低氧细胞培养工作站---华仪行(北京)科技有限公司学习资料
细胞培养用的仪器
细胞培养用的仪器
细胞培养用的仪器包括细胞培养皿、细胞摇瓶、细胞计数器、离心机、PCR仪等。
这些仪器的作用分别是：
1. 细胞培养皿：用于细胞培养的实验室器具，一般由玻璃或塑料制成，形状为圆形或方形，用于观察细胞生长和繁殖的情况。
2. 细胞摇瓶：一种用于细胞培养的器具，由玻璃或塑料制成，形状为细长形，内装有细胞和培养基，通过摇晃可以使细胞得到充分的营养和氧气。
3. 细胞计数器：一种用于细胞计数的仪器，可以准确地测定细胞数量，帮助研究人员了解细胞生长和繁殖的情况。
4. 离心机：一种用于分离和纯化细胞的仪器，通过高速旋转将细胞和其他物质分离，可以用于细胞分离、洗涤和浓缩等操作。
5. PCR仪：一种用于DNA扩增的仪器，通过PCR技术可以将特定的DNA片段在短时间内大量扩增，用于基因克隆、突变分析和疾病诊断等领域。
这些仪器在细胞培养实验中是必不可少的，可以帮助研究人员更好地了解细胞生长和繁殖的情况，以及进行基因克隆和疾病诊断等研究工作。
细胞低氧培养条件-概述说明以及解释
细胞低氧培养条件-概述说明以及解释1.引言1.1 概述细胞低氧培养是一种实验技术，通过调节细胞培养条件中的氧气浓度，模拟体内低氧环境，以研究细胞在缺氧条件下的生物学特性和生理功能。
在正常的细胞培养条件下，氧气浓度通常为20，而在体内某些组织或病理状态下，氧气浓度可能会降低。
针对这种低氧环境，细胞低氧培养技术可以提供一种便捷的方法来模拟体内环境，以更好地研究细胞应对低氧环境的生物学反应。
细胞低氧培养条件要求精确控制培养液中的氧气浓度，一般通过混合不同浓度的氮气和空气来实现。
根据研究需求，可以调整氧气浓度在1-20之间，模拟不同程度的低氧环境。
此外，为了保持低氧条件的稳定性，还需要使用密闭的培养系统，并定期检测和调整氧气浓度。
细胞低氧培养条件对于许多研究领域都具有重要意义。
在癌症研究中，低氧环境常常与肿瘤生长、进展和治疗耐药性有关。
通过模拟低氧环境，可以深入了解肿瘤细胞在缺氧条件下的生存机制和代谢适应。
此外，细胞低氧培养条件也对心血管疾病、神经退行性疾病等研究领域具有重要意义，这些疾病在发展过程中常与低氧环境有关。
综上所述，细胞低氧培养条件是一种重要且有效的实验手段，用于研究细胞在低氧环境下的适应机制和生物学特性。
这种技术不仅可以帮助我们更好地理解细胞生命活动的本质，还有助于揭示低氧环境在疾病发展中的作用机制。
因此，掌握和应用细胞低氧培养条件技术对于推动相关领域的研究具有重要的意义。
1.2 文章结构文章结构部分的内容可以参考以下模板：文章结构本文将按照以下结构展开论述细胞低氧培养条件的要点。
首先，引言部分将对本文的概述、文章结构以及目的进行介绍，为读者提供一个整体的框架。
接着，在正文部分将详细讨论细胞低氧培养条件的要点。
主要包括细胞低氧培养条件要点1和细胞低氧培养条件要点2。
最后，在结论部分将对本文进行总结，并对未来研究方向进行展望。
通过这样的结构安排，读者能够清晰地了解细胞低氧培养条件的相关要点，并获得对未来研究的启示。
细胞培养常用设备及实验技巧
细胞培养常用设备及实验技巧常用设备准备室的设备：单蒸馏水蒸馏器、双蒸馏水蒸馏器、酸缸、烤箱、高压锅、储品柜（放置未消毒物品）、储品规（放置消毒过的物品）、包装台。
配液室的设备：扭力天平和电子天平（称量药品）、PH计（测量培养用液PH值）、磁力搅拌器（配置溶液室搅拌溶液）。
培养室的设备：液氮罐、储品柜（存放杂物）、日光灯和紫外灯、空气净化器系统、低温冰箱（-80℃）、空调、二氧化碳缸瓶、边台（书写实验记录）。
必须放在无菌间的设备：离心机（收集细胞）、超净工作台、倒置显微镜、CO2孵箱（孵育培养物）、水浴锅、三氧消毒杀菌机、4℃冰箱（放置serum和培养用液）。
无菌操作无菌室的灭菌：1.定期打扫无菌室：每周打扫一次，先用自来水拖地、擦桌子、超净工作台等，然后用3‰来苏尔或者新洁尔灭或者0.5％过氧乙酸擦拭。
2.CO2孵箱（培养箱）灭菌：先用3‰新洁尔灭擦拭，然后用75％酒精擦拭或者0.5％过氧乙酸，再用紫外灯照射3.实验前灭菌：打开紫外灯、三氧杀菌机、空气净化器系统各20-30分钟4.实验后灭菌：用75％酒精（3‰新洁尔灭）擦拭超净台、边台、倒置显微镜的载物台。
实验人员的无菌准备：1.肥皂洗手。
2.穿好隔离衣、带好隔离帽、口罩、放好拖鞋3.用75％酒精棉球擦净双手。
无菌操作的演示：1.凡是带入超净工作台内的酒精、PBS、培养基、胰蛋白酶的瓶子均要用75％酒精擦拭瓶子的外表面2.靠近酒精灯火焰操作。
3.器皿使用前必须过火灭菌4.继续使用的器皿（如瓶盖、滴管）要放在高处，使用时仍要过火。
5.各种操作要靠近酒精灯，动作要轻、准确，不能乱碰。
如吸管不能碰到废液缸。
6.吸取两种以上的使用液时要注意更换吸管，防止交叉污染。
器械的清洗和消毒玻璃器械洗消：一、新的玻璃器皿的洗消：1.自来水刷洗，除去灰尘。
2.烘干、泡盐酸：烤箱中烘干，然后再浸入5％稀盐酸中12小时以除去脏物、铅、砷等物。
3.刷洗、烘干：12小时后立即用自来水冲洗，再用洗涤剂刷洗，自来水冲干净后用烤箱烘干。
氧分析仪日常维修保养
氧分析仪日常维修保养1.清洁仪器：定期清洁仪器是保证准确测量的前提。
可用软布蘸取少量酒精或清洁剂，轻轻擦拭仪器表面和探头。
