统组成部分，但过度生长可能导致水质污染和生态系统崩溃。
因此，进行蓝绿藻测试是非常重要的。
以下是一些常规的蓝绿藻测试标准：
1. 藻密度测试：通过计数水样中的蓝绿藻细胞数量来评估蓝绿藻的密度。
常见的方法是显微镜计数或流式细胞仪分析。
2. 叶绿素测定：叶绿素是蓝绿藻的光合作用关键色素，其浓度可以用于评估藻类生长状态。
叶绿素可以通过光谱分析或压滤法测定。
3. 水中营养盐测定：蓝绿藻过度生长通常与过量的营养盐（例如氮和磷）相关。
测试水样中的氮和磷浓度可以帮助了解蓝绿藻生长的潜在原因。
4. 藻毒素检测：一些蓝绿藻产生毒素，对人类和动物健康有害。
进行蓝绿藻测试时，通常会测定水样中的藻毒素浓度。
5. DNA测序：通过对蓝绿藻DNA进行测序，可以识别和分类蓝绿藻的不同物种和菌株。
这有助于理解蓝绿藻的种类组成和生态功能。
需要注意的是，蓝绿藻测试标准可能因地区和具体监测目的的
不同而有所差异。
在进行蓝绿藻测试时，必须遵循相应的方法和标准。
EXO罗丹明配方
用于总藻类传感器的罗丹明WT染料溶液在进行操作前阅读并遵从所有安全操作规程和染料供应商提供的MSDS文件的要求。
请牢记只有经过训练的人员才可以处置化学药品。
配制使用以下操作步骤来配制罗丹明WT溶液用于EXO总藻类（叶绿素和蓝绿藻）传感器的稳定性检查：1. 采购溶液形式的罗丹明WT染料。
这些染料的浓度标称值可能会有一定程度的不同。
推荐的2.5%浓度的罗丹明WT溶液的供应商如下：Fluorescent FWT Red Dye (item #106023)Kingscote Chemicals3334 South Tech Blvd.Miamisburg, OH 45342 USA1-800-394-06782. 准确地将5.0 mL的罗丹明WT溶液注入到一个1000 mL的量瓶中。
将去离子水或蒸馏水注入到该量瓶的刻度线并充分混合以配制出大约125 mg/L的罗丹明WT溶液。
将溶液注入到一个玻璃瓶中备用。
3. 准确地将5.0 mL上面步骤配制的溶液注入到1000 mL的量瓶中然后在量瓶中诸如去离子水或蒸馏水直至满刻度。
充分混合后即可获得浓度为0.625 mg/L的水溶液（一个浓缩液的200:1的稀释液）。
4. 在冰箱里使用黑色的瓶子来保存浓缩的标准液来延迟其分解。
之前步骤配制的稀释标准液应该在配制完成后的24小时内使用。
抛弃掉使用过的标准液。
如果日后需要罗丹明标准液，在让罗丹明WT浓缩液在环境中逐步升温至环境温度后配制另外一份稀释液。
荧光的温度特性很多染料的荧光特性的强度和温度表现出反比例变化的关系。
在使用罗丹明WT校准EXO总藻类传感器时这种效应应该被考虑到。
根据下面标准液温度变化的表格中输入μg/L的校准值。
有关EXO的总藻传感器（叶绿素/蓝绿藻藻蓝蛋白）校准：1）两个溶液，蒸馏水或去离子水，第二点为625ug/L罗丹明WT溶液；2）对于RFU和ug/L要分别校准；3）因此，对于EXO的一支二合一的叶绿素/蓝绿藻传感器共要做8次校准；4）细节如下：对于叶绿素的ug/L单位第一点蒸馏水/去离子水输入值0第二点625ug/L罗丹明WT溶液输入值66ug/L对于叶绿素RFU单位第一点蒸馏水/去离子水输入值0第二点625ug/L罗丹明WT溶液输入值16.4对于蓝绿藻的ug/L单位第一点蒸馏水/去离子水输入值0第二点625ug/L罗丹明WT溶液输入值16ug/L对于蓝绿藻的RFU单位第一点蒸馏水/去离子水输入值0第二点625ug/L罗丹明WT溶液输入值16输入值也可按下表修正：浊度传感器：与6600一样，两点校准第一个点零第二个点溶液和6600的一样，但输入值为124NTU光学溶解氧正常校准即可。
关于6600叶绿素和蓝绿藻读数
关于6600于太湖蓝绿藻和叶绿素监测数据的说明关于常州环境监测中心提出的“在以微囊藻为优势种群的水体中，仪器的测值应该是蓝绿藻高的地方，叶绿素也应该高”。
