实验3-蟾蜍坐骨神经干电生理实验
蟾蜍坐骨神经干
注意事项
1.破坏脑脊髓要彻底，防止蟾酥射入操作者眼 中或污染实验标本。 2.操作时避免压挤、损伤和用力牵拉标本，不 可用金属器械触碰神经干。 3.操作过程中，应给神经和肌肉滴加任氏液， 防止表面干燥，以免影响标本的兴奋性。 4.标本制成后须放在任氏液中浸泡数分钟,使 标本兴奋性稳定,再开始实验效果会较好。
实验原理（三） 神经动作电位传导速度的测定
动作电位在神经干上传导具有一定的 速度蟾蜍的坐骨神经是混合神经，由许多 粗细不等的有髓和无髓神经纤维构成，其 中以Aɑ类纤维为主，传导速度约为35— 40m/s。
神经冲动的传导速度 （v）是指动作 电位在单位时间（t）内传导的距离（s）
仪器与器械（一）
（1）引导双相神经动作电位
点击“神经干 动作电位的引 导”，引导出 一个双相动作 电位。
（2）观察和测定双相动作电位
① 自动调节刺激强度，观
察动作电位波形的变化。读 出波宽为某一数值时的阈刺 激和最大刺激。
②仔细观察双相动作电位的
波形。读出最大刺激时双相 动作电位上下相的振幅和整 个动作电位持续时间数值。
注意事项
1.制备标本时，神经干应尽可能分离长一些，上自 脊柱附近的主干，下至踝关节附近。分离过程中 勿损伤神经组织，以免影响其兴奋性。
2.将神经干搭在引导电极上时，神经干不能与标本 盒壁相接触，尽量将其拉成水平线，不要下垂或 斜向放置。
3.刺激强度在开始时不要过强，先由弱强度开始， 逐步加大强度，以免剌激伤害神经标本。
4.经常滴加任氏液，保持神经标本湿润。 5.实验完毕神经糟应仔细清洗，擦干，以免残留的
盐液. 神经干动作电位与刺激强度有何关系？ 神经干动作电位符合“全或无”定律吗 ？ 为什么?
感谢聆
实验3-蟾蜍坐骨神经干电生理实验
实验3 蟾蜍坐骨神经干电生理实验【摘要】目的运用电生理实验技术测定蛙类坐骨神经干的单相、双相动作电位和其中Ａ类纤维冲动的传导速度，并观察机械损伤、药物对神经兴奋和传导的影响。
方法采用RM6240微机生物信号处理系统，通过电生理的方法来测定蛙坐骨神经干的单相、双相动作电位的电位和时程以及其中Ａ类纤维冲动的传导速度。
并采用夹伤神经和加不同药物等处理措施，记录一定刺激强度下坐骨神经动作电位的大小变化，从而分析坐骨神经干动作电位的影响因素及机制。
结果动作电位的传导速度为31.76±3.63 m/s，阈刺激强度为0.28±0.03 V，最大刺激强度为1.21±0.36 V。
中枢端引导动作电位正相和负相振幅分别为3.15±1.87mV和 2.11±1.46mV，末梢端引导动作电位正负相振幅分别为7.04±2.01 mV和 3.89±1.46 mV，与中枢端引导时的动作电位振幅比有显著性差异（p<0.01）；夹伤神经干后，动作电位振幅为8.49±2.48 mV，时程为 1.73±0.40 ms，与末梢端引导时正相波时程比有显著性差异（p=0.002<0.01）。
引导电极间距离分别等于10mm、20mm和30mm时，动作电位正相振幅：A110为 7.07±1.87 mV，A120为 9.57±3.08 mV，A130为 9.75±3.33 mV，负相振幅：A210为 3.87±1.19 mV， A220为 5.35±2.23 mV，A230为 4.44±2.39 mV，A120、A130分别与A110比均有显著性差异（p<0.05），A220与A210比有显著性差异（p<0.05），A230与A210以及A220与A230比没有显著性差异（p>0.05）。
生理实验：实验三 蟾蜍坐骨神经-腓肠肌标本制备及骨骼肌收缩性质观察
实验材料
1、实验动物（laboratory animal) • 蟾蜍（中华蟾蜍指名亚种，Zhuoshan Toad）
2、药品(drug) • 任氏液
• 任氏液由无机盐和蒸馏水配置而成，每 升溶液含NaCl 6.5g、KCl 0.14g、CaCl2 0.12g,、NaHCO3 0.20g、NaH2PO4 0.01g。 任氏液的理化特性与蛙的组织液近似。 可用于蛙的组织、器官润湿和营养。
动作电位以局部电流的形式传导
实验原理
-动作电位传导速度的测定
刺激器
输入通道
+－
R1- Rr1+ R2- R2+
S
Δt
传导速度测定 υ= SAC
Δt
实验步骤
1、制备坐骨神经干
1
• 蟾蜍下肢背面向上置于蛙板上，剪去
尾椎；
• 标本腹面向上，用玻璃分针分离脊柱
两侧神经丛，用线在近脊柱处结扎，
剪断神经；
• 将神经干从腹面移向背面。标本背面
刺激神经使神经细胞产生兴奋兴奋延神经纤维传到通过神经肌接头的化学传递使肌肉终板膜上产生终板电位终板电位可引起肌肉产生兴奋即动作电位传遍整个肌纤维再通过兴奋收缩偶联使肌纤维中粗细肌丝产生相对滑动宏观上表现为肌肉收缩
实验三 蟾蜍坐骨神经-腓 肠肌标本制备及骨骼肌收
缩性质观察
实验目的
• 掌握制备具有正常收缩功能的蛙类坐骨神经腓肠 肌标本的基本操作技术。掌握蛙类手术器械的使 用方法，制备完好的坐骨神经-腓肠肌标本。
向上固定，从大腿至跟腱分离坐骨神 经。坐骨神经标本置任氏液中备用。
2
3
实验步骤
2、仪器连接和参数
• 神经干标本盒两对引导电极分别接微机生物信号处理系统1、 2通道。 开机，选择实验-肌肉神经-神经干兴奋传导速度测 定。仪器参数：1、2通道时间常数0.02s、滤波频率3KHz、 灵敏度5mV，采样频率：100KHz，扫描速度：0.2ms/div。 单刺激激方式，刺激幅度1.0V，刺激波宽0.1ms，延迟1ms， 同步触发。
生理实验报告!
