大肠杆菌感受态细胞
大肠杆菌感受态细胞的制备和转化原理
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大肠杆菌感受态细胞的制备和转化(原理)感受态细胞的概念重组DNA分子体外构建完成后,必须导入特定的宿主(受体)细胞,使之无性繁殖并高效表达外源基因或直接改变其遗传性状,这个导入过程及操作统称为重组DNA分子的转化。
在原核生物中,转化是一个较普遍的现象,在细胞间转化是否发生,一方面取决于供体菌与受体菌两者在进化过程中的亲缘关系,另一方面还与受体菌是否处于一种感受状态有着很大的关系。
1、感受态细胞的概念所谓的感受态,即指受体(或者宿主)最易接受外源DNA片段并实现其转化的一种生理状态,它是由受体菌的遗传性状所决定的,同时也受菌龄、外界环境因子的影响。
cAMP可以使感受态水平提高一万倍,而Ca2+也可大大促进转化的作用。
细胞的感受态一般出现在对数生长期,新鲜幼嫩的细胞是制备感受态细胞和进行成功转化的关键。
制备出的感受态细胞暂时不用时,可加入占总体积15%的无菌甘油或-70℃保存(有效期6个月)。
2、转化的概念及原理在基因克隆技术中,转化特指将质粒DNA或以其为载体构建的重组DNA导入细菌体内,使之获得新的遗传特性的一种方法。
它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术之一。
受体细胞经过一些特殊方法(如:电击法,CaCl2等化学试剂法)处理后,使细胞膜的通透性发生变化,成为能容许外源DNA分子通过的感受态细胞。
进入细胞的DNA分子通过复制、表达实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。
大肠杆菌的转化常用化学法(CaCl2法),该法最先是由Cohen 于1972年发现的。
其原理是细菌处于0℃,CaCl2的低渗溶液中,菌细胞膨胀成球形,转化混合物中的DNA形成抗DNase(DNA酶)的羟基--钙磷酸复合物粘附于细胞表面,经42℃短时间热冲击处理,促使细胞吸收DNA复合物,在丰富培养基上生长数小时后,球状细胞复原并分裂增值。
被转化的细菌中,重组子中基因得到表达,在选择性培养基平板上,可选出所需的转化子。
大肠杆菌热击感受态细胞的制备、注意事项和转化
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大肠杆菌感受态细胞制备和转化大肠杆菌感受态细胞制备原理:大肠杆菌自然条件下极难进行转化,其关键原因是转化因子吸收较为困难。
在转化试验中,通常先采取人工方法制备感受态细胞,代表性方法之一是Ca2+诱导法。
感受态形成后,细胞生理状态会发生改变,出现多种蛋白质和酶,负责供体DNA结合和加工等。
细胞表面正电荷增加,通透性增加,形成能接收外来DNA分子受体位点等。
Ca2+诱导DNA对大肠杆菌细胞转化:①在0℃CaCl2低渗溶液中,细菌细胞发生膨胀,同时CaCl2使细胞膜磷脂层形成液晶结构,促进细胞外膜和内膜间隙中部分核酸酶解离开来,诱导大肠杆菌形成感受态。
②Ca2+能和加入DNA分子结合,形成抗DNA酶(DNase)羟基-磷酸钙复合物,并黏附在细菌细胞膜外表面上。
当42℃热刺激短暂处理细菌细胞时,细胞膜液晶结构发生猛烈扰动,并随之出现很多间隙,为DNA分子提供了进入细胞通道。
一、受体菌培养从LB平板上挑取新活化E. coli DH5α单菌落,接种于3-5ml LB液体培养基中,37℃下振荡培养12小时左右,直至对数生长后期。
将该菌悬液以1:100-1:50百分比接种于100ml LB 液体培养基中,37℃振荡培养2-3小时至OD600 =0.5左右。
(OD600值在0.4到0.6之间)二、感受态细胞制备 ( CaCl2 法)1、将培养液转入离心管中,冰上放置10分钟,然后于4℃下3000g离心10分钟。
2、弃去上清,用预冷0.05mol/LCaCl2 溶液10ml轻轻悬浮细胞,冰上放置15-30分钟后,4℃下3000g离心10分钟。
3、弃去上清,加入4ml预冷含15%甘油0.05mol/LCaCl2 溶液,轻轻悬浮细胞,冰上放置几分钟,即成感受态细胞悬液。
4、感受态细胞分装成200μl小份,贮存于-80℃可保留半年。
大肠杆菌感受态过程中注意事项:1、细菌生长状态:不要用经过数次转接或储于4℃培养菌,最好从-80℃甘油保留菌种中直接转接用于制备感受态细胞菌液。
大肠杆菌感受态细胞制备及转化实验反思
