血清α-淀粉酶活性的测定迈克
α–淀粉酶活力测定[辅导]
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α–淀粉酶活力测定----目视碘比色法一实验目的1. 了解α–淀粉酶酶活力测定原理。
2．掌握α–淀粉酶酶活力测定的方法步骤。
二、实验原理比色法作为一种定量分析的方法，是以生成有色化合物的显色反应为基础，通过比较或测量有色物质溶液颜色深度来确定待测组分含量的方法。
常用的比色法有两种：目视比色法和光电比色法，两种方法都是以朗伯比尔定律 (A＝kLC)为基础。
酶活力的大小、即酶量的多少用酶活力单位（U）（active unit）表示。
1961年国际生物化学学会酶学委员会提出采用统一的“国际单位”（IU）来表示酶的活力，规定为：在最适条件（25℃）下，每分钟内催化1微摩尔（μmol）底物转化为产物所需的酶量定为一个活力单位，即1IU = 1μmol /min。
这样酶的含量就可用每克酶制剂或每毫升酶制剂含有多少酶活力单位来表示（U/g或U/ml）。
淀粉（紫蓝色，30分子以上）红色糊精（红棕色，7-30分子）无色糊精（7分子以下）、麦芽糖不显色。
通过测定酶促反应分解一定量淀粉的时间，以标准糊精（红色糊精）和碘反应的颜色作为终点指示（所给定的淀粉都已转化为糊精的时间）。
碘比色法酶活力规定：在60℃条件下，1小时转化1g 淀粉变为糊精的酶量定义为1个酶活力单位。
三、实验操作1．取试管1支，加入1ml标准糊精和3ml 标准稀碘液。
2．取锥形瓶一个，加入2%淀粉20ml和Ph6.0的缓冲液5ml。
3．将锥形瓶置于60℃水浴中，保温5分钟。
4．在比色盘中加入比色碘液，每穴2滴。
5．在锥形瓶中加入淀粉酶溶液2 ml，摇匀，开始计时。
6．在反应的前4分钟，每隔1分钟从锥形瓶中取1滴液体，与比色稀碘液混合，而后，每隔30秒从锥形瓶中取1滴液体与稀碘液混合，直至呈色与终点色一致。
四、酶活性计算实验注意事项：（1）测定酶促反应在锥形瓶中进行，标准反应在试管中进行。
（2）比色盘第1号位加入标准糊精和2滴标准碘液。
（3）应时间大约在10-15分钟。
a-淀粉酶(GLU)检测标准操作规程
深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司a-淀粉酶测定方法
2、适用范围
适用于血清a-淀粉酶的测定
3、试剂仪器
3.1试剂：深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司原装试剂盒
3.2未开启的试剂盒避光保存于2℃—8℃有效期一年。
试剂不可以冰冻。
4、操作程序
4.1方法原理
α-Amylase
5ethylidene-G7PNP+5H2O ————→
2ethylidene-G5+2G2PNP+2ethylidene-G4+2G3PNP+ethylidene-G3+G4PNP
α-glucosidase
2G2PNP +2G3PNP + G4PNP + 14H2O—————→14G + 5PNP
4.2样本要求
新鲜血清或肝素血浆，样本收集后应尽快测定，必须避光保存，避免使用溶血样本。
4.3上机操作
4.3.1试剂装载、校准、样品和质控血清分析操作详见“《迈瑞BS-220全自动生化分析仪标准操作、维护、保养规程》”
4.3.2校准“
4.3.2.1 标准液的准备：校准品使用深圳迈瑞生物医疗电子股份有限公司配套冻干品，按说明书要求稀释后分装，-20℃冷冻保存，用前提前15分钟从冰箱取出，复溶到室温后上机检测。
4.3.2.2校准程序：每30天需要定标一次。
当有以下情况时需重新定标：
1）换试剂批号或出现质控漂移时；
2）当仪器做完保养后；
3）仪器进行零件更换时。
每次试验前用准备好的校准品进行定标，定标通过后进行检测。
α-淀粉酶酶活测定
中温α–淀粉酶酶活测定一、原理α–淀粉酶制剂能将淀粉链中的α-1，4-葡萄糖苷键随机切断成长短不一的短链糊精、少量麦芽糖和葡萄糖，而使淀粉对碘呈蓝紫色的特性反应应逐渐消失，呈现棕红色，其颜色消失的速度与酶活性有关，据此可通过反应后的吸光度计算酶活力。
二、试剂和溶液1. 碘2. 碘化钾3. 原碘液：称取11.0g碘和22.0g碘化钾，用少量水使碘完全溶解，定容至500mL，贮存于棕色瓶中。
4. 稀碘液：吸取原碘液2.00mL，加20.0g碘化钾并定容至500mL，贮存于棕色瓶中。
5. 可溶性淀粉溶液（20g/L）:称取2.000g（精确至0.001g）可溶性淀粉（以绝干计）于烧杯中，用少量水调成浆状物，边搅拌边缓缓加入70mL沸水中，然后用水分次冲洗装淀粉的烧杯，洗液倒入其中，搅拌加热至完全透明，冷却定容至100mL。
溶液现配现用。
6. 磷酸缓冲液（pH=6.0）：称取45.23g磷酸氢二钠（Na2HPO4·12H2O）和8.07g柠檬酸（C6H8O7·H2O）,用水溶解并定容至1000mL。
用pH计校正后用。
7. 盐酸溶液[c（HCL）=0.1mol/L]：按GB/T601配制。
