HE Masson染色 - 360文档中心

肾缺血实验报告

1. 建立肾缺血模型，观察肾缺血对肾脏功能的影响。

2. 探讨肾缺血对肾脏组织形态学、病理生理学及生物化学指标的影响。

3. 为临床肾缺血疾病的防治提供理论依据。

二、实验材料1. 实验动物：清洁级雄性SD大鼠，体重200-250g，共40只。

2. 实验仪器：手术显微镜、超声刀、手术器械、生理盐水、肝素、0.9%氯化钠溶液等。

3. 实验试剂：苏木素-伊红（HE）染色试剂盒、Masson染色试剂盒、肾小球滤过率（GFR）测定试剂盒、血清肌酐（Scr）测定试剂盒、尿素氮（BUN）测定试剂盒等。

三、实验方法1. 实验分组：将40只SD大鼠随机分为4组，每组10只，分别为正常组、肾缺血模型组、缺血预处理组、肾缺血+预处理组。

2. 建立肾缺血模型：采用腹主动脉夹闭法建立肾缺血模型。

麻醉大鼠后，无菌条件下进行手术，暴露腹主动脉，使用无创动脉夹闭腹主动脉，持续夹闭时间为45分钟。

3. 缺血预处理：在建立肾缺血模型前30分钟，给予大鼠预先给予一定浓度的肝素和生理盐水溶液，以降低肾缺血引起的肾脏损伤。

4. 观察指标：（1）肾小球滤过率（GFR）：通过测定大鼠尿量、血清肌酐（Scr）和尿素氮（BUN）浓度，计算GFR。

（2）肾脏组织形态学：采用HE染色和Masson染色观察肾脏组织形态学变化。

（3）肾脏生物化学指标：检测血清Scr和BUN浓度。

5. 数据处理：采用SPSS 22.0软件进行统计学分析，数据以均数±标准差（±s）表示，组间比较采用单因素方差分析（ANOVA）和LSD检验。

1. 肾小球滤过率（GFR）：与正常组相比，肾缺血模型组GFR显著降低（P<0.05）；缺血预处理组和肾缺血+预处理组GFR与正常组相比无显著差异（P>0.05）。

2. 肾脏组织形态学：HE染色结果显示，肾缺血模型组肾脏组织出现明显的水肿、炎症细胞浸润和肾小球纤维化等病变；缺血预处理组和肾缺血+预处理组肾脏组织形态学变化与正常组相似。

masson染色结果分析

Masson三色染色液说明书【产品名称】Masson三色染色液【包装规格】货号：DC0032套组包装规格：8×20ml/盒、8×100ml/盒、8×250ml/盒【预期用途】主要用于组织中结缔组织、肌肉和胶原纤维的组织细胞学染色。

【检验原理】Masson三色染色又称马松染色，是胶原纤维染色权威而经典的技术方法，所谓三色染色通常是指染胞核和能选择性的显示胶原纤维和肌纤维。

该法染色原理与阴离子染料分子的大小和组织的渗透有关：分子的大小由分子量来体现，小分子量易穿透结构致密、渗透性低的组织；而大分子量则只能进入结构疏松的、渗透性高的组织，苯胺蓝的分子量很大，染色后肌纤维呈红色，胶原纤维呈蓝色，主要用于区分胶原纤维和肌纤维。

【主要组成成分】试剂组成主要成分1、Weigert铁苏木素A液苏木素2、Weigert铁苏木素B液三氯化铁3、酸性乙醇分化液乙醇4、蓝化液碳酸盐5、丽春红品红染色液丽春红、品红6、乙酸溶液乙酸7、磷钼酸溶液磷钼酸8、苯胺蓝染色液苯胺蓝【储存条件及有效期】5℃～35℃保存，原包装未开封染色液的有效期为l8个月，在有效期内的已开封染色液建议在开封后6个月内使用完，每次用后应及时拧紧瓶盖，以免挥发或变质。

【样本要求】组织片充分固定和脱蜡。

【检验方法】1、组织固定于Bouin氏固定液(另购)或Zenker氏固定液(另购)或10%中性福尔马林固定液(另购)等，流水冲洗，常规脱水包埋；2、切片常规脱蜡至水；3、取适量的Weigert铁苏木素A液和Weigert铁苏木素B液等量混合,即为Weigert铁苏木素染色液，用Weigert铁苏木素染色液染色，流水稍洗；4、酸性乙醇分化液分化数秒，流水冲洗数分钟；5、蓝化液返蓝数秒，流水冲洗数分钟；6、丽春红品红染色液染色数分钟，流水稍冲洗；7、将蒸馏水:乙酸溶液按一定的比例配制乙酸工作液，用乙酸工作液洗切片；8、磷钼酸溶液处理后，倾去玻片上磷钼酸溶液(不用水洗)；9、苯胺蓝染色液复染，倾去玻片上染色液(不用水洗)；10、用乙酸工作液处理切片，至切片无蓝色脱出(必要时镜下控制)；11、95%乙醇迅速脱水，无水乙醇脱水数次后，二甲苯透明，中性树胶封固。

masson染色结果分析

Masson三色染色液说明书【产品名称】Masson三色染色液【包装规格】货号：DC0032套组包装规格：8×20ml/盒、8×100ml/盒、8×250ml/盒【预期用途】主要用于组织中结缔组织、肌肉和胶原纤维的组织细胞学染色。

【检验原理】Masson三色染色又称马松染色，是胶原纤维染色权威而经典的技术方法，所谓三色染色通常是指染胞核和能选择性的显示胶原纤维和肌纤维。

该法染色原理与阴离子染料分子的大小和组织的渗透有关：分子的大小由分子量来体现，小分子量易穿透结构致密、渗透性低的组织；而大分子量则只能进入结构疏松的、渗透性高的组织，苯胺蓝的分子量很大，染色后肌纤维呈红色，胶原纤维呈蓝色，主要用于区分胶原纤维和肌纤维。

