植物组织含水量的测定
实验 植物组织中自由水和束缚水含量的测定
实验1 植物组织中自由水和束缚水含量的测定
植物组织中的水分以自由水和束缚水两种不同的状态存在。自由水与束缚水含量的高低与植物的生长及抗性有密切关系。自由水／束缚水比值高时，植物组织或器官的代谢活动旺盛，生长也较快，抗逆性较弱；反之，则生长较缓慢，但抗性较强。因此，自由水和束缚水的相对含量可以作为植物组织代谢活动及抗逆性强弱的重要指标。
一、实验目的
1、了解和掌握自由水和束缚水测定的原理和意义及测定的方法
2、熟悉阿贝折射仪的使用
二、原理:
自由水未被细胞原生质胶体颗粒吸附而可以自由移动、蒸发和结冰，也可以作为溶剂。束缚水则被细胞原生质胶体颗粒吸附而不易移动，因而不易被夺取，也不能作为溶剂。基于上述特点以及水分依据水势差而移动的原理，将植物组织浸入高浓度（低水势）的糖溶液中一定时间后，自由水可全部扩散到糖液中，组织中便留下束缚水。自由水扩散到糖液后（相当于增加了溶液中溶剂）便增加了糖液的重量，同时降低了糖液的浓度。测定此降低了的糖液的浓度，再根据原先已知的高浓度糖液的浓度及重量，可求出浓度降低了的糖液的重量。用浓度降低了的糖液的重量减去原来高浓度糖液的重量即为植物组织中的自由水的量（即扩散到高浓度糖液中的水的量）。最后，用同样的植物组织的总含水量减去此自由水的含量即是植物组织中束缚水的含量。
三、材料、仪器设备及试剂
1、材料：新鲜的植物叶片
2、仪器设备：1.阿贝折射仪；2.分析天平或电子顶载天平（感量0.1mg）；3.烘箱；4.干燥器；5.称量瓶；
6.打孔器（面积0.5cm2左右）；
7.烧杯；
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告
引言：
植物的水势是指植物体内水分与纯水之间的差异，是植物水分状态的重要指标
之一。测定植物组织水势可以帮助我们了解植物的水分吸收与运输情况，进而
探索植物的适应机制和生理生态学特征。本实验旨在通过测定植物组织水势的
方法，探究植物水分状态的变化以及影响因素。
材料与方法：
1. 实验材料：鲜嫩的植物叶片、离心管、注射器、测水势仪器（如压力室或压
力台秤）等。
2. 实验步骤：
a. 收集鲜嫩的植物叶片，并将其快速放入离心管中，避免水分流失。
b. 将离心管中的叶片放入注射器中，并用注射器吸取一定量的水分，使叶片
完全浸没在水中。
c. 将注射器与测水势仪器连接，并记录初始读数。
d. 通过改变注射器的压力，使水分进入或退出植物叶片，记录每次读数。
e. 根据测得的数据，计算植物组织的水势值。
结果与讨论：
通过实验测定，我们获得了植物组织的水势值。根据实验结果，我们可以得出
以下结论和讨论。
1. 植物组织水势的变化：
在实验过程中，我们发现随着水分进入植物叶片，测水势仪器的读数逐渐增加，
表示植物组织的水势值降低。相反，当水分从植物叶片流失时，测水势仪器的
读数减少，表示植物组织的水势值增加。这说明植物组织的水势与水分的流动
方向密切相关。
2. 影响植物组织水势的因素：
植物组织的水势受多种因素的影响，包括温度、湿度、光照强度、气孔开闭等。在实验中，我们可以通过改变这些因素来观察植物组织水势的变化情况。例如，当提高环境温度时，植物组织的水势值通常会下降，因为高温会增加水分的蒸
植物水分等测定
植物水分、干物质和粗灰分的测定
植物水分、干物质和粗灰分的测定
植物水分和干物质的测定
植物体由水和干物质两部分组成。含水量多少是反映植物生理状态和成熟度的一个指标，含水量过高，植株易徒长倒伏；而过低又易调萎。植物需要有适宜的含水量才能生长健壮。在研究土壤、施肥、栽培和气候等因子对植物生长发育影响和光合利用率等问题时，一般要测定植株的水分和干物质积累状况。新鲜植物体一般含水量为70～95％，叶片含水量较高，又以幼叶为最高；茎秆含水量较少，种子含水量更少，一般为5～15％。新鲜植物体除去水分的剩余部分即为于物质，它包括有机质和矿物质两部分。其中有机质占植物干物质的90～95％，矿物质为5～10％。