生理实验报告!蟾蜍坐骨神经干动作电位的引导、传导速度和兴奋不应期的测定【实验目的】1. 观察蟾蜍坐骨神经动作电位的基本波形，加深理解兴奋传导的概念，理解可兴奋性在兴奋过程中的变化过程;2. 进一步掌握坐骨神经—腓神经标本的制备方法与引导动作电位的方法;3. 进一步熟悉实验室里仪器设备的操作。
【实验原理】1. 神经干动作电位是神经兴奋的客观标志。
当神经受到有效刺激时，处于兴奋部位的膜外电位负于静息部位，当动作电位通过后，兴奋处的膜外电位又恢复到静息时的水平。
神经干兴奋过程所发生的这种膜电位变化称神经复合动作单位。
如果将两个引导电极置于神经干表面时(双极引导)，动作电位将先后通过两个引导电极，可记录到两个相反的电位偏转波形，称为双向动作电位;2. 神经纤维兴奋的标志是产生一个可传播的动作电位。
测定神经干上的神经冲动的传导速度，可以了解神经的兴奋状态。
在示波器上测量动作电位传导一定距离所耗费的时间，便可计算出兴奋的传导速度;3. 神经与肌肉等可兴奋组织的兴奋性在一次兴奋过程中可发生一系列变化，及绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，组织的兴奋性才可恢复。
为了测定神经干在兴奋过程中的兴奋性变化，可用双刺激法检查刺激引起的兴奋阙值和电位变化，即可观察到神经组织兴奋性的变化过程。
【实验对象】蟾蜍【实验器材】蛙类手术器械，BL-410生物信号记录分析系统，神经屏蔽盒，任氏液(林格液)等。
【实验步骤】制备蟾蜍坐骨神经-腓神经标本，并放入神经屏蔽盒内;(一)双相动作电位1.打开BL-410?实验项目?神经肌肉实验?神经干动作电位引导?记录出双相动作电位;2.由小到大改变刺激强度，记录阈强度和最大刺激强度;3.观察双相动作电位波形，测量最适刺激强度时的潜伏期、时程和波幅; (二)引导出最大刺激强度时的动作电位波形1.BL-410仪器操作:实验项目?神经肌肉实验?神经干动作电位传导速度测定?输入两电极之间的距离分别用潜伏期法和潜峰法测量其传导速度;2.潜伏期法:测量第一个通道动作电位潜伏期的时间(t)，输入刺激电极到第一个引导电极间的距离(S)，屏幕右上角显示传导速度和根据速度的公式计算传导速度:v=S/t;3.潜峰法:测量两个通道电位的动作电位的波峰间的时间差，为(t2-t1),测量并输入两对引导电极间的距离为(S2-S1),屏幕右上角显示传导速度和用公式计算传导速度:v=(S2-S1)/(t2-t1)。
【2017年整理】蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度和兴奋性不应期的测定
人体机能学实验报告姓名张立鑫2010221460 专业临床二系年级2010级班次4班赵文韬2010221470 日期2011年9月14日郑维金2010221473钟原2010221475【实验名称】蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度和兴奋性不应期的测定【实验目的】加深理解兴奋传导的概念，掌握测定神经干动作电位传导速度的方法。
熟悉仪器设备的操作。
【实验对象】蟾蜍【实验药品和器材】蛙类手术器械，BL-410生物信号记录分析系统，神经屏蔽盒，任氏液等。
【实验步骤及方法】（详见书P57.P58）1.坐骨神经—腓神经标本的制备。
2.将标本放入神经屏蔽盒，（注意刺激电极端为神经干的中枢端）。
3.仪器连接。
4.BL-410的操作。
【实验结果】1.神经干动作电位的引导2.坐骨神经干动作电位传导速度V=(S2-S1)/(t2-t1)实验测得两对引导电极之间的距离为1.6cm，两个通道的动作电位波峰间的时间差为0.60ms。
计算得到传导速度V=26.7m/s3.二次刺激在兴奋周期之后相对不应期受到二次刺激绝对不应期受到二次刺激二次刺激没有出现相应的动作电位。
【实验结论】实验测得两对引导电极之间的距离为1.6cm，两个通道的动作电位波峰间的时间差为0.60ms。
计算得到传导速度V=26.7m/s【讨论与分析】1.神经干不能太干也不能太湿，剥离完整后在任氏液体中稳定15分钟左右，取出用滤纸吸干周围的任氏液。
2.神经干放置在引导电极上时，尽量拉直，不能使它下垂或斜向放置，以免影响神经干长度测量准确性。
3.神经干要尽可能长，两个引导电极之间的距离越远，测量的传导速度就越准确。
运动与健康题目：体育锻炼对运动系统的影响指导老师：欧阳靜仁班级：热能092班姓名：林灿雄学号：200910814223摘要：这篇文章通过对人体运动系统组成的介绍，以及体育锻炼对运动系统的作用和影响的一点点描述，给平时不重视锻炼的人说明了体育锻炼的好处，希望能够有更多的人重视体育锻炼。
神经干动作实验报告
一、实验目的1. 了解神经干动作电位的基本原理和传导过程；2. 掌握神经干动作电位传导速度和不应期的测定方法；3. 分析神经干动作电位在不同条件下的变化规律。
二、实验原理神经干动作电位是指神经纤维在受到刺激时，产生的一系列电生理现象。
当神经纤维膜电位达到一定阈值时，钠离子内流，产生动作电位，进而引起邻近神经纤维的兴奋和传导。
本实验通过观察和测量神经干动作电位，了解其传导速度和不应期等参数。
三、实验材料1. 实验动物：蟾蜍；2. 实验器材：坐骨神经干标本、任氏液、刺激器、示波器、记录仪、玻璃分针、粗剪刀、眼科剪、眼科镊、培养皿、烧杯、滴管、蛙毁髓探针、BL-420N系统；3. 实验药品：2%普鲁卡因。
四、实验方法1. 制备坐骨神经干标本：将蟾蜍麻醉后，解剖出坐骨神经干，置于任氏液中，用玻璃分针轻轻挑起，去除周围组织；2. 安装电极：将刺激电极和记录电极分别固定在坐骨神经干的两端，连接BL-420N系统；3. 刺激和记录：启动刺激器，给予坐骨神经干一定强度的刺激，观察示波器上的波形，记录动作电位传导速度和不应期；4. 重复实验：改变刺激强度，重复实验，观察动作电位传导速度和不应期的变化规律。
五、实验结果1. 动作电位传导速度：在实验条件下，坐骨神经干动作电位传导速度约为15.2 m/s；2. 不应期：在实验条件下，坐骨神经干动作电位不应期约为0.5 ms；3. 刺激强度与传导速度的关系：随着刺激强度的增加，动作电位传导速度逐渐增加，但增加幅度逐渐减小；4. 刺激强度与不应期的关系：随着刺激强度的增加，动作电位不应期逐渐延长。
六、实验讨论1. 神经干动作电位传导速度的测定原理：神经干动作电位传导速度的测定原理是，通过测量动作电位在神经干上的传播距离和时间，计算出传导速度；2. 不应期的产生原因：神经干动作电位不应期的产生原因是，神经纤维在兴奋时，膜电位处于超极化状态，此时钠离子内流受到抑制，导致动作电位不能立即产生；3. 刺激强度与传导速度、不应期的关系：刺激强度与传导速度呈正相关，但并非线性关系；刺激强度与不应期呈正相关。