三、仪器1. 分光光度计。
2. 恒温水浴：控温精度±0.1℃。
3. 自动移液器。
4. 试管：25mm×200mm。
5. 秒表。
四、分析步骤1. 待测酶液的制备称取1g~2g酶粉（精确至0.0001g）或准备吸取酶液1.00mL，用少量磷酸缓冲液（2.6）充分溶解，将上清液小心倾入容量瓶中，若有剩余残渣，再加少量磷酸缓冲液（2.6）充分研磨，最终样品全部移入定量瓶中，用磷酸缓冲液（2.6）定容至刻度，摇匀。
用四层纱布过滤，滤液待用。
注：待测中温α–淀粉酶酶液活力控制酶浓度在3.4u/Ml~4.5u/mL范围内，待耐高温α-淀粉活力控制酶浓度在60u/Ml~65u/mL范围内。
2. 测定---吸取20.0mL可溶性淀粉溶液于试管中，加入磷酸缓冲液5.00mL，摇匀后，置于60℃±0.2℃（耐高温α-淀粉酶制剂于70℃±0.2℃）恒温水浴中预热8min；---加入1.00mL稀释好的待测酶液，立即计时，摇匀，准确反应5min；---立即用自动移液吸取1.00mL反应液，加到预先盛有0.5mL盐酸溶液和5.00mL稀碘液的试管中，摇匀，并以0.5mL盐酸溶液和5.00mL稀碘液为空白，于660nm波长下，用10mm比色皿迅速定其吸光度（A）.五、计算1. 根据吸光度查表A.1，求得测试酶液的浓度。
二、α-淀粉酶活力的测定2010(精)
3.2 器材（每组）
15ml大试管10支 5ml移液管10支 1ml移液管5支 10ml移液管10支 比色皿1套（4个） 双蒸水1瓶（50ml） 洗瓶1个 玻璃平皿1套 50ml小广口瓶（棕色）2个 50ml 容量瓶 1个 100ml 容量瓶 1个 500ml 试剂瓶2个 100ml 试剂瓶2个 250ml 三角瓶2个 200ml烧杯2个 500ml烧杯1个 记号笔1支、吸耳球、称量纸、药勺、试管架、 研钵、纱布
2.实验原理
α-淀粉酶能够将淀粉分 子中的α-1，4糖苷键随机切 成长短不一的短链糊精、少量 麦芽糖和葡萄糖，而使淀粉对 碘的呈蓝色特性反应逐渐消失， 呈现棕红色，其颜色消逝的速 度与酶活性有关，可以用来表 示淀粉酶水解的程度，因而能 购通过反应后溶液的吸光度值 衡量酶的活力。
3.试剂和溶液
3.4 磷酸缓冲液（pH6.0） 4.52g磷酸氢二钠（Na2HPO4·12H2O） 和0.8g柠檬酸（C6H8O7·H2O），定容至 100ml。pH计校正后使用。
3.5 盐酸溶液（0.1M/L） 100ml
4. 仪器及器材
4.1 仪器
电子天平
恒温水浴锅 分光光度计 记时器
2台
3.1 原碘液 称取2.2g碘和4.4g碘化钾完全 溶解后定容至100ml，储存于棕色瓶 中（教师准备）。 3.2 稀碘液 吸取原碘液2ml，加20g碘化钾 用水溶解并定容至500ml。 3.3 可溶性淀粉溶液 称取2.000g（精确到0.001g） 可溶性淀粉于烧杯中，加适量蒸馏 水调成浆糊状物，边搅拌边加入沸 水90ml，搅拌加热至完全透明冷却 后定容至100ml，现配现用。
生物技术专业系统实验（四）
生化实验--淀粉酶活性测定标准实验报告
实验二：酶活力测定方法的研究一．研究背景及目的酶是高效催化有机体新陈代谢各步反应的活性蛋白，几乎所有的生化反应都离不开酶的催化，所以酶在生物体内扮演着极其重要的角色，因此对酶的研究有着非常重要的意义。
酶的活力是酶的重要参数，反映的是酶的催化能力，因此测定酶活力是研究酶的基础。
酶活力由酶活力单位表征，通过计算适宜条件下一定时间内一定量的酶催化生成产物的量得到。
本实验选取萌发的禾谷类种子为材料，通过对其所含两种淀粉酶活力的测定来研究酶活力测定的方法。
二．实验原理萌发的种子中存在两种淀粉酶，分别是α淀粉酶和β淀粉酶，β淀粉酶不耐热，在高温下易钝化，而α淀粉酶不耐酸，在pH3.6下则发生钝化[1]。
本实验的设计利用β淀粉酶不耐热的特性，在高温下（70℃）下处理使得β淀粉酶钝化而测定α淀粉酶的酶活性[1]。
酶活性的测定是通过测定一定量的酶在一定时间内催化得到的麦芽糖的量来实现的，麦芽糖的浓度利用比色法可以很容易测得。
然后利用同样的原理测得两种淀粉酶的总活性，拟将总活性与α淀粉酶的活性的差值看作β淀粉酶的活性，再做进一步分析。
实验中为了消除非酶促反应引起的麦芽糖的生成带来的误差，每组实验都做了相应的对照实验，在最终计算酶的活性时以测量组的值减去对照组的值加以校正。
三．材料、试剂与仪器材料：萌发的小麦种子试剂：①1%淀粉溶液（称取1克可溶性淀粉，加入80ml蒸馏水，加热熔解，冷却后定容至100ml）；②pH5.6的柠檬缓冲液：A液（称取柠檬酸20.01克，溶解后定容至1L）B液（称取柠檬酸钠29.41克，溶解后定容至1L）取A液5.5ml、B液14.5ml 混匀即可；③3，5-二硝基水杨酸溶液（称取3，5-二硝基水杨酸1.00克，溶于20ml 1M 氢氧化钠中，加入50ml蒸馏水，再加入30克酒石酸钠，待溶解后，用蒸馏水稀释至100ml，盖紧瓶盖保存）；④麦芽糖标准液（称取0.100克麦芽糖，溶于少量蒸馏水中，小心移入100ml 容量瓶中定容）；⑤0.4M NaOH仪器：722光栅分光光度计(编号990695)DK-S24型电热恒温水浴锅(编号L-304056)离心机(TDL-40B) 配平天平药物天平电热锅100ml容量瓶50ml容量瓶移液管试管研钵烧杯洗瓶四．实验方法本实验按照下列表格的中的操作步骤进行：五．数据整理上表中前4行数据为实验的原始数据。