理论上确实这样的，但是从实际情况、仪器测量原理、测量方式都会带来影响。
1首先太湖水华，是由于蓝绿藻引起的，而微囊藻属为蓝藻门一个重要的属，由于其能释放藻毒素而备受关注。
在微囊藻属内的不同藻类其叶绿素含量是不同的，在其不同生长周期其藻类叶绿素含量也是很不同的。
比如在由于氮盐限制藻类进入稳定生长后期和衰亡期，藻细胞颜色会从蓝绿色变成黄绿色甚至黄色，藻体内叶绿素a含量会大幅降低。
2YSI6600的叶绿素探头采用荧光法测量原理。
该叶绿素探头发射光波长仅在455-475nm之间，检测光波长660-680nm，和实验室法相比，测量值肯定会偏低。
另外所有的采用荧光法测量原理的仪器均有其难以克服的技术障碍：a) 荧光法无校准标准；b) 其他荧光物种的干扰；c) 时间因素、温度因素、细胞结构等等，比如在休息状态的细胞发出的荧光特性比正常状态的细胞多。
3在苏州阳澄湖上曾经出现过在冬天蓝绿藻值很高的情况，实验室发现该地绿藻很高。
对YSI6600仪器，浊度和叶绿素值都会导致蓝绿藻增加，浊度每增加1NTU蓝绿藻值增加13cells/ml，叶绿素每增加1ug/l蓝绿藻值增加60cells/ml。
而且如果蓝绿藻和叶绿素探头同时在蓝绿藻种群优势区中使用，由于含每单位叶绿素的蓝绿藻荧光特性会弱于其他种类的浮游藻类或植物，这也会导致叶绿素值偏低，而蓝绿藻偏高。
叶绿素和蓝绿藻探头同时使用也可以客观真实地反映整个水体不同藻类的特性，种群信息及叶绿素和蓝绿藻比率等。
4YSI提供给客户最纯正的数据，即使存在上述浊度以及叶绿素对蓝绿藻的影响，YSI亦未修改数据。
5在实际应用中，在苏州和无锡环境监测中心都出现过常州站的情况，究其原因，除了上述原因，叶绿素在水体中分布并不均匀，单点单数据的测量很有可能会出现这种情况。
YSI6600V2水质多参数仪现场快速法与实验室分光光度法测定湖泊藻类叶绿素的比较
将 Y S I6600V 2 测得的蓝藻密度样本分为2 类 后 ，相关性得到显著提升。提出了利用蓝藻密度对样本进行分类后，分别进行
叶 绿 素 a 校正的方法，并说明了此种校正方法的局限性。
关 键 词 ：叶绿素；Y S I6600V2 水质多参数仪;荧光法；局限性
中图分类号：X 835
文献标志码： B
蓝 光 作 为 激 发 光 源 。用 这 种 蓝 光 照 射 时 ，在完整细 胞中存在的叶绿素a 将会发射出光谱在650〜 700 n m 范围内的荧光。为 了 量 化 荧 光 信 号 ，系统
检 测 器 采 用 高 灵 敏 度 的 光 敏 二 极 管 ，并且用光学滤 光 片 限 定 检 测 波 长 。滤 光 片 阻 止 了 被 水 样 中 颗 粒 反 射 的 470 n m 的激发光被检测到。
随着经济的快速发展，内陆湖泊水体富营养化 越发严重，频频发生“水华”现 象 ，使得对浮游植物 的监测成为研究的热点[1]。
叶绿素是衡量水体初级生产力的重要指标，对 叶绿素进行测定可以了解水体的生产力和富营养 化水平，因此浮游藻类中的叶绿素是衡量水体富营 养 化 的 重 要 指 标 [2]。浮 游 植 物 细 胞 内 叶 绿 素 含 量 随 浮 游 植 物 种 类 或 类 群 而 有 所 不 同 ，同 时 还受浮 游 植 物 年 龄 、生 长 率 、光 和 营 养 条 件 的 影 响 [3]。
文章编号=1674 -6732(2016)05 -0014 -05
Comparison of Onsite YSI6600V2 Multi-Parameter Water Quality Meter and Laboratory Spectrophotometry for the Determination of Lake Algal Chlorophyll
蓝藻色素测定方法
叶绿素的测定