蟾蜍坐骨神经干动作电位的引导 (自动保存的)
蟾蜍坐骨神经干动作电位的引导、传导速度和兴奋性不应期的测定一、实验目的1、熟悉仪器设备的操作。
2、掌握神经干动作电位的引导及传导速度的测定方法。
3、测定神经干不应期，理解可兴奋组织的兴奋性在兴奋过程中的变化过程。
二、实验原理1、将两个引导电极置于神经干表面时，动作电位将先后通过两个电极引导处，可记录到电位偏转波形。
2、在示波器上测量动作电位传导一定距离所耗费的时间，可计算出兴奋的传导速度。
3、神经与肌肉等可兴奋组织的兴奋性在一次兴奋过程中可发生一系列变化，即绝对不应期、相对不应期、超常期和低常期，组织的兴奋性才逐渐恢复。
可先给一个条件刺激以引起兴奋，然后再用另一检验性刺激在前一兴奋的不同时相给予刺激，检查神经对检验性刺激反应的兴奋阈值以及所引起的动作程度，即可观察到神经组织兴奋性的变化过程。
三、实验对象：蟾蜍。
四、实验器材：蛙类手术器械，BL-410生物信号记录分析系统，神经屏蔽盒，任氏夜等。
五、实验步骤1、制备蟾蜍坐骨神经干标本（1）脊髓捣毁法处死蟾蜍，剪除躯干上部和内脏，注意勿损伤到坐骨神经，仅留下下后肢、骶骨、脊柱和坐骨神经。
（2）剥皮：握住脊柱断面（不要触碰神经），剥掉蟾蜍的皮肤。
（3）游离坐骨神经：沿脊柱一侧用玻璃探针分离坐骨神经，将其结扎并剪断。
再将坐骨神经大腿部分从坐骨神经沟中游离出来，将坐骨神经一直游离到腘窝处。
（4）游离腓神经，在此过程中动作要轻，切勿损伤神经。
2、仪器连接。
3、实验观察。
六、实验结果1、测量阈值。
能引起动作电位的最小刺激强度，称为刺激的阈值。
由实验统计可知，该坐骨神经干的阈值为0.300V，但是，该图中的波形不是怎么稳定，这可能与实验样本制作的质量有关。
2、（1）（2）（3）（4）图（1）为潜峰法测得的神经干动作电位的传导速度，两个通道的动作电位波峰的时间差为t2-t1=0.6ms，两对引导电极间的距离为S2-S1=1.8cm.屏幕上显示的传导速度为28.3m/s，利用公式计算的传导速度v=（S2-S1）/(t2-t1)=30m/s.图（2）为双相动作电位图。
蟾蜍坐骨神经干电生理实验
实验报告课程名称：实验类型：实验项目名称：同组学生姓名：指导老师：摘要目的以蟾蜍坐骨神经干标本为材料，测定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位，探讨蟾蜍坐骨神经干的特性、双相动作电位形成机制及神经损伤、药物对神经兴奋传导的影响。
方法应用微机生物信号采集处理系统及电生理实验方法，记录不同处理情况下的动作电位情况结果中枢引导时，在刺激电压1.0V，波宽0.1ms的方波刺激下，第一、二对引导电极引导出的动作电位之间，正相与负相振幅大小均有显著性差异（P<0.05），正相与负相时程长度之间均有显著性差异（P<0.05）；末梢引导时，在刺激电压1.0V，波宽0.1ms的方波刺激下，第一对引导电极引导出的动作电位的正相振幅与负相振幅大小间有显著性差异（P<0.05），正相时程与负相时程长度间有显著性差异（P<0.05）；末梢引导时，用刺激电压 1.0V，波宽0.1ms的方波刺激，当引导电极距离为10/20/30mm时，动作电位的正相振幅与负相振幅大小间均有显著性差异（P<0.05）；引导电极距离10mm时动作电位的正相振幅/负相振幅与引导电极距离20mm时相比均有显著性差异（P<0.05）；引导电极距离10mm时动作电位的正相振幅与引导电极距离30mm时相比有显著性差异（P<0.05）。
夹伤神经后，测定得的末梢单相动作电位振幅与时程相较双相动作电位均有显著性差异。
经3mol KCl处理2分钟后，正相动作电位振幅与处理前均无显著性差异（P>0.05），负相动作电位振幅及正相时程与处理前均有显著性差异（P<0.05）。
经4%procaine处理5分钟后，正相动作电位振幅与处理前均无显著性差异（P>0.05），负相动作电位振幅及正相时程与处理前均有显著性差异（P<0.05）。
结论蟾蜍坐骨神经具有双向传导动作电位的能力。
当引导电极间距小于动作电位时程时，正相波与负相波叠加形成双相动作电位。
生理实验报告神经干复合动作电位
人体解剖及动物生理学实验报告实验名称神经干复合动作电位姓名学号系别组别同组姓名实验室温度20℃实验日期2015年4月24日一、实验题目蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）A蟾蜍坐骨神经干CAP阈值和最大幅度的确定B蟾蜍坐骨神经干CAP传导速度的确定C蟾蜍坐骨神经干CAP不应期的确定二、实验目的确定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（CAP）的（1）临界值和最大值（2）传导速度（3）不应期（相对不应期、绝对不应期）三、实验原理神经系统对维持机体稳态起着重要作用，动作电位（AP）是神经系统进行通信联系所采用的信号，多个神经元的轴突集结成束形成神经，APs沿感觉神经有外周传向中枢或沿运动神经由中枢传向外周。
坐骨神经干由上百根感觉神经和运动神经组成，分别联系腿部的感受器和效应器（骨骼肌）。
如果电刺激一根离体的坐骨神经干，通过细胞外引导方式，就能记录到神经干复合动作电位（CAP）。
一个CAP是一系列具有不同兴奋性的神经纤维产生的多个AP的总和。
刺激强度越爱，兴奋的神经纤维数目就越多，CAP 的幅度也就越大。
与胞内引导得到的单细胞AP相比，CAP是双相电位，逐级递增（非全或无），并且幅度较小。
阈电位是指一个刚刚能观测到的CAP，所对应的刺激为阈刺激。
在一定范围内增加刺激强度，CAP幅度相应增大。
最大CAP所对应的最小刺激电位即最大刺激。
动作电位可以沿神经以一定的速度不衰减地传导，传导速度的快慢基于多种因素，这些因素决定了生物体对其坏境的适应性。
它们包括神经的直径、有无髓鞘、温度等等。
神经在一次兴奋过程中，其兴奋性将发生一个周期性的变化，最终恢复正常。
兴奋的周期性变化，依次包括绝对不应期、相对不应期等等。
绝对不应期内，无论多么强大的刺激都不能引起神经再一次兴奋；相对不应期内，神经兴奋性较低，较大的刺激能够引起兴奋。
绝对不应期决定了神经发放冲动（动作电位）的最高频率，保证了动作电位不能叠加（区别于局部电位），以及单向传导（只能有受刺激部位向远端传导，不能返回）的特性。
蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度和兴奋性不应期的测定实验报告
神经干双向动作电位的引导传导速度及不应期的测定组员：陈良鹏肖瑶伍思静袁果曼罗冰清实验目的：观察蟾蜍坐骨神经动作电位的基本波形，掌握坐骨神经制备方法与引导动作电位的方法，理解与刺激和最大刺激强度的概念测定潜伏期时程和波幅，学会通过潜伏期法和潜峰法测定神经冲动的传导速度，通过测定神经干不应期理解兴奋性在兴奋过程中的变化过程。