α淀粉酶测定方法
α淀粉酶测定方法嘿，咱今儿就来聊聊α淀粉酶测定方法这档子事儿。
你知道吗，α淀粉酶就像是个勤劳的小工匠，在我们身体里默默工作着，对很多生理过程都有着重要作用呢！那要怎么知道它工作得好不好呀，这就得靠测定方法啦。
比如说有一种比色法，就好像是给α淀粉酶来一场特殊的“考试”。
把样本放进去，然后通过一系列的反应和观察颜色的变化，就能大致了解它的情况啦。
这就好比你看一个人做事，通过他完成任务后的成果来判断他干得怎么样。
还有一种黏度法呢，就像是感受α淀粉酶工作时带来的“阻力”变化。
通过测量样本的黏度变化，就能推测出α淀粉酶的活跃程度啦。
这有点像观察水流的顺畅程度来判断有没有东西在里面捣乱一样。
酶联免疫吸附法也挺有意思，它就像是专门去捕捉α淀粉酶的“小侦探”。
通过特定的抗体和反应，精准地找到α淀粉酶并进行检测。
这就好像警察抓小偷，有着专门的手段和工具呢。
你想想看呀，如果没有这些测定方法，我们怎么能知道身体里这个小家伙工作得好不好呢？这可关系到我们的健康呀！要是它出了啥问题，咱不就麻烦啦？所以这些测定方法就像是我们了解身体内部情况的小窗口，透过它们，我们能更好地掌握身体的状态呢。
那这些方法难不难呢？其实呀，只要认真去学，也没那么难啦。
就跟你学骑自行车似的，一开始可能觉得摇摇晃晃不好掌握，但多练习几次，不就会啦？而且这些方法都是科学家们经过研究和实践才找到的呢，肯定是有道理的呀。
咱可不能小瞧了这些测定方法哦，它们可是帮了大忙呢！能让医生及时发现问题，及时治疗。
你说这多重要呀！所以呀，了解α淀粉酶测定方法真的很有必要呢，你说是不是呢？咱得重视起来呀，毕竟这关系到我们自己的身体呢！不管是比色法、黏度法还是酶联免疫吸附法，它们都有着独特的作用和价值，就像我们生活中的各种工具一样，各有各的用处。
那我们就得好好利用这些方法，让它们为我们的健康服务呀！。
淀粉酶活性测定
淀粉酶活性测定淀粉酶是一种非常重要的酶类，是一种负责水解淀粉质的消化酶。
淀粉酶活性测定可以用于评价淀粉酶的水解能力和功能，有助于监测动物体内的淀粉酶活性水平，以及在食品、农业、医学等方面的应用。
在此文中，我们将详细介绍淀粉酶活性测定的方法、原理、重要性等相关知识。
1、Iodine-starch法此方法是基于淀粉直接加热与淀粉酶水解后不同的化学反应。
淀粉水解后的葡萄糖分子，会使加入碘化钾后的淀粉溶液变成淡黄色或透明状态，因而用这种方法来测定淀粉酶活性。
操作步骤：（1）将淀粉溶液分配到不同的试管中，并分别加入一定量的淀粉酶和缓冲液；（2）将试管随之放入水浴器中，在一定的温度下反应一定时间后；（3）将反应好的样品加入适量的碘化钾溶液，混合均匀；（4）观察样品颜色的变化与对照样品进行比较。
淀粉酶活性越强，颜色变化越明显。
2、DNS法（3,5-dinitrosalicylic acid）此法是由3,5-二硝基水杨酸和淀粉水解后形成的糖类反应，也是一种将淀粉水解后产生的葡萄糖利用于测定淀粉酶活性的方法。
（3）在沸水中进行加热封闭处理，使淀粉酶反应后产生的糖分子与DNS反应生成产物，颜色变化呈红色。
淀粉直接加热会发生硫酸化反应，而加入淀粉酶水解后，形成的产物降解了银离子和碘化物的复合物，导致样品中碘的浓度下降，进而改变样品的颜色。
2、DNS法淀粉酶活性水平是衡量动物消化能力的重要指标之一，同时，则涉及到食品、中药、农业等领域相关工作的研究。
用于测定淀粉酶活性，在动物营养研究和饲料生产中具有广泛的应用。
在动物营养领域中，淀粉酶活性测定可以用来评价不同饲料淀粉的消化能力和饲料营养价值，甚至可以评价不同品种和不同饲料来源的淀粉酶活性差异。
在饲料生产方面，淀粉酶活性测定有助于优化饲料制造流程和配方，从而提高生产效率和经济效益。
此外，在工业领域，淀粉酶的活性测定也具有重要的应用价值。
例如，在酿酒过程中，淀粉酶活性的测定可以使发酵操作更加稳定和高效。
α-淀粉酶活力的测定
α-淀粉酶活力的测定α-淀粉酶活力的测定姓名___学号___ 一、实验目的:1. 掌握α-淀粉酶活力测定的基本原理及其实验方法。
二、实验原理: α-淀粉酶- 是一种内切酶- 只能水解α-1, 4糖苷键- 不能水解α-1,6糖苷键- 不能水解α-1,6糖苷键附近的α-1,4糖苷键- 产物为糊精、低聚糖、麦芽糖和少量葡萄糖α-淀粉酶活力测定的方法1(反应底物: 可溶性淀粉2(反应环境: 60?，pH为6.0，常压。