参照Scherer 和Zhong(1991)的方法，将葛仙米、地木耳和发菜的新鲜或干燥
吸水后的藻体匀浆后(如果色素能提取干净或藻体较少可不匀浆)，加入100%甲醇，然后60 ℃下水浴保温30 min 或室温下过夜，冷却后于665 nm 处测定OD
值，叶绿素用以下公式计算：
Cchl a＝A/( ε*l) (8)
A 为光密度值，ε，消光系数为74 cm-1 mg-1 mL，l, 比色杯的内径长度为1 cm，
最终得出的叶绿素浓度为mg mL-1。
类胡萝卜素的测定
藻先用100%甲醇60℃下水浴保温30 min，冷却后加入14 mL 石
油醚和2 mL 乙醚萃取，于453 nm 处测定醚层的光密度值，消光系数为250 cm-1
mg-1 mL (Scherer et al., 1991)。
叶绿素的测定
参照Scherer 和Zhong(1991)的方法，将葛仙米、地木耳和发菜的新鲜或干燥
吸水后的藻体匀浆后(如果色素能提取干净或藻体较少可不匀浆)，加入100%甲醇，然后60 ℃下水浴保温30 min 或室温下过夜，冷却后于665 nm 处测定OD
值，叶绿素用以下公式计算：
Cchl a＝A/( ε*l) (8)
A 为光密度值，ε，消光系数为74 cm-1 mg-1 mL，l, 比色杯的内径长度为1 cm，
最终得出的叶绿素浓度为mg mL-1。
类胡萝卜素的测定
藻先用100%甲醇60℃下水浴保温30 min，冷却后加入14 mL 石
油醚和2 mL 乙醚萃取，于453 nm 处测定醚层的光密度值，消光系数为250 cm-1
mg-1 mL (Scherer et al., 1991)。
叶绿素、蓝绿藻水质标准
叶绿素和蓝绿藻都是水体中的一种生物，它们的存在会对水质产生一定的影响。
叶绿素是一种天然色素，存在于绿色植物中，能够吸收阳光并把太阳能转化为化学能，这个化学能再通过光合作用以葡萄糖的形式储存起来。
然而，如果水体中叶绿素含量过高，可能会造成水体“富营养化”，使得藻类大量繁殖，影响水质。
蓝绿藻是一种微生物，可以在自然环境中繁殖生长，并且在水体中存在是正常的现象。
然而，当蓝绿藻的数量过多时，会导致水体变绿、产生异味，并可能释放出有害物质，对水质安全造成潜在威胁。
对于叶绿素和蓝绿藻的指标设定，不同的国家和地区可能会有不同的标准。
一般来说，对于饮用水，叶绿素的含量应不超过1毫克/升；而对于蓝绿藻，由于其数量过多可能会引起水体异味、变色、产生毒素等问题，因此也需要对其进行控制。
总的来说，为了保障饮用水的安全和健康，需要定期对水体进行检测和控制，确保其中各种物质的含量符合国家标准。
同时，加强水源地的保护和水质监测也是非常重要的。
YSI6600V2型多参数水质监测仪
仪器YSI6600V2型多参数水质监测仪作业指导书1.概述1.1 简介YSI6600V2是一款适用于多点采样测量、长期现场监测与剖面分析的多参数仪器，可同时监测多达17个参数。
具有90天电池寿命与8组探头结构，其中包括两个供浊度、叶绿素或罗丹明探头同时安装的光学口，三个包括氨氮、硝酸盐、氯化物安装的离子选择性口，三个供pH/ORP、电导/温度、溶解氧安装的口。
1.2 仪器主要技术性能（1）数据存储YSI6600V2仪器自身的记录存储器为快闪存储器，能恒久存贮，直至人为地删除，不会因断电而丢失。
可存储高达15万个读数。
（2）仪器接口仪器具有RS-232和SDI-12接口。
YSI6600V2与数据采集平台的连接以SDI-12为佳。
SDI-12接口在欧州和美州已开始成为在线监测仪器和传感器的接口标准。
SDI-12和RS-232相比,SDI-12可以作单线多点连接，连接距离可超过100米。
另外，SDI-12除可以作数据传输，也可同时向仪器供电。
（3）电源供应透过SDI-12连接，数据采集器可向YSI6600V2直接供电。