实验对象：蟾蜍实验药品和器材:蛙类手术器械，BL-410生物信号记录分析系统，神经屏蔽盒，任氏液等。
实验原理：1、神经动作电位是神经兴奋的客观标志。
当神经受到有效刺激时，处于兴奋部位的膜外电位负于静息电位；当动作电位通过后，兴奋处的膜外电位又恢复到静息时水平。
神经干兴奋过程所发生的膜电位变化称神经复合动作电位。
如果将两个引导电极置于神经干表面时（双极引导），动作电位将先后通过两个引导电极处，可记录到两个相反的电位偏转波形，称为双向动作电位。
2、神经纤维兴奋的标志是产生一个可传播的动作电位。
测定神经干上的神经冲动的传导速度，可以了解神经的兴奋状态。
在示波器上测量动作电位传导一定距离所耗费的时间，便可计算出兴奋的传导速度。
3、神经与肌肉等可兴奋组织兴奋性在一次兴奋过程中可发生系列变化，即绝对不应期相对不应期超常期和低常期，组织的兴奋性才逐渐恢复。
为了测定神经干在兴奋过程中的兴奋性变化，可先给一个条件刺激以引起神经兴奋，然后再用另一检验性刺激，检查神经对检验性刺激反应的兴奋阈值以及所引起的动作电位（AP)幅度，即可观察到神经组织兴奋性的变化过程。
在本次实验中，主要观察的是不应期的变化，而非整个兴奋性的周期性变化。
实验对象：蟾蜍实验步骤及方法:1.坐骨神经—腓神经标本的制备。
2.将标本放入神经屏蔽盒，（注意刺激电极端为神经干的中枢端）。
3.仪器连接。
4.BL-410的操作。
实验内容：1、刺激坐骨神经时诱发产生的动作电位由在最适刺激强度时动作电位原图上进行区间测量可知，潜伏期为0.32ms，时程t1为 1.92ms ，波幅为11.08mV。
蟾蜍坐骨神经实验报告
蟾蜍坐骨神经实验报告蟾蜍坐骨神经实验报告一、引言在生物学研究中，动物模型的使用是不可或缺的。
蟾蜍作为一种常见的实验动物，其神经系统的研究一直备受关注。
本实验旨在通过观察和分析蟾蜍坐骨神经的结构和功能，深入了解神经系统的运作机制。
二、实验方法1. 实验材料准备本实验所需材料包括：蟾蜍、手术刀、显微镜、显微摄像机、生理记录仪等。
2. 实验操作步骤（1）蟾蜍麻醉：将蟾蜍置于麻醉盒中，使用适量的麻醉剂使其进入麻醉状态。
（2）手术准备：用手术刀小心地在蟾蜍的背部切开一小段皮肤，暴露出坐骨神经。
（3）神经刺激：使用细电极刺激坐骨神经，并记录下相应的电信号变化。
（4）数据记录与分析：使用生理记录仪记录下坐骨神经的电信号，并通过显微摄像机观察和记录蟾蜍的反应。
三、实验结果通过实验观察和数据记录，我们得到了以下结果：1. 坐骨神经的结构：坐骨神经是蟾蜍神经系统中的重要组成部分，由多个神经纤维组成。
在显微镜下观察，我们可以清晰地看到这些纤维的排列和分布情况。
2. 神经刺激的效果：通过对坐骨神经进行电刺激，我们发现蟾蜍会出现明显的反应，如肌肉的收缩和腿部的运动。
这表明坐骨神经对蟾蜍的运动起到了重要的调控作用。
3. 神经信号的记录与分析：通过生理记录仪，我们成功地记录下了坐骨神经的电信号，并进行了进一步的分析。
这些信号的变化可以反映出蟾蜍神经系统的活动状态。
四、实验讨论1. 坐骨神经的功能：坐骨神经是蟾蜍神经系统中的一条重要神经通路，它负责传递运动指令和感觉信号。
通过实验观察，我们可以看到坐骨神经的刺激会引起蟾蜍的运动反应，这进一步验证了其在运动调控中的重要性。
2. 神经信号的传导：通过记录和分析坐骨神经的电信号，我们可以了解神经信号的传导过程。
这有助于我们深入了解神经系统的工作原理，并为神经疾病的治疗提供参考。
五、实验结论通过本实验，我们深入了解了蟾蜍坐骨神经的结构和功能。
坐骨神经在蟾蜍的运动调控中起到了重要的作用，通过对其电信号的记录和分析，我们可以更好地理解神经系统的运作机制。
实验三 神经干动作电位测定
三、试剂与器材
蟾蜍或蛙、计算机、生物信号处理系统、 解剖针、手术剪、眼科剪、圆头手术镊、 尖头手术镊、玻璃勾针、神经屏蔽盒及 连接导线，任氏液、棉花、蛙板、烧杯。
四、实验内容 （步骤）
（一）坐骨神经标本的制备（看示范和录象） （二）连接实验装置 （三）实验观察 1. 动作电位的观察： 2. 倒换神经干的放置方向，动作电位有无变化。 3. 在两记录电极之间滴上KCl溶液，观察动作 电位的变化。观察到变化后，用任氏液洗掉 KCl溶液，直至动作电位恢复。 4. 在两电极之间滴上普鲁卡因，观察动作电位 的变化。
进行分析； 测出动作电位的各个时期； 测出绝对不应期和相对不应期。
七、思考题 解释在一定范围内神经干动作电位的振 幅随刺激强度而改变，是否与单个神经 纤维动作电位的“全”或“无”定律相 矛盾？ 改变神经干的方向后，动作电位的波形 发生了什么变化，为什么？ 分析KCl溶液和普鲁卡因对动作电位影 响的机理。 利用现有仪器和记录动作电位的方法， 设计一个测定坐骨神经不应期的实验， 讲清楚实验原理。？
（四）不应期的测定
采用双刺激。
调节刺激器的“延时”，逐渐缩短两刺
激之间的时间间隔。 观察出现的效应 记录，分析，测量
五.注意事项
标本剥制过程，尽量减少神经的损伤； 刺激参数设置要合理，过大会损毁神经。 双刺激的参数要一致。
六、结果和目标
观察和记录神经干动作电位并对其特性
动物生理实验模块
实验三神经干动作电位的测定
一、实验目的 1. 学习蛙的坐骨神经干标本的
剥制方法； 2.学习动作电位的测定方法； 3.了解双相和单相神经动作电 位产生的基本原理。
二.原理
神经或肌肉发Байду номын сангаас兴奋时，兴奋部位发生电
蟾蜍神经实验报告
实验目的：1. 观察蟾蜍神经系统的基本结构和功能。
2. 掌握蟾蜍坐骨神经干动作电位的产生和传导过程。
3. 研究蟾蜍反射弧的构成和功能。
实验材料：1. 蟾蜍1只2. 刺激电极1对3. 记录电极1对4. 动物解剖器械1套5. 任氏液6. 电子显微镜7. 计算机及生理信号采集处理系统实验步骤：一、蟾蜍坐骨神经干动作电位的产生和传导1. 将蟾蜍处死，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经及小腿的腓肠肌。
2. 将坐骨神经端结扎后，剪去无关分支，游离至膝关节处；肌肉端结扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎线留长。
3. 将标本离体，注意保持神经肌肉湿润。
4. 用大头钉将标本的膝关节固定于标本盒R2和R3两记录电极之间的石蜡凹槽内，保证神经、肌肉与电极充分接触。
5. 神经中枢端接触刺激电极S1和S2，肌肉接触记录电极R3和R4，之间接触接地电极。
6. 用计算机及生理信号采集处理系统记录坐骨神经干动作电位。
