CLONTECH酵母双杂中文版

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酵母双杂中文手册

酵母双杂中文手册

蛋白的酵母双杂交实验——以钓饵蛋白筛选cDNA 文库研究蛋白相互作用第一部分 系统简介1. 实验原理蛋白的酵母双杂交实验是以酵母的遗传分析为基础,研究反式作用因子之间的相互作用 对真核基因转录调控影响的实验。

很早就已知道,转录活化蛋白可以和DNA 上特异的序列结合而启动相应基因的转录反应。

这种DNA 结合与转录激活的功能是由转录活化蛋白上两个相互独立的结构域即DNA 结合结构域(Binding Domain, BD)和转录活化结构域(Activation Domain, AD)分别来完成的,并且这两个结构域对于基因的转录活化都是必须的。

目前酵母双杂交实验采用的系统有LexA 系统和Gal4系统两种。

在LexA 系统中,DNA 结合结构域由一个完整的原核蛋白LexA 构成,转录活化结构域则由一个88个氨基酸的酸性的大肠杆菌多肽B42构成,它在酵母中可以活化基因的转录; 在Gal4系统中,BD 和AD 分别由Gal4蛋白上不同的两个结构域(1-147aa 与768-881aa)构成。

在利用GAL4系统筛选cDNA 文库或研究蛋白间的相互作用时,DNA 结合结构域与靶蛋白即“诱饵”相结合,转录活化结构域与文库蛋白或要验证的蛋白相结合。

一般情况下,单独的BD 可以与GAL4上游活化序列(GAL UAS )结合但不能引起转录,单独的AD 则不能与GAL UAS 结合,只有当BD 与AD 分别表达的融合蛋白由于相互作用而导致两者在空间上相互靠近时,BD 与AD 才能与GAL UAS 结合并且引起报道基因的转录。

在BD 与AD 要导入的酵母菌AH109中,通过基因工程的方法在GAL4 UASs 和启动子的下游构建了3个报道基因——ADE2,HIS3,MEL1(或LacZ ),因此可以通过营养缺陷筛选和酵母菌表型的改变来筛选或验证两个蛋白之间是否存在相互作用。

GAL4系统的原理如图所示:图一:酵母双杂交系统工作原理Kan r Amp r pGBKT7-bait pACT2-cDNA 生物 w .e b i o e .c o m2.系统特点同以往研究蛋白质—蛋白质之间相互作用的实验手段相比,双杂交系统具有其独特优势。

酵母双杂交操作手册 by shenao

酵母双杂交操作手册 by shenao

酵母双杂交操作手册 by shenao Y2H所需材料:PJ69-4A PJ69-4α or AH109 Y187pGBKT7 DNA-BD Vector (bait)pGADT7 AD Vector (prey)pGBKT7-53 Control VectorpGBKT7-Lam Control VectorpGADT7-T Control VectorpCL1 Control Vector3' DNA-BD & AD Sequencing PrimersHerring testes carrier DNAYeast extract,Dextrose(glucose); SD base; DO Supplement; Peptone,with DMF) TE buffer DMSO PEG/LiAc (10X) TE/LiAc buffer (10X) X-a-gal(Yeast Phenotypes–––Ade, His, Leu, Requires adenine (Ade), histidine (His), leucine (Leu), or tryptophan (Trp) in the–or Trp medium to grow; is auxotrophic for at least one of these specific nutrients.Expresses the ADE2 reporter gene; i.e., does not require Ade in the medium to +Ade grow.+His Expresses the HIS3 reporter gene; i.e., does not require His in the medium to grow.+LacZ Expresses the lacZ reporter gene; i.e., is positive for b-galactosidase activity.+Mel1 Expresses the MEL1 reporter gene; i.e., is positive for a-galactosidase activity. MiscellaneousAde2p Protein encoded by the yeast ADE2 gene.3-AT 3-amino-1,2,4-triazole; a competitive inhibitor of the His3 protein.CHX CycloheximideDropout (supplement or solution); a mixture of specific amino acids and nucleosidesDO used to supplement SD base to make SD medium; DO solutions are missing one ormore of the nutrients required by untransformed yeast to grow on SD medium.His3p Protein encoded by the yeast HIS3gene.Minimal Synthetic Dropout medium; comprised of a nitrogen base, a carbon source SD medium (glucose or galactose), and a DO supplement.YPH Yeast Protocols HandbookSD/–Ade SD/–Met SD/–His SD/–Ura YPDA YPD/CHX SD/–Leu SD/–Trp StrainPJ69-4A – + – + + –––––– + + ––– PJ69-4α1SD/–Ade SD/–Met SD/–His SD/–Ura YPDA YPD/CHX SD/–Leu SD/–Trp StrainAH109 – + – + + –––––– + + ––– Y187Yeast selection Bacterial selection Fusion EpitopeCloning vectorspGBKT7 DNA/bait c-Myc TRP1 kanamycinpGADT7 AD/library HA LEU2 ampicillin Control vectorspCL1 GAL4 LEU2 ampicillinpGADT7-T AD/T-antigen HA LEU2 ampicillin pGBKT7-53 DNA-BD/p53 c-Myc TRP1 kanamycin pGBKT7-Lam DNA-BD/lamin C c-Myc TRP1 kanamycin .缩写:Ade腺嘌呤(adenine) His组氨酸(histidine) Leu亮氨酸(leucine) Trp色氨酸(tryptophan)培养基成分及配制方法:YPD & SD Base from CLONTECH already contains a carbonsource(Dextrose(glucose))YPD: 20g/L Peptone, 10g/L Yeast extract, 2% Dextrose(20g/L), 20 g/L Agar (for plates only) 加入上述药品,加水至1L,调节PH值到6.5。

