汞离子功能核酸生物传感器的建立与应用

合集下载
  1. 1、下载文档前请自行甄别文档内容的完整性,平台不提供额外的编辑、内容补充、找答案等附加服务。
  2. 2、"仅部分预览"的文档,不可在线预览部分如存在完整性等问题,可反馈申请退款(可完整预览的文档不适用该条件!)。
  3. 3、如文档侵犯您的权益,请联系客服反馈,我们会尽快为您处理(人工客服工作时间:9:00-18:30)。

汞离子功能核酸生物传感器的建立与应用
杜再慧;李相阳;田晶晶;田洪涛;许文涛
【摘要】利用汞离子(Hg2+)特异性功能核酸对Hg2+识别检测,其中模板主要包括与Hg2+特异性结合的识别区、形成G四链体的富G区以及由聚六乙二醇(Spacer18)链接的隔断区;靶序列主要包括5'端配对区和3'端富T区.模板与靶序列只有在Hg2+存在的条件下才能结合并引发延伸,进而使富G序列在模板上剥离下来,但由于Spacer18的隔断作用导致富G序列以单链形式存在,在特定环境下形成具有过氧化物模拟酶活性的G-四链体,催化H2 O2与2,2-联氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二胺盐(ABTS)发生肉眼可见的颜色变化,进而对Hg2+进行定量测定.利用构建的Hg2+功能核酸生物传感器,35 min内可完成检测,线性范围为20~500 nmol/L,检出限达到16.5 nmol/L(3σ).实际水样中的加标回收率为98.5%~103.5%.本方法操作简单、成本低、耗时短,在应急处理、实时环境检测等方面具有良好的应用价值.%Excessive mercury ions have negative effects on individual health. So, it is of great significance to develop a method for rapid, sensitive and specific detection of Hg2+. In this study, the method for detection of Hg2+ was developed based on specific T-Hg-T mismatche and G-quadruplex. The template sequence mainly included the recognition region which could combine with Hg2+ specifically, the rich G region which could form G-quadruplex, and the speacer 18 partition zone. The target sequence mainly included 5' ends combining area and 3' end T-rich region. Templates and targets could be combined and the elongation was triggered only in the presence of Hg2+. Furthermore, the G-rich sequences were stripped off the templates and could form a single-stranded structure,
because Spacer 18 had partition function. The G-quadruplex was formed with the K+and hemin, and catalyzed H2 O2-2,2-azinobis (3-ethylbenzothiozoline)-6-sulfonic acid(ABTS) reaction with color variations. The detection could be done within 35 min, and the Hg2+ concentration exhibited a linear correlation with absorbance at 414 nm within range of 20-500 nmol/ L, with a detection limit of 16. 5 nmol/ L (3σ). The recoveries of Hg2+ spiked in tap water were 98. 5% - 103. 5% . The method exhibited the advantages such as simple operation, low cost and short time, and operation value in emergency treatment and real-time environmental detection.
【期刊名称】《分析化学》
【年(卷),期】2018(046)006
【总页数】5页(P947-951)
【关键词】汞离子;G四链体;间隔臂;功能核酸;生物传感器
【作者】杜再慧;李相阳;田晶晶;田洪涛;许文涛
【作者单位】河北农业大学,食品科技学院,保定 071000;北京农学院, 食品科学与工程学院, 北京 102206;中国农业大学,北京食品营养与人类健康高精尖创新中心,北京 100083;中国农业大学,食品科学与营养工程学院,北京 100083;河北农业大学,食品科技学院,保定 071000;中国农业大学,北京食品营养与人类健康高精尖创新中心,北京 100083;中国农业大学,食品科学与营养工程学院,北京 100083
【正文语种】中文
1 引言
汞 (Hg)是一种分布广泛的重金属,进入环境后很难降解,可通过生物富集作用在
动物或人体内积累,对人体健康具有极大的危害[1~3]。