二、蟾蜍反射弧的构成和功能1. 将蟾蜍处死，剥去皮肤，暴露腰骶丛神经，游离大腿肌肉之间的坐骨神经及小腿的腓肠肌。
2. 将坐骨神经端结扎后，剪去无关分支，游离至膝关节处；肌肉端结扎在肌腱上，将腓神经也一起结扎，结扎线留长。
3. 将标本离体，注意保持神经肌肉湿润。
4. 用大头钉将标本的膝关节固定于标本盒R2和R3两记录电极之间的石蜡凹槽内，保证神经、肌肉与电极充分接触。
5. 神经中枢端接触刺激电极S1和S2，肌肉接触记录电极R3和R4，之间接触接地电极。
6. 用计算机及生理信号采集处理系统记录反射弧的兴奋传递过程。
7. 分析反射弧的构成和功能。
实验结果：1. 观察到蟾蜍坐骨神经干动作电位在刺激电极和记录电极之间产生，并且随着刺激强度的增加，动作电位幅度也随之增大。
2. 观察到反射弧的兴奋传递过程，包括感受器、传入神经、反射中枢、传出神经和效应器。
实验讨论：1. 蟾蜍坐骨神经干动作电位的产生和传导是神经兴奋传递的基本形式，与哺乳动物神经系统的兴奋传递过程相似。
实验报告：蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定
一、蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定实验目的：加强理解兴奋传导的概念，掌握测定神经干动作电位传导速度的方法。
熟悉仪器设备的操作。
实验原理：通过测出示波器上动作电位传导的距离和传导所需的时间，计算传导速度。
1.潜伏期法：测量第一个通道动作电位潜伏期的时间t，输入刺激电极到第一个引导电极间的距离s，v=s/t。
2.潜峰法：测量两个通道的动作电位波峰间的时间差和两对引导电极间的距离，v=(s2-s1)/(t2-t1)。
实验步骤：1.制备坐骨神经-腓神经标本，放入神经屏蔽盒。
2.连接仪器，引导动作电位波形。
3.剪裁编辑图形，计算传导速度。
实验结果：1.图形2.计算S=10mm, t=0.33ms, v=10mm/0.33ms=33m/s分析讨论：1. 当刺激端和记录端离得较远时，引导的复合动作电位波形会发生什么改变，为什么？2.用什么方法可使复合动作电位传导速度的测量更准确？实验结论：神经干动作电位的传导速度为33m/s.二、兴奋性不应期的测定实验目的：了解测定不应期的方法和原理，并加深对兴奋性在兴奋过程中的变化过程的理解。
实验原理：神经纤维受到适宜刺激后，产生兴奋，即动作电位。
一次兴奋产生后，必须经绝对不应期、相对不应期、超常期等变化后，兴奋性才能恢复。
本实验通过生物电放大器引导并记录神经干复合动作电位，验证和测量动作电位的不应期。
先给一个条件刺激，再用另一个检验刺激在兴奋的不同时期给予刺激，检查兴奋未阈值及所引起动作电位的幅度。
实验步骤：1．制备坐骨神经-腓神经标本，并浸在任氏液中约5分钟，待其兴奋性稳定后实验。
2.连接仪器，设置实验参数，观察并测量神经干的不应期。
实验结果：（见图）分析讨论：1.为什么要先引导神经纤维的单向复合动作电位，然后再测量其兴奋性的不应期？2.神经干不应期与单根神经纤维的不应期有何不同？实验结论：兴奋性的不应期包括绝对不应期、相对不应期、超常期、低常期。
人体机能_蟾蜍坐骨神经干动作电位传导速度和兴奋性不应期的测定实验报告
神经干双向动作电位的引导传导速度及不应期的测定作者：2011222681宋利婷组员：2011222702曾惜 2011222709张芮 2011222698杨袁虹一、实验对象：蟾蜍二、实验目的：观察蟾蜍坐骨神经动作电位的基本波形，掌握坐骨神经制备方法与引导动作电位的方法，理解与刺激和最大刺激强度的概念测定潜伏期时程和波幅，学会通过潜伏期法和潜峰法测定神经冲动的传导速度，通过测定神经干不应期理解兴奋性在兴奋过程中的变化过程。
三、实验内容图一：阈刺激和最大刺激强度的测定由上图可知，以0.100v为起始刺激强度，在0.100到0.300v的刺激时，不产生动作电位，逐渐增大强度，一直到当刺激强度为0.4V时，刚好引产生动作电位，即阈刺激为0.4V，当刺激强度达到1.4V后，即使再增加刺激强度，动作电位的幅也不再改变，即最大（适）刺激强度为1.4V.图二：潜伏期波幅时程及速度的测定由在最适刺激强度时动作电位原图上进行区间测量可知，潜伏期为0.60ms，时程t1为 2.84ms ，波幅为 2.72mV，输入刺激电极到第一个引导电极间距离s＝1.3cm,以传导速度和根据速度的公式计算传导速度v1=s/t1,求得的速度v1=45m/s图三：潜峰法测量速度如图是通过测量两个通道的动作电位波峰间的时间差，为（t1-t2）,测量并输入两对引导电极间的距离为（s2-s1），s2=4.7cm,s1=3.8cm,t1-t2=0.28ms,由传导速度和用公式计算传导速度：v2=(s2-s1)/(t1-t2),v2=321m/s图四：绝对不应期和相对不应期的测定由上图可知当刺激间隔为4.3mS时，第二个刺激引起的动作电位幅度刚好开始降低，的第二个刺激已经落入第一次兴奋的相对不应期，当刺激间隔为1.6mS时,第二个动作电位完全消失，几次是第二个刺激落入第一个刺激的绝对不应期期。
相对不应期=总不应期-绝对不应期=4.3ms-1.6ms=2.7ms四、实验讨论1、为什么在一定范围内，用电刺激神经，动作电位随刺激强度增大而增大，并没有出现“全或无”的现象？答：一根神经纤维在受到阈值以上刺激产生动作电位不随着刺激强度增大而增大，但是坐骨神经干是有许多神经纤维组成的，在受到阈值以上刺激时，由于引起不同数目神经纤维产生动作电位，但是每个神经对刺激的兴奋性，随着刺激强度增大，神经纤维产生动作电位的数目也越多，动作电位的幅度也就越大，当全部神经纤维都产生动作电位时，动作电位的幅度就不会增大了．故在一定范围内,坐骨神经干动作电位的幅度为何随着刺激强度增大而增大．2、为什么兴奋上神经上出现单向传导？答：因为在一个神经纤维细胞上，当某点受到刺激时，形成产生动作电位，形成局部电流，双向传导，当电流传导到两个神经纤维细胞相接触的部位，即神经突触时，但是兴奋只能从突触前膜穿到突触后膜，所以兴奋上神经上是单向传导的。
实验报告：蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定
一、蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定实验目的：加强理解兴奋传导的概念，掌握测定神经干动作电位传导速度的方法。
熟悉仪器设备的操作。
实验原理：通过测出示波器上动作电位传导的距离和传导所需的时间，计算传导速度。
1.潜伏期法：测量第一个通道动作电位潜伏期的时间t，输入刺激电极到第一个引导电极间的距离s，v=s/t。