【主要组成成分】试剂组成主要成分1、Weigert铁苏木素A液苏木素2、Weigert铁苏木素B液三氯化铁3、酸性乙醇分化液乙醇4、蓝化液碳酸盐5、丽春红品红染色液丽春红、品红6、乙酸溶液乙酸7、磷钼酸溶液磷钼酸8、苯胺蓝染色液苯胺蓝【储存条件及有效期】5℃～35℃保存，原包装未开封染色液的有效期为l8个月，在有效期内的已开封染色液建议在开封后6个月内使用完，每次用后应及时拧紧瓶盖，以免挥发或变质。

【样本要求】组织片充分固定和脱蜡。

【检验方法】1、组织固定于Bouin氏固定液(另购)或Zenker氏固定液(另购)或10%中性福尔马林固定液(另购)等，流水冲洗，常规脱水包埋；2、切片常规脱蜡至水；3、取适量的Weigert铁苏木素A液和Weigert铁苏木素B液等量混合,即为Weigert铁苏木素染色液，用Weigert铁苏木素染色液染色，流水稍洗；4、酸性乙醇分化液分化数秒，流水冲洗数分钟；5、蓝化液返蓝数秒，流水冲洗数分钟；6、丽春红品红染色液染色数分钟，流水稍冲洗；7、将蒸馏水:乙酸溶液按一定的比例配制乙酸工作液，用乙酸工作液洗切片；8、磷钼酸溶液处理后，倾去玻片上磷钼酸溶液(不用水洗)；9、苯胺蓝染色液复染，倾去玻片上染色液(不用水洗)；10、用乙酸工作液处理切片，至切片无蓝色脱出(必要时镜下控制)；11、95%乙醇迅速脱水，无水乙醇脱水数次后，二甲苯透明，中性树胶封固。

masson 染色肾组织的描述

尊敬的客户：在本文中，我将为您撰写一篇关于“masson 染色肾组织的描述”的文章。

我将以从简到繁、由浅入深的方式来探讨这一主题，以便您能更深入地理解。

1. masson 染色肾组织的描述让我们来了解一下什么是masson染色以及它在肾组织中的应用。

masson染色是一种组织染色方法，主要用于分辨胶原纤维和肌纤维，并且可用于观察肾小球间质的纤维化情况。

在肾脏疾病的诊断中，masson染色可以帮助医生准确评估患者的肾脏病变程度，对疾病的诊断和治疗具有重要的指导意义。

2. masson 染色肾组织的应用在肾脏病变的研究中，masson染色被广泛应用于观察肾小球间质的纤维化程度。

肾小球间质的纤维化是很多肾脏疾病的共同表现，包括慢性肾炎、糖尿病肾病等。

通过masson染色，可以清晰地观察到肾小球周围的胶原纤维沉积情况，以及肾小管间质的纤维化情况，从而评估肾脏病变的程度和类型。

3. masson 染色肾组织的意义根据masson染色结果，医生可以更准确地判断患者肾脏病变的类型和程度，为后续的治疗方案提供重要参考。

通过观察纤维化程度，可以及时采取有效的治疗措施，延缓疾病的进展，保护肾功能。

masson 染色在肾脏疾病的诊断和治疗中具有非常重要的意义。

4. 个人观点和理解在我看来，masson染色对于肾脏疾病的诊断和治疗具有重要的意义。

通过对肾组织进行染色观察，可以从纤维化的角度全面评估病变情况，为医生制定个性化的治疗方案提供重要依据。

masson染色的应用也为科学研究提供了重要的技术支持，有助于深入了解肾脏疾病的发病机制和进展规律。

总结回顾通过本文的介绍和解释，相信您已经对masson染色肾组织的描述有了更深入的了解。

这种染色方法在肾脏疾病的诊断和治疗中扮演着重要角色，帮助医生更准确地评估病变情况，制定有效的治疗方案。

也为科学研究提供重要的技术支持，推动肾脏疾病的深入研究和治疗进展。

希望本文能够帮助您更全面、深刻和灵活地理解masson染色肾组织的描述。

肾小球he染色形态学

肾小球he染色形态学全文共四篇示例，供读者参考第一篇示例：肾小球是肾脏的重要组成部分，是肾脏的滤过单位。

肾小球结构包括毛细血管病变、系膜区及鲍曼囊。

染色形态学是通过染色技术观察肾小球的结构和组织学细胞学特点，对于肾小球疾病的诊断和治疗至关重要。

肾小球he染色形态学作为常规的组织学染色技术之一，常常用于观察肾小球的形态学特点。

HE染色是指用赛莱明了，氯胺酮，乙醚进行染色的组织切片染色方法，通常显示细胞核呈蓝色、胞质呈粉红色。

这种染色方法在观察组织形态和结构方面有很好的效果，被广泛应用于临床实践和病理诊断中。

在HE染色下观察肾小球，我们可以观察到毛细血管病变的不同类型，包括系膜增生、毛细血管内皮细胞肿胀、基底膜增厚、毛细血管内血栓形成等。

这些变化反映了肾小球病变的严重程度和类型，有助于医生进行病因学分析和疾病诊断。

除了毛细血管病变外，HE染色还可以观察到肾小球系膜区和鲍曼囊的结构。

系膜区是肾小球内的细胞间质区域，包括系膜细胞、系膜基质和免疫细胞等，起着支持和调节作用。

HE染色可以清晰地显示系膜区的结构和组织学变化，如系膜细胞增生、系膜基质增加等，有助于判断肾小球疾病的病变类型。

鲍曼囊是肾小球内的尿血管腔，是尿液产生的地方。

HE染色可以清晰地显示鲍曼囊的形态和结构，包括袢、锥体、管腔等部分。

通过观察鲍曼囊的形态学特征，可以了解肾小球的滤过功能和泌尿功能是否正常。

肾小球HE染色形态学是肾小球疾病诊断和治疗的重要手段。

通过观察肾小球的形态学特征，可以及时发现肾小球病变的不同类型和程度，为临床医生制定合理的治疗方案提供重要参考。

对肾小球HE染色形态学有深入的研究和了解，对于提高肾小球病变的诊断准确率和治疗效果具有重要意义。

希望通过我们的努力，能够为相关学科的研究和应用提供更多有益的信息和帮助。

【2000字】第二篇示例：肾小球是肾脏的结构之一，是肾脏进行血液过滤的地方。

在肾小球中，有许多细胞和结构负责过滤血液中的废物和维持体内的水平衡。

masson染色结果分析

Masson三色染色液说明书【产品名称】Masson三色染色液【包装规格】货号：DC0032套组包装规格：8×20ml/盒、8×100ml/盒、8×250ml/盒【预期用途】主要用于组织中结缔组织、肌肉和胶原纤维的组织细胞学染色。