Y187酵母双杂交菌株使用说明

Y187酵母双杂交菌株使用说明
细菌在 30-­‐35℃培养箱中培养 24-­‐48h,真菌在 23-­‐28℃培养箱中培养 24-­‐72h (必要时,可适当延长培养时间)。 菌 株 传 代 : 将得到的菌株的新鲜培养物转接到适宜的固体培养基及液体培养基中(尽量增大 接种量:如用无菌吸管吸取≥50μl 新鲜培养物至固体培养基,边移动边缓 慢释放),适宜温度下培养,用以菌株的保藏、传代及制备工作菌株。 注 意 事 项 : 1、菌种活化前,将冷冻管保存在低温、清洁、干燥的环境中,长时间室温下放 置会导致菌种衰退; 2、冷冻管开封、冻干粉复溶、菌株恢复培养等操作应在无菌条件下进行; 3、一些菌种经过冷冻干燥保存后,延迟期较长,部分需连续两次继代培养才能 正常生长; 4、苛养菌的培养需采用含特定营养成分的培养基,敬请正确选择,不清楚时来 电询问; 5、某些厌氧菌的培养,自开封到接种完成,均需以无氧气体充填,以保持厌氧 状态;培养过程中亦要保持厌氧状态; 6、某些菌种,如肺炎链球菌、流感嗜血杆菌、淋病奈瑟菌等需要 5-­‐10%CO2 促 进生长; 7、如发现冷冻管盖松动、复溶液浑浊等异常情况,应停止使用对应产品。 8、部分菌种有致病性、扩散性,请专业人员在专业环境下有保护性操作。 保 藏 条 件 : -­‐20℃保存(复溶液于 2-­‐8℃保存) 保 藏 时 间 : 2-­‐10 年,应根据菌种状况及时转接
与 AD 结合,将要检测的蛋白质分别与 BD 和 AD 融合,形成 bait 融合蛋
白(bait -­‐BD)和 prey 融合蛋白(prey-­‐AD),如果 bait 和 prey 发生相
互作用,就会促使 BD 和 AD 的相互接近,形成完整的 GAL4,从而激活
位氨基酸区段的转录激活域(AD)。DNA-­‐BD 能够识别 GAL4-­‐responsive gene

酵母双杂实验操作手册和注意事项

酵母双杂实验操作手册和注意事项

酵母双杂(Yeast two-hybrid)实验操作手册和注意事项一. 酵母双杂的原理1989年,Song和Field建立了第一个基于酵母的细胞内检测蛋白间相互作用的遗传系统。

很多真核生物的位点特异转录激活因子通常具有两个可分割开的结构域,即DNA特异结合域(DNA-binding domain,BD)与转录激活域(Transcriptional activation domain ,AD)。

这两个结构域各具功能,互不影响。

但一个完整的激活特定基因表达的激活因子必须同时含有这两个结构域,否则无法完成激活功能。

不同来源激活因子的BD区与AD结合后则特异地激活被BD结合的基因表达。

基于这个原理,可将两个待测蛋白分别与这两个结构域建成融合蛋白,并共表达于同一个酵母细胞内。

如果两个待测蛋白间能发生相互作用,就会通过待测蛋白的桥梁作用使AD与BD形成一个完整的转录激活因子并激活相应的报告基因表达。

通过对报告基因表型的测定可以很容易地知道待测蛋白分子间是否发生了相互作用。

酵母双杂交系统由三个部分组成:(1)与BD融合的蛋白表达载体,被表达的蛋白称诱饵蛋白(bait)。

(2)与AD融合的蛋白表达载体,被其表达的蛋白称靶蛋白(prey)。

(3)带有一个或多个报告基因的宿主菌株。

常用的报告基因有HIS3,URA3,LacZ和ADE2等。

而菌株则具有相应的缺陷型。

双杂交质粒上分别带有不同的抗性基因和营养标记基因。

这些有利于实验后期杂交质粒的鉴定与分离。

根据目前通用的系统中BD来源的不同主要分为GAL4系统和LexA系统。

后者因其BD来源于原核生物,在真核生物内缺少同源性,因此可以减少假阳性的出现。

二.所用的载体及相关信息1. pGBKT7载体的图谱和相关信息The pGBKT7 vector expresses proteins fused to amino acids 1–147 of the GAL4 DNA binding domain (DNA-BD). In yeast, fusion proteins are expressed at high levels from the constitutive ADH1promoter (PADH1); transcription is terminated by the T7 and ADH1 transcription termination signals(TT7 & ADH1). pGBKT7 also contains the T7 promoter, a c-Myc epitope tag, and a MCS. pGBKT7replicates autonomously in both E. coli and S. cerevisiae from the pUC and 2 m ori, respectively. Thevector carries the Kan r for selection in E. coli and the TRP1 nutritional marker for selection in yeast.Yeast strains containing pGBKT7 exhibit a higher transformation efficiency than strains carrying other DNA-BD domain vectors (1).b. pGADT7载体的图谱和相关信息pGADT7-T encodes a fusion of the SV40 large T-antigen (a.a. 86–708) and the GAL4 AD (a.a. 768–881). The SV40 large T DNA (GenBank LocusSV4CG) was derived from a plasmid referenced in Li & Fields (1993) and was cloned into pGADT7 using the EcoR I and Xho I sites. pGADT7-T has not been sequenced.三.实验主要流程A.需要准备的药品和设备1.两种酵母菌种(AH109,Y187)2.酵母培养所需的药品: Yeast nitrogen base without amino acidsAgar (for plates only)sterile 10×Dropout Solution单缺-T,-L(clontech公司)二缺-T/-L (clontech公司)四缺-T/-L/-Ade/-His(clontech公司)3.酵母转化所需的药品: 10×TE buffer10×LiAc40%PEGcarrier DNA4.酵母显色所需要的药品: x- -GAL5.其他仪器设备: 30℃恒温培养箱30℃摇床.水浴锅分光光度计B.DNA-BD和DN-AD fusion protein 载体的分别构建。

630490 酵母双杂交文库构建实验流程(clontech)

630490 酵母双杂交文库构建实验流程(clontech)

第一链cDNA合成1.准备: 高质量的Poly A 或总RNA2. 在微量离心管中混匀以下试剂:1–2 μl RNA 样本(0.025–1.0 μg poly A+或0.10–2.0 μg 总RNA)1.0 μl CDS III 或CDSIII/6 引物1–2 μl 去离子水(补齐体系到4.0 μl)4.0 μl 总体积注意: 对照实验时,请使用1μl *1μg+ 的对照RNA。