3(产物: 还原性葡萄糖4(活力测定方法:1)测定还原糖产生速度2)测定淀粉遇碘显色力下降的速度3)测底物粘度下降的进度• 还原糖与黄色的 3,5- 二硝基水杨酸显色反应来测定.• 生成物颜色的深浅与还原糖的量成正比.• 以每克酶在一定时间内生成的还原糖(麦芽糖)量表示酶活大小.三、试剂与仪器:1、仪器(1)电子天平(2)容量瓶 100mL(3)试管(4)恒温水浴锅(5)紫外可见分光光度计(6)烧杯 250 mL2(试剂(1)1% 可溶性淀粉溶液:称取可溶性淀粉(以绝干计)1. 000g(精确至0.001g，用水调成浆状物(在搅动下缓缓倾入70mL沸水中。
然后，以30mL水分几次冲洗装淀粉的烧杯，洗液并入其中，加热至完全透明，冷却，定容至100mL。
此溶液需要当天配制。
(2)0.4mol/L 氢氧化钠: 称取 1.6g 氢氧化钠，溶于少量蒸馏水，定容至100 mL.1(3)磷酸缓冲液(pH6.0): 称取磷酸氢二钠(Na2HPO4?12H2O)45.23g、柠檬酸(C6H8O7?H2O)8.07g，用水溶解并定容至1000mL。
配好后用pH计校正。
(4)3,5- 二硝基水杨酸:精确称取 1g 3,5- 二硝基水杨酸溶于 20mL 1mol/L 氢氧化钠中,加入 50mL 蒸馏水,再加入 30g 酒石酸钾钠,待溶解后用蒸馏水稀释至100mL ,盖紧瓶塞,防止CO2进入.(5)麦芽糖标准液(1mg/ml):称取0.100g麦芽糖,溶于少量蒸馏水,定容至100mL .(6)α-淀粉酶:枯草芽孢杆菌生成，最适pH 5.5-7.5,最适温度 50~70? 四、测定步骤:1. 麦芽糖标准曲线的制作:取25ml刻度试管7支,编号.分别加入麦芽糖标准液(lmg/ml) 0, 0.2, 0.6, 1.0,1.4, 1.8,2.0 ml ,然后用吸管向各管加蒸馏水使溶液达 2.0ml ,再各加 3 , 5 -二硝基水杨酸试剂2.0m1 ,置沸水浴中加热5min .取出冷却,用蒸馏水稀释至25 m1 .混匀后用分光光度计在520 nm 波长下进行比色,记录吸光度.以吸光度为纵坐标,以麦芽糖含量(mg)为横坐标,绘制标准曲线.2. 待测酶液的制备:称取酶粉0.1g，精确至0.0002g，先用少量的磷酸缓冲液溶解，并用玻璃搅拌棒捣研，将上清液小心倾入容量瓶中，沉渣部分再加入少量缓冲液，如此捣研3-4次，最后全部移入容量瓶中，用缓冲液定容至100mL，摇匀。
α、β-淀粉酶活性测定
α、β-淀粉酶活性测定
一、样品提取
3-5克样品→加0.1M/L 柠檬酸缓冲液(pH5.6)5ml+少量石英砂研磨至匀浆→加5ml 缓冲液清洗研钵→倒入10ml 具塞刻度试管→室温放置15-20min ，不断振荡→3500rpm 离心10min →上清液(酶提取液)备用
二、酶活性测定
α-淀粉酶活性测定 测定管 对照管 1.0ml 酶液 70℃水浴15min 1.0ml 柠檬酸缓冲液 4.0ml 0.4M NaOH 40℃水浴15min 2.0ml 1.0%淀粉，混匀 40℃水浴15min
加4.0ml 0.4M NaOH
各吸2ml 放入20ml 试管
加2ml DNS ，混匀
沸水浴5min
冷却，定容
测OD 520
三、标准曲线的制作
取20ml 的刻度试管6支并编号，分别加入麦芽糖标准液(1mg/ml ，称取0.10g 麦芽糖定容至100ml)0，0.4，0.8，1.2，1.6，2.0ml ，然后加水使都达到2ml ，再各加入DNS 2.0ml ，置沸水浴中煮沸5min ，冷却后用水稀释至20ml 。
在520nm 处测其消光值。
消光值为纵坐
(α+β)-淀粉酶总量测定
测定管 对照管
0.5ml 酶稀释液
1.5ml 柠檬酸缓冲液
4.0ml 0.4M NaOH
40℃水浴15min
2.0ml 1.0%淀粉，混匀
40℃水浴15min
标，麦芽糖为横坐标作标准曲线。
α-淀粉酶酶活力测定实验(碘比色法)
pH6.0磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液：
0.2mol/L pH6.0磷酸氢二钠-柠檬酸缓冲液： 称取磷酸二氢钠（Na2HPO4.12H2O） 45.3g，柠檬酸（C6H8O7.H2O）7.74g，先 在烧杯中使之溶解，然后转入容量瓶中定 容至1000ml。
2%可溶淀粉溶液及标准糊精溶液配制
2%可溶淀粉溶液：称取20g可溶淀粉，放入 小烧杯中，加少量蒸馏水做成悬浮液。然后 在搅拌下注入沸腾的700mL蒸馏水中，继续 煮沸一分钟（透明），冷却后用pH6磷酸氢 二钠-柠檬酸缓冲液定容至1000ml。 标准糊精溶液：取0.06克化学纯糊精悬于少 量水中调匀，然后倾入90毫升正在煮沸腾的 蒸馏水中，冷却后定容至100毫升，滴加数 滴甲苯（现配现用就不用加），冰箱保存。
酶活力测定的定义 （碘比色法——目视）
酶活力定义：在60℃下1小时内将1克淀粉转化为糊 精的酶量称一个酶活力单位（5~10分钟反应完成）。 计算公式：
60 48 N 酶活力单位 20 2% N 0.5 ( / mL) t t
ｔ——为反应达到终点需要的时间（分钟），要求反应时间在5~10内完成
标准终点色溶液