【检验原理】Masson三色染色又称马松染色，是胶原纤维染色权威而经典的技术方法，所谓三色染色通常是指染胞核和能选择性的显示胶原纤维和肌纤维。

该法染色原理与阴离子染料分子的大小和组织的渗透有关：分子的大小由分子量来体现，小分子量易穿透结构致密、渗透性低的组织；而大分子量则只能进入结构疏松的、渗透性高的组织，苯胺蓝的分子量很大，染色后肌纤维呈红色，胶原纤维呈蓝色，主要用于区分胶原纤维和肌纤维。

【主要组成成分】试剂组成主要成分1、Weigert铁苏木素A液苏木素2、Weigert铁苏木素B液三氯化铁3、酸性乙醇分化液乙醇4、蓝化液碳酸盐5、丽春红品红染色液丽春红、品红6、乙酸溶液乙酸7、磷钼酸溶液磷钼酸8、苯胺蓝染色液苯胺蓝【储存条件及有效期】5℃～35℃保存，原包装未开封染色液的有效期为l8个月，在有效期内的已开封染色液建议在开封后6个月内使用完，每次用后应及时拧紧瓶盖，以免挥发或变质。

【样本要求】组织片充分固定和脱蜡。

【检验方法】1、组织固定于Bouin氏固定液(另购)或Zenker氏固定液(另购)或10%中性福尔马林固定液(另购)等，流水冲洗，常规脱水包埋；2、切片常规脱蜡至水；3、取适量的Weigert铁苏木素A液和Weigert铁苏木素B液等量混合,即为Weigert铁苏木素染色液，用Weigert铁苏木素染色液染色，流水稍洗；4、酸性乙醇分化液分化数秒，流水冲洗数分钟；5、蓝化液返蓝数秒，流水冲洗数分钟；6、丽春红品红染色液染色数分钟，流水稍冲洗；7、将蒸馏水:乙酸溶液按一定的比例配制乙酸工作液，用乙酸工作液洗切片；8、磷钼酸溶液处理后，倾去玻片上磷钼酸溶液(不用水洗)；9、苯胺蓝染色液复染，倾去玻片上染色液(不用水洗)；10、用乙酸工作液处理切片，至切片无蓝色脱出(必要时镜下控制)；11、95%乙醇迅速脱水，无水乙醇脱水数次后，二甲苯透明，中性树胶封固。

masson 染色肾组织的描述

masson 染色肾组织的描述摘要：一、引言二、Masson染色原理三、Masson染色在肾组织中的应用四、Masson染色的操作步骤五、Masson染色结果的解读六、Masson染色在肾组织研究中的优势与局限七、展望与总结正文：一、引言Masson染色是一种常用的组织化学染色方法，广泛应用于病理学、组织学等领域。