YSI6600V2带有电池室，一套碱性电池可提供75~90天的操作（15分钟采样率，25℃工作温度），可确保在整个监测系统完全断电的情况下不会丢失任何数据，提供数据测量的有效保障（4）采样间隔YSI 6600V2的测量频次（间隔）可以根据需要设定，最长可达9个多小时。
1.3 主要技术规格（1）a 溶解氧(%空气饱和度)：测量范围 0至500%；分辨率 0.1%；准确度⑴0至200%：读数之±2%或2%空气饱和度，以较大者为准⑵200至500%：读数之±6%，温度和盐度具有自动补偿功能。
b 溶解氧(mg/L)：测量范围 0至50mg/L；分辨率 0.01 mg/L；准确度⑴0至20 mg/L：读数之±2%或0.2 mg/L，以较大者为准⑵20至50 mg/L：读数之±6%，温度和盐度具有自动补偿功能。
叶绿素及蓝绿藻二合一在线监测仪验收方案
叶绿素及蓝绿藻二合一在线监测仪验收方案一、目标和背景叶绿素及蓝绿藻二合一在线监测仪是一种用于监测水体中叶绿素和蓝绿藻浓度的仪器。
本次验收的目标是测试该在线监测仪的性能和准确度，以确保其能够满足监测要求。
该仪器的使用背景是为了监测水体中叶绿素和蓝绿藻的浓度，以提供水质监测数据，帮助保护水环境。
二、测试内容和方法1.性能测试1.1精确度测试：使用标准样品，分别对叶绿素和蓝绿藻进行测量，与标准值进行比较，计算误差。
1.2灵敏度测试：使用不同浓度的叶绿素和蓝绿藻样品，测量其浓度，并绘制浓度与测量值的曲线，评估仪器的灵敏度。
1.3重复性测试：使用相同浓度的叶绿素和蓝绿藻样品，进行多次测量，计算测量值的标准差，评估仪器的重复性。
2.准确度测试2.1野外测试：在实际应用环境中，使用该仪器对不同水体中的叶绿素和蓝绿藻进行测量，将测量结果与实际采样分析数据进行比较，评估仪器的准确度。
2.2对比测试：与同类仪器进行对比测试，对同一水样进行测量，比较测量结果，评估该仪器的准确性。
三、验收标准根据上述测试内容和方法，制定以下验收标准：1.性能测试方面，误差应控制在±5%，灵敏度应能够检测到叶绿素和蓝绿藻的较低浓度，重复性标准差应小于测量值的5%。
2.准确度测试方面，与实际采样分析数据比较的误差应控制在±10%，与同类仪器对比的误差应控制在±5%。
四、验收流程和方法1.准备工作：根据测试需要，提供标准样品、水样和其他测试用具。
2.性能测试：按照性能测试内容和方法进行测试，记录测量结果和误差。
3.准确度测试：在实际应用环境中进行测试，将测量结果与实际采样分析数据比较，记录误差。
4.对比测试：与同类仪器进行对比测试，将测量结果与对比仪器的测量结果比较，记录误差。
5.验收评估：根据验收标准，对测试结果进行评估，判断该在线监测仪是否符合要求。
6.缺陷处理：如果仪器存在性能不达标或准确度不符合要求的问题，需要进行相应的维修或调整，直至达到验收标准。
藻蓝蛋白与叶绿素的关系
藻蓝蛋白与叶绿素的关系藻蓝蛋白和叶绿素是两种不同的色素分子，它们在生物体内发挥着不同的作用。
藻蓝蛋白是一种蓝色的蛋白质，存在于一些蓝藻和绿色植物中，它能够吸收波长为620-660纳米的光线，参与光合作用中的电子传递过程。
而叶绿素则是一种绿色的色素分子，存在于几乎所有的绿色植物和一些藻类中，它能够吸收波长为400-500纳米和600-700纳米的光线，参与光合作用中的光能转化和电子传递过程。
尽管藻蓝蛋白和叶绿素在吸收光线的波长和参与光合作用的过程中有所不同，但它们在结构上却有一定的相似性。
藻蓝蛋白和叶绿素都是由一个大的多环结构和一个较小的辅基团组成的。
这个多环结构被称为色素环，它是由若干个共轭的双键和一些杂原子组成的。
这些双键和杂原子的存在使得藻蓝蛋白和叶绿素都具有了吸收光线的能力。
辅基团则是与色素环相连的一些小分子，它们能够调节色素分子的光学性质和化学性质，从而影响色素分子的功能。