切勿使用水直接清洗，以免进水导致短路或损坏仪器。
2.校准仪器：准确的测量结果需要经常进行校准。
通常，仪器会配备校准气体供校正使用。
根据仪器说明书，按照指引步骤进行校准。
一般校准频率为每月一次，或根据实际使用情况而定。
3.检查传感器：传感器是仪器的关键部分，用来测量氧气的浓度。
定期检查传感器的状态，确保传感器的表面清洁，没有污渍或氧化物。
如有发现，可使用温和的清洗液进行清洁，并确保彻底晾干后再使用。
4.检查电源：电源是仪器的核心部分，提供仪器运行所需的能量。
检查电源线和插头是否正常，确保电源线不受损。
如果发现线路受损，应及时更换。
此外，保持电源线通风良好，避免遮挡或受热。
5.定期维护：除了日常的清洁和校准，仪器还需要定期进行维护。
这包括更换传感器、滤清器、密封圈等易损件，以及检查仪器内部的电路和连接器是否正常。
根据仪器说明书，参照维护手册的指引进行维护。
6.配件更换：根据仪器需要，及时更换和维修配件。
如传感器老化失效、滤清器阻塞或密封圈破损等。
避免因配件的失效导致仪器的测量结果出现不准确或其他问题。
7.存放和保护：当仪器暂时不使用时，应将其存放在干燥、通风和清洁的环境中，避免阳光直射和潮湿。
定期检查存放环境是否符合要求，以免对仪器的正常运行产生影响。
维修保养时需要注意的事项：1.请严格按照仪器的使用说明进行操作，避免人为失误导致仪器损坏。
2.保持维修保养记录，记录维护时间、维护内容和维护人员等信息，方便追踪维修历史和及时发现潜在问题。
4.当发现仪器出现故障或损坏时，应及时报修或更换，不要擅自进行修理以免进一步损坏。
氧分析仪的维修保养工作对于仪器的正常运行和准确测量结果至关重要，希望上述建议能对您有所帮助。
Electrotek厌氧工作站PPT细胞低氧汇编
※ 影响神经、循环、呼吸系统，造成各种疾病。
ELECTROTEK
低氧生物模型概述
研究低氧的意义： 1、灾害救助
ELECTROTEK
低氧生物模型概述
研究低氧的意义： 2、高原症研究
ELECTROTEK
低氧生物模型概述
研究低氧的意义： 3、军事医学研究
ELECTROTEK
低氧生物模型概述
研究低氧的意义： 4、肿瘤研究
ELECTROTEK
Electrotek厌氧/微需氧工作站特点
1、裸手操作—简捷精确
只需裸露双手就可操作，操作者手腕周围有空气 密封垫，可保持低氧环境，无需影响操作手感的 橡胶手套，极大地提高了操作人员的精细操作。 消除了脚踏开关，去掉了内门设计，能够提供更 大有效工作空间，并最大程度地简化了操作。 使用气体更加节省，操作人员可在数秒内将手伸 入工作台内。
ELECTROTEK
低氧生物模型概述
细胞低氧方法 1、环境低氧 2、低糖、无血清培养（灌流）液 3、与空气隔绝 4、中断呼吸链 氰化物、硫化氢、磷、砷化物 细菌毒素、放射线 通常O2浓度：5%，特殊O2浓度：2% 无血清培养基，低糖培养基
ELECTROTEK
低氧生物模型概述
细胞低氧方法 1、环境低氧 2、低糖、无血清培养（灌流）液 3、与空气隔绝 4、中断呼吸链 由于低氧作用全面而常被采用 应用面狭小，只作特殊细胞低氧研究 试验重现性较差，很少使用 放射性、毒性物质不易获得，使用保管 程序繁琐，很少使用
六面均采用高性能的透明材料，确保操作观察视 野的高通透性及良好的耐用性。 操作孔采用30°斜角的人体工学设计，让操作人 员的双手更加舒适地操作，消除长时间操作而引 起的职业疲劳。 保护剂模块设计专用的支架，便于快速更换。 内部科学合理布局，有效利用每寸空间，绝无任 何操作死角！
细胞培养实验室的设备配置及用途
细胞培养实验室的设备配置及用途以下是一个典型细胞培养实验室的设备配置及其用途：1.生物安全柜：生物安全柜是细胞培养实验室的核心设备，用于提供无菌和安全的实验环境。
生物安全柜分为三个级别，根据需求可以选择不同级别的生物安全柜。
2.培养箱：培养箱是用于维持细胞培养所需的适宜环境条件，例如恒定温度（通常在37摄氏度），适宜的湿度和二氧化碳浓度。
培养箱通常配备有温度、湿度和CO2的控制器，以确保细胞在适宜的培养环境中生长。
3.倒置显微镜：倒置显微镜是观察和检测细胞培养过程中的细胞形态、生长状态和细胞染色等的重要设备。
4.细胞培养罐：细胞培养罐是用来培养细胞的容器，通常分为培养瓶和培养皿两种。
培养罐通常由无菌塑料材料制成，能够提供适宜的培养条件和保护细胞。
5.离心机：离心机用于离心培养细胞和沉淀物，以便进行培养基的更换、细胞分离和沉淀物的收集等操作。
6.显微镜：显微镜用于观察细胞培养的细胞形态、细胞分裂和细胞染色等。
7.细胞离心机：细胞离心机是用于从细胞培养物中分离细胞、细胞沉淀和细胞富集的设备。
8.培养箱温度计和湿度计：用于监测培养箱中的温度和湿度，以保持适宜的培养环境。
9.细菌培养箱：用于细胞培养实验室中的细菌菌种的保存和培养。
10.无菌工作台：无菌工作台是一个封闭的工作空间，提供无菌环境，用于处理无菌操作和培养物的分装、传递和传染性较强的试样的操作。
11.水培养装置：水培养装置用于提供无菌水用于培养细胞。
12.酶消化仪：酶消化仪用于将培养物中的细胞分离成单个细胞，以便后续的实验操作。
13.细胞计数仪：细胞计数仪用于计算培养物中细胞的数量。
14.PCR仪器：PCR仪器用于进行细胞培养实验中的基因表达、基因检测和基因定量等相关实验。