在肾组织研究中，Masson染色具有重要的意义。

本文将对Masson染色在肾组织中的应用进行详细介绍，并探讨其在肾组织研究中的优势与局限。

二、Masson染色原理Masson染色是一种双染色方法，主要通过两种染色剂对组织中的胶原纤维和肌纤维进行染色。

胶原纤维呈蓝色，肌纤维呈红色。

这种染色方法能够清晰地显示肾组织的胶原纤维和肌纤维分布，有助于研究肾组织的结构与功能。

三、Masson染色在肾组织中的应用1.肾小球肾炎：Masson染色可以显示肾小球的纤维化程度，有助于判断肾小球肾炎的病理类型和病情严重程度。

2.肾间质纤维化：Masson染色可以清晰地显示肾间质的纤维化程度，有助于评估肾间质纤维化的程度和病变范围。

3.肾血管病变：Masson染色可以显示肾血管的胶原纤维分布，有助于研究肾血管病变的发生机制和病变特点。

4.肾肿瘤：Masson染色可以显示肾肿瘤周围的纤维组织，有助于判断肿瘤的侵袭性和转移风险。

四、Masson染色的操作步骤1.取材：切取新鲜肾组织块，固定于甲醛溶液中。

2.脱水：依次用乙醇、丙酮进行脱水处理。

3.透明：采用透明剂使组织透明。

4.染色：按照Masson染色试剂盒说明书进行操作，染色剂包括Masson 试剂、丽春红试剂等。

5.脱色：用分化液进行脱色处理。

6.冲洗：用清水冲洗组织切片。

7.透明：用透明剂透明处理。

8.封片：滴加封片剂，覆盖玻片，晾干。

五、Masson染色结果的解读1.胶原纤维：呈蓝色，分布于肾小球、肾小管、肾血管等部位。

2.肌纤维：呈红色，主要分布于肾小球和肾小管。

Masson染色在辅助诊断肝纤维化中应用

Masson染色在辅助诊断肝纤维化中应用1. 引言1.1 Masson染色的原理Masson染色是一种常用的组织切片染色技术，广泛应用于肝纤维化的辅助诊断中。

其原理是利用酸性品红染料染色胶原蛋白和肌纤维蛋白，这两种成分在组织切片中呈现出蓝绿色，而细胞核则呈现出红色。

这种染色方法能够清晰地显示出胶原纤维的分布和形态，从而帮助医生判断纤维化程度和类型。

Masson染色通过特定的着色方式可以将不同组织结构和成分区分开来，使得观察者能够更准确地识别有关组织的特征。

在肝纤维化的诊断中，Masson染色通常用于显示胶原纤维在肝脏组织中的沉积情况，帮助医生评估病变程度。

通过观察Masson染色的结果，医生可以判断出肝脏组织中胶原纤维的增多和分布情况，从而判断出肝纤维化的严重程度。

Masson染色的原理是利用不同成分在酸性品红染料染色下呈现出的不同颜色来区分组织结构，从而帮助医生辅助诊断肝纤维化等疾病。

这种染色方法具有简单易行、结果清晰等优点，是肝纤维化辅助诊断中常用的技术之一。

1.2 肝纤维化的概述肝纤维化是指肝脏在长期受损或慢性炎症作用下，纤维组织不断增生，最终导致肝脏结构的改变和功能异常。

其病理特点主要表现为肝小叶结构紊乱，肝细胞损伤和坏死，以及纤维组织增生。

肝纤维化是许多慢性肝病的共同表现，如慢性乙型肝炎、慢性丙型肝炎、酒精性肝病等。

在肝纤维化的发展过程中，纤维组织的沉积逐渐增多，形成纤维化带，最终会影响肝脏的正常功能。

临床上，肝纤维化的程度往往反映了肝脏受损的程度和肝功能的恶化程度。

准确评估肝纤维化的程度对于肝病的诊断和治疗具有重要意义。

2. 正文2.1 Masson染色在肝纤维化中的应用Masson染色是一种常用的组织学染色方法，可用于观察胶原蛋白和其他纤维蛋白的沉积情况。

在肝纤维化的辅助诊断中，Masson染色可以帮助医生快速准确地识别肝脏组织中的纤维化程度，并指导后续的治疗方案。

通过Masson染色，医生可以明显看到不同颜色的纤维组织，从而对肝脏的纤维化程度进行评估。

胶原纤维染色

胶原纤维染色胶原纤维是人体中的结缔组织的主要成分，分布在全身的各个部位，组成胶原纤维的主要成分是胶原蛋白。

新鲜时呈白色，故一般称为白色纤维。

在HE染色中被染为淡红色。

它的性质是具有一定韧性及紧固性，因此它能够抵抗一定的牵拉力而不至于撕裂或拉断它们常聚集成粗细不等的束，呈波浪状。

胶原纤维由许多根纤细的胶原纤维组成。

在电镜下胶原原纤维又由更细的原纤维构成。

根据Kramen和Little所进行的电镜研究证实，胶原纤维是特有的，具有横纹的（重复期为650）原纤维。

当有病变时这些纤维可发生变形，常出现的就是胶原纤维的坏死，胶原纤维在稀酸里可发生膨胀，变成胶样物。

它们能被酸性染料染成深浅不一的粉红色，这些往往跟淀粉样物难以区别。

由于它们的屈光率较弱，因而在光学显微镜下，很难与纤维区别。

胶原纤维的分子长度约为3000，直径约为14，分子量为300000。

一、胶原纤维的组成：1、细胞内合成前胶原蛋白分子，成纤维细胞摄取合成蛋白质所需的氨基酸，包括脯氨酸、赖氨酸和甘氨酸。

在粗面内质网的核糖体上按照特定的胶厚mRNA的碱基序列，合成前α-多肽链。

后者边合成边进入粗面内质网腔中，并在羟化酶的作用下，将肽链中的脯氨酸和赖氨酸羟化经羟化后，三条前α-多肽链互相缠绕成绳索状的前胶原蛋白分子。

溶解状态的前胶原蛋白分子，两端未缠绕，呈球状构形，在粗面内质网腔风或转移到高尔基复合体内加入糖基后，分泌到细胞外。

2、厚胶原蛋白分子的细胞外聚合。

细胞外的前胶原蛋白分子，在肽内切酶的作用下，切去分子两端球状构表部分，形成厚胶原蛋白分子，粗约1.5nm，长约300nm，厚胶原蛋白分子平行排列聚合成胶原纤维。

聚合时，相互平的相邻分子错开1/4分子长度，同一排的分子，菌尾相对并保持一定距离，聚合成束，于是形成具有64nm周期横纹的胶原原纤维。

聚合时，分子内，分子间的化学基因进行缩合，交联，增加厚纤维的稳固性。

若干胶原原纤维经糖蛋白粘合成粗细子等的胶原纤维。

肝纤维化几种病理染色方法及意义归纳

肝纤维化几种病理染色方法及意义归纳徐艳华;金刚;巴图德力根;苏日古嘎;孙德志【摘要】目的:归纳肝组织各种病理切片染色方法,探讨不同方法在大鼠肝纤维化病理诊断中的意义.方法:将实验大鼠分为正常组和模型组,每组各8只,模型组腹腔注射30％CCl4橄榄油溶液2.0ml/kg,1次/4天,共7次,建立肝纤维化模型.取材肝组织制作病理切片,分别进行HE染色、弹力胶原纤维染色、网状纤维染色、Masson(马松)三色染色、天狼星红染色.结果:正常组大鼠肝组织各种染色均呈现正常形态.模型组大鼠肝脏切片HE染色示肝细胞变性、坏死,呈现大面积假小叶组织结构,属坏死后肝硬变;弹力胶原纤维染色示大量胶原纤维沉积,汇管区周围胶原纤维沉积,纤维条索较粗且染色着色较深,包裹,已形成假小叶;马松染色示大量蓝色胶原纤维沉积,自汇管区周围向外延伸,纤维条索较粗且染色着色较深,表明胶原纤维较多,已形成假小叶;网状纤维染色示网状纤维失去正常分布状态,自汇管区周围网状纤维塌陷、融合、增粗、包裹并已形成假小叶;天狼星红染色示各型胶原纤维自汇管区向外扩展,偏光镜下观察可见胶原沉积、扩展已形成假小叶,其中大量红色I型胶原纤维、绿色III型胶原,少量疏网状II型胶原纤维和淡黄色IV型胶原纤维.结论:HE染色可以观察细胞形态,弹力胶原纤维染色、网状纤维染色、Masson(马松)三色染色均能诊断肝纤维化,而天狼星红染色可以对肝纤维化组织中各型胶原纤维进行分型.【期刊名称】《中西医结合肝病杂志》【年(卷),期】2018(028)006【总页数】3页(P352-353,后插1)【关键词】大鼠肝纤维化;病理染色;方法;意义【作者】徐艳华;金刚;巴图德力根;苏日古嘎;孙德志【作者单位】内蒙古民族大学附属医院内蒙古通辽,028007;内蒙古民族大学附属医院内蒙古通辽,028007;内蒙古民族大学附属医院内蒙古通辽,028007;内蒙古呼伦贝尔市新巴尔虎右旗结核病防治所;内蒙古民族大学附属医院内蒙古通辽,028007【正文语种】中文肝纤维化是慢性肝炎发展至肝硬化的早期可逆阶段。