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大肠杆菌感受态细胞制备及转化实验反思【原创版3篇】目录(篇1)1.实验目的与原理2.实验步骤3.实验结果与分析4.实验反思正文(篇1)一、实验目的与原理大肠杆菌感受态细胞制备及转化实验旨在通过转化方法将外源基因导入大肠杆菌中,从而实现目的基因的表达。
实验原理主要基于重组 DNA 技术,通过外源 DNA 与载体 DNA 的连接,形成重组表达载体,然后将载体转化入大肠杆菌细胞内,使外源基因得以在细胞内表达。
二、实验步骤1.制备大肠杆菌感受态细胞(1)将 500 ml DH5a 的培养物在 LB 中培养至 OD 0.4-0.5(2)将培养瓶在冰浴中摇动 1-2 分钟以预冷细胞(3)将细胞置于无菌预冷离心瓶中,在 5K、4 下旋转 10 分钟(4)弃上清,并将菌液重浮于 1/10 体积 (即 50 毫升) 的冰冷的TSS 中(5)将 05 ml 样品放入预冷的无菌 Eppendorf 试管中,在液氮中快速冷冻。
在一 70C 下储存 KCM 感受态细胞2.转化实验(1)加入 20ul 5XKCM,加入 DNA 和 dd H20 至总体积为 100ul,保持冰上(2)加入 100ul 感受态细胞,混合并在冰上保持 20 分钟(3)37 热激 90 秒(4)向试管中加入 1ml 预热的 LB,在 37 温育 40-60 分钟(5)离心,剩余 50uL 菌体涂布在选择性培养基 (LB-amp/kana) 上。
三、实验结果与分析实验结果主要观察转化后大肠杆菌菌落是否具有抗生素抗性。
将涂布后的培养基在适当条件下培养,观察菌落生长情况。
若菌落生长,说明转化成功;若无菌落生长,则转化失败。
四、实验反思本次实验中,制备感受态细胞及转化过程均较为顺利,但需要注意实验过程中的无菌操作,避免因操作不当导致实验失败。
目录(篇2)1.实验目的与原理2.实验步骤及操作要点3.实验结果与分析4.实验反思与建议正文(篇2)一、实验目的与原理大肠杆菌感受态细胞制备及转化实验旨在通过转化方法将外源基因导入大肠杆菌,从而实现基因的表达和功能研究。
大肠杆菌感受态细胞的制备
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大肠杆菌感受态细胞的制备大肠杆菌(Escherichia coli)是一种常见的细菌,广泛应用于生物技术领域。
在生物技术中,大肠杆菌感受态细胞的制备是非常重要的一步。
感受态细胞是指细胞表面有特定的受体,能够感受到外界的信号,从而引发细胞内的反应。
下面将介绍大肠杆菌感受态细胞的制备方法。
1. 菌株的选择首先需要选择适合的大肠杆菌菌株。
常用的菌株有DH5α、BL21等。
这些菌株具有较高的转化效率和稳定性,适合用于感受态细胞的制备。
2. 受体的构建感受态细胞的制备需要构建受体。
受体是一种蛋白质,能够与外界的信号分子结合,从而引发细胞内的反应。
常用的受体有蛋白激酶、离子通道等。
构建受体需要进行基因克隆、表达、纯化等步骤。
3. 质粒的构建构建受体需要使用质粒。
质粒是一种环状DNA分子,能够在细胞内自主复制。
常用的质粒有pET、pGEX等。
构建质粒需要进行基因克隆、转化、筛选等步骤。
4. 细胞的转化将构建好的质粒转化到大肠杆菌中。
转化是指将外源DNA导入到细胞内,使其表达外源蛋白。
转化需要进行化学转化、电转化等步骤。
5. 细胞的培养转化后的细胞需要进行培养。
培养条件包括温度、氧气、营养物质等。
培养时间需要根据不同的实验目的进行调整。
6. 受体的表达和纯化经过培养后,细胞内的受体会被表达出来。
为了得到纯净的受体,需要进行蛋白质纯化。
常用的纯化方法有亲和层析、离子交换层析等。
7. 受体的功能验证得到纯净的受体后,需要进行功能验证。
功能验证是指验证受体是否能够与外界的信号分子结合,并引发细胞内的反应。
常用的功能验证方法有荧光共振能量转移(FRET)、酶联免疫吸附实验(ELISA)等。
大肠杆菌感受态细胞的制备需要进行菌株的选择、受体的构建、质粒的构建、细胞的转化、细胞的培养、受体的表达和纯化、受体的功能验证等步骤。
这些步骤需要严格控制,才能得到高质量的感受态细胞。
大肠杆菌感受态制备
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摇床
用于大肠杆菌的振 荡培养。
恒温振荡器
用于大肠杆菌的恒 温振荡培养。
03 实验步骤
细菌培养
01