2.潜峰法：测量两个通道的动作电位波峰间的时间差和两对引导电极间的距离，v=(s2-s1)/(t2-t1)。
实验步骤：1.制备坐骨神经-腓神经标本，放入神经屏蔽盒。
2.连接仪器，引导动作电位波形。
3.剪裁编辑图形，计算传导速度。
实验结果：1.图形2.计算S=10mm, t=0.33ms, v=10mm/0.33ms=33m/s分析讨论：1. 当刺激端和记录端离得较远时，引导的复合动作电位波形会发生什么改变，为什么？2.用什么方法可使复合动作电位传导速度的测量更准确？实验结论：神经干动作电位的传导速度为33m/s.二、兴奋性不应期的测定实验目的：了解测定不应期的方法和原理，并加深对兴奋性在兴奋过程中的变化过程的理解。
实验原理：神经纤维受到适宜刺激后，产生兴奋，即动作电位。
一次兴奋产生后，必须经绝对不应期、相对不应期、超常期等变化后，兴奋性才能恢复。
本实验通过生物电放大器引导并记录神经干复合动作电位，验证和测量动作电位的不应期。
先给一个条件刺激，再用另一个检验刺激在兴奋的不同时期给予刺激，检查兴奋未阈值及所引起动作电位的幅度。
实验步骤：1．制备坐骨神经-腓神经标本，并浸在任氏液中约5分钟，待其兴奋性稳定后实验。
2.连接仪器，设置实验参数，观察并测量神经干的不应期。
实验结果：（见图）分析讨论：1.为什么要先引导神经纤维的单向复合动作电位，然后再测量其兴奋性的不应期？2.神经干不应期与单根神经纤维的不应期有何不同？实验结论：兴奋性的不应期包括绝对不应期、相对不应期、超常期、低常期。
实验报告：蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定
一、蟾蜍坐骨神经干动作电位引导及传导速度测定实验目的：加强理解兴奋传导的概念，掌握测定神经干动作电位传导速度的方法。
熟悉仪器设备的操作。
实验原理：通过测出示波器上动作电位传导的距离和传导所需的时间，计算传导速度。
1.潜伏期法：测量第一个通道动作电位潜伏期的时间t，输入刺激电极到第一个引导电极间的距离s，v=s/t。
2.潜峰法：测量两个通道的动作电位波峰间的时间差和两对引导电极间的距离，v=(s2-s1)/(t2-t1)。
实验步骤：1.制备坐骨神经-腓神经标本，放入神经屏蔽盒。
2.连接仪器，引导动作电位波形。
3.剪裁编辑图形，计算传导速度。
实验结果：1.图形2.计算S=10mm, t=0.33ms, v=10mm/0.33ms=33m/s分析讨论：1. 当刺激端和记录端离得较远时，引导的复合动作电位波形会发生什么改变，为什么？2.用什么方法可使复合动作电位传导速度的测量更准确？实验结论：神经干动作电位的传导速度为33m/s.二、兴奋性不应期的测定实验目的：了解测定不应期的方法和原理，并加深对兴奋性在兴奋过程中的变化过程的理解。
实验原理：神经纤维受到适宜刺激后，产生兴奋，即动作电位。
一次兴奋产生后，必须经绝对不应期、相对不应期、超常期等变化后，兴奋性才能恢复。
本实验通过生物电放大器引导并记录神经干复合动作电位，验证和测量动作电位的不应期。
先给一个条件刺激，再用另一个检验刺激在兴奋的不同时期给予刺激，检查兴奋未阈值及所引起动作电位的幅度。
实验步骤：1．制备坐骨神经-腓神经标本，并浸在任氏液中约5分钟，待其兴奋性稳定后实验。
2.连接仪器，设置实验参数，观察并测量神经干的不应期。
实验结果：（见图）分析讨论：1.为什么要先引导神经纤维的单向复合动作电位，然后再测量其兴奋性的不应期？2.神经干不应期与单根神经纤维的不应期有何不同？实验结论：兴奋性的不应期包括绝对不应期、相对不应期、超常期、低常期。
实验三蟾蜍坐骨神
A（mV)
U(V)
Threshold stimulus Maximal stimulus
图 刺激强度与动作电位振幅的关系
要求：测定阈强度和最大刺激强度，刺激强度与动作电位振幅的关系曲线
神经干引导所获得复合动作电位（ compound action potential (CAP）与单 神经纤维引导的动作电位的性质有所不同。
用玻璃微电极做细胞电生理实验
尖端直径0.5m 的玻璃微电极
剑桥大学Hodgkin和Huxley应用金属微电极 对乌贼巨神经纤维电活动进行 系统研究， Hodgkin和 Katz提出离子假说 1949年，凌宁和Gerard 发明玻璃微电极。电压钳和膜片钳将电生理研究 推向分子水平
细胞内记录（ intracellular Recording）实验阶段
A110
D210
A210
D110 要求：分别测量第1对引导电极记录的动作电位正相、负相的幅度和时程
2.5 测定单相动作电位（monophasic action potential，MAP） 用镊子夹伤对1对引导电极间的神经干，然后用1.0V电压，波宽 0.1ms的单个方波激刺激神经干中枢端，测定末梢端MAP振幅和时程
S+、S-刺激电极，E接地电 极，r1- 、r1+和r2- 、r2+引 导电极，
1.4制备坐骨神经干（ preparation of sciatic nerve trunk ）
• 蟾蜍毁脑脊髓，去上肢和内脏，下肢剥皮浸于任氏液中。 •蟾蜍下肢背面向上置于蛙板上，剪去尾椎；标本腹面向上，用玻璃分针分 离脊柱两侧神经丛，用本背面向上固定，从大腿至跟腱分离坐骨神经。坐骨神经标本 置任氏液中备用
目的（objective）： 测定蟾蜍坐骨神经干复合动作电位（compound action potential，CAP），研究蟾蜍坐骨神经干的 特性、双相动作电位形成机制及神经损伤、药物对神 经兴奋传导的影响
蟾蜍坐骨神经干
通过实验验证神经兴奋的传播机制，如局部 电流和跳跃式传导等。
研究神经兴奋性
通过记录神经干动作电位，研究神经兴奋性， 了解神经元和神经纤维的兴奋过程。
探索药物对神经传导的影响
研究某些药物对神经传导的影响，为药物研 发提供实验依据。
实验材料
蟾蜍
选用健康成年蟾蜍，确保其神 经系统发育成熟。
探索其在疾病模型中的作用
总结词
蟾蜍坐骨神经干在疾病模型中具有重要价值，有助于深入理解疾病的发病机制和寻找新 的治疗策略。
详细描述
利用蟾蜍坐骨神经干构建疾病模型，可以模拟神经系统疾病的发病过程，从而更深入地 了解疾病的发病机制。同时，通过研究这些模型，可以探索新的药物或治疗方法，为开
发更有效的治疗方案提供科学依据。
蟾蜍坐骨神经干
目录
Contents
• 蟾蜍坐骨神经干简介 • 蟾蜍坐骨神经干实验 • 蟾蜍坐骨神经干的应用 • 蟾蜍坐骨神经干与其他神经干的比
较 • 蟾蜍坐骨神经干的研究前景
01 蟾蜍坐骨神经干简介
定义与位置
定义
蟾蜍坐骨神经干是由坐骨神经节 和一系列神经纤维组成的神经束 ，位于蟾蜍的背部和腹部之间。
坐骨神经干
分离出蟾蜍的坐骨神经干，确 保其完整性。
刺激器和记录器
用于产生刺激和记录神经电信 号的仪器。