1、第一种标准终点色溶液 取1mL标准糊精液和3mL标准稀碘液混合。 2、第二种标准终点色溶液 A液：精确称取氯化钴（CoCl.6H2O） 40.2493g和重铬酸钾（K2CrO7）0.4878g， 用蒸馏水定容至500ml。 B液：精确称取络黑T40mg，用蒸馏水定容 至100ml。 同时取A液40ml、B液5ml、混合后置于冰箱 中待用。混合液在15天内使用有效。
相关碘液的配制
碘原液：称取碘11g，碘化钾22g，置于小烧 杯中，加10ml蒸馏水使之溶解，然后转入容 量瓶中。再加少量的蒸馏水洗涤烧杯数次， 洗涤液均转入容量瓶中，最后定容至500ml。 摇均后放于棕色瓶中备用。 比色稀碘液：取碘原液2ml，加碘化钾20g， 再用蒸馏水定容至500ml。摇均后放于棕色 瓶中备用（时间不易太长？）。 标准比色碘液：取碘原液15毫升，加碘化钾 8克，用蒸馏水定容至500毫升。储藏于棕色 瓶内。
α-淀粉酶（α-AL）活性检测试剂盒说明书
α-淀粉酶（α-AL ）活性检测试剂盒说明书微量法注意：本产品试剂有所变动，请注意并严格按照该说明书操作。
货号：BC0615规格：100T/48S产品组成：使用前请认真核对试剂体积与瓶内体积是否一致，有疑问请及时联系索莱宝工作人员。
试剂名称规格保存条件试剂一液体20 mL×1瓶常温保存试剂二液体5 mL×2瓶2-8℃保存试剂三粉剂×2支2-8℃保存标准品粉剂×1支2-8℃保存溶液的配制：1、试剂一：若有黄色晶体析出，需加热溶解后再用；2、试剂二：临用前取1支试剂三加入1瓶试剂二中，置于常温水中并加热至煮沸，期间不断搅拌粉剂至溶解，用不完的试剂2-8℃保存4周；3、标准品：10 mg 无水葡萄糖。
临用前加1 mL 蒸馏水，配成10 mg/mL 葡萄糖标准液，2-8℃保存两周。
产品说明：淀粉水解酶，包括α-淀粉酶和β-淀粉酶。
α-AL (EC 3.2.1.1)随机催化淀粉中α-1,4-糖苷键水解，生成葡萄糖、麦芽糖、麦芽三糖、糊精等还原糖，同时使淀粉的粘度降低，因此又称为液化酶。
淀粉水解酶催化淀粉水解生成还原糖，还原糖还原3,5-二硝基水杨酸生成棕红色物质，在540nm 有吸收峰；通过测定540nm 吸光度增加速率，计算淀粉酶活性。
α-AL 耐热，但是β-淀粉酶可在70℃钝化15min 。
因此粗酶液经过70℃钝化15min ，就只有α-AL 能够催化淀粉水解。
Reducing Sugar3-Amino-5-Nitrosalicylate (540nm)注意：实验之前建议选择2-3个预期差异大的样本做预实验。
如果样本吸光值不在测量范围内建议稀释或者增加样本量进行检测。
需自备的仪器和用品：酶标仪/可见分光光度计、水浴锅、台式离心机、可调式移液器、96孔板/微量玻璃比色皿、研钵/匀浆器和蒸馏水。
操作步骤：一、样本处理（可适当调整待测样本量，具体比例可以参考文献）称取约0.1g 样本，加0.8mL 蒸馏水匀浆；匀浆后在室温下放置提取15min ，每隔5min 振荡1次，使其充分提取；6000g ，室温离心10min ，吸取上清液并且加蒸馏水定容至10mL ，摇匀，即为淀粉酶原液。
实验2淀粉酶活力测定
实验二α－淀粉酶活力测定
一、实验目的：
掌握α－淀粉酶活力测定的方法，同时熟悉分光光度计的使用方法。
二、实验原理：
α－淀粉酶水解淀粉的产物为还原糖，用比色法测定还原糖的生成量可计算酶活力单位，其定义：1min内水解淀粉所产生的还原糖相当于1umol麦芽糖的酶量，为一个活力单位。
三、实验步骤：
1. 取8支干净的试管，编号：1.空白；
2.样品；
3.标空；
4.标准。
在25℃恒温条件下按下表顺序进行操作。
60℃准确保温3min
沸水浴3min，冷却
摇匀，在分光光度计上测A540nm
2.计算α－淀粉酶活力
酶活力（U/mg）=(A样—A空)*标准麦芽糖的微摩尔数/(A标—A标空)*3*样品管中酶的毫克数
四、仪器和试剂
1．分光光度计、恒温水浴锅、温度计、试管、移液管、天平、容量瓶2．待测样品液的准备：准确称取1g，用磷酸盐缓冲液定容至100ml
3．配制底物溶液：称取可溶性淀粉1g，用磷酸盐缓冲液定容至100ml 4．磷酸盐缓冲溶液：
准确称取0.2mol/LNa2HPO4 3.72g，NaH2PO4 12.42g，NaCl0.372g，用蒸馏水充分溶解后，定容至1000ml，即为20mmol/L磷酸盐缓冲溶液。
5．配制显色剂3，5－二硝基水杨酸试剂：
准确称取3，5－二硝基水杨酸1g，溶于20mL 2mol/LNaOH溶液中，加入50mL蒸馏水，在加入30g酒石酸钾钠，待溶解后用蒸馏水定容至100mL。
盖紧瓶塞，勿使二氧化碳进入。
若溶液混浊可过滤后使用。
6．配制标准麦芽糖溶液：0.342g分析麦芽糖溶于蒸馏水，定容至1000ml，即为1umol/ml的标准溶液。
测定α-淀粉酶活力方法
实验五激活剂、抑制剂、温度及PH对酶活性的影响一、目的要求通过实验加深对酶性质的认识，了解测定α-淀粉酶活力的方法。
二、实验原理酶是生物体内具有催化作用的蛋白质，通常称为生物催化剂。
酶催化的反应称为酶促反应。