02
03
培养基选择
选择适合大肠杆菌生长的 培养基,如LB培养基,以 保证细菌正常生长。
培养温度
将细菌培养在37℃恒温摇 床中,振荡培养至对数生 长期。
细菌密度
通过观察细菌的生长情况, 控制细菌密度,通常在 OD600值为0.6-0.8时进 行后续操作。
参考文献2
02
03
参考文献3
大肠杆菌感受态制备技术进展, 作者:XXX,出版日期:XXXX 年X月,出版社:XXX出版社。
大肠杆菌感受态制备实验指南, 作者:XXX,出版日期:XXXX 年X月,出版社:XXX出版社。
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实验原理
感受态
感受态是指细菌处于一种生理状态,能够接受外源DNA并与之结合, 进而发生转化。
转化过程
外源DNA通过细菌的细胞膜进入细胞内,并在DNA结合蛋白的作 用下与细菌染色体上的同源序列发生交换,从而实现基因的克隆和 表达。
影响因素
影响感受态形成的因素包括细菌生长状态、培养基成分、温度、渗透 压等。
转化子的筛选和验证
筛选方法
转化子可以通过抗生素筛选、蓝白斑筛选等方法进行 筛选。
验证方法
验证转化子是否含有目的基因,可以通过PCR、酶切、 测序等方法进行。
注意事项
在筛选和验证过程中,需要注意避免假阳性或假阴性 的结果,确保实验结果的准确性。
优化实验条件
1 2 3
温度
感受态细胞的转化需要在一定的温度下进行,不 同的温度可能会影响转化效率,因此需要选择适 宜的温度进行实验。
大肠杆菌感受态细胞的制备和转化原理及注意事项
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大肠杆菌感受态细胞的制备和转化原理及注意事项1、感受态细胞的概念重组DNA分子体外构建完成后必须导入特定的宿主(受体细胞)使之无性繁殖并高效表达外源基因或直接改变其遗传性状,这个导入过程及操作统称为重组DNA分子的转化。
在原核生物中,转化是一个较普遍的现象,在细胞间转化是否发生,一方面取决于供体菌与受体菌两者在进化过程中的亲缘关系,另一方面还与受体菌是否处于一种感受状态有着很大的关系。
所谓的感受态:即指受体或者宿主最易接受外源DNA片段并实现其转化的一种生理状态,是由受体菌的遗传性状所决定的同时也受菌龄、外界环境因子的影响.cAMP可以使感受态水平提高一万倍,而Ca2+也可大大促进转化的作用。
细胞的感受态一般出现在对数生长期新鲜幼嫩的细胞是制备感受态细胞和进行成功转化的关键。
制备出的感受态细胞暂时不用时可加入占总体积15%的无菌甘油或—70℃保存有效期6个月。
2、转化的概念及原理在基因克隆技术中,转化特指将质粒DNA或以其为载体构建的重组DNA导入细菌体内使之获得新的遗传特性的一种方法。
它是微生物遗传、分子遗传、基因工程等研究领域的基本实验技术之一.受体细胞经过一些特殊方法,如电击法、CaCl2等化学试剂法处理后,使细胞膜的通透性发生变化,成为能容许外源DNA分子通过的感受态细胞.进入细胞的DNA分子通过复制、表达实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。
大肠杆菌的转化常用化学法CaCl2法该法最先是由Cohen于1972年发现的。
其原理是细菌处于0℃CaCl2的低渗溶液中,菌细胞膨胀成球形,转化混合物中的DNA形成抗DNase的羟基—钙磷酸复合物粘附于细胞表面,经42℃短时间热冲击处理,促使细胞吸收DNA复合物,在丰富培养基上生长数小时后,球状细胞复原并分裂增值,被转化的细菌中重组子中基因得到表达,在选择性培养基平板上可选出所需的转化子。
Ca2+处理的感受态细胞其转化率一般能达到5×106~2×107转化子/ug质粒DNA可以满足一般的基因克隆试验。
大肠杆菌感受态细胞的几种制备方法
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大肠杆菌感受态细胞的几种制备方法感受态细胞(Competent cells) :常态的细胞不能摄入外部溶液中的DNA,所以要转化质粒DNA进入大肠杆菌必须首先制备感受态的大肠杆菌细胞。
受体细胞经过一些特殊方法(如:CaCl,RuCl等化学试剂法)的处理后,细胞膜的通透性发生变化,成为能容许多有外源DNA的载体分子通过的感受态细胞(competent cell) 。
转化:是将异源DNA分子引入一细胞株系,使受体细胞获得新的遗传性状的一种手段,是基因工程等研究领域的基本实验技术。