药物试剂
用于研究药物对神经传导影响 的各种药物试剂。
实验步骤
准备实验材料
准备好所需的实验器材和试剂，确保实验顺 利进行。
分离坐骨神经干
从蟾蜍身上分离出坐骨神经干，保持其完整性 。
连接刺激器和记录器
药物作用机制研究
通过观察药物对蟾蜍坐骨神经干的影 响，可以深入了解药物的作用机制， 为药物的研发和应用提供理论支持。
084120XXX 生理学 实验三
实验三神经干动作电位的测定一、实验目的：1. 学习蟾蜍坐骨神经干标本的制备方法。
2. 观察蛙坐骨神经干复合动作电位的波形，并了解其产生的基本原理。
二、实验原理：神经干受到有效刺激后，可以产生动作电位，在另一端可以引导出双相的动作电位，如果在两个引导电极之间将神经麻醉或损坏，则引导出的动作电位即为单相动作电位。
坐骨神经干是以由很多不同类型的神经纤维组成的，所以，神经干的动作电位是复合动作电位。
复合动作电位的幅值在一定刺激强度下是随刺激强度的变化而变化的。
三、实验动物和器材实验动物：蟾蜍或蛙实验器材：常用手术器械、计算机采集系统、神经屏蔽盒、任氏液。
四、实验步骤：1.制备蛙或蟾蜍坐骨神经干标本。
2.将蛙的坐骨神经干标本置于屏蔽盒内的电极上，神经干的中枢端置于刺电极一侧，从末梢端引导动作电位。
3.实验观察与记录（1）神经干兴奋阈值的测定（2）双相动作电位（3）动作电位参数的测量（4）单相动作电位五、实验图表、数据记录和处理和讨论表一末梢端引导引导时的阈刺激强度和最大刺激强度图表1 刺激强度与动作电位振幅强度的关系神经干动作电位神经干动作电位传导速度的测定。
逐渐缩短刺激间隔，观测第二个动作电位幅度的变化讨论：1、神经干的双相动作电位是神经冲动先后通过两个引导电极形成的，冲动通过第1个电极，形成动作电位的正相波，冲动通过第2个电极，形成动作电位的负相波。
2、刺激电压从阈值增加至最大值，神经干动作电位振幅随刺激电压增加而增高。
神经干动作电位不具有“全或无”性质。
3、刺激蟾蜍坐骨神经干中枢端，可在其末梢端引导出动作电位，反之也然，由此可以证明离体蟾蜍坐骨神经具有双向传导兴奋的能力4、由各组实验汇总的数据分析无论是从末梢段引导还是从中枢端引导，所得到的波形的正向振幅均大于负向振幅，而正向时程均小于负向时程。
两引导电极处神经纤维的多寡不是形成正相振幅大于负相振幅和正相时程小于负相时程的主要原因。
六、注意事项：1．注意保持标本的活性良好，经常用任氏液湿润之。
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实验3 蟾蜍坐骨神经干电生理实验【摘要】目的运用电生理实验技术测定蛙类坐骨神经干的单相、双相动作电位和其中Ａ类纤维冲动的传导速度，并观察机械损伤、药物对神经兴奋和传导的影响。
方法采用RM6240微机生物信号处理系统，通过电生理的方法来测定蛙坐骨神经干的单相、双相动作电位的电位和时程以及其中Ａ类纤维冲动的传导速度。
并采用夹伤神经和加不同药物等处理措施，记录一定刺激强度下坐骨神经动作电位的大小变化，从而分析坐骨神经干动作电位的影响因素及机制。
结果动作电位的传导速度为31.76±3.63 m/s，阈刺激强度为0.28±0.03 V，最大刺激强度为1.21±0.36 V。
中枢端引导动作电位正相和负相振幅分别为3.15±1.87mV和 2.11±1.46mV，末梢端引导动作电位正负相振幅分别为7.04±2.01 mV和 3.89±1.46 mV，与中枢端引导时的动作电位振幅比有显著性差异（p<0.01）；夹伤神经干后，动作电位振幅为8.49±2.48 mV，时程为 1.73±0.40 ms，与末梢端引导时正相波时程比有显著性差异（p=0.002<0.01）。
引导电极间距离分别等于10mm、20mm和30mm时，动作电位正相振幅：A110为 7.07±1.87 mV，A120为 9.57±3.08 mV，A130为 9.75±3.33 mV，负相振幅：A210为 3.87±1.19 mV， A220为 5.35±2.23 mV，A230为 4.44±2.39 mV，A120、A130分别与A110比均有显著性差异（p<0.05），A220与A210比有显著性差异（p<0.05），A230与A210以及A220与A230比没有显著性差异（p>0.05）。
3mol/L KCl处理前A c正相振幅为 2.57±0.75 mV，负相振幅为1.28±0.52 mV，处理后5min A5正相振幅为3.16±0.97 mV，负相振幅为0.12±0.18mV；D c正负相时程分别为 1.30±0.26 ms和2.00±0.65 ms，处理后5min D5正负相时程分别为 1.94±0.44 ms和0.31±0.44 ms。
A5与A c相比以及D5与D c相比均有显著性差异（P<0.05）。
3％procaine处理前A c正相振幅为 7.43±0.92 mV，负相振幅为4.17±0.75 mV；处理后5min A5正相振幅为8.54±1.88 mV，负相振幅为2.92±1.76 mV。
D c正负相时程分别为 0.88±0.21 ms和1.99±0.50 ms，处理后5min D5正负相时程分别为 1.02±0.29 ms和2.13±0.79 ms。
A55与A cc相比以及D55与D cc相比均有显著性差异（p<0.05）。
结论神经冲动在神经纤维内可以双向传导，传导速度为 m/s。
双相动作电位是神经冲动先后通过两个引导电极形成的，为正相波与负相波叠加后的结果。
坐骨神经干的动作电位及传导过程不表现“全或无”现象，当刺激电压从阈刺激增加至最大刺激的过程中，神经干动作电位振幅随刺激电压增加而增高，。
KCl处理神经干过程中，由于阻滞了K+的外流，动作电位的振幅随时间延长逐渐减小，至5min时已基本为0。
procaine处理神经干后，由于阻滞了Na+的内流，动作电位的振幅逐渐变小。
【关键词】神经干刺激复合动作电位单相动作电位双相动作电位传导速度神经纤维在接受阈上刺激后产生动作电位（全或无），产生后沿其神经纤维以一定的速度传导。
神经干由许多神经纤维组成，从神经干引导的动作电位是这些神经纤维的复合动作电位。
通过置于神经干上的电极，可以引导出不同的单相、双相动作电位。
不同的神经纤维传导速度也不同，蟾蜍坐骨神经干主要由Aα类纤维组成，传导速度约为30-40m/s。
神经损伤以及药物作用等对神经的兴奋、传导都具有影响。
本实验通过测定不同条件下神经干动作电位参数变化，探讨其机制。
1.材料和方法1.1实验动物蟾蜍（中华蟾蜍指名亚种，Zhuoshan Toad）1.2药品任氏液、3%procaine、3mol/LKCl.1.3 器材RM6240微机生物信号处理系统（成都仪器厂）、神经标本屏蔽盒。
1.4坐骨神经干制备蟾蜍毁脑脊髓，去上肢和内脏，下肢剥皮浸于任氏液中。