大鼠肾脏组织病理染色方法及结果解读

肾脏组织病理主要的染色方式：HE染色显示各种细胞核呈蓝色，细胞质呈红色，主要用于观察细胞的种类和数量、坏死及管型成分。

观察的病变包括：肾小球的增生、坏死及渗出性病变，肾小管上皮细胞损伤，间质水肿、间质出血、炎细胞浸润、血管炎症等。

PAS染色显示基底膜、系膜基质、糖原及糖蛋白呈紫红色，细胞核呈蓝色，能很好的显示肾小球和肾小管的基底膜，主要用于观察肾组织的基本结构，进而发现病变，判断病变性质、累及部位和轻重程度，同时根据基底膜轮廓还能判断固有细胞种类。

观察的病变包括：肾小球基底膜增厚，毛细血管袢塌陷，包曼囊壁病变，透明滴，硬化，系膜细胞和基质增多，系膜溶解，毛细血管袢内/外增殖；肾小管上皮细胞内蛋白吸收滴，肾小管基底膜增厚，肾小管炎；血管透明变性，动脉内弹力层分层等。

Masson-Trichrome三色染色显示基底膜、系膜基质和型胶原呈绿色（或蓝色，取决于使用亮绿或甲苯胺蓝），免疫复合物、纤维素样坏死、血栓均呈红色，细胞核呈蓝黑色，主要用于观察坏死性病变、免疫复合物沉积。

观察的病变包括：肾小球免疫复合物沉积，血栓，纤维蛋白，血小板；肾小管萎缩，间质纤维化；血管血栓等。

PASM-Masson染色显示基底膜和系膜基质呈棕黑色，细胞质及免疫复合物呈红色，胶原呈绿色/或蓝色（取决于套染中使用亮绿或甲苯胺蓝），该染色对肾小球结构的显示较PAS染色更为精细，主要用于观察基底膜，免疫复合物及特殊沉积物。

观察的病变包括：肾小球基底膜“钉突”和空泡，基底膜双轨，基底膜和包曼囊壁断裂，间质纤维化和动脉内弹力层分层等。

免疫荧光、免疫组化冰冻切片较好，足细胞标志物如（nephrin WT-1, podocin 等，查看足细胞病变、肾小球硬化病理观察（电镜）肾小球：1.肾小球总数、球性、节段硬化的肾小球、缺血性肾小球2.病变分布：局灶或弥漫，节段或球性3.增生：系膜增生、毛细血管内增生或渗出性，浸润细胞类型或数量4.K-W结节5.毛细血管袢基底膜断裂、增厚、病变（钉突、空泡）肾小管间质1.肾小管急性损伤2.肾小管上皮细胞凝固性坏死3.肾小管基底膜异常4.肾小管炎5.间质炎细胞浸润6.间质出血水肿7.间质纤维化、肾小管萎缩血管动脉炎、动脉内皮细胞病变、动脉栓塞、管周毛细血管炎细胞浸润；动脉TMA病变、动脉硬化和小动脉硬化（透明变性和内膜增厚）HE 染色图解对于肾脏的观察要看肾小球、肾小管、肾间质及肾小动脉的病变，肾小球的病变又要观察肾小囊、系膜细胞及基质、毛细血管基底膜、足细胞等等等等，而且糖尿病不等于糖尿病肾病，如果是糖尿病肾病最典型的标志性病变是系膜基质无细胞性增生，形成K-W结节片子质量没有问题。

Masson染色在辅助诊断肝纤维化中应用

Masson染色在辅助诊断肝纤维化中应用1. 引言1.1 Masson染色简介Masson染色是一种常用的组织染色方法，用于检测胶原蛋白和纤维组织。

该染色方法以法国病理学家皮埃尔·马松（Pierre Masson）命名，最初用于研究纤维组织的形态结构。

Masson染色主要通过梵斯基与苏木精染液染色，使得胶原纤维呈蓝色，肌肉纤维和胶原纤维上的细胞核呈黑色或蓝色，而细胞质和胶原纤维之外的结缔组织呈红色或紫红色，从而能够清晰地区分不同类型的组织结构。

在肝纤维化的辅助诊断中，Masson染色被广泛应用于观察肝组织中的纤维化程度和类型。

通过Masson染色，医生可以清晰地看到肝组织中纤维组织的分布情况、密度和形态，从而帮助判断肝纤维化的严重程度和发展趋势。

Masson染色还可以帮助鉴别不同类型的纤维化组织，例如胶原纤维和弹性纤维，有助于提高对肝组织结构的准确理解。

Masson染色是一种简单而有效的组织染色方法，在辅助诊断肝纤维化中具有重要意义。

它的应用可以为医生提供更直观、全面的肝组织信息，有助于制定更精准的治疗方案和预后评估。

Masson染色在肝纤维化诊断中的重要性将在后续内容中进一步探讨。

1.2 肝纤维化的诊断意义肝纤维化是一种常见的肝脏疾病，它是由于长期的肝脏损伤导致肝脏组织纤维化增生而引起的。

肝纤维化的诊断在临床上具有重要的意义，因为它往往是其他肝病发展到晚期的先兆。

通过及时的诊断和治疗，可以有效预防肝纤维化进一步发展成为肝硬化甚至肝癌等严重疾病。

2. 正文2.1 Masson染色原理Masson染色是一种常用的组织染色方法，主要用于观察和分析胶原和纤维蛋白等胶原纤维的存在和分布情况。

它是通过同时染色细胞核、胶原和肌纤维蛋白，使之呈现不同的颜色，从而能够清晰地区分不同的细胞和组织结构。

Masson染色的原理主要是基于组织成分对染色剂的亲和性不同所导致的颜色差异。

具体来说，Masson染色是将织片浸入酸性酒红O染色液中，再经过苏木红和亚甲蓝的染色，最后脱水、透明和封片，使细胞核呈蓝色，胶原呈蓝色（富含胶原的纤维呈绿色），而肌纤维蛋白则呈红色。