进入细胞的DNA分子通过复制表达,才能实现遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性状。
转化过程所用的受体细胞一般是限制-修饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和甲基化酶的突变株。
α-互补现象:因为许多载体都带有一个LacZ基因的调控序列和头146个氨基酸的编码信息,编码α-互补肽,该肽段能与宿主编码的缺陷型β-半乳糖苷酶实现基因内互补(α-互补)。
当这种载体转入可编码?-半乳糖苷酶C端部分序列的宿主细胞中时,在异丙基-β-D 硫代半乳糖苷(IPTG)的诱导下,宿主可同时合成这两种肽段,虽然它们各自都没有酶活性,但它们可以融为一体形成具有酶活性的蛋白质。
所以称这种现象为α-互补现象。
由互补产生的α-半乳糖苷酶(LacZ)能够作用于生色底物5-溴-4-氯-3-吲哚-β-D-半乳糖苷(X-gal)而产生蓝色的菌落,所以利用这个特点,在载体的该基因编码序列之间人工放入一个多克隆位点,当插入一个外源DNA片段时,会造成LacZ(α)基因的失活,破坏α-互补作用,就不能产生具有活性的酶。
所以,有重组质粒的菌落为白色,而没有重组质粒的菌落为蓝色。
方法一:TSS方法制备感受态细菌(又称一步法)一、准备工作1、缓冲液1×TSS的配制事先配制1M的氯化镁:20.3g氯化镁(6分子水结晶),定容于100ml去离子水后封装,不用灭菌。
取干净的100ml 量筒和100ml 烧杯,用量筒量取100ml去离子水,加入至烧杯中,取 1 g 蛋白胨,0.5g 酵母抽提物,0.5g 氯化钠,10 g PEG(MW= 3350),5ml DMSO,5ml 的1 M氯化镁,溶解后用盐酸或者氢氧化钠调整pH为6.5,混匀后用0.22um 滤器过滤除菌。
实验九大肠杆菌感受态细胞的制备及转化
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02
在实验过程中,发现感受态细胞的质量和转化效率受到多种因素的影响,如试 剂浓度、温度、时间等。因此,需要严格控制实验条件,确保实验结果的可靠 性和可重复性。
03
实验中还发现,不同批次的大肠杆菌菌株对感受态细胞制备和转化的影响也较 大,这可能与菌株的遗传背景和生理状态有关。因此,在实验中应尽量使用同 一种菌株,以保证结果的稳定性。
序列分析
对转化子进行序列分析,进一步验证目的基 因的准确性。
05
结果与数据分析
转化效率的计算
转化效率计算公式
转化效率 = (转化子数量 / 菌落总数) × 转化体系中 DNA的总量。
转化效率的影响因素
感受态细胞的制备方法、DNA的质量和浓度、转化条 件等。
转化效率的优化
通过调整感受态细胞制备方法和优化转化条件,可以 提高转化效率。
实验材料与试剂
实验材料:大肠杆菌菌株
大肠杆菌菌株
用于制备感受态细胞和转化实验的基本材料,应选择生长旺 盛、纯度高的菌株。
注意事项
确保菌株无污染,并按照实验室规定进行菌株保存和使用。
试剂:CaCl2、LB培养基、Amp等
CaCl2
用于制备感受态细胞的试剂,能够提高大肠 杆菌的转化效率。
LB培养基
用于培养大肠杆菌的生长,提供必要的营养 物质。
02
实验过程中,通过调整试剂浓度、温度和时间等参数,优化了感受态 细胞的制备和转化条件。
03
成功将外源DNA导入感受态细胞,并通过抗生素筛选获得了转化子。
04
实验结果表明,感受态细胞的制备和转化是实现基因克隆和表达的关 键步骤,为后续的分子生物学实验奠定了基础。
结果分析与讨论
01
实验结果与预期基本一致,成功实现了大肠杆菌感受态细胞的制备和转化。
实验-大肠杆菌感受态细胞的制备及转化
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实验仪器、材料、试剂
1、仪器:恒温摇床,恒温水浴锅,电热
恒温培养箱,无菌工作台,微
量移液枪。
2、材料:DH5α感受态细胞、质粒pGEX-4T2
3、试剂:LB液体及固体培养基、氨苄青霉
素Amp(50mg/ml)。
实验步骤
1、每100ul感受态细胞加入1ul质粒DNA, 同时做一个空白对照(由第一组完成) 。
Amp的平板上,直至液体被培养基全部吸收;
6、平板倒置,37 ℃,过夜培养。
时间。
4、悬浮细胞时动作要轻柔,以免造成菌
体破裂,影响转化。
思考题
1、影响感受态细胞转化效率的因素有哪
些?