水分含量测定也是农作物产品的品质检定和判断其是否适于贮藏的
重要标准。在植物成分分析中，都是以全干样品为基础来计算各成分的质量百分含量。因为新鲜样品的含水量变化很大，风干样品的含水量也会受环境湿度和温度的影响而变动，只有用全干样作计算（干基），各成分含量的数值才比较稳定。
水分的测定方法
测定植物水分的方法很多，应根据植物样品成分的性质、对分析精度的要求和实验室设备条件等情况适当选择。常用的方法有常压恒温干燥法、减压干燥法和蒸馏法，其中用得最多的常压恒温干燥法准确度较高，适用于不含易热解和易挥发成分的样品，被认为是测定水分的
标准方法；但对于幼嫩植物组织和含糖、干性油或挥发性油的样品则不适用。减压干燥法，运用于含易热解成分的样品；但含有挥发性油的样品也不适用，蒸馏法，适用于含有挥发油和干性油的样品，更适用于含水较多的样品，如水果和蔬菜等。其他如红外干燥法、冷冻干燥法、微波衰减法、中子法、卡尔·费休法等都要有特定仪器设备，不易推广使用。
植物生理学实验
实验名称：植物含水量的测定
实验目的：掌握测定植物组织的含水量的方法
实验原理：利用水遇热蒸发为水蒸汽的原理，可用加热烘干法来测定植物组织中的含水量。植物组织含水量的表示方法，常以鲜重或干重 % 表示，有时也以相对含水量 % （或称饱和含水量 % ）表示。后者更能表明它的生理意义。
实验材料与设备：
（一）材料：植物鲜组织。
（二）仪器设备：天平（感量1/1000g）；烘箱；干燥器；剪刀；搪瓷盘；塑料袋；纸袋；吸水纸等。
实验步骤：
⒈鲜重测定迅速剪取植物材料，装入已知重量的容器（或塑料袋）中，带入室内，用分析天平称取鲜重（FW）。
⒉干重测定提前把烘箱打开，温度升至100~105℃。把称过鲜重的植物材料装入纸袋中，放入烘箱内，100~105℃杀青10min，然后把烘箱的温度降到70~80℃左右，烘至恒重。取出纸袋和材料，放入干燥器中冷却至室温，称干重（DW）。
⒊饱和鲜重测定将称过鲜重的植物材料浸入水中，数小时后取出，用吸水纸吸干表面水分，立即称重；再次将材料放入水中浸泡一段时间后，再次取出，吸干表面水分，称鲜重，直到两次称重的结果基本相等，最后的结果即为饱和鲜重（SFW）。若事先已知达到水分饱和所用的时间，则可一次取得饱和鲜重的测量定值。
⒋取得以上数据后，按公式计算组织含水量、相对含水量。
思考题：
测定饱和含水量时，植物材料在水中浸泡时间过短或过长会出现什么问题？
实验名称：植物组织水势的测定（小液流法）
实验目的：学会用小液流法测定植物组织的水势
实验原理：将植物组织分别放在一系列浓度递增的溶液中，当找到某一浓度的溶液与植物组织之间水分保持动态平衡时，则可认为此植物组织的水势等于该溶液的水势。因溶液的浓度是已知的，可以根据公式算出其渗透压，取其负值，为溶液的渗透势（ψπ），即代表植物的水势（ψw）。
植物生理指标测定方法
植物生理指标测定方法
本文介绍了植物生理指标的测定方法，包括叶片持水率、植物暂时萎蔫率、叶片相对含水量、相对电导率和可溶性糖的测定。
首先介绍叶片持水率的测定方法。选择植株上部枝条健康完整的定型叶，摘取后混均匀分成三份即时称量鲜重，然后置入40℃恒温烘箱中烘40 min，取出称重，再置入85℃烘箱中
恒温烘至恒重。失水率的大小可以反映叶片持水能力的高低，计算公式为失水率=[（鲜重－40℃烘40 min重）÷（鲜重－85℃烘至恒重）]×100%。
其次介绍植物暂时萎蔫率的测定方法。观察植株叶片萎蔫下垂、翌日晨不能恢复正常者，即取盆中土壤测定。将植株连土团倒出，用小刮铲从根的周围取土，剔除杂物后称重，带回室内置于105℃烘箱内烘至恒重。每种植物每次测试一盆，按
公式计算暂时萎蔫率：暂时萎蔫率=[（土壤湿重－土壤干重）÷土壤干重]×100%。
接下来介绍叶片相对含水量的测定方法。取各植株相同部位叶片，测定叶片的鲜重M1，然后将叶片浸入蒸馏水中使其
吸水达到饱和状态，再取出擦干叶片至表面无水分残留，称重得到叶片的饱和鲜重M2，最后将叶片放进烘箱，105℃杀青