CDSIII = Oligo-dT;引物CDSIII/6 =随机引物3. 72°C ,孵育2 min。

4. 冰上冷却2 min,然后14000rpm,10sec,瞬时离心。

5. 混合以下试剂,将混合液加入Step4中的经过变性且结合有引物的RNA样本中,轻拍混匀。

2.0 μl 5X First-Strand 缓冲液1.0 μl DTT (100 mM)1.0 μl dNTP 混合物(10 mM )1.0 μl SMART MMLV 反转录酶6. 只有使用随机引物(CDSIII/6)实验才进行此步骤[如果采用Oligo-dT(CDSIII)请忽略此步骤,直接进行Step7],25°C,室温孵育10 min。

7. 42°,孵育10 min。

注意: 孵育在热盖的PCR仪中进行。

若用非热盖的PCR仪或水浴,请在反应管中加入一滴矿物油来避免水分蒸发。

8. 加入1 μl SMART III-modified oligo,混匀,42°C,孵育1 hr。

9. 75°C ,10 min终止第一链合成反应。

10. 室温冷却,加入1 μl RNA酶H (2U)。

11. 37°,孵育20 min。

12. 继续进行LD-PCR 扩增(Section VII.B)。

注意: –20°C下可保存3个月。

第一链反应最终体积为15μl• 10 μl SMART III Oligo(10 μM; 5’-AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGTGG CCATTATGGCCGGG-3’)• 10 μl CDS III 引物(10 μM; 5’-AT TCTAGAGGCCGAGGCGGCCGACA TG-d(T)30VN-3’)*23个碱基• 10 μl CDS III/6 引物(10 μM; 5’-AT TCTAGAGGCCGAGGCGGCCGACA TG-NNNNNN-3’)注意: N = A, G, C, or T; V = A, G, or C• 50 μl 5’ PCR 引物(10 μM; 5’-TTCCACCC AAGCAGTGGTATCAACGCAGAGTGG-3’)25个碱基•50 μl 3’ PCR 引物(10 μM; 5’-GTATCGATGCCCACCC TCTAGAGGCCGAGGCGGCCGACA-3’)第二链cDNA合成(LD-PCR)尽量使用最小的循环数来得到3-6ug的ds cDNA。

酵母双杂交操作手册 by shenao

酵母双杂交操作手册 by shenao

酵母双杂交操作手册 by shenao Y2H所需材料:PJ69-4A PJ69-4α or AH109 Y187pGBKT7 DNA-BD Vector (bait)pGADT7 AD Vector (prey)pGBKT7-53 Control VectorpGBKT7-Lam Control VectorpGADT7-T Control VectorpCL1 Control Vector3' DNA-BD & AD Sequencing PrimersHerring testes carrier DNAYeast extract,Dextrose(glucose); SD base; DO Supplement; Peptone,with DMF) TE buffer DMSO PEG/LiAc (10X) TE/LiAc buffer (10X) X-a-gal(Yeast Phenotypes–––Ade, His, Leu, Requires adenine (Ade), histidine (His), leucine (Leu), or tryptophan (Trp) in the–or Trp medium to grow; is auxotrophic for at least one of these specific nutrients.Expresses the ADE2 reporter gene; i.e., does not require Ade in the medium to +Ade grow.+His Expresses the HIS3 reporter gene; i.e., does not require His in the medium to grow.+LacZ Expresses the lacZ reporter gene; i.e., is positive for b-galactosidase activity.+Mel1 Expresses the MEL1 reporter gene; i.e., is positive for a-galactosidase activity. MiscellaneousAde2p Protein encoded by the yeast ADE2 gene.3-AT 3-amino-1,2,4-triazole; a competitive inhibitor of the His3 protein.CHX CycloheximideDropout (supplement or solution); a mixture of specific amino acids and nucleosidesDO used to supplement SD base to make SD medium; DO solutions are missing one ormore of the nutrients required by untransformed yeast to grow on SD medium.His3p Protein encoded by the yeast HIS3gene.Minimal Synthetic Dropout medium; comprised of a nitrogen base, a carbon source SD medium (glucose or galactose), and a DO supplement.YPH Yeast Protocols HandbookSD/–Ade SD/–Met SD/–His SD/–Ura YPDA YPD/CHX SD/–Leu SD/–Trp StrainPJ69-4A – + – + + –––––– + + ––– PJ69-4α1SD/–Ade SD/–Met SD/–His SD/–Ura YPDA YPD/CHX SD/–Leu SD/–Trp StrainAH109 – + – + + –––––– + + ––– Y187Yeast selection Bacterial selection Fusion EpitopeCloning vectorspGBKT7 DNA/bait c-Myc TRP1 kanamycinpGADT7 AD/library HA LEU2 ampicillin Control vectorspCL1 GAL4 LEU2 ampicillinpGADT7-T AD/T-antigen HA LEU2 ampicillin pGBKT7-53 DNA-BD/p53 c-Myc TRP1 kanamycin pGBKT7-Lam DNA-BD/lamin C c-Myc TRP1 kanamycin .缩写:Ade腺嘌呤(adenine) His组氨酸(histidine) Leu亮氨酸(leucine) Trp色氨酸(tryptophan)培养基成分及配制方法:YPD & SD Base from CLONTECH already contains a carbonsource(Dextrose(glucose))YPD: 20g/L Peptone, 10g/L Yeast extract, 2% Dextrose(20g/L), 20 g/L Agar (for plates only) 加入上述药品,加水至1L,调节PH值到6.5。

酵母双杂实验步骤

酵母双杂实验步骤

酵母双杂实验步骤2.1.1酵母双杂交2.1.1.1Gateway入门克隆设计Gateway引物时,在上游引物的5'端加上B1序列:GGGG-ACA-AGT-TT G-TAC -AAA-AAA-GCA-GGC-TNN-,下游引物的5'端加上B2序列:GGGG-ACC-ACT-TT G-T AC-AAG-AAA-GCT-GGG-TN-。

其中,5'-GGGG序列是保护碱基,防止引物的重要部分被降解,下划线加粗的部分是在整个的Gateway克隆中可以保存下来的序列,3'端的碱基N是为了保证经过入门载体构建目的载体时阅读框的正确性,一般建议为C。