15.洗鼓机：洗鼓机用于将细胞从细胞培养物中剥离，以便后续操作。
细胞低氧培养舱安全操作及保养规程
细胞低氧培养舱安全操作及保养规程细胞低氧培养是一种生命科学中常用的技术，可供研究各种细胞生长和功能的变化，尤其是在心肌、肺、血液、肝脏和肾脏等器官组织中，缺氧环境下的细胞行为更为活跃。
为了保证低氧环境下细胞培养舱的使用安全与长期维护，特制定本规程，希望相关人员严格遵守。
一、细胞低氧培养舱的安全操作1. 细胞低氧培养舱在使用前的注意事项1.确保人员已经完成与低氧培养技术有关的培训，获得低氧操作特批，熟练掌握低氧环境下设备的操作。
2.使用前，应仔细检查低氧培养舱的各个配件是否齐全、完好，如有损坏或缺件应及时与维修人员联系。
3.在操作细胞低氧培养舱时，必须穿戴手套、口罩、防护眼镜，佩戴实验服和安全帽，确保个人身体健康。
2. 细胞低氧培养舱的操作流程1.在进行操作前，必须关闭培养箱电源并打开气源，释放培养箱的压力，等待3-5分钟使氧浓度降至低氧环境。
2.打开培养箱门，将需要操作的物品放入透明的低氧培养皿中，尽量避免皿内出现气泡。
3.将低氧培养皿装入培养板中，并将培养板放入培养舱的舱内，稍微摇晃培养板使低氧培养皿尽量均匀地散布于培养舱中。
4.关闭培养箱门，设定培养舱的温度、湿度、氧气含量等参数，并启动培养箱电源。
5.在操作结束后，应将培养舱的电源关闭，将气源接口拔掉，待气压降至常温后，再打开培养箱门取出低氧培养皿。
3. 细胞低氧培养舱的注意事项1.在进行操作前，应注意确保培养箱的内部清洁，避免污染低氧环境，以免对细胞生长产生不良影响。
2.操作人应尽量避免在低氧环境下打喷嚏、咳嗽、异味等现象，可事先进行防护措施以避免污染环境。
3.在操作时，应注意低氧环境下可能存在的问题，如氧气含量不正确，培养箱内部压力异常等问题，必须及时进行排查和处理，避免对细胞生长产生不良影响。
4.操作结束后，应注意及时清理培养舱内部的水肥、培养皿等物品，保持设备的整洁和卫生。
二、细胞低氧培养舱的保养规程为了确保细胞低氧培养舱的长期运转，减少维修成本和保障样品的稳定性，必须按照下列保养规程进行操作：1.定期检查细胞低氧培养舱的框架、门、电气设备等部分是否有锈蚀、松动、变形等现象，并及时维修或更换部件。
血培养仪器培训之理论部分
血培养仪器培训之理论部分1、原理：微生物在培养瓶中生长产生CO2，CO2激活了包埋在培养瓶底部的荧光物质，荧光物质在发光二级管的照射下被激发出荧光，培养孔位底部的荧光探测器探测到荧光并将数据传递到后部的微处理器，微处理器通过预设的一系列运算模式计算出荧光值；荧光值的强弱与CO2浓度成正比，而CO2浓度又与微生物浓度成正比，这样通过CO2这一中间物质将荧光强度与微生物浓度关联起来，荧光值越强，微生物浓度越高，反之亦然。
2、培养瓶种类：三类七种培养瓶1）标准瓶：标准需氧瓶（血站、血液中心用）标准厌氧瓶（血站、血液中心用）2）树脂瓶：树脂需氧瓶（医院临床用）树脂厌氧瓶（医院临床用）树脂儿童瓶（医院临床用）树脂的功能：1．树脂最大的功能是吸附抗生素。
树脂瓶中有两种树脂，白色的叫阳离子交换树脂，褐色的叫共价吸附树脂，一个起化学吸附作用，一个起物理吸附作用，通过这两种吸附作用，树脂可以在极短的时间内将标本中抗生素的浓度降至接近于零的水平2．裂解血细胞。
如果裂解的是红细胞，可以将红细胞中的营养物质释放出来供微生物生长利用，其原理跟血平板与巧克力平板的关系一样；如果裂解的是白细胞，可以将被白细胞中吞噬的微生物释放出来，提高阳性检出率。
3．为微生物生长提供了广大的附着表面。
树脂用肉眼看表面是光滑的，但在高倍镜下观察表面是坑洼不平的、镂空的，打个比方就像一个核桃，如果将一个树脂瓶中所有树脂的表面积展开，可达5个标准足球场的面积。
4．涂片染色镜检时不会对观察背景造成干扰。
由于树脂本身无色透明、染色时又不着色，因而在涂片染色镜检时不会对观察背景造成干扰，从而避免了实验室初学者对观察结果产生误判。
3）含溶血素瓶：含溶血素厌氧瓶1. 厌氧瓶不仅可以培养厌氧菌还能培养兼性厌氧菌。
2. 研究数据表明有16%的链球菌和17%的肠杆菌科的细菌仅对厌氧瓶报阳，如果不用厌氧瓶就会对这部分微生物造成漏检。
含溶血素分枝杆菌/真菌培养瓶1. BD所有的需氧瓶都能培养真菌，之所以要用这一专业的真菌瓶是为了培养苛养的真菌，比如丝状真菌。
GIBCO细胞培养基本知识手册(中文版)
7.细胞低氧工作站
细胞低氧工作站一、主要用途：用于微生物在厌氧（微氧）环境中的接种、连续培养、传代，培养基转换和观察、鉴定等工作。
可同时对国标中志贺氏菌（厌氧、41.5℃）、空肠弯曲菌（微需氧、25℃）、产气荚膜梭菌（厌氧、36℃）、肉毒杆菌（厌氧、35℃）、乳酸菌（厌氧、36℃）进行培养，也可同时对需要不同二氧化碳含量的微生物进行培养。
二、功能特点。
1、控制氧气浓度，模拟体内低氧环境。
2、控制二氧化碳浓度，提供细胞生长的最佳条件。
3、全自动湿度控制系统，完美地湿度调控。
4、HEPA过滤系统。
5、无袖操作与传统袖套操作系统可选。
6、厌氧模式与低氧模式灵活切换，也可以只配置艳厌氧模式。
三、技术参数。
1、配置快速转移闸容量，容量≥12L，转移闸利用N2吹洗，在60秒内顺利完成将样品或设备转出或转进工作站内。
2、转移闸智能保护功能，保证内部环境不受影响。
3、内部尺寸：高度≥535mm,宽度：≥760mm，深度≥580mm。