生活饮用水卫生标准GB 5749-2006中规定Hg2+限量值为 1 mg/L[4]。

建立一种廉价、快速、灵敏、特
异性的Hg2+的检测方法是非常必要的。

传统的Hg2+检测方法主要包括原子吸收光谱法(AAS)[5]、原子荧光光谱法(AFS)[6]等,方法灵敏、检出限低,但一般需要大型仪器和专业的操作人员,检测周期长,费用高。

近年来,研究者不断开发出特异性金属离子功能核酸,具有易于修饰、成本低、结构稳定、特异性强等优点[7,8],使得Hg2+功能核酸生物传感器发展迅速[9]。

Hg2+能与富有胸腺嘧啶(T)的脱氧核苷酸链特异性结合形成稳定的双螺旋结构[10],其结合强度超过正常的腺嘌呤-胸腺嘧啶(A-T)配对。

因此T-Hg2+-T错配可以作
为一种良好的Hg2+识别元件。

基于T-Hg2+-T错配可引起寡核苷酸链结构的变化、替换以及重组的原理建立的分析方法被广泛用于Hg2+的检测。

近年来,在
Hg2+与胸腺嘧啶相互作用的基础上,研究者采用电化学[11~13]、荧光[14,15]
或者比色[16~18]作为信号输出方式, 建立了许多Hg2+检测方法。

其中,比色传感器具有无需分析仪器、肉眼可读、快速、容易操作等优点[19],是Hg2+定点诊断、原位快速筛选的理想方法。

最常见的比色传感器是通过氯高铁血红素(Hemin)和富G序列形成的具有过氧化物模拟酶(HRP)活性的G四链体,可以在H2O2存
在的条件下催化2,2-联氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二胺盐(ABTS2-)发生颜
色变化。

本研究以带有富G和隔断的序列为模板对Hg2+进行特异性检测,靶序列与模板
序列同时含有6个连续T碱基的序列,不存在Hg2+时,两条序列不能结合,因
此不发生延伸。

当溶液中含有Hg2+时,靶序列与模板间通过T-Hg-T碱基错配形
成稳定的双链结构,在DNA聚合酶(Bst DNA polymerase)和脱氧核糖核苷酸(dNTPs)存在的条件下发生延伸,但由于隔断序列的存在,富G序列只能从模板上剥离下来,以游离的单链形式存在。

在K+、Hemin存在的条件下,形成具有过氧化物模拟酶活性的G四链体;在H2O2存在的条件下,催化ABTS发生肉眼可见的颜色变化,通过颜色的变化可以对Hg2+进行定量检测。

2 实验部分
2.1 仪器与试剂
VARIOSKAN FLASH多功能全波长酶标仪(赛默飞世尔科技(中国)有限公司); DK-98-1电热恒温水浴锅(天津市泰斯特仪器有限公司); UNIQUE-R20超纯水仪(北京百亿新创科技公司)。

2,2-联氮-二(3-乙基-苯并噻唑-6-磺酸)二胺盐(ABTS)、氯高铁血红素、二甲基亚砜和其它金属盐(分析纯,Sigma公司); H2O2(30%, 北京蓝戈有限公司); Bst 3.0 DNA Polymerase(NEB公司);脱氧核糖核苷酸的混合物(dNTPs,宝生物工程(大连)有限公司); DNA核酸序列由北京睿博兴科生物技术有限公司合成,HPLC 纯化(表1)。

表1 DNA核酸序列(5'-3')
Table 1 Sequence of DNA(5'-3')
名称 Name序列 Sequences(5'-3')模板TemplateGTGGGTAGGGCGGGTTGGspacer18CCAACCCGCCCTACCCACAAA TTTTTTCACGACGGCCAGAC靶标 TargetGTCTGGCCGTCGTGTTTTTT互补序列Complementary sequenceGTCTGGCCGTCGTGAAAAAA注:下划线部分是G四链体形成序列; 斜体为与靶标互补配对的序列。