通过PCR扩增获得带有att B位点的基因片段,扩增体系和条件见3.2.2.2,其中将退火温度改为65℃。

获得扩增产物后对其进行回收纯化,测定纯化后DNA 的质量和浓度后进行下一步的BP反应,反应体系如下:att B-PCR产物(≥10 ng/μL)1-7μLpDONR221 (150 ng/μL)1μLTE buffer, pH 8.0 补足8μL将上述混合物加入离心管中,加入2μL BP反应酶,加入之前需将其在涡旋仪上轻轻振荡两次,所有组分混匀离心后,25℃反应1h,加入1μL蛋白酶K后,混匀离心,37℃反应10min终止BP反应,将BP 反应产物参照3.2.2.6进行转化,由于pDONR221载体为Kan抗性,所以选用含有50μg/mL Kan抗生素的LB平板进行阳性克隆筛选,参照3.2.2.7检测阳性克隆,然后根据3.2.2.8中的方法提取重组质粒,测定质量和浓度后送至测序公司进行测序。

进行BP反应时,需注意以下几项:(1)对于BP反应来说,最高效的是采用线性的att B-PCR产物和超螺旋的att P入门载体;(2)为了提高BP反应的效率,可以将建议的25℃反应1h适当延长至4-6h,可以将效率提高2-3倍,或者延长至过夜反应,可以将效率提高5-10倍,对于长片段克隆来讲,适当的延长反应时间是非常必要的;(3)提高体系中PCR产物的量可以增加反应效率,但每10μL体系中PCR产物最好不要超过250ng。

酵母转化手册(译自Yeastmaker

酵母转化手册(译自Yeastmaker
clontechclontech提得3x1材料h的readyto供提供预先混习交流不做其transforma方法适用于所常规转化方的转化效率是稀有的相互个特殊又重酵母细胞105转化子uogomediap混合好的培养表1酵母转其他用途如ationsyst所有的酵母方法更为高效是必要的条互作用此方重要的步骤
质粒 DNA(浓度、纯度高) 变性的**Yeastmaker 宿主 DNA (10 µg/µl)
Small‐Scale (1.5 ml tube) 100 ng 5 µl
Library‐Scale (15 ml tube) 5–15 µg* 20µl
(* For example, use 5 µg of bait + 10 µg of prey for yeast two‐hybrid library cotransformation. )
50 µl 500 µl 30 min
600 µl 2.5 ml 45 min
6. 加入 DMSO,轻柔混匀
20 µl
160 µl
7. 在 42℃水浴锅中温浴
(注意:期间 Small‐Scale 每隔 5 min,Library‐Scale 每隔 10 min,轻轻倒混几次)
15 min
20 min
本手册仅供学习交流,不做其他用途,如需 word 版本请发送站内信。
B. 方法:转化酵母感受态细胞 1. 材料 Yeastmaker Yeast Transformation System 2 酵母感受态细胞(Section 6.A) PEG/LiAc (Section 4) 0.9% (w/v) NaCl DMSO 2. 将下列组分加入到已经预冷的无菌离心管中,混合均匀。

酵母双杂

酵母双杂
取SD/-Trp平板上挑取经PCR验证过后菌落直径大于2mm的pGBKT7和
pGBKT7-XX酵母转化菌分别接种于5mL SD/-Trp的液体培养基中, 30℃,
220rpm,培养2~3天,测其OD60定
利al
351ml
两种质粒。所以,这种情况下,最好先将诱饵质粒转入
注意:此处的加入顺序非常重要,PEG必须得首先加入, 它可以将酵母细胞与高浓度的LiAc分开,使酵母免
酵母中(用本方法或快速转染的方法),然后再Leu、SD/-Trp/-Leu、SD/-Trp/-
1、制备酵母感受态,实验步骤同上;
7、以6000~8000rpm离心30s,用微量移液枪尽量除去转
2、将1 mL单链载体DNA样品煮沸5 min,迅速 化混合液;
置于冰水中冷却; 3、取制备好的酵母感受态,14000rpm,离心 30s,用微量取样器尽量除去残留的LiAc; 4、往盛有酵母感受态的离心管中按表7加入酵 母转化所需物质:
6、1000g,离心10分钟,弃上清,用10 mL含有卡 那霉素(终浓度为50μg/mL )的0.5×YPDA重悬 菌体;(酵母悬浮液的体积大约为11.5mL)
7、取100 μL酵母悬浮液进行稀释,步骤同2.4.1, 然后吸取100 μL 10-1,10-2,10-3,10-4号管的 稀释液分别涂布于SD/-Trp/-Leu平板上,30℃, 培养3~5天,最后根据SD/-Trp/-Leu平板上的菌
1、取-80℃冻存的诱饵载体的酵母转化菌,在SD/Trp固体平板上划线培养,30℃,培养3~5天;
2、 挑取SD/-Trp固体平板上菌落直径大于2mm的 转化酵母单菌落,接种到已灭菌的50 mL SD/Trp液体培养基中(250ML瓶子装),30℃, 260rpm,培养至OD600=0.8(大约16~20小 时);

酵母双杂交

酵母双杂交

酵母双杂交酵母感受态细胞的制备及酵母转化酵母感受态细胞的制备转化规模 YPDA 培养基平板上活化酵母菌小大文库接直径2-3ml的单克隆1个或多个于1ml YPDA 或 aSD培养基中(最好选用四周之内的酵母菌落)涡旋打散菌体转移到表中右面所示体积的YPDA或SD培养基中 50ml 50ml 150ml 30?,250rpm,振荡培养16-18h,至OD600大于 1.5转移过夜培养的培养物于表中右面所示体积的300ml 300ml 1000ml YPDA中,加入的量要足够使1升培养物中OD600约达0.2-0.330?,230-270rpm,振荡培养3h 至OD600约 0.5(0.4-0.6)50ml 离心管,室温1000×g,离心5min 收集菌体弃上清,用灭菌的1×TE或灭菌蒸馏水重悬菌体 25-50ml 25-50ml 500ml 室温,1000×g,离心5min 弃上清,用灭菌的1×TE/LiAc 重新悬浮菌体 1.5ml 1.5ml 8ml 准备PEG/LiAc溶液10ml 10ml 100ml 注:酵母转化分为顺序转化和共转化。

a 在顺序转化中,进行第二次转化时,用SD-Trp培养基;上面表中所标出的培养基及试剂的体积不是固定不变的,可根据实验中的实际情况调整,如PEG/LiAc溶液,转化时只用60ml,若准备100ml 就很浪费。