4、侧面板可以整体取下，用于小型设备的出入，箱体的清洁，清洁箱体可用消毒液，有效消毒灭菌，对箱体无损伤。
5、厌氧模式采用双气，低氧模式采用三气。
6、参数设置，设备状态监控及报警都在彩色7寸触摸屏上实现.7、全自动微度控制系统，最高湿度可达90%（选配超声波加湿系统情况下）。
8、标配荧光灯254nm紫外灭菌灯.9、HEPA过滤系统可使箱内环境达到100级。
10、标配单皿转移系统，用于转移单个小培养皿。
11、标配厌氧指示系统，指示液与指示泵，可以选配数字厌氧指示（0-3000ppm）。
12、氧气控制范围：厌氧模式：低于50ppm。
氧气模式：0.1-23%递增。
13、二氧化碳控制范围：0.1-20%递增,0.1%递增。
14、温度控制范围：0-85%。
15、温度：控制温度范围：室温+3℃至50℃，显示精度0.1℃，均一度±0.3℃。
16、标配无袖快速操作系统，满足完全裸手操作，无需抽真空充氮气，可选配传统套袖操作系统。
低氧细胞培养工作站 - 华仪行(北京)科技有限公司
低氧细胞培养工作站超凡卓越！简洁、高效、实用低氧研究案例细胞生长经证实，减少培养箱内氧气含量水平可以增强干细胞和祖细胞繁殖率。
实验结果发现，低氧状态下细胞每阶段的平均扩增约为9倍，而相反在氧气含量为20%的条件下，细胞每阶段的扩增只有5倍（Fig. 1A）。
在超过6周的培养中，在低氧（470,000 vs 16,000）环境中hMSC s 细胞扩增近30倍（Fig. 1B）。
而hMSC s细胞在低氧环境下培养，5天内在低氧状态下细胞扩增数量和常氧状态下扩增数量并没有显著的区别，但是到第7天两者的细胞数量有了显著区别（Fig. 1C）。
Fig1. （A）第7天时细胞数量（B）hMSC s细胞扩增（C）P4 hMSC增长曲线图（n=4; *p<0.05）在空气和氧气中细胞的初级增长细胞数（log10）时间（天）Fig 2* 在空气和氧气中细胞的初级增长基因表达在仅一天的低氧培养（H:N=1.3）后hMSC s（Fig. 3A and B）中Oct-4 mRNA水平升高，该数据在随后的3-7天内持续显著升高，第5天达到峰值（H:N=4.2）。
我们早期的研究观察到低氧hMSCs中Oct-4值较高，并且在氧气含量为1-5%时，培养的胚胎干细胞也可得到相似结果。
Oct-4表达增强是胚胎干细胞多能性试验中一种确定的指示剂。
该推论也可适用于成人干细胞群。
Fig 3 （A）在常氧（N）和缺氧（H）P4 hMSC s状态下Oct-4表达。
（B）Oct-4和HIF-2a（n=4；*数据显示高于第0天；数据显示高于第1天）与qPCR表达等级的相关性。
分化和细胞形态进行缺氧培养（Fig.4A和B）时，联接蛋白43水平明显升高。
使用膨胀介质进行单层培养11天时，在低氧hMSCs中观察到联接蛋白43表达增长显著。
（Fig. 4E和F）Fig 4. 常氧状态（A）和缺氧状态（B）下联接蛋白43的表达。
hMSCs相位对比图像显示在培养过程中细胞形态的变化。
低氧培养箱工作原理
低氧培养箱工作原理低氧培养箱是一种用于模拟低氧环境的实验设备，常用于细胞和组织培养实验中。
它的工作原理基于对氧气浓度的控制和调节，以提供适合细胞生长和研究的低氧环境。
低氧培养箱主要由氧气控制系统、气体混合系统、密封隔离系统和温控系统组成。
首先，氧气控制系统是低氧培养箱的核心部分，用于控制和调节低氧环境中的氧气浓度。
该系统通常包括氧气传感器、氧气供应装置和氧气控制器。
氧气传感器用于监测低氧环境中氧气浓度的变化，将检测到的信号传输给氧气控制器。
氧气供应装置根据氧气控制器的指令，控制氧气的供应量，以保持低氧环境中氧气浓度的稳定。
气体混合系统用于混合氧气和其他气体，以达到所需的低氧浓度。
气体混合系统通常包括气体流量控制器和气体混合器。
气体流量控制器用于控制不同气体的流量，以确保混合气体的精确配比。
气体混合器将不同气体按照一定比例混合，并将混合气体输送到培养箱中。
密封隔离系统是保证低氧环境有效的关键。
它由高密封性的箱体、密封门和密封橡胶垫组成。
箱体通过合适的材料和结构设计，确保氧气不会外泄，从而有效地维持低氧环境。
密封门和密封橡胶垫用于提供可靠的气密性，防止氧气泄漏。
温控系统用于调节低氧培养箱的温度。
温控系统通常包括温度传感器、加热装置和温度控制器。
温度传感器用于监测低氧培养箱内部的温度变化，将检测到的信号传输给温度控制器。
温度控制器根据设定的温度值，控制加热装置的工作，以维持低氧培养箱内部的恒定温度。
低氧培养箱通过氧气控制系统、气体混合系统、密封隔离系统和温控系统的协同工作，实现对低氧环境的控制和模拟。
它为细胞和组织的研究提供了一个理想的实验条件，可以模拟体内低氧环境下的生理和病理状态，有助于相关疾病的研究和治疗。
在细胞和组织培养实验中，低氧培养箱的应用可以提供更加接近自然环境的培养条件，提高实验的可靠性和可重复性，为细胞生物学研究和临床医学应用提供有力支持。
注以下设备参数为参考技术参数无排他指向性若有变动
注：以下设备参数为参考技术参数，无排他指向性，若有变动以发送招标文件为准，并在公告主页声明。
第一包单细胞悬液制备仪等设备仪器名称数量招标参数单细胞悬液制备仪（公共平台）1台一、技术要求1.可将组织制备成有活力的单细胞悬液，用于后续的培养和筛选。