Notes: The underlined part is the sequence of G-quadruplex;The oblique body is the complementary sequence with the target.
氯高铁血红素溶液用二甲基亚砜(DMSO)试剂配制4 mg/mL的储存液,工作液浓度为4 μg/mL; DNAzyme酶活性提升缓冲液为10 mmol/L NaH2PO4-
Na2HPO4、100 mmol/L KCl、2 mmol/L MgCl2、0.003% (V/V) Triton X-100, pH=7.0; ABTS底物溶液为20 mg/mL DMSO溶液; DNAzyme底物缓冲液为51 mmol/L Na2HPO4·12H2O、48 mmol/L柠檬酸, pH=3.6; DNAzyme显色液:1 mL DNAzyme底物缓冲液+ 5 μL ABTS底物溶液+ 1 μL 30% H2O2,避
光混匀。

2.2 实验方法
2.2.1 Hg2+的检测10 μL反应体系中包含10 μmol/L模板序列、10 μmol/L靶序列、0.25 mmol/L dNTPs、0.06 U/μL Bst DNA polymerase、Buffer(1×),然
后加入等体积不同浓度的Hg2+溶液,在55℃条件下反应3 min,然后在95℃孵育10 min,使DNA polymerase失活。

将上述溶液加到80 μL DNAzyme酶活
性提升缓冲液和10 μL Hemin工作液,37℃孵育27 min,促使G4结构充分形成。

然后加入100 μL 预混均匀的ABTS和H2O2的DNAzyme显色液,37℃反
应5 min。

用多功能全波长酶标仪在414 nm条件下检测体系吸光度。

2.2.2 特异性实验将上述Hg2+检测方法加入的10 μmol/L Hg2+用10倍浓度的的其它离子(包括100 μmol/L的Zn2+、Cd2+、Mn2+、Ca2+、Co2+、Cu2+、Pb2+)代替,其它步骤与2.2.1节相同,考察方法的特异性。

2.2.3 实际水样分析采用本方法对自来水样品进行检测。

同时在自来水样品中分别加入50、200 和300 nmol/L的Hg2+标准溶液,测定加标回收率。

3 结果与讨论
3.1 实验原理
本研究根据Hg2+能与胸腺嘧啶(T)碱基形成稳定的T-Hg-T结构的原理,设计了
可特异性检测Hg2+的功能核酸生物传感器。

模板序列包括三部分:一部分是可与
靶序列部分互补配对的序列,另一部分是可形成G-四链体的富G序列,以及一个疏水间隔臂Spacer18。

Hg2+不存在的情况下,富G序列与模板自身的互补链结合,靶序列不能与模板结合进行延伸;Hg2+存在的条件下,靶序列与模板互补,可在DNA聚合酶催化下进行链的延伸,将G-四链体序列打开,又由于Spacer18的隔断作用,富G序列形成游离的单链。

在适宜的缓冲条件和K+诱导下形成G-
四链体,并与Hemin结合形成具有过氧化物模拟酶活性的DNAzyme,在H2O2存在的条件下,催化ABTS发生肉眼可见的颜色变化(图1)。

图1 基于功能核酸Hg2+传感器的原理图Fig.1 Schematic illustration of Hg2+ sensor based on functional nucleic acid
3.2 可行性分析
不同条件下反应体系的吸收光谱如图2所示,当体系中只有模板时,背景信号较弱;当富G序列单独存在时,出现较高吸收峰。

含有错配碱基时的吸收峰较低,但加入Hg2+后,吸收峰有所增高,说明模板在Hg2+存在时形成T-Hg-T错配,进行了延伸,释放G四链体。

图2 不同溶液吸收光谱图。

a:10 μmol/L的G四链体序列; b为10 μmol/L模板+10 μmol/L互补序列; c为10 μm ol/L模板+10 μmol/L错配序列+25 μmol/L Hg2+; d为10 μmol/L的模板; e:为10 μmol/L模板+10 μmol/L错配序列;插图为反应体系照片。