小大文库酵母转化在指定管中混合下列成分 1.5ml 50ml 500mlaDNA-BD/诱饵0.1μg 20-100μg 0.2-1.0mgAD/文库0.1μg 10-50μg 0.1-0.5mgHerring testes carrier DNA(鲑鱼精DNA) 0.1mg 2mg 20mg 加入酵母感受态细胞,涡旋混匀 0.1ml 1ml 8ml 加灭菌的pEG/LiAc溶液,涡旋混匀 0.6ml 6ml 60ml 30?,200rpm,振荡培养30min 加DMSO,温柔混匀或旋转(注:此步一定不要涡旋) 70μl 700μl 7.0ml 42?热击15min,大规模和文库规模的需要不断旋转混匀冰上放置1-2min 5S(14krpm) 5min 5min(1000×g) (1000×g) 室温离心,弃上清bc用1×TE重悬 0.5ml 1.0ml或10ml 10ml 涂板,根据不同严谨度涂不同缺陷平板,低严谨度的涂SD-Leu-Trp二缺板;中严谨度的涂SD-Trp-His-Leu 三缺板;高严谨度的涂SD-Ade-His-Leu-Trp/X-gal 四缺板。

酵母双杂交文库筛选与蛋白互作验证服务

酵母双杂交文库筛选与蛋白互作验证服务

酵母双杂交技术是研究蛋白质-蛋白质相互作用的一种蛋白组学方法,是基于对真核生物的转录因子调控转录起始过程的认识而发明的技术。

其基本原理是利用真核生物酵母的转录激活因子Gal4可分为结构上分开并且功能独立的两个结构域:N端1-147aaDNA结合结构域(DNAb in di ngdomai n,BD)和 C 端768-881aa 转录激活结构域(Activati on Doma in ,AD),Gal4 的N端和C端可以分开构建表达质粒,将N端和诱饵蛋白(研究的目标蛋白A)融合表达,C端和细胞cDNA或者猎物蛋白X融合表达,如果cDNA编码的蛋白x能和A互相作用,就能把Gal4的C端和N端联系在一起,形成转录因子,激活UAS下游的基因表达,原理如图1所示。

图 1 酵母双杂交技术原理图(引自MATCHMAKER GAL4 Two-Hybrid System 3&Libraries User Manual).公司选用的是美国Clontech公司(现为Takara公司收购)的MatchMaker系列酵母双杂交系统,所用的AH109, Y187酵母菌株,是通过基因工程的方法突变了内源Gal4转录因子的工程菌株,并在GAL4 UASs和启动子的下游构建了3个报道基因--ADE2, HIS3, MEL1(或LacZ,因此可以通过营养缺陷和显色报告基因的表达来筛选或验证两个蛋白之间是否存在相互作用。

菌株信息如图2所示。

AH1W CrhUsIfKHGALI UASCALI TATA tfIS3GAL2UASGAU IATAADtZMELI UAS加 ELI TATAMELI UA3MELI TATAMH IY1t?Cuh$lriicn触 11 UASGALITATA血JI I I MATCHMAKER GAU Two-Hybrid System 3&Libnries Uitf MaiiuaKctontech)所用表达载体信息如下引自 MATCHMAKER GAL4 Two-Hyt^nd Sv^tem 濟Ubr@riE$ U 典r Mawa 唯少址“吋酵母双杂交技术优点:①高效:转化方法简单,转化效率高,便于操作。

酵母双杂交

酵母双杂交

酵母双杂交遇到问题:假阳性较多、转化效率偏低酵母双杂交由Fields在1989年提出。

他的产生是基于对真核细胞转录因子特别是酵母转录因子GAL4性质的研究。

GAL4包括两个彼此分离的但功能必需的结构域. 位于N端1-174位氨基酸残基区段的DNA结合域(DNA binding domain,DNA-BD)和位于C端768-881 位氨基酸残基区段的转录激活域(Activation domain,AD)。

DNA-BD能够识别位于GAL4效应基因(GAL4-responsivegene)的上游激活序列(Upstream activating sequence,UAS),并与之结合. 而AD则是通过与转录机构中的其他成分之间的结合作用,以启动UAS下游的基因进行转录。

DNA-BD和AD单独分别作用并不能激活转录反应,但是当二者在空间上充分接近时,则呈现完整的GAL4转录因子活性并可激活UAS下游启动子,使启动子下游基因得到转录。

产生原理双杂交系统的建立得力于对真核生物调控转录起始过程的认识。

细胞起始基因转录需要有反式转录激活因子的参与。

80年代的工作表明,转录激活因子在结构上是组件式的(modular), 即这些因子往往由两个或两个以上相互独立的结构域构成, 其中有DNA结合结构域(DNA binding domain,简称为DB)和转录激活结构域(activation domain,简称为AD),它们是转录激活因子发挥功能所必需的。

前者可识别DNA上的特异序列,并使转录激活结构域定位于所调节的基因的上游,转录激活结构域可同转录复合体的其他成分作用,启动它所调节的基因的转录。

二个结构域不但可在其连接区适当部位打开,仍具有利用酵母双杂交筛选基因各自的功能,而且不同两结构域可重建发挥转录激活作用。

酵母双杂交系统利用杂交基因通过激活报道基因的表达探测蛋白-蛋白的相互作用。

单独的DB虽然能和启动子结合,但是不能激活转录。

Mate_Plate酵母双杂交文库构建中文说明书(clontech)

Mate_Plate酵母双杂交文库构建中文说明书(clontech)