获得目标细胞，进行后续的研究2.可制备组织匀浆，用于从样本中提取DNA/RNA；提取蛋白；分离细胞器；测定病原滴度3.处理速度快，操作温和,保持细胞的完整性和活性，可以用于后续的细胞培养。
4.预设的特殊应用程序（时间、速度、方向）将操作规程优化，可以方便地处理标本。
5.一台机器支持两种应用（生成单细胞悬液和制备亚细胞物质）。
6.用户安全，无菌操作7.样本容量：0.3-10ml8.标本大小:20-4000mg9.缓冲液/培养基体积：0.3-10ml10.转速: 200-4000rpm,两个方向11.预设时间:1-180秒12.应用程序：提供优化的操作规程和程序，自带30个预设程序13.一次处理标本数量:2个14.样品管的管盖上带有特殊设计的转子及定子15.管的中心有一个用隔膜封闭的小孔，能保证在无菌条件下，在密闭系统中安全地处理样品。
16.不需要打开试管盖，即可添加酶和其他溶液，或者取出分离的细胞或者匀浆溶液。
二、配置要求1.组织解离器主机1套2.单细胞悬液制备管50个3.组织匀浆管50个自动磁性细胞分选仪（公共平台）1台一、技术参数1.基本功能：同时从多至24个混合细胞标本中快速、高效分离目的细胞；分离后的细胞可进行培养、细胞回输、流式细胞术、核酸和蛋白提取、基因组分析等,是进行多样本的细胞免疫学、肿瘤学、分子生物学和药物等研究。
2.可同时处理≧22个样本，总的分选时间≦45min；3.最大细胞上样量：≧1×109/样本；最大磁性细胞标记量：≧1×108/样本；4.分选用超顺化磁性微珠直径≦50nm，抗体与微珠直接偶联。
可生物降解，对细胞无毒性；5.使用分选柱方式进行分选，洗脱工作站进行自动样本洗脱；6.分选得到的细胞与流式细胞仪及其它设备兼容，可用于分析和其它后续实验7.可直接对全血样本进行分选，无须对样本进行红细胞裂解或密度梯度离心8.可在生物安全柜内操作9.采用高分辨率触摸屏，预设分选程序5种，用户可自行编程扩展程序种类，可再存储10个程序10.样本体积（进样）：2-3mL；样本体积（出样）：1-4mL11.两种通量任意选择：24孔高通量模式和单柱模式二、配置1.高通量自动磁性细胞分选仪主机一台2.洗脱室1个3.洗脱室模块1个4.洗脱室盖子I 1个5.洗脱室盖子II 1个6.24孔柱盖1个7.24孔深孔板2个8.单柱适配器1个9.5ml低温试管架1个10.分选柱适配器1个11.管线1根12.类调制解调器电缆1根13.高功率电缆1根分光光度计（公共平台）1一、技术要求1.基本功能1.1 检测功能：提供光吸收、荧光、荧光共振能量转移、化学发光(辉光和闪光)检测功能1.2 时间分辨荧光(TR-FRET)及HTRF功能可升级，检测灵敏度< 1amol Eu/孔1.3仪器可升级Alphascreen检测功能，检测灵敏度<100 amol/孔1.4 可升级配备气体模块，CO2和O2浓度等环境参数需在软件中实时记录1.5 检测模式包括：终点法、动力学、光谱扫描、孔内扫描和动力学光谱扫描1.6 光谱扫描支持：光吸收、荧光、时间分辨荧光全光谱扫描1.7 光路设计：包括四光栅光路和滤光片光路1.8 检测器：3个独立检测器，用于光吸收的光电二极管，可检测800nm以上荧光信号的PMT。
低氧培养箱工作原理
低氧培养箱工作原理低氧培养箱是一种用于在低氧环境下进行细胞培养的实验设备。
它的工作原理是通过控制箱体内的气体组成和压力来模拟低氧环境，从而提供一个更接近自然条件的培养环境，以促进细胞生长和研究。
低氧培养箱的主要部件包括气体控制系统、温度控制系统和湿度控制系统。
首先，气体控制系统起到关键的作用，它通过控制进入箱体的气体组成和流速，来实现低氧环境的模拟。
一般来说，低氧培养箱会配备一个气体混合器，用来将空气中的氧气和氮气按照一定比例混合，生成低氧气体。
这样的气体混合器通常会配备氧气和氮气的流量计，通过调节两者的流速，可以精确地控制箱体内的氧气浓度。
温度控制系统也是低氧培养箱的重要组成部分。
细胞的生长和代谢活动受到温度的影响，因此在培养细胞时需要保持适宜的温度。
低氧培养箱通常具备一个温度控制器，通过感应箱体内的温度变化，并调节加热和制冷系统的工作来控制箱体的温度。
温度控制系统的稳定性和精确性对于细胞培养的成功至关重要。
湿度控制系统也是低氧培养箱的一个重要组成部分。
细胞在培养的过程中需要适当的湿度来保持其正常的生长和代谢活动。
低氧培养箱通常配备一个湿度控制器，通过调节湿度控制系统中的加湿和除湿装置，来控制箱体内的湿度。
湿度控制系统的工作需要与温度控制系统协调配合，以提供一个稳定的培养环境。
在低氧培养箱中进行细胞培养时，还需要注意一些细节。
首先，需要在培养箱中加入适当的培养基和营养物质，以提供细胞生长所需的养分。
此外，还需要定期检查培养箱内的氧气和湿度浓度，确保其稳定在所需要的范围内。
同时，还需要定期清洁和消毒培养箱，以防止细菌和霉菌的污染。
低氧培养箱通过控制气体组成、温度和湿度来模拟低氧环境，为细胞培养提供了更加接近自然条件的环境。
它的工作原理主要集中在气体控制系统、温度控制系统和湿度控制系统上。
通过合理调节这些系统的工作，可以提供一个稳定、精确的低氧培养环境，促进细胞生长和研究的进行。
在使用低氧培养箱时，还需要注意一些细节，以确保培养的成功和结果的准确性。
低氧工作站哪些优势可以描述
低氧工作站哪些优势可以描述
低氧工作站作用和构成
低氧工作站是一种用于细胞培养、细胞实验和生化实验的实验室设备。