半小时，再于85℃环境下烘至恒重，得到叶片干重M3.按公
式计算叶片相对含水量。
然后介绍相对电导率的测定方法。取各植株相同部位叶片，用蒸馏水拭净叶片表面和背面，去除叶片中脉，剩下部分剪成大小为5mm×5mm的叶片。取0.20g各3份放入锥形瓶中并加
入30ml蒸馏水，放于真空干燥器中，用真空泵抽气10min，
以抽出细胞间隙空气。缓慢放入空气，水即渗入细胞间隙，叶片变成透明状，细胞内溶质易于渗出。取出锥形瓶，在室温下保持30min后用电导仪测定电导率L1，然后将加塞锥形瓶转
本科课件-植物生理学实验(完整)
势(ψw)。
7
二、材料、设备与试剂
（一 ）实验材料 油菜
实验01-1 植物组织中自由水和束缚水 含量的测定
一、实验原理 将植物组织浸入高浓度（低水势）蔗糖溶 液中并达到平衡后，自由水可全部扩散到外部 糖液中，导致外部糖液的质量增加，同时浓度 降低。用浓度降低了的糖液的质量减去原来高 浓度糖液的质量即得到来自植物组织中的自由
水的质量。 以植物组织的总含水量减去自由水含量，
硫酸，其他 操作相同。
加入1mol/L硫酸2ml
取出根吸 干水分
与3～4ml乙酸乙酯在研钵 内磨碎
查标准曲线， TTC还原量(mg)
空白试验作参比测 红色提取液移入试管且 485nm下吸光度 用乙酸乙酯定容到10ml
五、实验结果
TTC还原能力 （mg/g(根鲜重)/h）
＝
四氮唑还原量（mg） [根重（g）×时间(h)]
• 以植物叶片为材料时利用减压渗入法排除细胞间隙空气， 充以水分，可使叶片沉于水中；
• 光合作用放出氧气，O2在水中溶解度很小，而在细胞间和 叶表面积累，结果使原来下沉的叶片上浮，根据上浮时间 长短即能比较光合作用强弱。
植物生理学实验
植物生理学实验
课程名称：植物生理学
实验名称：植物组织含水量的测定（一）
实验属性：基本实验
计划时数：3学时
教学目标与基本要求：
1．掌握植物组织自然含水量和相对含水量的测定方法
2．能够利用所学测定方法测定同一植物在不同生态环境下的自然含水量和相对含水量。
实验内容或指导思想：
1．自然含水量：⑴求称量瓶重量；⑵求称量瓶与植物样品总重量；⑶将材料烘至恒重；⑷结果计算。
2．相对含水量：⑴同1方法先求材料鲜重；⑵求饱和鲜重；⑶求组织干重；
⑷结果计算。
实验教材及参考书：
1．张志良，1997。植物生理学实验指导，高等教育出版社。
2．A.И.耶尔马科夫等著，吴相钰译：1956。植物生物化学研究法，科学出版社。
实验名称：植物组织渗透势的测定（二）
实验属性：基本实验
计划时数：3学时
教学目标与基本要求：
1．学习以质壁分离法测定植物组织渗透势的方法。
2．以所学方法测定不同植物材料的组织渗透势。
实验内容或指导思想：
1.配制梯度浓度蔗糖溶液；
2.撕取植物材料表皮，浸入不同溶液5—10分钟；
3. 显微镜观察确定引起半数以上细胞发生初始质壁分离的浓度和不引起质壁分离的最高浓度；④计算。
实验教材及参考书：
1．张志良，1997。植物生理学实验指导，高等教育出版社。
2．F.H.魏海姆等，中国科学院植物研究所生理生化研究室译：1974。植物生理学实验，科学出版社。
实验名称：植物组织水势的测定（三）
实验属性：基本实验
计划时数：3学时
教学目标与基本要求：
1．学习以小液流法测定植物组织水势的方法；
2．运用所学方法测定不同生态环境下植物组织的水势。
植物组织含水量的测定
实验 2 植物组织含水量的测定
一、原理
植物组织的含水量是反映植物组织水分生理状况的重要指标，如水果、蔬菜含水量的多少对其
品质有影响，种子含水状况对安全贮藏更有重要意义。利用水遇热蒸发为水蒸汽的原理，可用
加热烘干法来测定植物组织中的含水量。植物组织含水量的表示方法，常以鲜重或干重 % 表
示，有时也以相对含水量 % （或称饱和含水量 % ）表示。后者更能表明它的生理意义。
二、实验材料与仪器设备
（一）实验材料
植物鲜组织。