内容二:质粒DNA的转化与转化体筛选
1
实验目的 实验原理
实验仪器、材料、试剂
2
3
4
实验步骤
注意事项 思考题
5
6
实验目的
了解转化的概念及其在分子生物学研究中
的意义。
学习将外源质粒DNA转入受体菌细胞及筛 选重组子的方法。
1、仪器:高压灭菌锅、恒温水浴锅、台式
离心机、无菌操作台、微量移液
器、恒温摇床;
2、材料:菌种E.coli DH5α; 3、试剂:LB液体培养基、0.1M CaCl2。
实验步骤
1、将E.coli DH5α单菌落接种于3mlLB培 养液中,37℃震荡培养过夜。 2、取30μl液体培养液加入3mlLB液体培养 基中, 37℃下震荡培养,至光密度值 OD600在0.5~0.6之间(5×107 个/ml )。
感受态细胞,通过高压脉冲的作用将载体
DNA分子导入受体细胞。
实验原理
用CaCl2处理大肠杆菌细胞使其处于感 受态后,通过热激处理可将质粒转化进入细 菌中。进入细菌细胞的质粒能够自主复制并 在宿主中实现其携带基因的转录、表达。
大肠杆菌感受态细胞的制备和转化实验报告
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大肠杆菌感受态细胞的制备和转化实验报告大肠杆菌感受态细胞的制备和转化实验报告引言:大肠杆菌(Escherichia coli)是一种常见的细菌,广泛应用于生物学研究和基因工程领域。
在这个实验报告中,我们将讨论大肠杆菌感受态细胞的制备和转化实验。
实验目的:本实验的目的是制备大肠杆菌的感受态细胞,并将目标DNA转化到细胞内。
通过这个实验,我们可以研究细菌的基因表达和遗传变异。
实验材料和方法:1. 大肠杆菌培养基:含有适当营养物质的LB培养基。
2. 大肠杆菌感受态细胞:选择性培养基(如含有抗生素的培养基)筛选得到的细菌株。
3. 目标DNA:从其他生物体中提取的DNA片段。
4. 热激转化装置:用于将DNA转化到感受态细胞中的装置。
5. 热激转化条件:将感受态细胞与目标DNA和CaCl2在冰上混合,然后在热激转化装置中进行热冲击。
实验步骤:1. 制备感受态细胞:从大肠杆菌培养基中挑取一小部分细菌,接种到含有适当抗生素的选择性培养基中。
在37摄氏度下孵育过夜。
2. 提取目标DNA:从其他生物体中提取目标DNA片段,可以使用商业提取试剂盒或自制提取试剂进行操作。
3. 转化实验:将感受态细胞取出,进行适当的处理,如洗涤和离心。
将感受态细胞与目标DNA和CaCl2在冰上混合,并在热激转化装置中进行热冲击。
然后将细菌培养在含有抗生素的选择性培养基上。
4. 孵育和筛选:将转化后的细菌培养在含有抗生素的选择性培养基中,以筛选出成功转化的细菌。
在孵育过程中,可以使用PCR或其他方法进行确认。
结果和讨论:通过本实验,我们成功制备了大肠杆菌的感受态细胞,并将目标DNA转化到细胞内。
在筛选过程中,我们观察到在含有抗生素的培养基上生长出了抗性菌落,表明转化成功。
通过进一步的分析,如PCR检测,我们可以确认转化的目标DNA是否存在于细菌中。
这个实验的结果对于后续的基因表达研究和遗传工程应用具有重要意义。
大肠杆菌是常用的宿主细胞,可以用于大量表达外源蛋白和合成重组蛋白。
大肠杆菌感受态细胞的制备和转化
![大肠杆菌感受态细胞的制备和转化](https://img.taocdn.com/s3/m/474e49dc998fcc22bcd10da7.png)
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分 子实 生验
物 学
四. 问题与讨论
1.感受态细胞有何特点?如何保证它的质量?
2.如阴性对照中长出菌,原因?
3.还有哪些方法可以将外源基因导入受体细 胞?各有什么优缺点?