它通过控制培养箱内的氧气浓度，使细胞能够在低氧环境下生长和繁殖。
低氧工作站由主控制箱、气体控制箱、培养箱和氧气传感器等组成。
工作原理是基于氧气分子的渗透性和扩散性。
主控制箱中放置着氧气控制器，在气体控制箱内部会通过气体阀门将氧气和氮气等气体控制在一定比例下，向培养箱内不断注入气体。
在培养箱内部，设置了氧气传感器，可以实时监测培养箱内的氧气浓度，并将数据反馈给主控制箱。
主控制箱根据氧气传感器测量的数据，精确地控制氧气的浓度。
低氧工作站产品特点：
1、尺寸小巧，非常适于小样本的研究工作；
2、采用高质量材料制造，四面透明可视，并具有良好的绝缘性和抗腐蚀性；
3、提供全自动湿度控制、氧气检测系统、内置电源插座、聚光照明、催化剂、培养皿搁架、手套；
4、传输舱：在仪器顶部的传输舱，一次可放10只培养皿，可快速取放培养皿；
5、裸手操作：只需裸露双手就可操作，操作者手腕周围有空气密封垫，更大有效工作空间，使用气体更加节省，操作人员可在数秒内将手伸入工作台内，可保持很好的厌氧环境；。
低氧工作站功能需求
8月12日具体配置及参数一、低氧工作站：1.★箱体材料：箱体采用材料须经退火处理的聚丙烯酸(亚克力)，厚道≥10mm；2.★可容纳≥900个90mm的平皿，培养区域不小于210升；3.★内置HEPA高效空气过滤器，腔体内达到一级净化标准（ISO 14644-1Class 3）；4.★操作界面采用PLC可编程逻辑控制系统，可设置五个不同级别的用户密码及工程师代码，触屏上清晰显示警报和状态信息5.转移闸容积不小于12升，采用N2吹洗，可容纳至少40块培养皿，在60秒内顺利完成将样品或设备转出或转进工作站内；6.转移闸供气：氮气吹洗，60秒内完成；7.★具有转移闸智能保护功能：在转移闸内部不完成氮气气体吹洗的情况下，无法打开内部自动门。
在内门打开的时候，外部转移闸的门也无法打开8.氧气控制范围及精度：0.1%-20%, 精度0.1%；9.★氧气探头使用寿命至少2年。
氧气探头经AD转换，将0%及20.9%两点的电化学信号强弱用直观的数字显示，探头性能及寿命情况由数字显示；10.氧气探头校正：直接用压缩空气和纯氮气校正；11.配置红外二氧化碳控制模块，二氧化碳控制范围0.1%--15%，显示精度0.1%，探头控制精度±0.02%+2%读数值；12.温度控制范围：高于环境温度5℃至45℃，腔体内温度均一性±0.6℃，显示精度0.1℃，控制精度0.1℃；13.双灯管带通风降温装置的荧光照明系统，带最长240分钟延时关闭功能；14.★仪器内置降低湿度控制单元，采用Peltier半导体冷凝器降低湿度；15.标配舷舱式袖套，舷舱内由无线脚踏开关控制抽真空及充氮气；16.配置裸手操作装置；17.配置内置双电源插座；18.配置可移动前面板，19.配置数据记录模块，记录氧气、温度、湿度、二氧化碳浓度的变化情况，可直观在屏幕上查看数据曲线；20.须具备以下可通过后期升级实现功能扩展：1). 主动增湿系统：水滴泵至105度加热板产生湿蒸汽，并自动喷入腔体内，可控制相对湿度最高达到90%，2). 真空吸液口：配合外置真空泵，用于细胞培养过程换培养基时使用，科研人员无需取出细胞培养瓶即可在工作站内更换培养液详细配置：1. 低氧细胞工作站（标配可移动前面板），1台；2. 氮气减压阀，1个3. 氢气减压阀，1个4. 空气减压阀，1个5. 二氧化碳气减压阀，1个6．内置氧气探头，1个7. 内置红外二氧化碳探头，1个8. 蒸发除湿器，1个9. HEPA过滤系统，1套10. 内置双电源插座，1 套11. 自动袖套充气系统，1个12. 袖套，1副13. 手套固定O型圈，2个14. 手腕密封圈，1个15. 气管连接工具，1套16. 滑石粉，1份二、小动物荧光发光三维成像系统：主要供能及应用领域1、系统需具备以下功能：1）具备生物发光及荧光二维成像功能；2）具备可提供深度、浓度信息的生物发光及荧光三维成像功能；3）具备基于切伦科夫辐射原理的放射性同位素成像功能；4）数据可与CT、MRI、PET/SPECT等其他分子影像系统联用。
干细胞低氧制备
干细胞低氧制备引言：干细胞是一类具有自我更新和多向分化潜能的细胞，被广泛应用于组织工程、再生医学和药物筛选等领域。
干细胞的制备方法有很多种，其中低氧环境下的培养是一种常见的制备方法。
本文将探讨干细胞在低氧环境下的制备方法及其应用。
一、干细胞低氧培养的原理在正常氧气浓度（20%）下培养的细胞，体外培养的时间较长，容易出现细胞老化、凋亡和分化的现象。
而将细胞培养于低氧环境（通常为3-5%）下，则可以模拟体内组织的低氧状态，提高细胞的存活率和增殖能力，并保持其干细胞特性。
这是因为低氧环境可以激活细胞内的一些信号通路，如HIF-1α信号通路，进而促进干细胞的自我更新和增殖。
二、干细胞低氧培养的方法1. 低氧培养箱法：干细胞可以通过将培养基置于低氧培养箱中进行低氧培养。
低氧培养箱会调节氧气浓度，保持细胞处于低氧环境中。
这种方法操作简单，但需要专门的设备。
2. 化学物质法：可以通过加入化学物质来模拟低氧环境，如使用二氮化碳、硫化氢等气体来调节培养基中的氧气浓度。
这种方法相对简单，但需要对化学物质有一定的了解和掌握。
3. 三维培养法：将干细胞培养于三维结构的载体上，如海藻酸盐凝胶、生物支架等，在这些载体中形成低氧环境，促进干细胞的存活和增殖。