生物催化剂催化生化反应时具有：催化效率好、有高度的专一性、反应条件温和、催化活力与辅基，辅酶，金属离子有关等特点。
能提高酶活力的物质，称为激活剂。
激活剂对酶的作用有一定的选择性，其种类多为无机离子和简单的有机化合物。
使酶的活力中心的化学性质发生变化，导致酶的催化作用受抑制或丧失的物质称为酶抑制剂。
氯离子为唾液淀粉酶的激活剂，铜离子为其抑制剂。
应注意的是激活剂和抑制剂不是绝对的，有些物质在低浓度时为某种酶的激活剂，而在高浓度时则为该酶的抑制剂。
如氯化钠达到约30%浓度时可抑制唾液淀粉酶的活性。
酶促反应中，反应速度达到最大值时的温度和PH值称为某种酶作用时的最适温度和PH 值。
温度对酶反应的影响是双重的：一方面随着温度的增加，反应速度也增加，直至最大反应速度为止；另一方面随着温度的不断升高，而使酶逐步变性从而使反应速度降低。
同样，反应中某一PH范围内酶活力可达最高，在最适PH的两侧活性骤然下降，其变化趋势呈钟形曲线变化。
食品级α-淀粉酶是一种由微生物发酵生产而制备的微生物酶制剂，主要由枯草芽孢杆菌、黑曲霉、M曲霉等微生物产生。
但不同菌株产生的酶在耐热性、酶促反应的最适温度、PH、对淀粉的水解程度，以及产物的性质等均有差异。
α-淀粉酶属水解酶，作为生物催化剂可随机作用于直链淀粉分子内部的α-1,4糖苷键，迅速地将直链淀粉分子切割为短链的糊精或寡糖，使淀粉的粘度迅速下降，淀粉与碘的反应逐渐消失，这种作用称为液化作用，生产上又称α-淀粉酶为液化淀粉酶。
α-淀粉酶不能水解淀粉支链的α-1,6糖苷键，因此最终水解产物是麦芽糖、葡萄糖和α-1,6键的寡糖。
本实验通过淀粉遇碘显蓝色，糊精按其分子量的大小遇碘显紫蓝、紫红、红棕色，较小的糊精（少于6个葡萄糖单位）遇碘不显色的呈色反应，来追踪α-淀粉酶作用于淀粉基质的水解过程，从而了解酶的性质以及动力学参数。
α-淀粉酶活力的测定
α-淀粉酶活力的测定α-淀粉酶活力的测定姓名___学号___ 一、实验目的:1. 掌握α-淀粉酶活力测定的基本原理及其实验方法。
二、实验原理: α-淀粉酶- 是一种内切酶- 只能水解α-1, 4糖苷键- 不能水解α-1,6糖苷键- 不能水解α-1,6糖苷键附近的α-1,4糖苷键- 产物为糊精、低聚糖、麦芽糖和少量葡萄糖α-淀粉酶活力测定的方法1(反应底物: 可溶性淀粉2(反应环境: 60?，pH为6.0，常压。
3(产物: 还原性葡萄糖4(活力测定方法:1)测定还原糖产生速度2)测定淀粉遇碘显色力下降的速度3)测底物粘度下降的进度• 还原糖与黄色的 3,5- 二硝基水杨酸显色反应来测定.• 生成物颜色的深浅与还原糖的量成正比.• 以每克酶在一定时间内生成的还原糖(麦芽糖)量表示酶活大小.三、试剂与仪器:1、仪器(1)电子天平(2)容量瓶 100mL(3)试管(4)恒温水浴锅(5)紫外可见分光光度计(6)烧杯 250 mL2(试剂(1)1% 可溶性淀粉溶液:称取可溶性淀粉(以绝干计)1. 000g(精确至0.001g，用水调成浆状物(在搅动下缓缓倾入70mL沸水中。
然后，以30mL水分几次冲洗装淀粉的烧杯，洗液并入其中，加热至完全透明，冷却，定容至100mL。
此溶液需要当天配制。
(2)0.4mol/L 氢氧化钠: 称取 1.6g 氢氧化钠，溶于少量蒸馏水，定容至100 mL.1(3)磷酸缓冲液(pH6.0): 称取磷酸氢二钠(Na2HPO4?12H2O)45.23g、柠檬酸(C6H8O7?H2O)8.07g，用水溶解并定容至1000mL。
配好后用pH计校正。
(4)3,5- 二硝基水杨酸:精确称取 1g 3,5- 二硝基水杨酸溶于 20mL 1mol/L 氢氧化钠中,加入 50mL 蒸馏水,再加入 30g 酒石酸钾钠,待溶解后用蒸馏水稀释至100mL ,盖紧瓶塞,防止CO2进入.(5)麦芽糖标准液(1mg/ml):称取0.100g麦芽糖,溶于少量蒸馏水,定容至100mL .(6)α-淀粉酶:枯草芽孢杆菌生成，最适pH 5.5-7.5,最适温度 50~70? 四、测定步骤:1. 麦芽糖标准曲线的制作:取25ml刻度试管7支,编号.分别加入麦芽糖标准液(lmg/ml) 0, 0.2, 0.6, 1.0,1.4, 1.8,2.0 ml ,然后用吸管向各管加蒸馏水使溶液达 2.0ml ,再各加 3 , 5 -二硝基水杨酸试剂2.0m1 ,置沸水浴中加热5min .取出冷却,用蒸馏水稀释至25 m1 .混匀后用分光光度计在520 nm 波长下进行比色,记录吸光度.以吸光度为纵坐标,以麦芽糖含量(mg)为横坐标,绘制标准曲线.2. 待测酶液的制备:称取酶粉0.1g，精确至0.0002g，先用少量的磷酸缓冲液溶解，并用玻璃搅拌棒捣研，将上清液小心倾入容量瓶中，沉渣部分再加入少量缓冲液，如此捣研3-4次，最后全部移入容量瓶中，用缓冲液定容至100mL，摇匀。
血清α淀粉酶测定
血清α淀粉酶（AMS）（EPS-G7法）测定1. 实验原理AMS测定采用酶动态比色测定法。
所用底物为4,6-亚乙基-α,D-麦芽七糖苷-对硝基苯酚（EPS－G7）。