小鼠卵巢组织切片HE和Masson染色法的比较

网络出版时间：２０２０－７－２６１０：０３　网络出版地址：ｈｔｔｐｓ：／／ｋｎｓ．ｃｎｋｉ．ｎｅｔ／ｋｃｍｓ／ｄｅｔａｉｌ／３４．１０７３．Ｒ．２０２００７２４．１５５１．０２９．ｈｔｍｌ小鼠卵巢组织切片ＨＥ和Ｍａｓｓｏｎ染色法的比较冯梓欣，田雪梅关键词：卵巢；ＨＥ染色；Ｍａｓｓｏｎ染色中图分类号：Ｒ４４６８文献标志码：Ｂ文章编号：１００１－７３９９（２０２０）０７－０８５９－０２ｄｏｉ：１０．１３３１５／ｊ．ｃｎｋｉ．ｃｊｃｅｐ．２０２０．０７．０２９接受日期：２０２０－０５－０１作者单位：华南师范大学生命科学学院，广州　５１０６３１作者简介：冯梓欣，女，硕士研究生。

Ｅｍａｉｌ：２０１７０２２１５２＠ｍ．ｓｃｎｕ．ｅｄｕ．ｃｎ田雪梅，女，博士，教授，通讯作者。

Ｅｍａｉｌ：ｘｍｔｉａｎ６９＠１６３．ｃｏｍ卵巢是雌性动物生殖系统的重要器官，卵泡是卵巢组织中的主要结构成分。

卵巢长期处于动态变化中，其中卵泡受到一系列复杂精细的调控而发生形态和结构的变化，处于不同的发育阶段［１］。

卵泡根据形态和功能可分为原始卵泡、初级卵泡、次级卵泡和成熟卵泡四个阶段，不具备生长优势的卵泡在发育进程中形成闭锁卵泡［２］。

对卵巢的组织学和病理学研究中，常常需要借助染色来观察组织切片中卵泡的形态结构，识别各种发育阶段的卵泡。

ＨＥ、ＰＡＳ、Ｍａｓｓｏｎ染色是小鼠卵巢组织石蜡切片常用的染色方法［３］。

本文比较观察ＨＥ染色和Ｍａｓｓｏｎ染色的卵巢组织切片，以探讨这两种染色方法在卵巢组织切片中的应用。

１　材料与方法１．１　试剂与仪器１．１．１　试剂　Ｂｏｕｉｎ液：饱和苦味酸水溶液７５ｍＬ，１０％中性福尔马林２５ｍＬ，冰醋酸５ｍＬ；Ｅｈｒｌｉｃｈ苏木精：取苏木精２ｇ加入１００ｍＬ无水乙醇，３７℃搅拌溶解后加入甘油１００ｍＬ，另取硫酸铝钾３ｇ加入１００ｍＬ蒸馏水，充分混匀，将上述两种液体充分混匀后再加入１０ｍＬ冰醋酸，自然氧化成熟后过滤使用；伊红染液：伊红１ｇ，９５％乙醇１００ｍＬ；１％盐酸乙醇溶液：７０％乙醇９９ｍＬ，浓盐酸１ｍＬ；Ｍａｓｓｏｎ染色试剂盒购自南京建成科技公司，内含核染液（主要成分为苏木精染液）、质染液（丽春红、酸性复红混合染液）、分色液（磷钼酸水溶液）、冲洗液（乙酸水溶液）、复染液（苯胺蓝染液）。

masson染色阅读方法

masson染色阅读方法
马松染色解读法
马松染色是一种组织学染色技术，用于区分结缔组织中的不同成分。

该技术通过利用胶原蛋白和肌纤维的高亲和力，使用酸性染料和碱性染料的组合对组织切片进行染色。

具体步骤：
1. 组织固定：将组织样品置于甲醛或福尔马林等固定液中，以保存组织结构。

2. 石蜡包埋：固定后的组织脱水并浸入石蜡中，形成石蜡包埋块，以便进行切片。

3. 切片：使用微切机将石蜡包埋块切成薄切片（通常为 4-6 微米厚）。

4. 脱蜡：将切片放置在溶剂（例如二甲苯）中，以去除石蜡。

5. 水化：将脱蜡切片逐步浸入一系列乙醇溶液（从 100% 到70%）中，以使切片复水。

6. 核染色：使用苏木精（一种碱性染料）对切片进行染色，以突出细胞核。

7. 酸性福红染色：使用酸性福红（一种酸性染料）对切片进行染色，以染色胶原蛋白和肌纤维。

8. 脱水：将染色切片再次逐步浸入一系列乙醇溶液（从 70% 到 100%）中，以脱水。

9. 透明：将脱水切片置于二甲苯等透明剂中，使其透明。

10. 安装：将透明切片安装在载玻片上，使用永久安装剂（例如加拿大树胶）覆盖。

解读结果：
马松染色后，胶原蛋白和肌纤维呈现红色，而细胞核呈现蓝色或紫色：
胶原蛋白：红色或粉红色
肌纤维：红色
细胞核：蓝色或紫色
马松染色可用于评估结缔组织的分布、结构和量化。