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分 子实 生验
物 学
的试剂都要灭菌,且注意防止被其它试剂、DNA酶或
杂DNA所污染, 否则均会影响转化效率或杂DNA的
转入, 为以后的筛选、鉴定带来不必要的麻烦。
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分 子实 生验
物 学
二. 材料,设备及试剂
1)材料 E. coli DH5α菌株; 质粒、 1.5ml 离心管(又称eppendorf管) 卡那霉素;
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分 子实
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物
学
注意:
1、含卡那霉素的LB固体培养基的配制:将灭菌的 LB固体培养基水浴溶解后冷却至60℃左右,加入 Kana储存液,使终浓度为100ug/ml,摇匀后到平板;
2、1小时空间:转化后温浴45min左右,让抗性基 因得以表达,再涂抗性平板
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物 学
CaCl2 (0.lmol/L)使细胞悬浮;
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分 子实 生验
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5) 4℃ ,8000 rpm离心4min,弃上清液;
6) 用100μl预冷的无菌CaC12 (0.lmol/L) 重新悬 浮细胞,冰上备用;
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物 学
2. 转化
(完整版)大肠杆菌感受态细胞的制备
![(完整版)大肠杆菌感受态细胞的制备](https://img.taocdn.com/s3/m/c93081596294dd88d1d26b90.png)
铵、氯化钠、硫酸钠等 .盐析时 ,溶液的 pH 在蛋白质的等电点处效果最好 .凡能与水以任意比
例混合的有机溶剂 ,如乙醇、甲醇、丙酮等 ,均可引起蛋白质沉淀 .2、电泳法 :蛋白质分子在
高于或低于其 pI 的溶液中带净的负或正电荷 ,因此在电场中可以移动 .电泳迁移率的大小主要
取决于蛋白质分子所带电荷量以及分子大小 .3、透析法 :利用透析袋膜的超滤性质 ,可将大分
电泳 ,约 1h 后 ,loading buffer 条带跑到底 ,便可停止 . ⑸考马斯亮蓝染色 ① 将电泳后的 PAGE 胶取下放入容器中 ,加入 50ml 双蒸水或去离子 水 ,加热至沸腾后停止 ,
继续在脱色摇床上摇动 5min, 弃去水溶液 .
② 加上染色液 ,以浸没胶面为准 ,加热沸腾后保持状态 30-60s, 停止加热后继续在脱色摇床
-70 ℃冰箱保存。)
注意事项
⑴、细胞的生长状态和密度
最好从 -70 ℃或 -20 ℃甘油保存的菌种中直接转接用于制备感受态细胞的菌液。不要用已 过多次转接, 及贮存在 4 ℃的培养菌液。细胞生长密度以每毫升培养液中的细胞数在
经 5×107
个左右为佳。即应用对数期或对数生长前期的细菌,可通过测定培养液的
DTT 3 μ l, urea 8M 18ml. 其余 buffer 均用 urea buffer 来配置 .
9.SDS-PAGE 的鉴定 ⑴配胶 (根据此蛋白的大小( 55KD ) ,配置 12% 的胶 )
下 层 胶 的 配 方 :Acr/Bis 4.44ml, 下 层 胶 缓 冲 液 PH8.8
分子蛋白质不能进入孔内而径直流出 ,因此不同大小的蛋白质得以分离 .6、超速离心: 利用物 质密度的不同 ,经超速离心后 ,分布于不同的液层而分离 .超速离心也可用来测定蛋白质的分
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1. 实验目的和要求
通过本实验学习氯化钙法制备大肠杆 菌感受态细胞和外源质粒DNA转入受 菌感受态细胞和外源质粒DNA转入受 体菌细胞的技术以及筛选转化体的技 术。了解细胞转化的概念及其在分子 生物学研究中的意义。 生物学研究中的意义。
冰冷的0.1mo1/ (6)弃去上清液,加入 )弃去上清液,加入100µl冰冷的 冰冷的 / L CaCl2溶液 , 小心悬浮细胞 , 冰上放置片刻 溶液,小心悬浮细胞, 即制成了感受态细胞悬液; 后,即制成了感受态细胞悬液; ( 7) 制备好的感受态细胞悬液可直接用于转 ) 化实验,也可加入占总体积15% 化实验,也可加入占总体积 %左右高压灭菌 过的甘油, 混匀后分装于1.5ml离心管中 , 置 离心管中, 过的甘油 , 混匀后分装于 离心管中 于-70℃条件下,可保存半年至一年。 ℃条件下,可保存半年至一年。