（二）仪器设备
分析天平，剪刀，烘箱，铝盒，干燥器，吸水纸，坩埚钳。
三、实验步骤
l. 自然含水量的测定
（ 1 ）铝盒的恒重将洗净的两个铝盒编号，放在 105 ℃恒温烘箱中，烘 2 小时左右，用坩
锅钳取出放入干燥器中冷却至室温后，在分析天平上称重，再于烘箱中烘 2 小时，同样于干
燥器中冷却称重，如此重复 2 次（ 2 次称重的误差不得超过 0.002g ），求得平均值 W 1 ，
将铝盒放入干燥器中待用。
（ 2 ）将待测植物材料（如叶子等）从植株上取下后迅速剪成小块，装入已知重量的铝盒中
盖好，在分析天平上准确称取重量，得铝盒与鲜样品总量为 W 2 ，然后于 105 ℃烘箱中干燥
4 ～ 6 小时（注意要打开铝盒盖子）。取出铝盒，待其温度降至 60 ～ 70 ℃后用坩锅钳将
铝盒盖子盖上，放在干燥器中冷却至室温，再用分析天平称重，然后再放到烘箱中烘 2 小时，
在干燥器中冷却至室温，再称重，这样重复几次，直至恒重为止。称得重量是铝盒与干样品总
重量 W 3 。烘时注意防止植物材料焦化。如系幼嫩组织可先用 100 ～ 105 ℃杀死组织后，
自由水和束缚水测定
植物组织中自由水和束缚水含量的测定
植物组织中的水分以自由水和束缚水两种不同的状态存在。自由水与束缚水含量的高低与植物的生长及抗性有密切关系。自由水／束缚水比值高时，植物组织或器官的代谢活动旺盛，生长也较快，抗逆性较弱；反之，则生长较缓慢，但抗性较强。因此，自由水和束缚水的相对含量可以作为植物组织代谢活动及抗逆性强弱的重要指标。
一、原理
自由水未被细胞原生质胶体颗粒吸附而可以自由移动、蒸发和结冰，也可以作为溶剂。束缚水则被细胞原生质胶体颗粒吸附而不易移动，因而不易被夺取，也不能作为溶剂。基于上述特点以及水分依据水势差而移动的原理，将植物组织浸入高浓度（低水势）的糖溶液中一定时间后，自由水可全部扩散到糖液中，组织中便留下束缚水。自由水扩散到糖液后（相当于增加了溶液中溶剂）便增加了糖液的重量，同时降低了糖液的浓度。测定此降低了的糖液的浓度，再根据原先已知的高浓度糖液的浓度及重量，可求出浓度降低了的糖液的重量。用浓度降低了的糖液的重量减去原来高浓度糖液的重量，即为植物组织中的自由水的重量（即扩散到高浓度糖液中的水的重量）。最后，用同样的植物组织的总含水量减去此自由水的含量即是植物组织中束缚水的含量。
二、试剂与仪器设备
（一）材料
白菜叶片
（二）试剂
重量百分浓度为60 ％～65 ％的蔗糖溶液：用托盘天平称取蔗糖60 ～65 g ，置于烧杯中，加蒸馏水40 ～35 g ，使溶液总重量为100 g ，溶解后备用。
（三）仪器设备
测糖仪，分析天平或电子天平（感量0.1 mg ），注射器，打孔器（直径0.5 cm 2 左右），烧杯（200ml），量筒。
植物相对含水量的测定
（12-
相对含水量和水分饱和亏可作为比较植物保水能力及推算需水程度的指标。 当植物组织含水量降低到产生不可恢复的永久性伤害时的水分饱和亏，称为
剩下的不挥发的 称为灰分（各种金属 不同化合物的组合）
植物组织含水量的表示方法，常以鲜重或干重来表示。 而在植物抗性生理研究中植物组织的含水量常用相对含水量(或称饱
和含水量)表示，该指标更能表明植物的水平状况的生理意义。
植物含水量的测定
1、将新采的植物叶片， 迅速剪成小块，
称取2 份 1 g （Wf） 2个重复
一、原理
表示组织含水量的方法有两种：一是以干重为基数表示；二是以鲜重为基数 表示。从而分为干重法和鲜重法：
组织含水量（占鲜重%）=(Wf－Wd) / Wf×100
（12-1）
组织含水量（占干重%）=(Wf－Wd) / Wd×100
（12-2）
式中Wf：组织鲜重；Wd：组织干重。
植物组织相对含水量（RWC）指组织含水量占饱和含水量百分数：
水分与植物的生命活动
植物的含水量 植物种类 生长环境 器官、组织的差异
构成植物 体的元素
水分 （10-95%）
干物质 （5－90%）
有机Βιβλιοθήκη Baidu （90%）