除了在结构上有一定的相似性之外，藻蓝蛋白和叶绿素在进化上也有一定的联系。
研究表明，藻蓝蛋白和叶绿素都是由一种叫做原始叶绿体的细胞器演化而来的。
原始叶绿体最初是一种光合细菌，它能够利用光能进行自养自足。
随着时间的推移，原始叶绿体逐渐演化成了现代植物和藻类中的叶绿体和蓝细菌。
在这个演化过程中，藻蓝蛋白和叶绿素的结构和功能也发生了一些变化，从而适应了不同的生存环境和生物功能。
总之，藻蓝蛋白和叶绿素虽然在吸收光线的波长和参与光合作用的过程中有所不同，但它们在结构上有一定的相似性，同时也有一定的进化联系。
这些相似性和联系不仅有助于我们更好地理解生物体内的光合作用过程，也为我们研究生物体的进化历史提供了一些线索。
区分绿藻和蓝藻最简单的方法
区分绿藻和蓝藻最简单的方法绿藻和蓝藻是两种常见的藻类生物，它们在形态、生活习性和生态功能上存在一些明显的区别。
下面将介绍区分绿藻和蓝藻最简单的方法。
首先，我们可以通过它们的形态特征来区分绿藻和蓝藻。
绿藻的细胞形态多样，大部分绿藻细胞是单细胞或者由细胞聚合而成的一小团。
而蓝藻的细胞形态相对较为固定，绝大部分蓝藻是原核生物，细胞形态呈股形或链状。
此外，蓝藻细胞的大小一般比绿藻要更大。
其次，我们可以通过它们的色素组成来区分绿藻和蓝藻。
绿藻的色素组成主要包括叶绿素a和b，这两种叶绿素可以吸收蓝色和红色光线。
而蓝藻的色素组成则主要由蓝藻素和食物黄素组成。
蓝藻素可以吸收红色光线，并且具有较高的光合效率。
第三，我们可以通过它们的生活习性来区分绿藻和蓝藻。
绿藻主要生活在淡水和海水中，有些种类也可以生活在湿地和土壤中。
绿藻对于光线和温度的适应能力较强，可以在各种环境中生存和繁殖。
蓝藻则主要生活在淡水环境中，有些种类也可以生活在海水和土壤中。
蓝藻对于光线和温度的适应能力较差，只能在特定的环境中生存和繁殖。
最后，我们可以通过它们的生态功能来区分绿藻和蓝藻。
绿藻是一类重要的初级生产者，通过光合作用将阳光能转化为有机物质，为整个生态系统提供能量和营养物质。
绿藻在水生生态系统中的角色十分重要，对于水质的净化和稳定起着重要作用。
而蓝藻则是一类光合细菌，具有氮固定的功能。
蓝藻可以将大气中的氮气转化为有机氮化合物，为整个生态系统提供氮源。
综上所述，通过对绿藻和蓝藻的形态特征、色素组成、生活习性和生态功能的分析，我们可以很容易地区分这两类藻类生物。
这些方法不仅可以帮助我们更好地了解和研究绿藻和蓝藻，还对于保护和管理相关生态系统具有重要的意义。
水体富营养化监测指标及预防措施分析
水体富营养化监测指标及预防措施分析随着人类社会的发展和经济的快速增长，水体污染问题成为一个日益突出的全球性环境问题。
其中，水体富营养化现象的不断加剧引起了广泛的关注。
水体富营养化的主要原因是过量的营养物质进入水体，并促进了藻类和水生植物的过度生长，导致水体中的氧气消耗增加、水质恶化，甚至引发赤潮等灾害。
为了监测并预防水体富营养化，采取合理的指标和措施至关重要。
一、水体富营养化的监测指标1. 总氮和总磷浓度：总氮和总磷是评价水体富营养化程度的主要指标。
它们是藻类和水生植物生长的主要限制因子，浓度的过高能够促进藻类的繁殖和藻华爆发。
2. 可溶性无机氮和无机磷：可溶性无机氮和无机磷是评价营养物的有效性和水生生物生长的指标。
高浓度的可溶性无机氮和无机磷可以提供充足的养分供藻类等生物利用。
3. 叶绿素a和蓝绿藻生物量：叶绿素a是衡量藻类生物量和水体中蓝藻种群的主要指标。
高含量的叶绿素a表明水体中富含蓝藻，进一步反映了水体的富营养化程度。
4. 水体溶解氧水平：由于大量的藻类和水生植物生长，水体中的溶解氧被消耗掉，这对其他水生生物造成威胁。
监测水体的溶解氧水平可以揭示水体富营养化对水生生物的影响。