系统说明书PT4085-1 (PR013451)Cat. No. 630490Published February 2010“Mate & Plate™”文库构建系统说明书目录I. 介绍&操作流程 (4)II. 组份列表 (5)III. 附加产品推荐 (7)IV. 缩写列表 (8)V. 宿主菌株信息 (9)VI. 对照实验 (10)A. 总论 (10)B. 操作:对照同源重组克隆的实验操作 (10)VII. cDNA文库构建 (11)A. 操作:第一链cDNA合成 (11)B. 操作:长距离PCR (LD-PCR)扩增cDNA (13)C. 操作: CHROMA SPIN™ TE-400 纯化ds cDNA (14)VIII. 双杂交文库构建 (16)A. 酵母双杂交文库构建&筛选总论 (16)B. 操作:制作Mate & Plate文库 (16)IX. 参考文献 (18)X. 疑难解答指南 (19)附录A: 文库滴度测定 (24)附录B: 质粒信息 (22)附录C: 酵母生长培养基&补充物 (23)附录D: SMART™ 技术概述 (25)Protocol No. A Clontech Laboratories, Inc. Version No. PR013451 Takara Bio Company2“Mate & Plate™”文库构建系统说明书目录,续图表Figure 1.利用酵母的生物学知识构建Mate & Plate文库 (4)Figure 2. Mate & Plate文库构建概述 (11)Figure 3. SMART cDNA合成高质量cDNA (14)Figure4. CHROMA SPIN纯化柱和收集管 (15)Figure 5. pGADT7-Rec 载体图谱和克隆位点 (22)Table I:酵母宿主菌株的基因型 (9)Table II:根据不同SD培养基的表型测试 (9)Table III: RNA起始量和PCR最优循环数的相关性分析 (13)Table IV:酵母培养基套装2&酵母培养基套装2Plus的各组份 (23)Table V: Matchmaker黄金酵母操作用独立包装的酵母培养基 (23)Table VI:酵母双杂交筛选用的附加培养基&培养基补充物 (24)_____________________________________________A Clontech Laboratories, Protocol No. PT4085-1 Takara Bio Company Version No.PR0134513“Mate & Plate™”文库构建系统说明书1.介绍&操作流程酵母双杂交系统主要是从prey文库中筛选与已知蛋白(bait)有相互作用的蛋白(prey)。

酵母双杂交系统技术介绍

酵母双杂交系统技术介绍
酵母双杂交系统技术介绍
混合
DDO/X/A
QDO/X/A
4/1
取1ml菌液按 照一定比例 用LB稀释, 150ul/板进 行涂板,过 夜培养。
提取质粒
刮取平板上的 菌落,提取质 粒。
转化酵母菌
MatHJ Hwang, S Kim… - The Plant Cell …, 2011 - Am Soc Plant Biol
2. Extracellular signal-regulated kinase 8 (Erk8) controls estrogen-related receptor α (ERRα) cellular localization and inhibits its transcriptional activit021 • 22•筛选: 诱饵载体构建及其自激活检测
SD-Trp/X/A
酵母双杂交系统技术介绍
4/187 α型
Mix Mating
二倍体
DDO筛选
QDO筛选
Y2H Gold
a型
酵母双杂交系统技术介绍
Clontech
Matchmaker™
4/11/2021 • 6

背景介绍: Matchmaker Gold 系统
酵母单杂交-蛋白与DNA的相互作用
• Matchmaker™ Gold Yeast One-Hybrid Library Screening System (630491)
酵母双杂交系统技术介绍
4/11/2021 • 7

背景介绍: Matchmaker Gold系统原理
Reporter Gene
酵母双杂交系统技术介绍
Reporter Gene

酵母双杂试验

酵母双杂试验

pGBKT7和pGADT7不要同时转入细胞,要先转入一个,平板培养,挑单菌落做液体培养,再转入另一个质粒,同时转入两个质粒的效率太低。

我做的时候转化率很高,从来没有出现过问题,转入第一个质粒(pGBKT7)通常在SD-Trp平板上可以有3000-4000个菌落,再转入pGADT7后,在双选择平板SD-Trp-Leu上至少也可以收获400-500个菌落。

需要注意的是,细胞转入pGBKT7后,在-Trp上挑选单菌落做液体培养时,不要用YPD培养液,要用SD-Trp培养液,这样才可以使转化的细胞充分生长。

转化实验的条件也很重要,如果你觉得这中间有什么不放心,你可以把protocol发给我看看。

我这里AH109长得很好,但实验室在国外,估计没法给你。

另外,你说AH109培养不好,是在什么选择平板上?在转完两个质粒以后做实验筛选时,应该先做LacZ和MEL1的显色,再做HIS3,最后做ADE2(因为ADE2的选择是最stringent 的)。

还有什么问题可以继续问我。

1.YPDA配制方法如下:先称好Yeast Extract 和Tryptone ,各10g/L 和20g/L ,加水885ml/L另外称取葡萄糖20g/L,放入另一个容器内,(如果量不多,也可以用50ml离心管)加水定容至100ml。

以上两个瓶子同时灭菌:115摄氏度,20min 。

灭菌完后,再混合。

最后加入已经过滤除菌的0.2%的ADE储液,15ml/L 。

121° 15min-80°取菌种,划线,30° 培养3天, 表面光滑而湿润,把平板用封口膜封好,4°冰箱保存,防止霉菌污染。

2.设置阴性对照最好用空载体,因为pGBKT7-Lam+pGADT7-T组成的阴性对照,在SD\-Trp-Leu-His 板上是能够生长的,但生长速度要比阳性对照慢好多。

而Y187或AH109空菌株,在SD\-Trp-Leu-His 板上不能生长,这说明,阴性对照在三缺板上有背景生长。

酵母双杂原理

酵母双杂原理

酵母双杂原理
酵母双杂原理是指在酵母菌中同时存在两个不同的杂合体(heterozygote)基因型,这种基因型通常由一对等位基因(alleles)构成,一个来自母本,一个来自父本。