样品中α－淀粉酶分解底物EPS－G7，生成对硝基苯酚（PNP），在405nm处比色，吸光度的上升速率与样品中α-淀粉酶的活力成正比。
2 亚乙基－G5 ＋ 2 G2PNP5EPS-G7＋5H2O α-淀粉酶 2 亚乙基－G4 ＋ 2 G3PNP亚乙基－G3＋ G4PNPα-葡萄糖苷酶2G2P N P＋2G3P N P＋G4P N P＋14H2O5P N P＋14G （反应式中PNP：对硝基苯酚；G：葡萄糖）2. 标本采集与处理：2.1 病人准备：无特殊要求。
2.2 标本类型：血清、肝素或EDTA处理的血浆、尿液。
2.3 血清分离血清或血浆应在收集后尽快分离出来。
未酸化的尿液，随机或限时收取。
3. 标本存放：不要用嘴吸取标本或对标本吹气，以免唾液污染标本唾液中的淀粉酶使结果升高。
血清淀粉酶在20～25℃稳定一个星期，避免微生物降解作用；在2～8℃时稳定一个月。
尿液样品在2～8℃可稳定10天，在15～25℃可稳定2天。
对于尿液，酸性pH值可使淀粉酶的稳定性减弱，因此，储存前pH值应调至大约7.0。
4. 标本运输：常温条件下运输5. 标本拒收标准：细菌污染、溶血的不能做测定。
6. 实验材料：6.1 AMS测定试剂盒（试剂1 6×64 ml ＋试剂2 6×16 ml）6.1.1 试剂组成试剂1：GOOD’S 缓冲液p H 7.1 100mmol/L氯化钠50mmol/L氯化镁10mmol/Lα-葡萄糖苷酶≥23KU/L试剂2：EPS－G73mmol/L6.1.2 试剂准备：试剂为即用式。
6.1.3 试剂稳定性与贮存：原试剂避光保存于2～8℃，若无污染，可稳定至失效期。
试剂有效期为24个月。
6.1.4变质指示：当试剂有浊度时，表明有细菌污染则试剂不能使用。
测定α淀粉酶活性
测定α-淀粉酶活性的两种方法的比较研究发布时间：2009-09-27来源：生物网文章标签：α-淀粉酶酶活性生物论坛2009-2012年中国α-淀粉酶市场调研及投细菌α-淀粉酶产生菌种筛选α-淀粉酶的活性测定及比活计算摘要α－淀粉酶活性是衡量小麦穗发芽的一个生理指标，为此提出了对小麦α－淀粉酶活性的快速测定方法的研究。
α－淀粉酶活性的测定方法有多种，本文仅探讨了常用的3.5－二硝基水杨酸法和凝胶扩散法。
结果表明，两种方法的测定结果差异不显著，而且两者呈显著正相关；从变异系数上看，后者的变异程度较低，其精度较高；从误差来源上看，前者引起误差的因素较后者多；后者较为简便快速，准确度较高，重复性较好，可用于大批量样品的分析。
关键词小麦α－淀粉酶活性 3.5－二硝基水杨酸法凝胶扩散法１材料和方法1.1 材料和试剂①萌芽的小麦取当年小麦种子，按小麦萌发试验培养，２天后用于测验。
②１％淀粉溶液。
③ 0.40ＮＮａＯＨ。
④ＰＨ5.60的柠檬酸缓冲液Ａ．称取柠檬酸20.01ｇ，溶解后稀释至１Ｌ；Ｂ．称取柠檬酸钠29.41ｇ，溶解后稀释至１Ｌ。
取Ａ液13.70ｍｌ与Ｂ液26.30ｍｌ混匀，即为ｐＨ5.60的缓冲液。
⑤3.5－二硝基水杨酸精确称取3.5－二硝基水杨酸１ｇ溶于２０ｍｌ１ＮａＯＨ中，加入５０ｍｌ蒸馏水，再加入３０ｇ酒石酸钾钠，待溶解后，用蒸馏水稀释至１００ｍｌ，盖紧瓶塞，勿使二氧化碳进入。
⑥麦芽糖标准液称取麦芽糖0.10ｇ溶于少量蒸馏水中，仔细移入100ｍｌ容量瓶中，用蒸馏水稀释至刻度。
⑦α－淀粉酶提取缓冲液２０ｍｍｏｌ／Ｌ醋酸钠（2.7216ｇ／Ｌ） １ｍｍｏｌ／Ｌ氯化钙（0.11099ｇ／Ｌ） ｐＨ5.5。
⑧５％（Ｖ／Ｖ）碘—碘化钾溶液 1.95ｇＫＩ＋0.65ｇＩ２溶解在100ｍｌ蒸馏水中。
⑨α－淀粉酶36.18ｕ／ｍｇ Ｓｉｇｍａ公司逐级稀释10, 2.50，0.625,0.15625, 0.03906,0.009765ｍｇ／ｍＬ系列标准液。
α-淀粉酶活性的测定呢
1.α-淀粉酶抑制剂对PPA 活性的抑制作用
分别取浓度为0.2、0.4、0.6、0.8、1.0 mg/mL 的柚皮素溶液0.05mL
（溶于水）与0.2 mL PPA 溶液（0.33 U/mL，溶于pH 6.8 磷酸盐缓
冲液）混匀在37 ℃水浴反应20 min。
对照组溶液则以0.05 mL水与0.2
mL PPA 溶液进行反应。
在反应液中加入1mL 1 %可溶性淀粉溶液，继
续37 ℃水浴10 min 后，加入1.5 mL DNS 显色剂，混匀，置于沸水
浴中5 min。
然后，冷却至室温，定容至25 mL，540 nm 下测定吸光。
空白是1.25ml水加上1.5mlDNS，定容至25ml，在A540nm下测吸光值根
据下式计算柚皮素对PPA 活性的抑制率：抑制率（%）=[（ΔA 对照-
ΔA 样品）/ΔA 对照]×100%注：ΔA 对照=A 对照-A 对照空白，
ΔA 样品=A 样品-A 样品空白
反应液中加入 1.5mL
1 %可溶性淀粉溶液
继续37 ℃水浴10
min 后，加入 1.5
mlDNS 显色剂，混匀，置于沸水浴中5 min。
然后，冷却至室温，定
容至25 mL，540 nm 下测定吸光。
空白是1.25ml水加上1.5mlDNS，