三、干细胞低氧培养的应用1. 组织工程：低氧环境可以提高干细胞的存活率和增殖能力，有利于干细胞在体外构建组织工程结构。
通过干细胞低氧制备的组织工程产品可以用于修复和替代受损组织，如心脏、肝脏等。
2. 再生医学：干细胞低氧制备的干细胞可以用于再生医学领域的研究和应用。
例如，通过低氧培养可以获得具有多向分化潜能的干细胞，可以用于治疗神经系统疾病、骨骼肌肉损伤等。
3. 药物筛选：低氧环境能够模拟体内组织的低氧状态，因此干细胞低氧制备的细胞可以用于药物筛选。
通过将药物作用于低氧环境下的干细胞，可以更准确地评估药物的疗效和毒性。
结论：干细胞低氧制备是一种常见的制备方法，可以提高干细胞的存活率和增殖能力，并保持其干细胞特性。
细胞乏氧实验报告
一、实验目的1. 了解细胞乏氧的基本概念和生理意义；2. 掌握细胞乏氧的检测方法；3. 分析细胞乏氧对细胞生长和代谢的影响。
二、实验原理细胞乏氧是指细胞在缺氧条件下生长和代谢的现象。
在缺氧条件下，细胞会通过降低代谢速率、增加无氧代谢途径来适应环境。
细胞乏氧的检测方法主要包括：测量细胞内乳酸浓度、细胞呼吸酶活性、细胞增殖能力等。
三、实验材料1. 细胞：小鼠成纤维细胞；2. 实验试剂：DMEM培养基、胎牛血清、细胞乏氧指示剂、乳酸检测试剂盒、细胞呼吸酶检测试剂盒、细胞计数试剂盒；3. 仪器：细胞培养箱、细胞培养板、酶标仪、显微镜、细胞计数仪等。
四、实验方法1. 细胞培养：将小鼠成纤维细胞接种于培养瓶中，置于细胞培养箱中培养，待细胞生长至对数生长期；2. 乏氧处理：将细胞分为正常组和乏氧组，正常组细胞继续在正常氧气浓度下培养，乏氧组细胞在细胞培养箱中设置低氧环境（氧气浓度约1%）培养；3. 细胞内乳酸浓度检测：采用乳酸检测试剂盒，分别检测正常组和乏氧组细胞内乳酸浓度；4. 细胞呼吸酶活性检测：采用细胞呼吸酶检测试剂盒，分别检测正常组和乏氧组细胞呼吸酶活性；5. 细胞增殖能力检测：采用细胞计数试剂盒，分别检测正常组和乏氧组细胞增殖能力；6. 细胞形态观察：利用显微镜观察正常组和乏氧组细胞的形态变化。
五、实验结果1. 细胞内乳酸浓度：乏氧组细胞内乳酸浓度显著高于正常组；2. 细胞呼吸酶活性：乏氧组细胞呼吸酶活性显著低于正常组；3. 细胞增殖能力：乏氧组细胞增殖能力显著低于正常组；4. 细胞形态：乏氧组细胞形态出现明显变化，细胞体积减小，细胞核染色质浓缩，细胞膜出现皱褶等。
六、实验分析1. 细胞乏氧导致细胞内乳酸浓度升高，说明细胞在缺氧条件下主要通过无氧代谢途径产生能量；2. 细胞乏氧导致细胞呼吸酶活性降低，说明细胞在缺氧条件下有氧代谢途径受阻；3. 细胞乏氧导致细胞增殖能力降低，说明细胞在缺氧条件下生长受到抑制；4. 细胞形态变化说明细胞在缺氧条件下出现适应性改变。
DFE微量氧分析仪中文
氧分析仪实用说明一．添加电解液电解液具有腐蚀性,添加时要做好防护添加步骤：1.用活扳手把进气管 INLET 上卡套及螺帽卸下。
2.打开前盖,把在氧气探头附近的9针插子从接头处拔开3.探头前面,两个固定架上的拇指螺丝松开。
4.将探头整体向前拉出一段,可以看到流量计上端连接的软管,软管与流量计的连接处是快速接头,这时按图示拆下软管。
5.从仪器上把探头整体拿出6.打开盛装电解液罐的盖子,倒入其中一瓶电解液,使之完全流入罐内。
7.重装完毕,盖上盖子拧紧以防电解液泄露。
8.重新装回探头的顺序为4-1步骤9.添加电解液完成后需静止60分钟,再通气使用。
二．采样气体连接设备：1.采样气入口/出口都在仪器的尾端,如下图：采样气入口和出口提供了可供连接1/8”不锈钢管的接头。
在设备上连接任何气管都要充分的连接。
别用扳手把背板螺帽不要拧太紧。
2.净化设备提供给设备的标样氮气含氧量浓度越低越好。
如果氧分仪的出口直接通大气,这时在出口处要加压力调节阀,使出口气体流量在 SCFH,这样不会因为过压而损坏探头。
仪器的背压不要超。
如装置输出口的气管安装过长 > ,产生的背压将加在氧气探头上,导致超过允许值。
如上述原因,两种方法解决：1 出口换成1/4inch 管；2 尽量减少输出管弯迂。
三．电池充电氧分析仪接通交流电源,打开箱盖前门,把开关打到“1”即开的位置。
充满电时间为12小时；如泵运行,充满时间为16小时1 用电池模式下,LCD显示屏右下方显示“BAT”,电池电量低时,显示屏右下方显示“LOW”另外可以发出滴滴报警,如果电池电量太低,分析仪会自动停机。
2 用交流电模式下,电池电量低时,在屏幕右方显示“CHG”,充满电时,右下方没有任何显示。
四．开机操作1.开机设备交流电源电压范围：100-240VAC,送电前,确定仪器内部电源开关OFF “0”位置,这时再接交流电源。
注意：送电前必须检查电源开关位于OFF位置才能接交流电源。
HQ40d系列(LBOD)简易操作指南-
HQ40d系列(LBOD)简易操作指南-简易操作指南-HQ40d系列(LBOD)第一部分：仪器主要技术指标主机电源需求：4节AA碱性电池或镍氢电池。
保存温度：-20～60℃，操作温度：～60℃。
数据存储：最多500个数据。
测量范围：0.05–10.0mg/L (ppm)。
显示单位：mg/L或百分饱和度。
准确度：±0.05mg/L。
温度量程：～50℃，保存、操作、样品温度：10～30℃。
温度分辨率：0.1℃，温度准确度：±0.2℃(@ 20±5℃)。