每个等位基因会对一个特定的基因座(locus)进行编码,基因型是指一个个体在所有基因座上的等位基因组合。

在酵母双杂原理中,两个不同的杂合体基因型具有不同的表型(phenotype),即表现出不同的外部特征。

酵母双杂原理是一种非常重要的遗传学实验方法,可以用来研究基因的功能、表达和调控。

通过将两个不同的杂合体基因型分别交配,得到一个新的杂合体基因型,这个新的基因型包含了来自父本和母本的两个不同等位基因的组合。

通过对这个新的基因型进行表型分析,可以确定不同基因座的遗传性状和表达模式,从而研究基因的功能和调控机制。

酵母双杂原理的应用非常广泛,包括研究基因调控机制、发现新的基因和蛋白质相互作用关系、检测基因突变和修饰等。

此外,酵母双杂原理也被用于筛选新药物和治疗方法,以及研究人类疾病的基因遗传学。

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目录(一)介绍 4 (二)试剂盒物品清单 7 (三)额外附加物品列表9 (四)酵母菌株11 (五)酵母载体14 (六)方法简述:单杂交文库的构建和筛选16 方法简述:双杂交文库的构建和筛选17 (七)构建用于酵母单杂交的报告质粒载体18 (八)构建用于酵母双杂交的DNA-BD融合载体19 (九)构建生成cDNA文库21 (十)构建和筛选酵母单杂交和双杂交文库(简述)27 (十一)酵母单杂交文库的构建和筛选28 (十二)酵母双杂交文库的构建和筛选30 方法A:通过酵母配对(Yeast Mating)来筛选目的蛋白30方法B:通过共转化的方法筛选目的蛋白35 (十三)分析阳性相互作用结果38 (十四)问题解决指南44 (十五)参考文献47 (十六)相关产品50 附录A: 双链 cDNA合成的典型结果51 附录B: 酵母感受态的制备—LiAc 法52 附录C:单杂交对照载体信息53 附录D:双杂对照载体信息54 表格列表Table I. BD Matchmaker酵母菌株的基因型11 Table II. BD Matchmaker酵母菌株的表型11 Table III.单杂交系统的载体14 Table IV.双杂交系统的载体15 Table V.各BD-Matchmaker DNA-BD 载体的比较19 Table VI. RNA起始浓度和PCR扩增循环数之间的关系24 Table VII.单杂交共转化的对照实验的设置29 Table VIII.单杂共转化对照实验:期望的结果29 Table IX.双杂交转化的对照实验的设置33 Table X.双杂交配对筛选的对照实验的设置Table XI.双杂交共转化的对照实验的设置Table XII.双杂交共转化的对照实验:期望的结果Table XIII.用于PCR筛选菌落的Assembling Master Mixs图片列表Figure 1.使用BD Matchmaker单杂交系统筛选蛋白-DNA相互作用 4 Figure 2.使用BD Matchmaker单杂交系统筛选蛋白-蛋白相互作用 4 Figure 3.酵母单杂交和双杂交筛选的大致步骤5 Figure 4.构建和筛选BD Matchmaker酵母单杂交和双杂交文库6 Figure 5.酵母菌株AH109和Y187中的报告基因12 Figure 6.BD Matchmaker酵母单杂交文库的构建和筛选16 Figure 7.BD Matchmaker酵母双杂交文库的构建和筛选17 Figure 8.用BD SMART技术合成高质量的ds cDNA 21 Figure 9.BD CHROMA SPIN纯化柱和收集管26 Figure 10.通过酵母重整合作用来构建AD融合文库27 Figure 11.为双杂交筛选AD融合文库32 Figure 12.分析和证明可能的单杂交和双杂交相互作用阳性结果的策略39 Figure 13.通过酵母配对来验证蛋白-蛋白相互作用42 Figure 14.用对照用人胎盘Poly A+ RNA合成双链cDNA 51 Figure 15.p53HIS对照载体的图谱53 Figure 16.pGAD-Rec2-53 AD对照载体的图谱53 Figure 17.pGADT7-RecT AD对照载体的图谱54 Figure 18.pGBKT7-53 DNA-BD 对照载体图谱54 Figure 19.pGBKT7-Lam DNA-BD 对照载体图谱55(一)介绍BD Matchmaker TM Library Construction & Screening试剂盒提供一种简便的方法构建cDNA文库用来进行酵母双杂交和单杂交的筛选,这些试剂盒结合了BD Matchmaker TM Systems和BD SMART TM cDNA Synthesis的技术,只需要用任何组织的1 μg poly A+ RNA 或total RNA就能构建cDNA文库。

通过一般细胞内克隆步骤,你能利用BD Matchmaker Systems所提供的灵敏的转录方法所构建的文库来进行单杂交或双杂交实验。

单杂交实验的原理——蛋白-DNA相互作用实验单杂交实验使你能够确定和描述蛋白与目的顺式DNA激活序列的绑定,该序列可能是处于最小限度的启动子上游的用于增强转录的元件。

这个实验也可以用于预测或新蛋白的DNA 绑定结构域的确定。

通过BD Matchmaker One-Hybrid System你可以很容易的获得这些基因表达的蛋白在BD Matchmaker One-Hybrid实验中,潜在的DNA绑定蛋白基因是与克隆在pGADT7-Rec2(为单杂交设计的低拷贝载体)上GAL4激活结构域(AD)序列一起融合表达的。

一个或多个目的DNA序列的串联拷贝被构建在pHIS2(含有HIS3营养缺陷报告基因的报告载体)。

DNA绑定蛋白和目标序列的相互作用会激活HIS3的转录(Figure 1),该过程要在宿主菌株Y187(组氨酸缺陷型)中进行并在缺少组氨酸的培养基生长双杂交实验的原理——蛋白-蛋白相互作用的原理双杂实验分析能用于鉴定新的蛋白与蛋白相互作用、确定疑似作用、明确结构域。

在一个BD Matchmaker双杂交实验分析中,诱饵基因是与GAL4 DNA(DNA-BD)绑定结构域序列融合表达的,同时其他的基因或其cDNA与GAL4激活域(AD)序列融合表达(Fields & Song, 1989; Chien et al., 1991)。