二、水体富营养化的预防措施1. 控制农业和畜禽养殖面源污染：加强农业和畜禽养殖排放的监管，限制农药、化肥和畜禽粪便的直接排放进入水体，采取农田间作物轮作、合理施肥等措施，减少农业面源污染。
2. 加强工业和城市污水处理：对工业和城市污水进行全面的处理，确保排放水质符合相关标准。
同时推广水资源回收利用技术，减少污水对水体富营养化的贡献。
3. 植被修复和湿地建设：恢复和保护湿地，通过湿地的自然过滤和生物处理能力，减少水体中营养物质的负荷。
此外，植被修复也是一个有效的手段，通过植被吸收和稀释营养物质来降低水体富营养化。
4. 定期监测和评估水体质量：建立完善的水体监测体系，通过定期监测不同区域的水质状况，了解富营养化问题的发展趋势。
叶绿体色素的定量测定
叶绿素含量的测定叶绿素的含量与植物光合作用及氮素营养有密切的关系，在科学施肥、育种及植物病理研究上常有测定的需要。
方法Ⅰ一、目的掌握叶绿素含量测定的基本原理和方法。
二、原理叶绿素与其他显色物质一样，在溶液中如液层厚度不变则其吸光度与它的浓度成一定的比例关系。
已知叶绿素a 、b在652 nm波长处有相同的比吸收系数（均为34.5）。
因此，在此波长下测定叶绿素溶液的吸光度，即可计算出叶绿素a 、b的总量。
三、材料、仪器设备及试剂1. 材料：菠菜叶；芥菜叶或其他植物叶片。
2. 仪器设备：电子分析天平；分光光度计；漏斗；25ml容量瓶；剪刀；滤纸；玻棒等。
3. 试剂：95﹪乙醇、石英砂、碳酸钙粉。
四、实验步骤1. 叶绿素的提取称取植物鲜叶0.20g（可视叶片叶绿素含量增减用量），剪碎放入研钵中，加少量碳酸钙粉和石英砂及3～5ml95﹪乙醇研成匀浆，再加约10ml 95﹪乙醇稀释研磨后，用滤纸过滤入25ml容量瓶中，然后用95﹪乙醇滴洗研磨及滤纸至无绿色为止，最后定容至刻度，摇匀，即得叶绿素提取液。
2. 测定取光径为1cm的比色杯，倒入叶绿素提取液距杯口1cm处，以95﹪乙醇为空白对照，在652 nm波长下读取吸光度（A）值。
五、计算值代入公式(1), 即可求得提取液中叶绿素浓度。
所得结将测得的吸光度A652果再代入公式(2)，即可得出样品中叶绿素含量（mg ·g－1Fw）。
A652C ( mg .ml－1 ) = ———— (1)34.5公式中： C —叶绿素（a 和b ）的总浓度( mg ·ml－1 )—表示在652nm 波长下测得叶绿素提取液的吸光度A65234.5为叶绿素a和b混合溶液在652nm波长的比吸收系数（比色杯光径为1cm, 样品浓度为1g·L－1时的吸光度）。
C（mg.ml－1）×提取液总量（ml）叶绿素含量（mg .g－1Fw）= ———————————————— (2)样品鲜重（g）方法Ⅱ一、目的掌握叶绿素a、b含量测定的基本原理和方法。
叶绿素的定量测定及叶绿素荧光仪分析
叶绿素的定量测定及叶绿素荧光仪分析实验原理叶绿素的定量测定：叶绿素a、b在红光区的最大吸收峰分别位于663nm与645nm，又，根据光密度的加和性我们可以在这两个波长的光下分别测叶绿素提取液的消光度并根据其不同情况的比吸收系数来计算叶绿素a、b各自的含量。
另外，由于叶绿素a、b在652nm波长光照下有相同比吸收系数34.5，故可测出总叶绿素含量。
叶绿素荧光仪参数分析：接受了1个光子的激发态的叶绿素有三种途径来回到基态，分别为荧光、光化学反应和热。
因此测量叶绿素荧光动力参数可以反映植物光合作用的状态（光能的吸收、转运及分配等）。
叶绿素荧光仪可分为连续激发式与脉冲调制式，本次试验用的是脉冲调制式，有便携的特点。
已知植物荧光多来自PSII天线色素蛋白复合体中的叶绿素a，荧光发射波长范围约在650-780nm，发射峰在685nm与735nm。
当植物经过暗适应后，所有的PSII都处于完全打开状态，即其下游PQ等都处于氧化状态，PSII系统可以接受电子。
此时经过激发光照射后所发射的荧光是固定荧光F0。