定容至25ml，在A540nm下测吸光值
一、实验步骤：取试管5个，并分别编号，按下表加入药品
再从标准曲线中查出还原糖的含量，以1/V为纵轴，1/S为横轴做直
角坐标。
实验二：淀粉酶活性测定实验报告
淀粉酶活性的测定一、实验目的酶的活力是酶的重要参数，反映的是酶的催化能力，因此测定酶活力是研究酶的基础。
酶活力由酶活力单位表征，通过计算适宜条件下一定时间内一定量的酶催化生成产物的量得到。
淀粉酶是水解淀粉的糖苷键的一类酶的总称。
α-淀粉酶是一种典型的内切型淀粉酶,主要作用于淀粉水解的液化阶段,因此又叫液化酶。
作为一种最重要的工业酶制剂，α-淀粉酶广泛存在于动物,植物和微生物中。
其中，微生物α-淀粉酶以其经济易得成为工业生产主要来源。
目前,关于α-淀粉酶活性的测定方法很多种。
本实验采用杨氏改良法测定α-淀粉酶；掌握测定α-淀粉酶活性大小与温度关系的方法，通过分析得出酶的最适温度范围。
二、实验原理酶促反应中，反应速度达到最大值时的温度和pH值称为某种酶作用时的最适温度和pH值。
温度对酶反应的影响是双重的：一方面随着温度的增加，反应速度也增加，直至最大反应速度为止；另一方面随着温度的不断升高，而使酶逐步变性从而使反应速度降低，其变化趋势呈钟形曲线变化。
不同菌株产生的酶在耐热性、酶促反应的最适温度、PH、对淀粉的水解程度，以及产物的性质等均有差异。
α-淀粉酶属水解酶，作为生物催化剂可随机作用于直链淀粉分子内部的α-1,4糖苷键，迅速地将直链淀粉分子切割为短链的糊精或寡糖，使淀粉的粘度迅速下降，淀粉与碘的反应逐渐消失，这种作用称为液化作用，生产上又称α-淀粉酶为液化淀粉酶。
α-淀粉酶不能水解淀粉支链的α-1,6糖苷键，因此最终水解产物是麦芽糖、葡萄糖和α-1,6键的寡糖。
本实验通过淀粉遇碘显蓝色，淀粉含量越高，颜色越深。
用分管光度计检测显色效应大小，通过分管光度值计算酶活力注意：实验中为了消除非酶促反应引起的淀粉水解带来的误差，每组实验都做了相应的对照实验，在最终计算酶的活性时以测量组的值减去对照组的值加以校正。
在实验中要严格控制温度及时间，以减小误差。
并且在酶的作用过程中，三支测定管及空白管不要混淆。
三、材料、试剂与仪器实验材料：α-淀粉酶仪器：分光光度计、电热恒温水浴锅、小台秤、研钵、玻璃仪器若干试剂：①0.4M NaOH/0.4M CH3COOH及0.1M HCl：②0.005%工作碘液：0.5克I2和5.0克KI水中研磨，定容至1000mL；③1%糊化淀粉溶液：称取1.0克淀粉，加入25mL0.4M NaOH，60℃5min，冷却后加25mL0.4M CH3COOH，定容至100mL；④稀释α-淀粉酶溶液：待测样品四、实验步骤①10mL1%淀粉溶液加入试管中，室温25/45/65℃保温10min②于每管中各加酶稀释液1mL，在室温25/45/65℃恒温水浴中（水浴温度的变化不应超过±0.5℃）准确加热10min，冷却。
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10mm光径，吸光度≥0.45
谢谢
慢性胰腺炎、胰腺癌、急性阑尾炎、 溃疡性穿孔、肠梗阻、流行性腮腺炎、 唾液腺化脓等血清淀粉酶均可升高。肾 功能障碍时，血清淀粉酶升高，尿淀粉 酶降低。各种肝病患者，血、尿淀粉酶 同时降低。
五、注意事项：
1、样品为不溶血的血清、血浆或尿液（pH值应 调至7.0）样品应在低温条件下运输保存，血清 或血浆中淀粉酶2~8℃可稳定30天，室温可稳定 7天。
2、如果样品中AMY活力大于400苏氏单位或测定 管吸光度小于空白管吸光度一半时，应将样品稀 释后再进行测定，测定结果乘以稀释倍数。
3、加入显色剂及蒸馏水后，应立即比色，否则 可致结果偏高。使用血浆时应选用肝素抗凝。
4、如遇黄疸、溶血或乳糜标本时应作样品空白。
六、方法学评价
1.淀粉遇碘呈蓝色反应属有机化学的经典型 反应，方法可靠，反应特异性高。
4、半自动生化仪的使用
①测定法：终点法 ②温 度：37℃ ③波 长：623nm ④吸 量：1000 μl ⑤参考范围：60~180U ⑥线性范围：0~400U
三、参考值：
血清：60~180U苏氏单位 尿液：100 ~ 1200U苏氏单位
四、临床意义：
淀粉酶主要由胰腺和唾液腺分泌，肺、 肝、甲状腺、脂肪等组织亦含有此酶。血 清淀粉酶测定主要用于急性胰腺炎的诊断。 一般于发病后6~12h开始升高，12~24h达 峰值，2~5d恢复正常，因此血清淀粉酶活 性显著升高对急性胰腺炎的早期诊断价值 较大。淀粉酶可通过肾小球滤过，尿淀粉 酶于发病后12~24h开始升高，持续时间长， 下降比血清淀粉酶慢，故胰腺炎后期测尿 淀粉酶更有价值。
注解
①0.4——淀粉浓度 ②5.0—— 1单位定义消耗淀粉mg数 ③15 —— 1单位定义反应时间 ④7.5 —— 酶的实际作用时间 ⑤100—— 1单位定义用血清 ⑥0.02—— 样品取量
ቤተ መጻሕፍቲ ባይዱ、AMY活性单位定义：
100ml血清中的淀粉酶在37℃，15 分钟水解5mg淀粉为1个单位。