无机物 （10%）
矿质元素？
C、H、O CO2 + H2O
植物体
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势的测定实验报告
植物组织水势是指植物细胞内的水分势，它是维持植物细胞正常生理活动的重
要因素。本实验旨在通过测定植物组织水势的变化，探究植物在不同环境条件下的水分调节机制。实验中我们选择了甜菜和马铃薯作为实验材料，通过测定它们在不同浓度蔗糖溶液中的质量变化，来间接推断植物组织的水势变化。以下是实验的具体过程和结果。
首先，我们准备了不同浓度的蔗糖溶液，分别为0.2M、0.4M、0.6M、0.8M和1.0M。然后，将甜菜和马铃薯均匀切成小块，分别放入不同浓度的蔗糖溶液中浸
泡一段时间。浸泡结束后，取出植物组织，用纸巾将其表面水分吸干，然后称量其质量并记录下来。
实验结果显示，随着蔗糖溶液浓度的增加，甜菜和马铃薯的质量均呈现出不同
程度的减少。这表明植物组织在高浓度蔗糖溶液中失去了水分，导致质量减少。而在低浓度蔗糖溶液中，植物组织的质量减少较少，甚至有些情况下质量还有所增加。这说明低浓度蔗糖溶液中的水势比植物组织的水势高，因此水分会从溶液中渗入植物组织，导致质量增加。
通过对实验结果的分析，我们可以得出以下结论，植物组织的水势受到周围环
境的影响，当外部环境的水势高于植物组织的水势时，水分会从外部环境渗入植物组织；反之，当外部环境的水势低于植物组织的水势时，水分会从植物组织流向外部环境。这种水分调节机制有助于植物在不同环境条件下维持细胞内稳定的水分平衡，保证正常的生长和代谢活动。
综上所述，本实验通过测定植物组织在不同浓度蔗糖溶液中的质量变化，间接
测定了植物组织的水势变化，并探究了植物的水分调节机制。通过本实验的学习，我们更深入地理解了植物细胞内水分调节的重要性，也为今后进一步研究植物生长发育提供了一定的参考和指导。
植物组织含水量的测定实验
植物组织含水量的测定实验
植物组织含水量是衡量植物健康状况和生理活性的重要指标之一。通过准确测定植物组织的含水量，可以了解植物对水分的吸收和利用能力，进一步研究植物的生长发育和胁迫适应机制。本文将介绍一种常用的测定植物组织含水量的实验方法。
实验材料和设备：
1. 植物样品：可以选择不同的植物组织部位，如叶片、茎、根等；
2. 称量器：精确称量植物样品的质量；
3. 烘箱：用于干燥植物样品；
4. 干燥皿：用于放置干燥后的植物样品；
5. 试管：用于装载植物样品；
6. 烧杯：用于称量和混合试剂；
7. 纱布：用于过滤试剂；
8. 隔水浴：用于加热试管。
实验步骤：
1. 准备工作：
a. 清洗和消毒所有实验器具，避免干扰实验结果。
b. 预热烘箱至恒温状态，通常设置为70℃。
c. 取适量的植物样品，尽量保持新鲜度，避免样品的水分损失。
2. 称量植物样品的质量：
a. 使用称量器，将干净的容器称重，记录容器的质量。
b. 将预先准备好的植物样品放入容器中，并再次称重，记录植物样品和容器的总质量。
3. 干燥植物样品：
a. 将称量好的植物样品放入烘箱中，保持一定的时间（通常为24小时）。
b. 取出烘干后的植物样品，放置于干燥皿中，待其冷却至室温。
4. 计算植物组织的含水量：
a. 将干燥后的植物样品放入试管中，并记录试管的质量。
b. 加入一定体积的去离子水，使植物样品完全浸泡。
c. 将试管放入隔水浴中，加热至沸腾，保持一定时间（通常为1小时）。
d. 将试管取出，冷却至室温。
e. 使用称量器，将装有试管中植物样品和水的总质量进行测量。
植物生理学实验方法指南
植物生理学实验方法指南
实验01 植物组织中自由水和束缚水含量的测定
植物组织中的水分以自由水和束缚水两种不同的状态存在。自由水与束缚水含量的高低与植物的生长及抗性有密切关系。自由水／束缚水比值高时，植物组织或器官的代谢活动旺盛，生长也较快，抗逆性较弱；反之，则生长较缓慢，但抗性较强。因此，自由水和束缚水的相对含量可以作为植物组织代谢活动及抗逆性强弱的重要指标。