之后用饱和脉冲技术，即用一个持续时间很短的强光关闭所有光合作用电子门使PSII的光化学作用暂时无法进行，再测量荧光，可得最大值Fm（此时光合作用能量全部转化为荧光和热）。
Fv为可变荧光，为Fm与F0之差，反应了QA的还原情况。
实验仪器及材料脉冲调制式叶绿素荧光仪，分光光度计，研钵，漏斗，分析天平。
菠菜叶，80%丙酮，碳酸钙，石英砂，不同环境下的烟草。
实验步骤1. 叶绿素定量测定1. 称取新鲜菠菜叶片5g剪碎置于研钵中，加入适量碳酸钙与石英砂和适量丙酮，匀浆，继续加入适量丙酮碾磨充分，用丙酮过滤于带刻度试管内，定容至25ml，摇匀。
2. 以80%丙酮为参比液，分别在645nm、663nm与652nm波长光照射下测量吸光度。
3. 处理数据。
2. 叶绿素荧光仪参数分析1. 选取一盆从温室移至室内条件下的烟草植株与一盆室内条件（逆境）处理的烟草植株，分别在相似位置夹上叶片夹子，暗适应20min。
叶绿素含量测定方法(精)
叶绿素含量测定方法---丙酮法由于微藻的生长周期比较复杂，包括无性繁殖阶段和有性繁殖阶段，其在不同阶段的生理形态不同，有时藻细胞会聚集在一起，以片状或团状形式存在，在显微镜下难以确定其所包含的细胞数量。
藻细胞中叶绿素的含量（特别是叶绿素a的含量）通常随与细胞的生长呈较好的线性关系，因此可通过测定藻细胞中叶绿素含量变化来反映微藻的生长情况。
叶绿素测定采用丙酮研磨提取法。
取适量藻液于10 mL离心管中在4000 rpm转速下离心10 min，弃去上清液，藻泥中加入适量的100 %的丙酮。
采用丙酮提取法时在试管研磨器中冰浴研磨5 min，4000 rpm离心后，上清液转入10 mL容量瓶中。
按上述方法对藻体沉淀进行萃取，直至藻体沉淀呈白色为止。
定容后，采用722S型可见分光光度计分别测定645 nm和663 nm下萃取液的吸光值，叶绿素含量用以下公式进行计算（Amon,1949）：叶绿素a含量用以下公式进行计算：Chlorophyll a (mg/L) = (12.7×A663 nm－2.69×A645 nm)×稀释倍数叶绿素b含量用以下公式进行计算：Chlorophyll b (mg/L) = (22.9×A645 nm－4.64×A663 nm)×稀释倍数叶绿素总含量用以下公式进行计算：Chlorophyll a＋b (mg/L) = (20.2×A645 nm＋8.02×A663 nm)×稀释倍数由于丙酮的沸点较低，较高温度下挥发很快。
此外，叶绿素稳定性较差，见光易分解，因此，本实验中叶绿素的提取和测定均在低温黑暗条件下进行，以减少提取过程中的损失。
叶绿素提取方法提取液：本试验用DMSO/80%丙酮(l/2，v/v)提取的叶绿素，谭桂英周百成底栖绿藻叶绿素的二甲基亚砜提取和测定法* 海洋与湖沼 1987 18（3）295--300.一、直接浸提法：1、准确量取10ml藻液,加到15ml离心管中，放在台式离心机离心，3500r/min （根据不同的藻选择不同那个的离心转速）离心5min倒上清；留藻泥。
蓝绿藻藻密度阈值
蓝绿藻藻密度阈值全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：蓝绿藻是一类单细胞藻类微生物，存在于淡水和海水中。
它们通常以蓝绿色为主，因其富含叶绿素而得名。
蓝绿藻在自然界中起着重要的生态作用，但过多的蓝绿藻群落可能导致湖泊和河流水质恶化，甚至对人类健康和生态系统产生负面影响。
蓝绿藻藻密度阈值是指湖泊或河流中蓝绿藻数量的临界值，超过此阈值将对水环境产生不利影响。
蓝绿藻藻密度的监测和控制对于维护水质环境至关重要。
了解蓝绿藻藻密度阈值的含义和影响，可以帮助我们更好地保护水资源，维护生态平衡。
蓝绿藻藻密度阈值的确定是基于植物生长和养分循环原理的。
在一定养分浓度下，蓝绿藻会迅速繁殖，形成藻华。