Fig.2 Absorption spectra of different solutions. a: 10
μmol/L G-quadruplex; b: 10 μmol/L template sequence +10 μmol/L complement sequence; c: 10 μmol/L template sequences +10 μmol/L target sequence +25 μmol/L Hg2+; d: 10 μmol/L template sequence; e: 10 μmol/L template sequence +10 μmol/L target sequence; inset shows the optical images.
3.3 传感器性能分析
在实验条件下,测定不同Hg2+浓度下反应体系的吸收光谱(图3A), Hg2+浓度在20~500 nmol/L范围内与反应体系在414 nm处吸光值有良好的线性关系(图
3B), R2=0.9805,检出限为16.5 nmol/L(3σ),低于生活饮用水卫生国家标准中对Hg2+的限量要求[4]。

图3 (A) 不同浓度Hg2+存在下传感体系吸收光谱图; (B)检测Hg2+的校正曲线Fig.3 (A) Absorption spectra of sensing system in the presence of different concentrations of Hg2+. Concentration of Hg2+ (form bottom to top) is 10 nmol/L, 20 nmol/L, 40 nmol/L, 50 nmol/L, 100 nmol/L, 500 nmol/L, 1
μmol/L, 5 μmol/L and 10 μmol/L, respectively; (B) Calibration curve for detection of Hg2+
3.4 传感器的特异性
用构建的传感器检测了10 μmol/L Hg2+以及10倍浓度的其它常见干扰离子的响应。

由图4可见,其它离子的响应远小于Hg2+的响应,表明本传感器对Hg2+具有良好的选择性。

Pb2+可高效稳定G四链体,Pb2+形成的G四链体比K+形成的G四链体有更高的稳定性[20],所以Pb2+通常会干扰基于G四链体的传感器的检测[21]。

本研究构建的传感器对Hg2+展现出高特异性,Pb2+基本不影响检测,这与本传感器的检测原理有关。

G四链体的形成需要富G序列从茎环上释放,由于Pb2+不能形成T-T错配,所以富G序列不会从模板上剥落下来,因此不会形成具有类过氧化物酶活性的G四链体,对Pb2+的响应信号低。

3.5 实际水样分析
采用本传感器对实验室中自来水样品进行检测,未检测到Hg2+。

添加回收实验结果如表2所示,加标回收率为98.5%~103.5%。

与文献报道的Hg2+测定方法[22~26]相比,本方法的检出限略高,但是完全可以满足实际自来水水样中
Hg2+的分析要求,且方法简单,成本低。

表2 自来水中Hg2+加标回收实验结果
Table 2 Recoveries of Hg2+ in tap water
样品编号Sample No.加标量Spiked(nmol/L)测量值Found(nmol/L)回收率recovery(%)15050.9±0.9101.82200199.9±2.999.93300300.0±1.6100.0
图4 传感器的特异性实验Fig.4 Selectivity of developed sensor , 10 μmol/L of Hg2+, 100 μmol/L of Zn2+, Cd2+, Mn2+, Ca2+, Co2+, Cu2+, Pb2+
4 结论
利用Hg2+和胸腺嘧啶特异性结合形成T-Hg-T碱基错配,进而引发延伸反应,发生链置换,释放出单链富G序列,在K+和Hemin存在下形成具有过氧化物模拟
酶活性的G-四链体,催化H2O2与ABTS发生肉眼可见的颜色变化,进而实现对Hg2+的定量检测,建立了一种Hg2+比色传感器。