它广泛应用于病理学、组织学和组织工程等领域。

组织病理学染色方法

组织病理学染色方法
组织病理学染色方法主要包括常规染色、免疫组化染色和原位杂交染色。

常规染色是最基本的病理学染色方法，常用的有血液学染色（如Wright染色和Giemsa染色等）、细胞及组织学染色（如HE染色等）。

这些染色方法可以在显微镜下观察细胞或组织的形态、结构、颜色变化等，并从而确定不同细胞类型和器官组织是否正常，有助于诊断肿瘤、感染和自身免疫性疾病等。

免疫组化染色则是利用抗体与特定蛋白质的结合来标记细胞和组织中的分子结构，以实现检测和定位特定细胞及其产生的分子。

这种方法通常用于确定肿瘤患者的预后，或者在治疗前后监控治疗效果。

其中最常用的包括Immunohistochemistry（IHC）和Flow Cytometry等。

原位杂交染色则是通过DNA或RNA与荧光染料进行配对，从而标记调查特定基因序列在细胞和组织中的分布、amplification和降解等信息。

病理染色方法包括但不限于以上提到的HE染色法、PAS染色法、Masson 染色法等，具体的选择要根据研究目标来定。

建议查阅病理学书籍获取更全面准确的信息。

HE、Masson、VG、pas、免疫组化、TUNEL染色步骤

包埋，就是将已经经过固定，脱水，透明，浸蜡的组织块从最后的蜡浴取出置入充满熔融石蜡的包埋框内，包埋成块，使组织和包埋剂相熔一体并迅速冷却，这个程序称为包埋。

包埋剂凝固后，进一步加强了组织的硬度和韧度而便于进行切片。

一．石蜡包埋法石蜡包埋法是制作光学显微镜切片的常规方法，它有许多优点，操作简易便于掌握，可进行连续切片，包埋后的组织可以长期保存。

包埋的方法有自动包埋机包埋和手工包埋两种。

手工包埋的步骤如下：1.组织浸入石蜡后，包埋前将组织移入包埋用石蜡杯内。

从恒温箱取出置于三角架上，其下点燃酒精灯，以保持石蜡的溶解状态。

2.准备好包埋框，将包埋用的镊子在酒精灯上加温（防止镊子粘蜡）后，左手持蜡杯，右手把加温的镊子放在蜡口（直立状）倒蜡时让石蜡沿镊子注入包埋框内。

3.迅速镊取组织块放入包埋框石蜡内，切面朝下放正置入框底并轻轻压平，以保证不再有气泡。

4.待石蜡表面凝固前将标签贴于其上，需注意勿使标签与标本混淆，当蜡块冷至蜡面有一层透明蜡膜时，浸入冷水中迅速使其冷却，否则蜡内常形成结晶。

5.蜡块完全硬固后除去铜框，以保证蜡彻底凝固，立即修切，准备制成切片或储藏备用。

二．石蜡包埋的注意事项1.作为包埋组织使用的石蜡不仅由于气候的不同需要加以选择，而且与组织的硬度也有密切关系，过硬的组织最好用硬度较高的石蜡包埋，反之，软组织则应以硬度较低的石蜡包埋。

其熔点一般要求再60。

C左右。

2.包埋用石蜡加温不可过高，以保持其不凝固为度，温度过高容易将组织烫坏，使得组织变硬，变脆，并发生卷曲，收缩变形而不利于切片，甚至影响诊断。

另外注意埋蜡的温度和组织本身的温度，两者是否合适，温度不一致常可造成组织与周围石蜡脱裂的现象，而达不到包埋的作用。

3.包埋用石蜡应掌握用量，以组织全部包埋完毕，石蜡也恰好用完为宜。

4.包埋应注意组织病变面放在下面，并尽可能使组织放平，在不损伤组织的情况下可用镊子轻压。

5.囊壁和消化道等组织包埋时更应注意组织方位，应将组织块直立拉平，不要卷曲。

HE染色方法与步骤吐血整理

HE染色试剂配置A：0.5~1%的伊红酒精溶液：称取伊红Y0.5~1g，加少量蒸馏水溶解后，再滴加冰醋酸直至浆糊状。

以滤纸过滤，将滤渣在烘箱中烤干后，以95%酒精（即工业酒精，如果不怕浪费，用无水乙醇配制也可）100毫升溶解。

B：苏木素染液配方：(配制3000ml，可按比列减少)苏木精6g无水乙醇100ml硫酸铝钾150g蒸馏水2000ml碘酸钠1.2g冰醋酸120ml甘油900ml配制方法：将苏木素溶于无水乙醇，再将硫酸铝钾溶于蒸馏水，溶解后将甘油倾入一起混合，最后加入冰醋酸和碘酸钠。

C：1%盐酸酒精分化液：将1毫升浓盐酸加入99毫升70%酒精中即可。

染色流程(1)二甲苯（Ⅰ）15min(2)二甲苯（Ⅱ）15min（3）二甲苯：无水乙醇=1:12min(4)100%乙醇（Ⅰ）5min(5)100%乙醇（Ⅱ）5min(6)80%乙醇5min(7)蒸馏水5min(8)苏木精液染色5min(9)流水稍洗去苏木精液1-3s(10)1%盐酸乙醇1-3s(11)稍水洗10-30s(12)蒸馏水过洗1-2s(13)0.5%伊红液染色1-3min(14)蒸馏水稍洗1-2s(15)80%乙醇稍洗1-2s(16)95%乙醇（Ⅰ）2-3s(17)95%乙醇（Ⅱ）3-5s(18)无水乙醇5-10min(19)石炭酸二甲苯5-10min(20)二甲苯（Ⅰ）2min(21)二甲苯（Ⅱ）2min(22)二甲苯（Ⅲ）2min(23)中性树胶封固注：①第（11）、（12）步可省去，（13）步冲水时间需延长至20-30min。

②第（21）步如果不用石炭酸二甲苯，可改用无水乙醇。

*冷冻切片HE染色步骤：（1）冰冻切片固定10～30s（2）稍水洗1～2s（3）苏木精液染色（60℃）30～60s（4）流水洗去苏木精液5～10s（5）1%盐酸乙醇1～3s（6）稍水洗1～2s（7）促蓝液返蓝5～10s（8）流水冲洗15～30s（9）0.5%曙红液染色30～60s（10）蒸馏水稍洗1～2s（11）80%乙醇1～2s（12）95%乙醇1～2s（13）无水乙醇1～2s（14）石炭酸二甲苯2～3s（15）二甲苯（Ⅰ）2～3s（16）二甲苯（Ⅱ）2～3s（17）中性树胶封固。