一、原理:
自由水未被细胞原生质胶体颗粒吸附而可以自由移动、蒸发和结冰，也可以作为溶剂。束缚水则被细胞原生质胶体颗粒吸附而不易移动，因而不易被夺取，也不能作为溶剂。基于上述特点以及水分依据水势差而移动的原理，将植物组织浸入高浓度（低水势）的糖溶液中一定时间后，自由水可全部扩散到糖液中，组织中便留下束缚水。自由水扩散到糖液后（相当于增加了溶液中溶剂）便增加了糖液的重量，同时降低了糖液的浓度。测定此降低了的糖液的浓度，再根据原先已知的高浓度糖液的浓度及重量，可求出浓度降低了的糖液的重量。用浓度降低了的糖液的重量减去原来高浓度糖液的重量即为植物组织中的自由水的量（即扩散到高浓度糖液中的水的量）。最后，用同样的植物组织的总含水量减去此自由水的含量即是植物组织中束缚水的含量。
二、材料、仪器设备及试剂
（一）材料：小白菜、棉花叶片。
（二）仪器设备：1.阿贝折射仪；2.分析天平或电子顶载天平（感量0.1mg）；3.烘箱；4.干燥器；
5.称量瓶；
6.打孔器（面积0.5cm2左右）；
7.烧杯；
8.瓷盘；
9.托盘天平（1/100g）；10.量筒。（三）试剂：重量百分浓度为60％～65％的蔗糖溶液：用托盘天平称取蔗糖60～65g，置烧杯中，加蒸馏水40～35g，使溶液总重量为100g，溶解后备用。
植物生理学实验
二、方法 I． TTC 法
（一）原理 凡有生命活力的种子胚部在呼吸作用过程中都有氧化还原反应。当TTC渗入种子胚
的活细胞内，并作为受氢体被脱氧氢辅酶（NADH2或NADPH2）上的氢还原时，变由无色 的氯化三苯四氮唑（TTC）变为红色的三苯基甲（TTF）。 TTC（无色）+2H—→TTF（红色）+HCl （二）材料、仪器和药品
二、实验材料：仪器和试剂
（4） 材料：蚕豆叶 （5） 仪器：显微镜、温箱、培养皿等 （6） 试剂：0.5%KNO3、0.5NaNO3、蒸馏水 三、实验步骤：
a) 取 3 个培养皿编号，分别放入 15ml0.5%KNO3、0.5NaNO3、蒸馏水。 b) 撕蚕豆叶下表皮分别放入 3 个培养皿。 c) 将 3 个培养皿放入 25 温箱，保温 0.5 小时。 d) 取出培养皿置于人工光照条件下，照光 0.5 小时。 e) 在显微镜下观察气孔的开度。 四、数据记录及处理
W1=
W2=
II 萎蔫青菜
W1’=
W2’=
五、 结果分析与讨论：
铝盒+样品干重（g） W3 = W3’=
（Ⅱ）植物组织水势的测定：小液流法
一、原理：水总是水势高处流向低处，水进入植物体并分布到各个组织器官中，是由水势差 决定的，水势越高，吸水能力越差。当植物组织放在外界溶液中，如植物组织的水势小于溶 液的渗透势，组织吸水，外界溶液变浓，比重变大；如植物组织水势大于溶液的渗透势，则 反之；如二者相等，则外界溶液的比重不变。
植物组织含水量的测定
实验 2 植物组织含水量的测定
、原理植物组织的含水量是反映植物组织水分生理状况的重要指标，如水果、蔬菜含水量的多少对其品质有影响，种子含水状况对安全贮藏更有重要意义。利用水遇热蒸发为水蒸汽的原理，可用加热烘干法来测定植物组织中的含水量。植物组织含水量的表示方法，常以鲜重或干重% 表示，有时也以相对含水量% （或称饱和含水量% ）表示。后者更能表明它的生理意义。
二、实验材料与仪器设备
（一）实验材料
植物鲜组织。
（二）仪器设备分析天平，剪刀，烘箱，铝盒，干燥器，吸水纸，坩埚钳。
三、实验步骤
l. 自然含水量的测定
（ 1 ）铝盒的恒重将洗净的两个铝盒编号，放在105 ℃恒温烘箱中，烘 2 小时左右，用坩锅钳取出放入干燥器中冷却至室温后，在分析天平上称重，再于烘箱中烘 2 小时，同样于干燥器中冷却称重，如此重复 2 次（ 2 次称重的误差不得超过0.002g ），求得平均值W 1 ，将铝盒放入干燥器中待用。
（ 2 ）将待测植物材料（如叶子等）从植株上取下后迅速剪成小块，装入已知重量的铝盒中盖好，在分析天平上准确称取重量，得铝盒与鲜样品总量为W 2 ，然后于105 ℃烘箱中干燥