(2) 将以上各样品轻轻摇匀 , 冰上放置 将以上各样品轻轻摇匀, 冰上放置2030min, 于 42℃ 水浴中保温 - 2min, 然后 , ℃ 水浴中保温1- , 迅速冰上冷却2min 迅速冰上冷却 (3) 立即向上述管中分别加入 立即向上述管中分别加入0.4ml LB液体 液体 培养基( 不需在冰上操作) 培养基 ( 不需在冰上操作 ) , 使总体积到 0.5ml, 该溶液称为转化反应原液 , 摇匀后 , 该溶液称为转化反应原液, 于37℃振荡培养约 ℃振荡培养约45-60min ,使受体菌恢复 正常生长状态,并使转化体表达抗生素基因 正常生长状态, 产物(Ampr)。 产物 。
4) 检出转化体和计算转化率
统计每个培养皿中的菌落数, 统计每个培养皿中的菌落数,各实验组 培养皿内菌落生长状况应如表所示: 培养皿内菌落生长状况应如表所示
各实验组在培养皿内菌落生长状况及结果分析
组 转化实验组 含抗菌素的平板 白色菌落和少量 蓝色菌落 无菌落或极少量 白色菌落 蓝色菌落 结果说明 说明有重组质粒导入细 胞中( 胞中(有时还需要酶切 进一步鉴定〕 进一步鉴定〕 说明插入片段比较纯或 有少量模板DNA存在 有少量模板DNA存在 可以判断感受态细胞的 效率
3) 平板培养(有时需要稀释) 平板培养(有时需要稀释)
(1)取各样品培养液 取各样品培养液0.1ml,分别接种于 取各样品培养液 , 含抗菌素LB 平板培养基上 , 涂匀 含抗菌素 如果用玻璃棒涂抹, ( 如果用玻璃棒涂抹 , 酒精灯烧过 后稍微凉一下再用,不要过烫) 后稍微凉一下再用,不要过烫)。
重组质粒克隆的鉴定
鉴定带有重组质粒克隆的方法常用的有α 鉴定带有重组质粒克隆的方法常用的有α互补、小规模制备质粒DNA进行酶切分析、 进行酶切分析、 互补、小规模制备质粒 进行酶切分析 插入失活、 以及杂交筛选的方法。 插入失活、PCR以及杂交筛选的方法。最 以及杂交筛选的方法 常用的方法是小规模制备质粒DNA进行酶 常用的方法是小规模制备质粒 进行酶 切分析,对于带有LacZ基因的载体还可以 切分析,对于带有 基因的载体还可以 结合α 互补现象来筛选 互补现象来筛选。 结合α-互补现象来筛选。
由互补产生的β 半乳糖苷酶( Z)能够作 由互补产生的β-半乳糖苷酶(LacZ)能够作 用于生色底物5 吲哚- 用于生色底物5-溴-4-氯-3-吲哚-β- 半乳糖苷(X gal)而产生蓝色的菌落 (X而产生蓝色的菌落, D-半乳糖苷(X-gal)而产生蓝色的菌落,所 以利用这个特点, 以利用这个特点,在载体的该基因编码序列 之间人工放入一个多克隆位点, 之间人工放入一个多克隆位点,当插入一个 外源DNA片段时, DNA片段时 Z(α 基因的失活, 外源DNA片段时,会造成LacZ(α)基因的失活, 破坏α 互补作用 就不能产生具有活性的酶。 互补作用, 破坏α-互补作用,就不能产生具有活性的酶。 所以,有重组质粒的菌落为白色, 所以,有重组质粒的菌落为白色,而没有重 组质粒的菌落为蓝色。 组质粒的菌落为蓝色。
转化(transformation): 转化( ) 是将异源DNA分子引入一细胞株系, 使受体细 分子引入一细胞株系, 是将异源 分子引入一细胞株系 胞获得新的遗传性状的一种手段, 胞获得新的遗传性状的一种手段 , 是基因工程 等研究领域的基本实验技术。 等研究领域的基本实验技术。 进入细胞的DNA分子通过复制表达,才能实现 分子通过复制表达, 进入细胞的 分子通过复制表达 遗传信息的转移, 遗传信息的转移,使受体细胞出现新的遗传性 转化过程所用的受体细胞一般是限制- 状。转化过程所用的受体细胞一般是限制-修 饰系统缺陷的变异株, 饰系统缺陷的变异株,即不含限制性内切酶和 甲基化酶的突变株。 甲基化酶的突变株。
转化的方法: 转化的方法: 1. 化学的方法 热击法);使用化学试剂(如 化学的方法(热击法 ;使用化学试剂( 热击法 CaCl)制备的感受态细胞,通过热击处 )制备的感受态细胞, 理将载体DNA分子导入受体细胞; 分子导入受体细胞; 理将载体 分子导入受体细胞 2. 电转化法:使用低盐缓冲液或水洗制备的 电转化法: 感受态细胞, 感受态细胞,通过高压脉冲的作用将载体 DNA分子导入受体细胞。 分子导入受体细胞。 分子导入受体细胞
克隆的筛选: 克隆的筛选:
主要用不同抗生素基因筛选。 主要用不同抗生素基因筛选。常用的 抗生素有:氨苄青霉素、卡那霉素、 抗生素有:氨苄青霉素、卡那霉素、 氯霉素、四环素、链霉素等; 氯霉素、四环素、链霉素等;