当诱饵与文库融合蛋白在AH109(ADE2, HIS3, lacZ, MEL1)这样的报告菌株中相互作用,DNA-BD和AD相接近结合,并激活报告基因转录(Figure 2)DNA-BD 和AD的融合序列是将cDNA序列克隆进酵母表达载体pGBKT7 和pGADT7-Rec载体中来实现的。

pGBKT7表达了与GAL4 DNA-BD融合的蛋白,而pGADT7-Rec表达与GAL4 AD相融合的蛋白。

在酵母中,两种融合基因在组成型启动子P ADH1下高水平表达的。

其他的像pGBT9、ADH1、pAS2-1、pBridge基于GAL4的克隆载体与这个试剂盒也相兼容的。

pBridge载体能被用于鉴定三蛋白复合体的酵母三杂交实验。

单杂交和双杂交实验分析的生物学基础单杂交和双杂交方法是基于许多真核转录因子被发现是复合组成的,它们的转录激活和DNA绑第结构域在结构上和功能上是分开的。

这使研究者可以构建各种融合基因,当在酵母中表达时,能同时结合到目标DNA序列并激活下游报告基因的转录(Figure1和Figure2),BD Matchmaker systems 使用的GAL4的转录激活域与DNA绑定域是被完全阐述的的转录因子(Zhu, L. & Hannon, G. J., 2000.)双杂和单杂文库的建立和筛选双杂和单杂文库的建立和筛选由四个主要步骤组成,(注:有两个步骤遵从同样的流程)。

如果想去筛选双杂交相互作用,第一步是建立一种DNA-BD融合载体。

第二步是使用试剂盒所提供BD SMART试剂从你所抽提poly A 和total RNA建立cDNA文库。

就酵母双杂筛选而言,如果你打算我们从预制的BD Matchmaker cDNA文库选取来替代自己准备文库,可以跳过RNA分离、cDNA合成、AD融合文库构建。

这些包含非常广泛组织的文库被有效的保存在甘油中或预转化到Y187酵母菌株。

我们也提供一种BD Matchmaker文库服务,基于这个服务,提供给我们你想筛选的组织与细胞,我们为你制作AD融合文库。

请注意,我们尽管在高拷贝酵母表达载体中建立了很多的预制和预转化的BD Matchmaker cDNA文库,对双杂工作非常理想的,但他们很少适合单杂分析。

在单杂分析中我们推荐使用pGADT7-Rec2 and pHIS2等低拷贝载体,因为他们产生较少的假阳性克隆。

其次是cDNA合成,把cDNA克隆到BD Matchmaker AD克隆载体中建立一个GAL4 AD 融合文库,如果是建立双杂文库是pGADT7-Rec载体,单杂则是pGADT7-Rec2载体。

克隆在细胞内通过同源重组来进行的,这一步利用酵母替内高效重组系统使ds cDNA和相应的GAL4 AD质粒融合。

采用重组介导的克隆,文库的构建和筛选能紧密的完成,而不需要任何的细菌转化和扩增步骤。

简单的把cDNA文库和相应的BD Matchmaker载体转化到酵母中,然后把细胞用于成分缺省培养基筛选双杂作用。

Figure 3. 酵母单杂和双杂筛选的一般步骤,更加详细单杂和双杂筛选流程图,请参考Figures 6 and 7.Figure 4. BD Matchmaker TM 单杂和双杂文库筛选与构建.如这个图表所示,As this diagram shows,重组介导克隆使文库构建和筛选更快捷高效,尽管这里没有显示,双杂文库能通过酵母融合筛选(细节参照Section XII).BD SMART TM 的cDNA合成和扩增,请参照Section IX. pGADT7-Rec被用于双杂文库构建和筛选而pGADT7-Rec2被用于单杂文库构建和筛选。

被pGADT7-Rec[2]所显示的两个相关载体有不同复制元件。

更多的信息请参照Section X 和相关的载体信息包.i(二)试剂盒内试剂列表此试剂盒包含有足够试剂能制备5次单杂或5次双杂文库。

去离子水、BD CHROMA SPIN柱,、NaCl溶液、缺省(DO)补充物、NaOAc、LiAc、PEG、TE Buffer,、YPD Plus培养基在室温下保存;.酵母菌株、对照Poly A +和BD SMART III Oligo 保存在–70°C,其他试剂储存在–20°C.下。

cDNA第一条链合成cDNA扩增Trial –Size BD Advantage TM PCR 试剂盒cDNA 纯化单杂交文库构建双杂交文库构建BD Yeastmaker 酵母转化系统(三)自备材料下列试剂自备,无其他特别要求所有的试剂与溶液均储存与室温下。

cDNA第一条链合成●无菌0.5ml离心管●Poly A+ or total RNA●矿物油●热循环仪●DNA marker (1-kb DNA ladder)● 1.2% Agarose/EtBr gelcDNA的分离● 1.5ml无菌离心管●带有小架子环型支架●95%乙醇(-20℃)●1% 氯代二甲苯诱饵质粒构建● E. coli感受态细胞。

像DH5α or BD Fusion-Blue 感受态细胞●T4 DNA连接酶●10X T4 连接buffer●LB/amp 平板●50 mM NaCl●从E. coli转化子中提取质粒的试剂盒酵母转化(在无菌容器中准备试剂)●PEG/LiAc溶液● 1.1X TE/LiAc溶液●二甲亚砜酵母的培养与配对●YPD培养基(参照Yeast Protocols Handbook)●YPDA培养基(添加30 mg/L adenine hemisulfate,参照Yeast ProtocolsHandbook)●TE buffer或者无菌的蒸馏水●适合转化的无菌试管和烧瓶●100-和150-培养平板●无菌玻璃棒,用于扑板弯曲的吸管●X-α-Gal(用于酵母双杂MEL1表达的蓝白筛选)●有agar的Minimal SD Base和没有agar的Minimal SD Base●3-AT(抑制SD缺省his培养基背景生长)●Kanamycin 储存液(50 mg/ml )保存于-20℃●Ampicillin 储存液(50 mg/ml )保存于-20℃文库长期保存●100%甘油●YPD冷冻培养基(25%v/v甘油)酵母双杂文库的构建与筛选BD Matchmaker Two-Hybrid Library Construction & Screening Kit不提供下列缺省补充物。

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