神经染色——精选推荐

神经组织染色包括三部分：基本染色，中枢神经系统染色和周围神经系统染色。

基本染色如HE染色，胶原纤维的VG，Masson三色染色；弹力纤维的Wei gret氏染色；网状纤维的W氏染色；以及细菌，脂类等等。

中枢神经系统特殊染色包括神经细胞，神经纤维，髓鞘，神经胶质细胞及纤维的染色。

周围神经系统的特殊染色包括周围神经髓鞘，轴索及末捎的染色。

神经组织的特殊染色，大多为银浸润法，组织要求以甲醛液固定。

有的如变性髓鞘，尼氏小体等的显示，则须特殊的固定液固定，否则得不出正确的结果。

同时，由于神经组织及易收缩，脱水时应从低浓度的脱水剂开始。

神经组织的特殊染色所用各种试剂要求化学纯，试剂用量要准确，临用时新鲜配制。

配制试剂的蒸馏水以双蒸水为佳，所盛试剂的容器以清洁有色玻璃瓶；避免用金属器械或手接触试剂3.1．尼氏小体染色3.1.1.甲苯胺兰或琉菫染色法[固定]新鲜组织以95%酒精溶液固定，石蜡切片8μm。

[试剂]1%甲苯胺兰—硼砂水溶液（或01-05%琉堇水溶液）分化液：苯胺 10ml95%酒精 90ml或：木榴油 5ml玉树油 40ml二甲苯 50ml纯酒精 15ml（用时以等量纯酒精稀释）[操作步骤]1．石蜡切片脱蜡至水。

2．1%甲苯胺兰—硼砂液于56℃温箱内30分钟；或酒精灯火焰上加温至染液冒气，待冷却后再加温反复三次，约5分钟，蒸馏水洗。

3．分化液分化（95%酒精分化）：至基质呈浅蓝色或近无色，尼氏小体清晰可见（镜下控制）。

4．纯酒精脱水，透明，封固。

[结果]尼氏小体呈蓝色或紫色；细胞核呈蓝色；基质无色。

[应用]用于神经损伤，白喉，婴儿麻痹症等传染病时，其尼氏小体的数量减少，位置改变甚至溶解，消失。

[注意事项]超过24小时后的尸体检材，尼氏小体常常消失，变形，再证示其则极不准确。

尼氏小体为粗细不等的颗粒集合成多角或长形之小体，位于神经细胞质内。

易被甲苯胺兰，琉堇及焦油紫等染料所染，但被染切片易褪色，不易长期保存。

三种胶原纤维染色法评价宫腔粘连的比较

三种胶原纤维染色法评价宫腔粘连的比较陈醒;毛乐乐;周应芳;白文佩【摘要】目的比较Masson染色、van Gieson染色、天狼猩红(Sirius red)染色三种胶原纤维染色方法在大鼠宫腔粘连模型中的评价效果.方法取24只成年雌性SD大鼠,暴露两侧子宫,左侧子宫剪开宫腔后使用机械性刮宫的方法损伤大鼠子宫内膜层,然后关腹,制作大鼠宫腔粘连模型.右侧子宫作为对照.术后14 d取材,行HE 染色、Masson染色、van Gieson染色、天狼猩红染色,对子宫组织纤维化进行评估.结果刮宫后子宫组织HE染色显示子宫内膜上皮层消失,子宫内膜腺体数量显著减少(P< 0.01).三种染色法均能清楚地染出胶原纤维.三种染色方法计算出的纤维化面积比,Masson染色(甲苯胺蓝)高于Masson染色(亮绿)、van Gieson染色和天狼猩红染色(P< 0.01).天狼猩红染色法能够在偏振光显微镜下明确区分Ⅰ型和Ⅲ型胶原纤维,Masson及van Gieson染色法则不能区分.结论天狼猩红染色较Masson染色和van Gieson染色能够更好地显示宫腔粘连组织的纤维化程度,并能区分胶原纤维的类型.%Objective To compare Masson staining,van Gieson staining,and Sirius red staining for evaluation of an intrauterine adhesion(IUA)model in rats. Methods In total,24 female adult Sprague-Dawley rats were selected and bilateral uteri exposed. To establish an IUA rat model, the left uterus was cut and the endometrium scraped using a scalpel. The right uterus was used as a control. Fourteen days after surgery, all uteri were collected for histological evaluation of IUA by hematoxylin and eosin(HE)staining,Masson staining,van Gieson staining,and Sirius red staining. Results HE staining showed that the endometrial epithelial layer of the uterus was absent, with a smaller number of endometrial glandsthan the control uterus(P < 0.01). Collagen fibers were clearly visible using all special staining method. The fibrotic area rate of uteri by Masson staining(using toluidine blue)was higher than Masson staining(using light green),van Gieson staining,and Sirius red staining(P< 0.01). Under polarized light,type I and type III collagen fibers were clearly distinguished by Sirius red staining,but not using Masson and van Gieson staining. Conclusions Sirius red staining is a superior method than Masson and van Gieson staining for evaluation of fibrosis in IUA and can also differentiate collagen fiber types.【期刊名称】《中国比较医学杂志》【年(卷),期】2018(028)005【总页数】6页(P34-38,45)【关键词】宫腔粘连;子宫内膜;纤维化【作者】陈醒;毛乐乐;周应芳;白文佩【作者单位】北京大学第一医院妇产科,北京 100034;北京大学第一医院妇产科,北京 100034;北京大学第一医院妇产科,北京 100034;首都医科大学附属北京世纪坛医院妇产科,北京 100038【正文语种】中文【中图分类】R-33宫腔粘连(intrauterine adhesion，IUA)又称Asherman综合征，是由于各种原因导致的子宫内膜基底层破坏，进而产生瘢痕修复，造成的宫颈管或宫腔部分或完全闭锁的一类疾病。