4 ～ 6 小时（注意要打开铝盒盖子）。取出铝盒，待其温度降至60 ～70 ℃后用坩锅钳将铝盒盖子盖上，放在干燥器中冷却至室温，再用分析天平称重，然后再放到烘箱中烘 2 小时，在干燥器中冷却至室温，再称重，这样重复几次，直至恒重为止。称得重量是铝盒与干样品总重量W 3 。烘时注意防止植物材料焦化。如系幼嫩组织可先用100 ～10
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定
植物组织水势的测定是通过测量植物组织中的水分势来进行的。水势是指水分在植物组织内的自由能，它是影响水向植物体内运动的重要驱动力。植物通过根系吸收土壤中的水分，并将其输送到其他组织的细胞中。测定植物组织水势可以帮助我们更好地理解植物水分运输的机理。
测定植物组织水势的方法有多种，下面将介绍几种常用的方法：
1. 切片法测定：这是一种常用的方法，它可以直接观察到组织中的水势变化。首先，将植物的组织切成薄片，然后将切片放置在一块干燥的滤纸上。滤纸会吸收切片中的水分，导致切片的水势下降。通过观察切片的变化，可以推断出组织中的水势大小。
2. 压蔗液法测定：这是一种基于液体能量传导的方法。将植物组织放置在一定浓度的糖液中，组织中的水分会向糖液中移动。根据糖液中的含水量、组织中的水势以及温度等参数，可以计算出组织的水势大小。
3. 压溶液法测定：这是一种通过测量细胞内液体的渗透压来计算水势的方法。将植物组织放置在一定浓度的溶液中，等待一段时间后，根据细胞内液体的渗透压和环境中液体的渗透压，可以计算出组织的水势大小。
4. 马尼托巴法测定：这是一种利用测定导电率和浓度来计算水势的方法。通过测量植物组织中的电导率和离子浓度，可以推
算出组织的水势大小。
需要注意的是，以上方法只是测定植物组织水势的一些常用方法，实际操作中还可以根据具体情况进行调整和改进。此外，由于植物组织中水分的运动是一个复杂的过程，测量结果可能会受到一些因素的影响。因此，在进行测定时，需要进行精确的实验设计和数据分析，以确保结果的准确性和可靠性。
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%
100Wf d -f ⨯鲜重干重鲜重W W %
100d d -f ⨯W W W 干重干重鲜重植物组织含水量的测定
【实验目的】
1.了解含水量的表示方法；
2.了解绝对含水量和相对含水量的区别
3.掌握植物组织鲜重干重的测量方法 【实验原理】
植物组织的含水量是反映植物组织水分生理状况的重要指标,其直接影响植物的生长、气孔状况，光合功能及作物产量。在环境胁迫情况下，植物组织的含水量也是反映植物受胁迫程度的重要指标之一。水分含量测定也是农作物产品的品质检定和判断其是否适于贮藏的重要标准。所以，植物组织含水量的测定在植物生理学研究及农业生产中具有重要的理论和实践意义。
植物组织含水量的表示方法常以鲜重、干重、相对含水量(或称饱和含水量)来表示。 其中相对含水量可作为比较植物保水能力及推算需水程度的指标。
分别测量植物组织的鲜重Wf ，干重Wd ，饱和鲜重Wt ，依据以下公式可以分别算出植物组织的鲜重含水量，干重含水量，以及相对含水量。
鲜重含水量=
干重含水量=
相对含水量=%
100Wf -Wt d
-f ⨯鲜重饱和鲜重干重鲜重W W
【实验材料】 蜀葵花瓣 【实验步骤】
1.将新采的蜀葵花瓣，称取6 份 0.5 g （Wf ） ，迅速剪成小块。
2.3份分别于120℃烘箱中烘考1~1.5 h ，然后称此时的干重（Wd ）。
3.3份分别放入蒸馏水中浸泡70 min ，当达到恒重时称此时的重量（Wt ）
利用所得到的数据：Wf ，Wd ，Wt 分别计算出鲜重含水量，干重含水量，相对含水量 注意事项:
1.测量干重时，先测出称量瓶的重量W ，在测出称量瓶与花瓣重量的总和Wf 与Wd 。放入瓶中以后，花瓣不再取出。烘烤一个小时后取出冷却至室温，称量，再放入烘箱中烘烤10分钟，取出冷却至室温，再次称量。重复以上步骤，直至总重量恒重。