蟾蜍下肢背面向上置于蛙板上，剪去尾椎；标本腹面向上，用玻璃分针分离脊柱两侧神经丛，用线在近脊柱处结扎，剪断神经；将神经干从腹面移向背面。
标本背面向上固定，从大腿至跟腱分离坐骨神经。
坐骨神经标本置任氏液中备用。
1.5仪器连接和参数“实验”菜单中选择生理科学实验中的“神经干动作电位”进入实验信号记录状态。
仪器参数：1、2通道时间常数0.02s、滤波频率1KHz、灵敏度5mV，采样频率40kHz，扫描速度0.5ms/div。
单刺激方式，刺激幅度1.0V，刺激波宽0.1ms，延迟5ms，同步触发。
1.6 动作电位引导神经干标本置于标本盒的电极上，神经与电极接触良好，调节刺激电压，记录动作电位。
2.观察项目2.1 蟾蜍坐骨神经干复合动作电位参数测定2.1.1 将神经干中枢端置于刺激电极处，用刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms的方波刺激神经干，测定第一对引导电极引导的双相动作电位正相波与负相波的振幅（Ac1、Ac2）和时程（Dc1、Dc2）。
2.1.2 将神经干末梢端置于刺激电极处，用刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms的方波刺激神经干，测定第一对引导电极引导的双相动作电位正相波与负相波的振幅（Ap1、Ap2）和时程（Dp1、Dp2）。
2.2 动作电位传导速度测定将神经干中枢端置于刺激电极处，用刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms的方波刺激神经干，记录通道1、2产生动作电位起始时间之差，根据υ＝ S R1- R2 / Δt 计算出AP的传导速度。
2.3 引导电极间距离的变化对动作电位振幅的影响取下第二对引导电极，用刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms的方波刺激神经干，分别记录第一对引导电极间距离为10mm，20mm，30mm时的动作电位的正负相振幅（A1、A2）。
2.4 单相动作电位引导用镊子将第一对引导电极之间的神经夹伤，用刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms的方波刺激神经干，测定第一对引导电极引导的单相动作电位的振幅（Am）和时程（Dm）。
2.5 刺激强度（U）变化对动作电位振幅（A）的影响用刺激波宽0.1ms，刺激电压从0.1V按步长0.05V不断增加，测定不同刺激电压下动作电位振幅的变化，直到动作电位不再增大为止。
记录阈刺激强度（Uth）和最大刺激强度（Umax）以及所对应的动作电位振幅。
2.6 3mol/L KCl溶液处理后的影响将一小块浸有3mol/L KCl 溶液的滤纸贴附在第2对引导电极的后一电极的神经干上，用刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms的方波刺激神经干，记录KCl溶液处理前及处理后5min 时，第一对引导电极引导的动作电位振幅（Ap）和时程（Dp）。
2.7 3%procaine处理后的影响换一神经干，将一小块浸有3%procaine溶液的滤纸贴附在第1 对引导电极的后一电极的神经干上，用刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms的方波刺激神经干，记录procaine处理前及处理后5min时，第一对引导电极引导的动作电位振幅（Ap）和时程（Dp）。
3.结果3.1 刺激波宽0.1ms时，阈刺激Uth为0.28±0.03 V；最大刺激1.21±0.36 V，刺激电压1.0V时，动作电位的传导速度为31.76±3.63 m/s 。
（见表1）表1 蟾蜍坐骨神经干阈刺激、最大刺激和传导速度sample Uth(V)Umax(V)V(m/s )10.300.9930.7720.32 1.1631.7530.30 1.3028.1750.25 1.2528.1760.25 1.8034.4870.30 1.5031.2580.26 1.1030.3090.240.5939.22x±s0.28±0.03 1.21±0.36*31.76±3.63*p＜0.01 vs阈刺激组。
刺激波宽0.1ms，刺激电压从0.1V按步长0.05V不断增加时，当刺激电压小于阈刺激时，不产生动作电位；当刺激电压大于阈刺激小于最大刺激时，动作电位振幅不断增大；当刺激电压大于最大刺激时，动作电位振幅不再增大。
动作电位振幅与刺激电压的变化关系见图1。
图1 不同强度刺激电压对蟾蜍坐骨神经干动作电位振幅的影响3.2刺激电压1.0V，刺激波宽0.1ms时，中枢端引导时动作电位，正相和负相振幅分别为3.15±1.87 mV和 2.11±1.46 mV，两者有高度显著性差异（p=0.001<0.01)；动作电位正负相时程分别0.95±0.16 ms和 1.68±0.41 ms，两者有高度显著性差异（p=0.0004<0.01)；末梢端引导时动作电位正负相振幅分别为 7.04±2.01 mV和 3.89±1.46 mV，与中枢端引导时的动作电位振幅比有高度显著性差异（p<0.01）；动作电位正负相时程分别为 0.98±0.18 ms和 2.02±0.48 ms，与中枢端引导时没有显著性差异（p>0.05)。
（见表2）表2 蟾蜍坐骨神经干中枢和末梢引导的复合动作电位sampleAc1(mv)Ac2( mv)Dc1(ms )Dc2(ms )Ap1(mv)Ap2(mv )Dp1(ms )Dp2(ms )1 4.98 3.030.84 1.528.02 4.270.94 1.972 2.86 2.150.90 1.607.00 4.410.84 1.693 4.64 2.720.83 1.118.99 6.130.88 1.194 1.69 1.10 1.32 1.96 5.35 2.09 1.37 2.565 6.23 5.23 1.04 2.319.86 4.16 1.13 2.676 1.81 1.270.93 1.408.11 5.24 1.04 1.97 70.990.560.98 1.31 3.31 1.36 1.02 1.598 1.270.720.80 2.23 5.79 3.790.81 2.419 3.92 2.200.87 1.70 6.91 3.590.80 2.09x±s 3.15±1.872.11±1.46**0.95±0.161.68±0.41**7.04±2.01*3.89±1.46*0.98±0.182.02±0.48*p<0.01 vs中枢端引导组；**p<0.01 vs正相波。