探头专门为BOD培养瓶配合使用进行了特殊设计，并增加了搅拌器。
第二部分：使用环境要求LBOD探头用于测量水样中的溶解氧数值，并非直接测量BOD数值。
探头前部专门为与BOD培养瓶配合使用进行了特殊设计，并增加了搅拌器。
第三部分：仪器开机1.仪器操作面板和显示屏如下图：2.仪器显示屏显示内容说明如下图：3.新的LBOD探头使用前首先需要把传感器帽安装在探头上。
未安装传感器帽的探头不得直接插入水样中进行测量。
4.新仪器第一次打开电源后，仪器显示要求连接一个探头。
此时先按仪器选项键，设定好仪器的日期和时间，然后再将新探头连接到仪器上。
第四部分：仪器操作1.样品测量LBOD溶解氧探头的传感器帽校正数据已包含在纽扣电池ibutton中，用户不需要校正，即可以直接开始测量。
在BOD样品5天培养前和培养结束后，将探头插入装满水样的BOD瓶中，按下探头顶部搅拌器开关开始搅拌，直接按绿键，即可以读出水样溶解氧数值。
操作时动作要迅速，避免引入外部空气。
2.探头校正如果用户希望自己对探头进行校正，可以设置一个用户方法进行校正。
校正之后，用户可以使用自己校正的数据进行测量，也可以选择仪器默认校正数据进行测量。
按下仪器选项键，在显示的菜单中选择“LBOD101 method>Save Current Method As”，自己取一个新方法的名字（如method1）进行保存。
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低氧细胞培养工作站
超凡卓越!
简洁、高效、实用
低氧研究案例细胞生长
经证实，减少培养箱内氧气含量水平可以增强干细胞和祖细胞繁殖率。
实验结果发现，低氧
状态下细胞每阶段的平均扩增约为9倍，而相反在氧气含量为20%的条件下，细胞每阶段的扩增只
有5倍（Fig. 1A）。
在超过6周的培养中，在低氧（470,000 vs 16,000）环境中hMSCs 细胞扩增近30倍（Fig. 1B）。
而hMSCs细胞在低氧环境下培养，5天内在低氧状态下细胞扩增数量和常氧状态下扩
增数量并没有显著的区别，但是到第7天两者的细胞数量有了显著区别（Fig. 1C）。
时间（天）
Fig 2水在空气和氧气中细胞的初级增长
基因表达
Figi. （A）第7天时细胞数量(B) hMSCs 细胞扩增(C) P4 hMSC 增长曲线图(n=4; *p<0.05) 细胞数（logio）
1DUS
in
10
・H
Q'
4 7
its?
fe 4( Lure
在空气和氧气中细胞的初级增长
在仅一天的低氧培养（H:N=1.3）后hMSCs （ Fig. 3A and B ）中Oct ・4 mRNA 水平升高，该数据在随后的3・7天内持续显 著升高，第5天达到峰值（H:N=4.2）。
我们早期的研究观察到低氧 hMSCs 中Oct ・4值
较高，并且在氧气含量为
1・5%时，培养的胚胎干细胞也可得到相似结果。
Oct ・4表达增强是胚胎干细
胞多能性试验中一种确定的指示剂。
该推论也可适用于成人干细胞群。
N
H
14
7
14
7
Oct-4
GAPDH
» MO VM
Fig 3
（ A ）在常氧（N ）和缺氧（H ） P4 hMSCs 状态下Oct ・4表达。
（B ） Oct ・4和HIF ・2a （n=4 ; ★数据
显示高于第0天；数据显示高于第1天）与qPCR 表达等级的相尖性。
分化和细胞形态
逬行缺氧培养（Fig.4A 和B ）时，联接蛋白43水平明显升高。
使用膨胀介质进行单层培养11天时，在低氧hMSCs 中 观察到联接蛋白43表达增长显著。
（Fig. 4E 和F ）
Ctfirlrsili U
Fig 4.常氧状态（A ）和缺氧状态（B ）下联接蛋白43的表达。
hMSCs 相位对比图像显示在培养过程中细胞形态的变化。
在常氧（
11
E ）和低氧（
F ）状态下。
低氧 高氧气
高二氧化碳正常碳氧产
低氧细胞培养工作站
有效控制培养箱内氧气和二氧化6炭，适用于任何反应
箱 品特点：氧气控制 独立二氧化碳控制 隔绝污染
数值记录（记忆卡）中控系统编程（可选）
5CM-O2CO2 GCM-O2E
/3.12kg 0.82kg 0%/0.1 〜30% 0~100%/0.1~100%
:0%/0.1~20% 不适用
40-123%/ 0-100% -40-123%/0-100%
解析度 0.1%
02
控制允差 设定值范围
+/-0.2%内范围在0・
30%内增量 0.1%
不适用
C02控制允羌 不适用
不适用
02
精确度 +/- 2% FSD @ 20C （68F ） ,1bar 压
力，应用气体2.5%的
甲醛体积
不适用
C02
精确度 不适舟
温度/湿度/精确度* +/-0.4 C , +/-3.0% RH
+/-0.4 C , +/-3.0%
RH
+/-0.4 C , +/-3.0%
RH
+/-0.4 C , +/-3.0%
RH 运行温度范围 -20-50C
02传感器寿命 1年
不适用
1年
1年
数据保存（USB
内存） 有 中央监视器（可选） 有
功率 85-264VAC / 50W 气压 0.8 bar(12psi)~ 1bar(15psi)
优化的自控能力 可选：所有EXL 导航仪均配有温度传感器和湿度传感器。
（您可以订购No.・TH 型
号）
订购指南
安装案例：R&D中心细胞疗法。