此传感器设计简单、操作方便、检测时间短,结果肉眼可见,具有良好的灵敏度和选择性。

检出限达到16.5
nmol/L(3σ),可以满足自来水样品中Hg2+的检测要求。

References
【相关文献】
1 Boening D W. Chemosphere, 2000, 40(12): 1335-1351
2 Nendza M, Herbst T, Kussatz C, Gies A. Chemosphere, 1997, 35(9): 1875-1885
3 Leterme B, Blanc P , Jacques, D. Environ.Sci.Pollut.Res., 2014, 21(21): 12279-12293
4 GB 5749-2006, Drinking Water Sanitary Standard. National Standards of the People's Republic of China
生活饮用水卫生标准. 中华人民共和国国家标准. GB 5749-2006
5 WANG Shuai, WANG Peng, WANG Xi-He, GAO Ji-Hui, ZHANG Zhi-Guo, WU Shao-Hua. Spectroscopy and Spectral Analysis, 2009, 29(8): 2262-2264
王帅, 王鹏, 汪细河, 高继慧, 张治国, 吴少华. 光谱学与光谱分析, 2009, 29(8): 2262-2264
6 WANG Mei, LI Shan, ZHOU Jian-Dong, XU Ying, LONG Jun-Biao, YANG Bing-Yi. Spectroscopy and Spectral Analysis, 2014, 34(8): 2254-2258
王梅, 李姗, 周建栋, 徐英, 龙军标, 杨冰仪. 光谱学与光谱分析, 2014, 34(8): 2254-2258
7 Yang J, Dou B, Yuan R, Xiang Y. Anal. Chem., 2016, 88(16): 8218-8223
8 Zou M, Li D, Yuan R, Xiang Y. Biosens. Bioelectron., 2017, 92: 624-629
9 Lee J S, Han M S, Mirkin C A. Angew. Chem. Int. Edit., 2007, 119(22): 4171-4174
10 Miyake Y, Togashi H, Tashiro M, Yamaguchi H, Oda S, Kudo M, Tanaka Y, Kondo Y, Sawa R, Fujimoto T. J. Am. Chem. Soc., 2006, 128(7): 2172-2173
11 Hong M, Wang M, Wang J, Xu X, Lin Z. Biosens. Bioelectron., 2017, 94: 19-23
12 Xuan F, Luo X , Hsing I M. Anal. Chem., 2013, 85(9): 4586-4593
13 Cai W, Xie S, Zhang J, Tang D, Tang Y. Biosens. Bioelectron., 2017, 98: 466-472
14 Chiang C K, Huang C C, Liu C W, Chang H T. Anal. Chem., 2008, 80(10): 3716-3721
15 Huang J, Gao X, Jia J, Kim J K, Li Z. Anal. Chem., 2014, 86(6): 3209-3215
16 Nolan E M, Lippard S J. Chem.Rev., 2008, 108(9): 3443-3480
17 Kim H N, Ren W X, Kim J S, Yoon J. Chem. Soc.Rev., 2012, 41(8): 3210-3244
18 Ren W, Zhang Y, ChenH G, Gao Z F, Li N B, Luo H Q. Anal. Chem., 2016, 88(2): 1385-1390
19 Liu J, Cao Z, Lu Y. Chem. Rev., 2009, 109(5): 1948-1998
20 Kotch F W, Fettinger J C, Davis J T. Org. Lett., 2000, 2(21): 3277-3280
21 Chai F, Wang C, WangT, Ma Z ,Su Z. Nanotechnology, 2009, 21(2): 025501
22 Cai W, Xie S, Zhang J, Tang D, Tang Y. Biosens.Bioelectron., 2017, 98: 466-472
23 Ngernpimai S, Matulakun P, Teerasong S, Puangmali T, Kopwitthaya A, Kanokmedhakul S, Sangiamdee D, Chompoosor A. Sens. Actuators B, 2018, 255: 836-842 24 Xu H, Geng F, Jiang X, Shao C, Wang Y, Wang K, Qu P, Xu M, Ye B C. Sens. Actuators B, 2018, 255: 1024-1030
25 Li Y, Liu N, Liu H, Wang Y, Hao Y, Ma X, Li X, Huo Y, Lu J, Tang S. Sci. Rep., 2017, 7: 45974-45982
26 Wang G, Xu G, Zhu Y and Zhang X. Chem. Commun., 2014, 50(6): 747-750。

相关文档
最新文档