2.放入蒸馏水浸泡的花瓣，可以用吸水纸将其覆盖在水中。另取两片花瓣同样的方式浸泡在水中。70min 后称量两片对照物花瓣，其恒重可作为实验材料也恒重的标志。 【实验结果】
蜀葵花瓣的含水量测定数据记录如下：
%100d
d
-f ⨯W W W 干重干重鲜重%
100Wf
d
-f ⨯鲜重干重鲜重W W
换算成1g 鲜重相应的饱和鲜重和干重
计算结果如下： 鲜重含水量= =86.09%
干重含水量= =618.91%
相对含水量=%
100Wf -Wt d
-f ⨯鲜重饱和鲜重干重鲜重W W =72.26%
【结果讨论】
1.在测量饱和鲜重时，由于将蜀葵的花瓣剪成了小块，再水中浸泡之后，其伤口处分泌出大量粘液，因此用吸水纸吸去材料表面残留蒸馏水时，受黏液影响很大，有的粘液会被吸附，有的则残留在伤口处。再测质量时伤口依然在继续分泌粘液，造成很大的误差，各组实验数据差别较大。因此在测量饱和鲜重时，不需将材料剪的过小，甚至可以不剪，直接整片放入蒸馏水中，所测结果可能更准确。
2.实验材料——蜀葵的习性：蜀葵喜阳光充足，耐半阴，但忌涝。耐盐碱能力强，在含盐0.6%的土壤中仍能生长。耐寒冷，在华北地区可以安全露地越冬。在疏松肥沃，排水良好，富含有机质的沙质土壤中生长良好。其中温度，土壤盐碱性都会对蜀葵的组织含水量产生影响。温度升高高会使植物蒸腾作用升高，含水量降低；土壤盐碱性增强可能导致根部细胞失水，造成含水量降低。
3.通过各组实验数据的比较，可以总结出影响植物组织含水量的因素。
（1）同种植物不同组织
本次实验中，分别测量了月季的花瓣与叶片的含水量，叶片的平均饱和含水量为
74.52%，花瓣的平均饱和含水量为88.49%,可以看出，对于月季而言，花的含水量大于叶片的含水量。但两者相差并不显著。
一般而言，同一植物的不同组织中，根尖，茎尖，叶片的含水量与种子的含水量相差较大。前者含水量大于后者。对于地上部分，可以分析，由于一般植物的茎中存在导管，运送水分和无机盐的主要器官，因此茎中的含水量应该较高。植物的根部是吸收水分的主要位置，因此含水量应该也较高。因为水分与植物代谢密切相关，因而一般代谢旺盛的部位含水量会较高。例如进行光合作用的场所（叶片，茎).由于本实验并没有选取除叶片和花瓣以外的植物组织材料，因此无法对其验证。
(2)同一植物组织在不同的时间段。
本次试验中，分别在早上，下午，晚上对月季花瓣，月季叶片，桃叶进行含水量的测定。桃叶上午和晚上的含水量分别为75.26%与66.05%月季叶片上午和下午的含水量分别为：59.89%与81.84%，月季花瓣下午和晚上的含水量分别为92.85%与80.32%.所得数据并不出自同一材料，且没有能够同时比较上午，下午，晚上含水量的数据。对于同一组织，白天含水量大于晚上含水量，可能是由于白天植物叶片进行光合作用，制造养料，代谢旺盛，因此含水量相对较高。
(3)植物种类及其生长环境。
本次试验中所采用的植物有：蜀葵，月季，桃，白车轴，牛膝菊，丁香。其中，蜀葵为大型草本植物，白车轴，牛膝菊为小型草本植物；月季，桃，丁香为木本植物。就叶片而言，小型草本植物的平均含水量为83.33%，木本植物的平均饱和含水量为77.65%，可以看出，草本植物含水量大于木本植物。
不同植物具有不同的适宜生长环境。本次实验材料中，小型草本植物均喜阴喜湿，而蜀葵及木本植物均喜阳耐旱，一般喜阴植物的组织含水量大于喜阳植物的组织含水量。喜阴喜湿植物由于环境中含水量高，因此组织中含水量也相应较高，喜阳耐旱植物则相反。
由于所有数据均来自不同时间的不同材料，且由不同的组员完成，各组差异较大，所得结果有较大的误差。因此对各组的数据进行比较，其结果并不具有很高的可信度，只能作为分析植物组织含水量影响因素的参考。
4.由各组测量数据可得，饱和含水量与鲜重（或干重）含水量并无必然的对应关系，即饱和含水量大的，不一定鲜重（或干重）含水量大。