将经过转化后的细胞在选择性抗生素培养 基中培养,才能较容易地筛选出转化体, 基中培养,才能较容易地筛选出转化体, 即带有异源DNA分子的受体细胞。否则, 分子的受体细胞。 即带有异源 分子的受体细胞 否则, 如果将转化后的菌液涂在无选择性抗生素 的培养基平板上, 的培养基平板上,会出现成千上万的细菌 菌落,将难以确认哪一个克隆含有转化的 菌落, 质粒。 质粒。虽然只有那些含有被转化质粒的细 菌才能在含有抗生素的平板上生长和繁殖, 菌才能在含有抗生素的平板上生长和繁殖, 但对于连接混合物而言, 但对于连接混合物而言,此时并不能确定 哪个克隆含有插入片段。 哪个克隆含有插入片段。
பைடு நூலகம்
重组DNA转化细菌过 重组DNA转化细菌过 DNA 程示意图
3.仪器、材料和试剂 .仪器、
无菌超净台,电热恒温水浴,分光光度计, 无菌超净台,电热恒温水浴,分光光度计,离心 移液器,微型离心管等; 机,移液器,微型离心管等; 菌株: DH5 菌株:E.coli DH5α 质粒: 质粒:pBluscript KS+DNA 片段的重组质粒以 空质粒; 及pBluscript KS 空质粒; LB培养基;含抗菌素的LB平板培养基 LB培养基;含抗菌素的LB平板培养基(氨苄青霉 培养基 LB平板培养基( 浓度50 100µg mL, 5020- 48µg/ml, 素 , 浓度 50 - 100 g / mL , X - gal 20 - 48 g/ml, g/ml。 IPTG 100 µg/ml。一般将抗生素、X-gal和IPTG g/ml 一般将抗生素、 gal和 配制成1000 储备液, 1000× 配制成 1000 × 储备液 , 用时按培养基的量再加 入); 预冷CaCl 溶液( mol/ 预冷CaCl2溶液(0.1mol/L)
转入2ml离心管 ( 2)每组取培养液 个 2ml转入 ) 每组取培养液3个 转入 离心管 在冰上冷却20-30min, 于 4℃ , 4000r 中 , 在冰上冷却 , ℃ 离心10min(从这一步开始 , 所有操 / min离心 离心 ( 从这一步开始, 作均在冰上进行,速度尽量快而稳) 作均在冰上进行,速度尽量快而稳); (3)倒净上清培养液,用1ml冰冷的 0.1mo1/L CaCl2溶液轻轻悬浮细胞,冰浴; 溶液轻轻悬浮细胞,冰浴; / 离心10min; (4)0~4℃,4000r/min离心 ) ~ ℃ / 离心 ; (5)弃去上清液,加入500µl冰冷的 0.1mo1/ L CaCl2溶液 , 小心悬浮细胞 。 溶液, / 溶液 小心悬浮细胞。 0~4℃,4000r/min离心 离心10min; ~ ℃ / 离心 ;
2)细胞转化 )
(1) 分别取3个100µl感受态细胞悬液 如是冷 分别取 个 感受态细胞悬液(如是冷 感受态细胞悬液 冻保存液, 冻保存液,则需化冻后马上进行下面的操 重组质粒DNA(体 作),第一组,加入 µl重组质粒 ,第一组,加入10 重组质粒 体 积不超过10µl)+ 100µl感受态细胞,此管为 感受态细胞, 积不超过 感受态细胞 转化实验组。第二组,插入DNA片段对照 转化实验组。第二组,插入 片段对照 组,即酶切后DNA片段 即酶切后 片段25ng+100µl感受态 感受态 片段 细胞悬液;第三组,质粒DNA对照组,即 对照组, 细胞悬液;第三组,质粒 对照组 1ng 未酶切 未酶切pBluescript 质粒 质粒DNA十100µl感 十 感 受态细胞悬液。 受态细胞悬液。
(2) 菌液完全被培养基吸收后,倒置培养皿, 菌液完全被培养基吸收后,倒置培养皿, 小时), 于37℃恒温培养箱内培养过夜 ℃恒温培养箱内培养过夜(12-16小时 , 小时 待菌落生长良好而又未互相重叠时停止培养, 待菌落生长良好而又未互相重叠时停止培养, 对于可以蓝白斑筛选的质粒和菌株来说, 对于可以蓝白斑筛选的质粒和菌株来说,此 时应该能清楚地看到蓝色和白色菌落。 时应该能清楚地看到蓝色和白色菌落。 法制备的感受态细胞, 用 CaCl2法制备的感受态细胞,可使每微克 产生5× 超螺旋质粒 DNA产生 ×106-2×107个转化菌 产生 × 在实际工作中,每微克有10 落。在实际工作中,每微克有 5以上的转 化菌落足以满足一般的克隆实验。 化菌落足以满足一般的克隆实验。
2. 相关知识及原理
感受态细胞(Competent cells): 感受态细胞 受体细胞经过一些特殊方法( 受体细胞经过一些特殊方法(如:CaCl, , RuCl等化学试剂法)的处理后,细胞膜的 等化学试剂法) 等化学试剂法 的处理后, 通透性发生变化 , 成为能容许多有外源 DNA的载体分子通过的感受态细胞 (competent cell) 。