过高的蓝绿藻密度会导致水体富营养化，产生大量有毒代谢产物，甚至引起水华，严重影响水生生物的生存和繁衍。
设定蓝绿藻藻密度阈值有助于及时发现水体异常变化，采取有效措施防止水质恶化。
蓝绿藻藻密度阈值的确定是与水域特性和环境因素相关的。
不同水体的生态环境和养分水平不同，蓝绿藻藻密度阈值也会有所差异。
一般来说，湖泊和河流的阈值较高，因为它们具有更大的水体容量和流动性，蓝绿藻过度繁殖的影响相对较弱。
而小型水体如塘坝、水塘等，由于水体规模小、养分浓度高，更容易形成蓝绿藻水华，阈值相对较低。
蓝绿藻藻密度阈值的监测和评估是保护水质环境的必要手段。
通过定期对水体进行采样分析，监测蓝绿藻藻密度变化，可以及时发现水华形成的趋势，预警和防范水质问题。
一旦监测结果超过蓝绿藻藻密度阈值，需要及时采取减少养分输入、增氧通风、物理清除等措施，遏制蓝绿藻水华的发展，保护水环境和生物多样性。
蓝绿藻藻密度阈值的优化和调整也是需要不断探讨和研究的问题。
随着环境污染和气候变化的加剧，水质恶化和蓝绿藻水华的发生频率和规模逐渐增加。
科学家和环保机构需要根据最新的研究成果和监测数据，不断修订和完善蓝绿藻藻密度阈值，以适应当前社会发展和环境变化的需要。
蓝绿藻藻密度阈值的设定和监测对于维护水质环境、保护生态系统至关重要。
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关于6600于太湖蓝绿藻和叶绿素监测数据的说明关于常州环境监测中心提出的“在以微囊藻为优势种群的水体中，仪器的测值应该是蓝绿藻高的地方，叶绿素也应该高”。
理论上确实这样的，但是从实际情况、仪器测量原理、测量方式都会带来影响。
1首先太湖水华，是由于蓝绿藻引起的，而微囊藻属为蓝藻门一个重要的属，由于其能释放藻毒素而备受关注。
在微囊藻属内的不同藻类其叶绿素含量
是不同的，在其不同生长周期其藻类叶绿素含量也是很不同的。
比如在由
于氮盐限制藻类进入稳定生长后期和衰亡期，藻细胞颜色会从蓝绿色变成
黄绿色甚至黄色，藻体内叶绿素a含量会大幅降低。
2YSI6600的叶绿素探头采用荧光法测量原理。
该叶绿素探头发射光波长仅在455-475nm之间，检测光波长660-680nm，和实验室法相比，测量值肯
定会偏低。
另外所有的采用荧光法测量原理的仪器均有其难以克服的技术
障碍：a) 荧光法无校准标准；b) 其他荧光物种的干扰；c) 时间因素、温
度因素、细胞结构等等，比如在休息状态的细胞发出的荧光特性比正常状
态的细胞多。
3在苏州阳澄湖上曾经出现过在冬天蓝绿藻值很高的情况，实验室发现该地绿藻很高。
对YSI6600仪器，浊度和叶绿素值都会导致蓝绿藻增加，浊
度每增加1NTU蓝绿藻值增加13cells/ml，叶绿素每增加1ug/l蓝绿藻值增
加60cells/ml。
而且如果蓝绿藻和叶绿素探头同时在蓝绿藻种群优势区中
使用，由于含每单位叶绿素的蓝绿藻荧光特性会弱于其他种类的浮游藻
类或植物，这也会导致叶绿素值偏低，而蓝绿藻偏高。
叶绿素和蓝绿藻
探头同时使用也可以客观真实地反映整个水体不同藻类的特性，种群信
息及叶绿素和蓝绿藻比率等。
4YSI提供给客户最纯正的数据，即使存在上述浊度以及叶绿素对蓝绿藻的影响，YSI亦未修改数据。
5在实际应用中，在苏州和无锡环境监测中心都出现过常州站的情况，究其原因，除了上述原因，叶绿素在水体中分布并不均匀，单点单数据的测量
很有可能会出现这种情况。
如果放在稳定的罗丹明校准溶液里，就不会出现叶绿素低，蓝绿藻高的现象。
6下图是我们在竺山湖的浮标长期监测（8.29-9.3）叶绿素和蓝绿藻的数据趋势图：
竺山湖（8.29-9.03）叶绿素和蓝绿藻的数据趋势图
该图足可证实长期监测仪器完全可以反映叶绿素和蓝绿藻的趋势也协同的，即叶绿素增加，蓝绿藻也是在增加的。
上海泽铭环境科技有限公司
技术部
2010年9月6日。